Name: Zebrafish 배아 Neuroepithelium의 투과율에 대한 분석 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-10-24T12:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 37 s
Description: 배우세요 제브라피시 배아 신경상피 투과율 정량화 방법을 형광 염료 주입과 시간 경과 이미징으로 분석하는 기술입니다. 이 방법은 신경발달 장애 연구에 활용됩니다.

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이 작품은 국립 정신 건강 연구소와 국립 과학 재단 (National Science Foundation)에서 지원되었습니다. 전문가 생선 축산에 대한 많은 유용한 토론과 건설적인 비판, 그리고 올리버 Paugois에 대한 Sive 연구소 회원에게 특별 감사드립니다.

1. Microinjection 준비 <ol><li> 셔터 계기 바늘 풀러를 사용하여 모세관 튜브를 당겨 microinjection의 바늘을 준비합니다. </li><li> 형광 염료와로드 microinjection의 바늘 (FITC-Dextran). </li><li> micromanipulator 및 microinjection 장치에 바늘을 탑재합니다. </li><li> 조심스럽게 폭 약 2 μm로 집게를 사용하여 microinjection의 바늘을 부러 그러나, 이렇게하면 microinjector 설정에 따라 달라집니다. 우리 microinjection의 바늘이 구부리하지 않는 끝에서 바늘의 첫 번째 지역에 해당합니다. </li><li> 각각의 주입은 1 NL을 제공합니다 있도록 분사 시간과 압력을 조정, 기름에 방울 크기를 측정합니다. 하버드 장치 microinjector 예를 들어 설정은 다음과 같습니다 P 잔액 = 1.4 PSI, P = 1.4 PSI 아웃, P는 0.4-0.7 초의 분사 시간 = 22.9 PSI, P 명확 = 67.8 PSI를 삽입. 이러한 설정을 사용하여 Google 바늘의 직경은 약 2 μm이다. 그러나, 설정 microinjector 구체적으로, 그리고이 달라집니다바늘 직경 쪽에서 그러는데 마이애미의 해변 에선. </li></ol> 2. 태아 준비 <ol><li> 코트는 2 각 조건 물에 1% 아가로 오스와 요리 1-200 μl 피펫 팁과 아가로 오스에 포크 구멍, 그리고 아가로 오스 플러그를 제거합니다. 배아 미디어와 요리를 채 웁니다. </li><li> 사용 포셉, stereomicroscope 18 명의 hpf 세 이상 dechorionate 배아. 태아도 Kimmel 외에 따라 개최됩니다. 11. </li><li> 첫째 아가로 오스 코팅 그릇에 dechorionated 배아를 전송합니다. </li><li> 배아는 (Westerfield 12에 따라 변경) 이동 중지 할 때까지 배아를 마취시키기 위해서, 음식에 tricaine을 (0.1 밀리그램 / ML)를 추가합니다. </li></ol> 3. 뇌 심실을 주입 <ol><li> 동양의 배아 그래서 당신은 구멍에 배의 꼬리를 넣어 자신의 등쪽 옆에 찾고 있습니다. 귀하의 micromanipulator가 오른쪽에 있으면 forebrain의 오른쪽에 왼쪽과 hindbrain에이되도록 한 다음 배아를 이동합니다. </li><li> 무선의 위치 바늘hindbrain의 심실의 목적지 가리 킵니다. </li><li> 난황 (그림 1A)로 뇌의 깊이 통과하지 않도록 것 hindbrain의 심실의주의 깊게 관통 지붕 판. </li><li> 염료는 뇌 심실의 전체 길이를 채우고 확인하는 심실에 형광 염료를 1-2 NL를 삽입. </li><li> 배아 미디어로 가득 번째 아가로 오스 코팅 접시에 배아를 전송하고 다시 마취로 2.4에 설명되어 있습니다. </li><li> 즉시로 시간 제로 이미지를 위해 제 4에 설명 된 이미지를 시작합니다. </li></ol> 4. 영상 <ol><li> 구멍에 자신의 꼬리 동양의 배아는 3.1에 ​​설명되어 있습니다. </li><li> brightfield의 ​​등쪽 이미지를 취할 전송 및 형광등을 모두 빛으로 해부 현미경을 사용합니다. 다른 배아의 이미지 사이의 배율이 일정하게 유지. 이 이미지 J (5.2-6)를 사용하여 수행 분석의 직접적인 비교를 할 수 있습니다. </li><li> 태아의 현미경이나 접시를 이동하지 않고,을해당 형광 이미지. </li><li> 원하는 시간 지점에서 각각의 배아에 대해 반복합니다. </li></ol> 5. 염료 운동의 정량화 <ol><li> 이전 Gutzman와 Sive (10)에 의해 설명 된대로 포토샵에서 brightfield 및 형광 이미지를 병합합니다. </li><li> 거리에게에서 제공 이미지 J 소프트웨어의 염료 전면 이동 측정 <a href="http://rsbweb.nih.gov/ij/" target="_blank">http://rsbweb.nih.gov/ij/을</a> . </li><li> 이미지 J와 neuroepithelium에서 10-20 ° 각도 (그림 1A)에서 전면 색깔을 할 수있는 forebrain 힌지 점에서 라인을 그릴 줄 도구를 사용에서 열기 병합 파일을 만듭니다. 이 야생 유형 neuroepithelium 밖으로 누출되는 염료의 최초이자 가장 눈에 띄는 사이트입니다 때문에이 지역은 선정되었습니다. </li><li> 라인의 길이를 계산하기 위해 측정 도구를 선택합니다. </li><li> 할 때마다 포인트에 대해 반복합니다. </li><li> 염료 앞에 다른 시간 지점에서 t = 0에서 거리를 차감하여 시간이 지남에 따라 이동 순 거리를 계산합니다. </li><li> 에 플롯그래프. </li></ol> 6. 대표 결과 야생 유형 배아를 사용하여 neuroepithelial 투자율 분석에서 얻은 결과의 예는 그림 1B-D로 표시됩니다. 정확하게 투과성을 차별화하는 데, 그것은 야생 유형 또는 제어 배아 (그림 2)에서만 약간 새는있는 크기를 식별하는 다른 분자 weightsto와 염료를 테스트하는 데 유용합니다. 이 유전자 돌연변이 나 환경 조건의 식별을 허용 그 중 증가 또는 감소는 투자율 (그림 1D, 녹색과 붉은 라인을 각각). 24 hpf의 zebrafish의 neuroepithelium를 들어, 70 kDa FITC Dextran 누출 천천히 2 시간 이상, 2,000 kDa이되지 않고 즉시 10 kDa 누수가 아웃 반면. 따라서 70 kDa 모두 증가하고는 neuroepithelial 투자율이 감소하는 조건을 식별 할 수있는 이상적인 분자량입니다. 바늘은 심실 내강, 형광 w를 그리워하는 경우병 t에서 뇌 이외의 표시 = 0 (예를 들어 Gutzman과 Sive 2009 년 10 참조). 주입 된 색소는 처음 뇌에 포함되지 않은 및 neuropeithelium의 염료 및 투자율의 움직임에 대한 명확한 결론이 내려 수 없습니다 때문에 이러한 배아는 폐기해야합니다. 마지막으로, 배아 전에 형광 염료의 주입을 수행 할 수있는 작은 심실 또는 해제 - 팽창 뇌 심실, 생리 식염수로 심실의 사전 주입이있는 경우. 이 형광 염료를 주입하면 쉽게 심실의 후속 시각화하는 심실 웃기 구 있네. 적절한 컨트롤은 생리의 주입이 정상 신경 튜브의 개발을 방해 여부를 판단하기 위해 수행해야합니다. <img alt="그림 1" src="/files/ftp_upload/4242/4242fig1.jpg" /> 1 그림. 다른 분자량의 염료의 시간 코스입니다. (A) 실험 다이어그램. 처음으로, 형광 색소는 심실에 주입되어 있습니다. X 분사에 대한 바늘의 = 위치. 다음 등쪽의 이미지는 시간이 지남에 캡처됩니다. 마지막으로, 거리 경첩 점은 (빨간색 선으로 표시) 측정 forebrain에서 염료를 전면으로 옮겼습니다. (BC) 22 hpf (t = 0 분, B), 24 hpf (t = 120 분, C)에서 brightfield 및 형광 등의 이미지를 흡수 합병. 화이트 라인은 forebrain 심실에서 염료 앞의 거리를 나타냅니다. (D) 가정 해봐 샘플 투자율 데이터입니다. 블루 = 야생 종류 나 컨트롤 제어 상대적으로 증가 투자율과 감소 제어 할 상대 투자율, 그리고 녹색 = 샘플과 붉은 색 = 샘플. <img alt="그림 2" src="/files/ftp_upload/4242/4242fig2.jpg" /> 그림 2. 다른 분자량의 염료에 neuroepithelial 투자율의 측정. (AE) 등의 병합 brightfield과 t 22 hpf 야생 유형 배아의 형광 이미지 = 0 분 FITC-D로 주입 후10 kDa (A), 40 kDa (B), 70 kDa (C), 500 kDa (D)와 2,000 kDa (E) 다음 분자량의 extran. t = 24 hpf의 120 분의에서와 같이 (A&#39;-E &#39;)과 동일 배아 (AE). 왼쪽 앞. F = forebrain, M = midbrain, H = hindbrain. 별표 = 귀.

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</ol>

관심 없음 충돌이 선언 없습니다.

우리는 주어진 분자 무게의 주입 염료에 대한 결정으로 생활 배아 zebrafish의 뇌의 투자율을 수량화 할 수있는 능력을 보여줍니다. 배아 zebrafish의 neuroepithelium는 분자 가중치를 서로 다른의 염료에 differentially 투과성있는 것으로 관찰 염료가 paracellular 투자율을 통해 이동하는 것이 좋습니다. 그러나, 우리는 관찰 투자율에 transcellular 공헌의 가능성을 배제 할 수 없습니다. 이 기술은 튜브의 내부와 외부 모두 볼 수 있으며 내강이 주입 될 수있는 한 다른 관 구조에 적용 할 수 있습니다. 그러나, 다른 기관에 이상적인 분자 무게의 식별이 조직 및 발달 단계 사이에 다를 수 있습니다에 따라 결정해야합니다. 이 분석은 루멘 인플레이션 및 루멘 크기의 규정 동안 상피 투자율의 역할에 더 조사를 수있게 될 것입니다. 또한이 기술은 그 거예요LP는 뇌수종과 polycystic 신장 질환 등의 질환과 관련된 상피 투자율에 변...

<table border="1"><tbody><tr><td> 시약의 이름 </td><td> 회사 </td><td> 카탈로그 번호 </td></tr><tr><td> Dextran, Fluorescein, 음이온, 리신 고칠 수 </td><td> Invitrogen </td><td> D7136, D7137, D1822, D1820, D1845 </td></tr><tr><td> Tricaine 분말 </td><td> 시그마 </td><td> A5040 </td></tr><tr><td> 모세관 튜브 </td><td> FHC 주식회사 </td><td> 30-30-1 </td></tr></tbody></table>

zebrafish 배아 neuroepithelium의 투과율에 대한 분석

An Assay for Permeability of the Zebrafish Embryonic Neuroepithelium

뇌 심실 시스템은 vertebrates 사이에 보존되어 있으며 뇌 개발의 초기 단계에서 형성과 동물의 삶을 통해 유지 뇌 심실라는 상호 충치의 일련의로 구성되어 있습니다. 뇌 심실 시스템은 vertebrates에서 발견하고, 심실은 중앙 루멘은 뇌척수 (CSF) 1,2로 채워 때, 신경 튜브 형성 한 후 개발을하고 있습니다. CSF는 정상적인 두뇌 개발과 기능 3-6을 위해 필수적이며 단백질 풍부한 액체이다. 신경 튜브가 폐쇄 된 후 zebrafish에서 뇌 심실 인플레이션은 약 18 시간 게시물 수정을 (hpf)에서 시작됩니다. 여러 프로세스가 neuroepithelium 형성, 투자율 및 CSF의 생산을 조절 긴밀한 접합 형성 등의 뇌 뇌실 형성와 연결되어 있습니다. 우리는이 모든 과정에 영향을 미치는, 오세영가 K-ATPase는 뇌 심실 인플레이션 필요하다고 보여claudin의 5A 꼭 접합부 형성 9 필요한 반면 에스 7,8. 또한, 우리는 마이 오신의 억제를 통해 배아 neuroepithelium의 &quot;휴식&quot;을 보여 뇌 심실 인플레이션과 연결되어 있습니다. zebrafish의 뇌 심실 인플레이션 동안 투자율의 규정을 조사하기 위해, 우리는 심실 염료 유지 분석을 개발했습니다. 이 방법은 휘황 중추 신경계에 라벨을, 거실 zebrafish의 배아, 이전에 우리 연구소 10 개발 기술에 뇌 뇌실 주입을 사용합니다. 태아는 다음 뇌 심실과 neuroepithelium을 통해 형광 염료 이동으로 시간이 지남에 따라 이미징 있습니다. 거리 염료 전면 정량 멀리 시간이 지남에 따라 neuroepithelium의 기초 (비 luminal) 측에서 이동하고 neuroepithelial 투자율의 측정 (그림 1)입니다. 우리는 염료 70 kDa과 작은이 neuroepithelium을 통해 이동한다는 관찰하고 detecte 할 수 있습니다24 hpf (그림 2)에서 배아 zebrafish의 뇌 이외의 D. 이 염료 유지 분석은 개발 기간 동안 다른 시간에 서로 다른 유전 배경을 다양한 neuroepithelial 투자율을 분석하는 데 사용, 환경 섭동 후 할 수 있습니다. 또한 CSF의 병적 인 축적을 조사에 유용 할 수 있습니다. 전반적으로,이 기법은 수사관 개발과 질병 중 투자율의 역할과 규정을 분석 할 수 있습니다.

우리는 배아 zebrafish의 뇌의 투자율의 라이브 전체 동물 양적 측정을 설명합니다. 기술은 신경 튜브 내강 내에서 서로 다른 분자 무게의 중추 신경계와 분자를 보유 할 수있는 능력을 분석하고 심실의 움직임을 단정 지을. 이 방법은 개발과 질병 중 상피 투자율과 성숙의 차이를 결정하는 데 유용합니다.

Zebrafish 배아 Neuroepithelium의 투과율에 대한 분석

뇌실 계통은 척추동물 전반에 걸쳐 보존되어 있으며, 뇌실이라 불리는 일련의 상호 연결된 강(cavity)들로 구성되어 있으며 이는 ...

본 절차의 전반적인 목표는 제브라피쉬 배아 신경 상피의 투과성을 정량화하는 것입니다. 이는 먼저 70 kilodalton FITC-dextran을 뇌실에 주입함으로써 수행됩니다. 그 다음, 명시야 및 형광 이미지의 타임코스 데이터를 획득합니다.그 다음, 각 시점마다 전뇌 힌지 지점(forebrain hinge point)으로부터 형광 염료까지의 거리를 측정합니다. 마지막으로, 시간에 따른 이동 거리를 계산합니다. 궁극적으로, 서로 다른 유전적 배경이나 환경 조건을 비교함으로써 신경 상피 투과성의 변화를 보여주는 결과를 얻을 수 있습니다.본 실험 절차의 전체적인 목적은 제브라피쉬 배아 신경 상피의 투과성을 정량화하는 것입니다. 주입을 준비하기 위해, 미리 준비된 주입 바늘에 형광 염료를 충전하고, 조작기 및 미세주입 장치에 바늘을 장착하십시오. 핀셋을 사용하여 미세주입 바늘의 끝을 약 2 µm 너비가 되도록 조심스럽게 절단하십시오.각 주입 시 1 nanoliter가 전달되도록 주입 시간과 압력을 조정하여 오일 내의 방울 크기를 측정하십시오. 배아를 준비하기 위해 각 조건당 두 개의 디쉬에 1% agros 수용액을 코팅하고, 200 microliter 피펫 팁을 사용하여 agros에 구멍을 뚫어 플러그를 제거하십시오. 실체 현미경 하에서 디쉬에 배아 배지를 채우십시오. 포셉을 사용하여 수정 후 18시간 이상 경과한 배아를 염소 처리하십시오.그런 다음 배아를 마취하기 위해 agros 코팅 디쉬 중 하나로 옮깁니다. 디쉬에 trica를 첨가하고 배아의 움직임이 멈출 때까지 기다립니다. 배아의 꼬리 부분을 구멍에 넣어 배아의 등쪽이 보이도록 방향을 잡습니다.마이크로 매니퓰레이터가 오른쪽에 있는 경우, 전뇌가 왼쪽으로, 후뇌가 오른쪽으로 가도록 배아를 이동시킵니다. 바늘을 후뇌 뇌실의 가장 넓은 지점에 위치시킵니다. 다음으로, 뇌의 깊숙한 곳을 지나 난황까지 도달하지 않도록 주의하며 후뇌 뇌실의 지붕판을 조심스럽게 관통합니다.그런 다음 1~2 nL의 형광 염료를 뇌실에 주입하며, 염료가 뇌의 전체 길이를 채우는지 확인하십시오. 뇌실. 배아를 배아 배지가 채워진 두 번째 아가로스 디쉬로 옮기고 다시 마취시킵니다. 시간대별 이미지를 얻기 위해 즉시 이미징 단계로 이동하십시오.배아를 촬영하기 위해 제로 이미지를 얻습니다. 이전과 같이 투과광과 형광광을 모두 갖춘 해부 현미경 아래에서 배아의 꼬리 부분이 구멍 쪽으로 향하도록 방향을 잡습니다. 명시야 등면 이미지를 촬영합니다.배아 현미경이나 배양 접시를 이동시키지 않고 직접 비교할 수 있도록 배아 간의 배율을 일정하게 유지하십시오. 이에 대응하는 형광 이미지를 촬영하고, 각 배아와 원하는 각 시점마다 이 과정을 반복합니다. 염료의 이동을 정량화하려면 Photoshop을 사용하여 명시야 이미지와 형광 이미지를 병합하십시오.그다음 염료 전선이 이동한 거리를 측정하기 위해, Image J를 사용하여 병합 파일을 열고 직선 도구를 사용하여 전뇌 힌지 지점(forebrain hinge point)부터 신경 상피(neuro epithelium)와 10~20도 각도를 이루도록 염료 전선까지 선을 긋습니다. 측정 도구를 선택하여 선의 길이를 계산합니다. 마지막으로, 다른 시점의 거리에서 0시점의 거리를 빼서 시간에 따른 염료 전선의 순 이동 거리를 계산합니다.표시된 그래프에 움직임을 도식화하십시오. 다음은 야생형 배아를 사용한 신경 상피 투과성 결과의 예시입니다. 여기에 제시된 병합된 명시야 이미지는 각각 수정 후 22시간과 24시간에 촬영되었습니다.흰색 선은 전뇌 뇌실로부터 D 전면까지의 거리를 나타냅니다. 그래프는 파란색으로 표시된 대조군 배아와 비교하여, 녹색으로 표시된 투과성 증가 또는 빨간색으로 표시된 투과성 감소를 결정하는 능력을 보여주는 가상의 샘플 투과성 데이터를 나타냅니다. 투과성을 정확하게 구별하기 위해서는 서로 다른 분자량을 가진 염료를 테스트하여 야생형 또는 대조군 배아에서 약간만 누출되는 크기를 식별하는 것이 유용합니다.이를 통해 24시간 동안 투과성을 증가시키거나 감소시키는 유전자 변이체 또는 환경 조건을 식별할 수 있습니다. 수정 후 야생형 제브라피쉬 신경 상피에서 70 kilodalton fitzy dextran은 2시간에 걸쳐 천천히 누출되는 반면, 2000 kilodalton은 누출되지 않으며, 10 kilodalton은 거의 즉시 누출됩니다.따라서 70 kilodaltons는 신경 상피 투과성을 증가시키거나 감소시키는 조건을 식별하는 데 이상적인 분자량입니다. 이 영상을 시청한 후에는 배아 제브라피시의 신경 상피 투과성을 정량화하는 방법에 대해 충분히 이해하게 될 것입니다.

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Research

연구

JoVE Journal

Neuroscience

신경과학

이 비디오에서는, 우리는 공촛점 현미경으로 단세포 해상도 라이브 zebrafish의 배아에서 개발 척추 두뇌를 분석하는 방법을 보여줍니다. 이것은 우리가 단일 셀 zebrafish 배아를 주입하고 이후 개발 두뇌를 마운트와 이미지하는 방법을 포함합니다.

공촛점 현미경으로 Zebrafish 배아 뇌 영상 라이브

이 기사는 유충의 이동을 모니터링하여 독성 화합물에 대한 제브라피쉬의 행동 반응을 설명합니다. 이 프로토콜은 환경 오염 물질에 대한 제브라피시 유충의 반응 예를 더 자세히 살펴봅니다.

Larval Locomotion Assay: 제브라피시 유충에서 화합물의 신경행동 독성을 연구하기 위한 고처리량 방법

이 비디오는 제브라피시 배아에서 운동 뉴런의 전기생리학을 연구하기 위한 비침습적 분석을 보여줍니다. 척수 운동 뉴런의 자발적인 탈분극의 결과로 배아에서 꼬리 코일링을 측정하면 코일링 빈도를 줄이기 위해 나트륨 채널 차단제가 적용됩니다. 다음으로, 배아를 아가로스에 고정시키고 형광 현미경 아래에 놓습니다. 유전자 조작 운동 뉴런은 공여체와 수용체 형광단이 있는 전압 감지 바이오센서를 발현합니다. 수용체 형광단 방출의 감소는 나트륨 채널 차단제로 인한 운동 뉴런의 자발적 탈분극(droppolarization)이 감소했음을 나타냅니다.

제브라피시 배아에서 운동 뉴런의 전기생리학을 연구하기 위한 비침습적 접근 방식

신경 및 비 신경 질환의 많은 지브라 피쉬의 모델 성어보다는 배아 / 유생으로 연구되어 있기 때문에, 우리는 성인 zebrafish의 질병 모델에 적용 할 수있는 양적 측면 라인 회생 분석법을 개발 하였다. 분석은 1) neuromast 2) 개별 머리 세포 수준의 해상도를하고있었습니다.

성인 Zebrafish의의 측면 라인 재생을위한 분석

여기에 설명된 프로토콜은 관심 세포 유형에서 선택적으로 발현되는 형광 공명 에너지 전달(FRET) 기반 유전자 인코딩 전압 지시기(GEVI)와 함께 생체 내 시스템에서 제브라피시 배아를 사용하여 가장 비침습적인 생리학적 조건에서 흥분성 세포의 전기적 특성을 연구할 수 있도록 합니다.

살아있는 Zebrafish 배아에서의 바이오 센스 모터 뉴런 멤브레인 잠재력

여기, 우리가 배아 개발, 운동, 시각화 세포 전기 전압 기자 제 브라 라인을 만드는 과정을 보여 그리고 물고기 종양 vivo에서세포.

Zebrafish 초기 배아에 종양 세포 전기 활동의 시각화

여기서 제시된 것은 성체 제브라피쉬 텔렌세팔론에서 플라스미드 DNA 전달 및 에펜디모글리아 세포 라벨링을 위한 전기개공 방법이다. 이 프로토콜은 개별 ependymoglial 세포를 구상하고 추적하는 빠르고 효율적인 방법이며 광범위한 유전 조작에 전기 증시인을 적용할 수있는 새로운 가능성을 열어줍니다.

성체 얼룩말 기피 텔렌세팔론에서 플라스미드 DNA의 생체 내 전달을 위한 전기 개공 방법

혈액-뇌 장벽 무결성은 신경계 기능에 매우 중요합니다. Drosophila melanogaster에서는,혈액 두뇌 방벽은 늦은 배아 발생 도중 신경교 세포에 의해 형성됩니다. 이 프로토콜은 D. melanogaster 태아 및 제 3 instar 애벌레에 있는 혈액 두뇌 방벽 대형 및 유지보수를 위한 분석하는 방법을 기술합니다.

초파리 멜라노가스터의 혈액-뇌 장벽 무결성에 대한 분석

레이저 절제는 생물학적 시스템의 재생을 연구하는 데 널리 적용되는 기술입니다. 제시된 프로토콜은 제브라피시 측면에서 신경마비 세포를 재생시키는 레이저 절제 및 후속 시간 경과 화상 진찰을 위한 표준 레이저 스캐닝 공초점 현미경의 사용을 설명합니다.

제브라피시 간 신경종 세포의 공초점 현미경 기반 레이저 절제 및 재생 분석

제브라피시 배아 진동 놀람 반응을 기반으로 화합물 독성을 평가하기 위한 스크리닝 시스템의 워크플로우 및 데이터 분석에 대해 설명합니다. 이 시스템은 진동 자극에 노출된 제브라피시 배아의 움직임을 기록하고 일반 독성/치사율 및 신경근 독성을 통합적으로 평가할 수 있습니다.

제브라피시 진동 놀람 반응 스크리닝 시스템을 사용한 화학물질의 독성 평가

이 프로토콜은 Evan의 청색 염료 기반 평가를 사용하여 성인 제브라피쉬(Danio rerio) 모델에서 혈액뇌장벽(BBB) 무결성을 평가하는 신뢰할 수 있는 방법을 제시하여 신경혈관 파괴의 정성적 및 정량적 분석을 모두 가능하게 합니다.

게이트키퍼 시각화: 성인 제브라피쉬의 혈액-뇌 장벽 투과성에 대한 Evan의 파란색 염료 기반 평가

배우세요 제브라피시 배아 신경상피 투과율 정량화 방법을 형광 염료 주입과 시간 경과 이미징으로 분석하는 기술입니다. 이 방법은 신경발달 장애 연구에 활용됩니다.

Zebrafish 배아 Neuroepithelium의 투과율에 대한 분석

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