2012년 10월 31일
여러 후보 생체의 높은 처리량 검증은 동결 / 해동 사이클을 최소화하고 귀중한 플라즈마 샘플을 사용하기 위해 순차적 엘리사에 의해 수행 할 수 있습니다. 여기, 우리는 순차적으로 여섯 가지 검증 플라즈마 생체에 대한 ELISAs을 수행하는 방법을 보여줍니다 1-3 이식 - 대 - 호스트 질환 (GVHD)의 4 동일한 플라즈마 샘플 있습니다.
다음 실험의 전반적인 목표는 단백질체학에 의해 발견된 많은 수의 새로운 바이오마커를 효율적으로 분석하기 위해 고처리량 순차 Eliza를 사용하는 것입니다. 이는 먼저 소스 플레이트에 샘플을 추가함으로써 달성되며, 이 플레이트는 각 바이오마커에 대한 희석을 생성하고 테스트 사이에 회수된 혈장을 저장하는 데 사용됩니다. 다음으로, 환자 샘플에서 단백질의 농도를 결정하기 위해 각 단백질에 대해 Eliza's를 실행합니다.
궁극적으로, 급성 이식편과 숙주 질환의 임상 증상이 시작될 때 이러한 바이오마커의 단백질 수준 상승을 평가할 수 있습니다. 기존 방법에 비해 이 기술의 주요 장점은 순차 분석기가 over multiplexing 플랫폼에서 항상 사용할 수 있는 것은 아닌 여러 새로운 단백질을 분석할 수 있다는 것입니다. 이 기술의 의미는 급성 이식편과 숙주 질환의 진단으로 확장됩니다.
이 방법을 통해 검증된 바이오마커는 현재 임상 치료를 위해 연구되고 있습니다. 이 방법은 외상 후 시적 줄기 세포 이식의 합병증에 대한 통찰력을 제공 할 수 있습니다. 또한 폐 이식, 합병증, 폐암 또는 진단용 혈액 검사가 유용한 잠재적으로 모든 질병과 같은 다른 질병에 대한 바이오마커 발견 및 검증에 적용할 수 있습니다.
재현성과 낮은 배치 변동성을 보장하기 위해 여러 단계를 일관되게 수행하는 것이 중요하기 때문에 이 방법을 시각적으로 시연하는 것이 중요합니다.실험 전날, 15, 300 RCF 및 섭씨 4도에서 10분 동안 생각 혈장 부분 표본 샘플을 스핀다운하여 혈장에서 하단의 혈전과 상단의 지질을 분리합니다. 그런 다음 사전 정의된 맵에 따라 수동 피펫팅을 통해 각 샘플의 희석되지 않은 플라즈마 150마이크로리터를 96웰 V 바닥 플레이트에 플레이트합니다. 플레이트를 Paraform으로 감싸고 최대 72시간 동안 섭씨 4도의 인간 챔버에 놓습니다.
다음으로, IL 2 수용체 알파 및 인간 성장 인자 또는 HGF 포획 항체를 제조업체의 사양 플레이트에 따라 재구성 및 희석한 후 각 항체의 50 마이크로리터 분취량을 각각의 96 웰 고결합 하프 웰 플레이트의 각 웰에 넣습니다. 그런 다음 이 플레이트를 플레이트 씰러로 밀봉하고 섭씨 4도에서 밤새 배양합니다. 이제 제조업체의 프로토콜에 따라 제조업체의 코팅 버퍼로 reg 3 알파를 희석하고 용액의 플레이트 25 마이크로 리터를 3 84 웰 맥서 플레이트가 없는 각 웰에 넣습니다.
그런 다음 이 플레이트를 실험 첫날에도 섭씨 4도에서 밀봉하여 보관하십시오. IL 2 수용체 알파 테스트 플레이트를 세척하고 TBS에서 블로토로 차단하는 것으로 시작합니다. 표준을 재구성한 후 제조업체의 프로토콜에 따라 8점 표준 곡선을 설정합니다.
다음 플레이트, 50 마이크로리터의 희석되지 않은 플라즈마와 50 마이크로리터의 각 표준물질이 소스 플레이트에서 ELIZA 테스트 플레이트까지 복제됩니다. 그런 다음 300RPM으로 설정된 플레이트 로테이터에서 실온에서 밀봉된 플레이트를 배양합니다. 2시간 후, IL 2 수용체 알파 ELIZA 테스트 플레이트에서 혈장을 회수하고 희석되지 않은 혈장 소스 플레이트에 다시 놓습니다.
그런 다음 제조업체의 프로토콜에 따라 EIA를 완료 한 후, 풍부한 3 알파 Eliza에 대해 450-570 나노 미터로 설정된 플레이트 리더를 사용하여 각 웰의 광학 밀도를 읽고, 먼저 10 마이크로 리터의 희석되지 않은 플라즈마를 별도의 뷰 바닥 소스 플레이트로 이동 한 다음 제조업체가 제공 한 희석 버퍼의 90 마이크로 리터를 각 웰에 추가하여 1-10 희석 소스 플레이트를 만듭니다. Reg three alpha Eliza를 완료 한 후 제조업체의 프로토콜에 따라 384 웰 플레이트에 스톱 솔루션을 추가하고 450-620 나노 미터로 설정된 플레이트 리더를 사용하여 각 웰의 광학 밀도를 읽습니다. 코끼리 및 tn FFR 1개의 포획 항체를 재구성하고 희석한 후, 제조업체 사양 코드에 따라 각각 96웰의 높은 결합 하프 웰 플레이트의 각 웰에 50마이크로리터의 포획 항체가 함유되어 있습니다.
그런 다음 밀봉된 테스트 플레이트를 코끼리 플레이트의 경우 실온에서, TN FFR 원 플레이트의 경우 섭씨 4도에서 밤새 배양합니다. IL 2 수용체 알파 Eliza를 완료한 후 60마이크로리터의 희석되지 않은 혈장을 새로운 소스 플레이트로 전달합니다. 그런 다음 PBS에서 60 마이크로 리터의 1 % BSA를 각 웰에 1-2 개의 희석 된 플라즈마 소스 플레이트를 만듭니다.
다음으로 TBS에서 LOTTO로 HGF 테스트 플레이트를 세척하고 막은 다음 8점 표준 곡선 희석을 설정합니다. 플레이트를 세척한 후 차단 단계 플레이트 50마이크로리터를 따라 1-2개의 희석된 플라즈마와 EISA 테스트 플레이트의 각 표준물질의 부분 표본을 복제합니다. 그런 다음 밀봉된 플레이트를 300RPM으로 설정된 플레이트 로테이터에서 실온에서 밤새 배양합니다.
다음 날 아침, HGF Eliza 테스트 플레이트에서 1-2개의 희석된 혈장을 회수하여 1-2개의 희석된 혈장 소스 플레이트에 다시 놓습니다. EIA를 완료한 후 제조업체의 프로토콜에 따라 실험 두 번째 날에 450-570나노미터로 설정된 플레이트 리더를 사용하여 각 웰의 광학 밀도를 읽습니다. 먼저 10 마이크로 리터의 희석되지 않은 플라즈마를 새로운 소스 플레이트로 옮긴 다음 PBS에서 190 마이크로 리터의 1 % BSA를 1-20 개의 희석 플라즈마로 만듭니다.
그런 다음 코끼리를 완성 한 후 Eliza는 제조업체의 프로토콜에 따라 450-570 나노 미터로 설정된 플레이트 리더를 사용하여 광학 밀도를 읽습니다. TN FFR의 경우, Eliza는 먼저 25마이크로리터의 1%BSA 및 PBS를 1-20 소스 플레이트에 추가하여 웰당 1-25개의 희석된 플라즈마 125마이크로리터를 생성합니다. 그런 다음 제조업체의 프로토콜에 따라 TN FFR 1 EIA를 완료한 후 I-L-H-E-I-A 첫 번째 전달을 위해 450 - 570 나노미터로 설정된 플레이트 리더를 사용하여 각 웰의 광학 밀도를 읽고, 1 - 2개의 희석된 플라즈마 60마이크로리터를 새 소스 플레이트에 넣은 다음 각 웰에 180마이크로리터의 IL 8 희석제를 추가하여 1 - 6개의 희석된 플라즈마 소스 플레이트를 만듭니다.
그런 다음 제조업체의 프로토콜에 따라 ILH Eliza를 완료한 후 450-570나노미터로 설정된 플레이트 리더를 사용하여 각 웰의 광학 밀도를 읽습니다. 마지막으로, 모든 Eliza가 완료되면 사용하지 않은 토크 플라즈마를 생각 Eloqua로 교체하고 나중에 사용할 수 있도록 동결합니다. 이 그래프에서, 초기 reg 3 알파 위장 이식편 대 숙주 질환 바이오마커 보고서를 위해 테스트된 1084명의 환자에 해당하는 reg 3 알파 농도를 측정하는 7개의 서로 다른 ELIZA 플레이트의 표준 곡선에 대한 광학 밀도는 플레이트 간의 일관된 광학 밀도를 표시하여 실험 간에 일관된 단백질 농도 측정을 보장합니다.
혈장 샘플의 단백질 농도는 샘플 광학 밀도를 표준 곡선 광학 밀도와 비교하여 계산되었습니다. 로봇처럼 깨끗한 처리 플랫폼을 사용하여 재현성을 더욱 높이는 동시에 Eliza 및 창의적인 폼 웰 플레이트를 실행하는 데 사용되는 플라즈마의 양을 줄일 수 있습니다. 이 절차를 계획하는 동안 희석되지 않은 플라즈마인 EIS를 먼저 실행하여 개발 후 후속 실험에서 회수하고 사용할 수 있도록 하는 것이 중요합니다.
이 기술은 단백질체학 분야의 연구자들이 순차적 Eliza s의 보편적인 사용을 통해 관심 있는 모든 질병에서 후보 바이오마커를 탐색할 수 있는 길을 열었습니다. 이 동영상을 시청한 후에는 소량의 혈장을 사용하고 자유 주기를 최소화하면서 순차적 E를 사용하여 여러 바이오마커를 검증하는 방법을 잘 이해하게 될 것입니다.
이 연구는 이식 대 숙주 질환(GVHD)과 관련된 여러 혈장 바이오마커를 검증하기 위한 고처리량 순차적 ELISA 방법을 보여줍니다. 이 기술은 동결/해동 사이클을 최소화함으로써 귀중한 혈장 샘플의 효율적인 분석을 가능하게 합니다.
Validating multiple plasma biomarkers from limited, irreplaceable patient samples is a critical bottleneck in translational biomarker discovery for acute graft-versus-host disease (GVHD). A high throughput sequential ELISA approach enables efficient, reproducible quantification of candidate biomarkers while conserving precious plasma volume and minimizing pre-analytical variability. This supports early-phase target validation and mechanistic de-risking by providing reliable, multiplex-compatible data from clinically relevant sample types.
The sequential ELISA method fits within the biomarker validation continuum, moving from discovery proteomics through targeted verification to preclinical and clinical correlation, particularly when sample volume and stability are limiting factors.