Name: 표현 복제가 Grb2 신호 복합 단지를 공부하기 위해 높은 콘텐츠 이미징 워크 플로우 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-10-30T13:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 52 s
Description: 학습하세요 Grb2 단백질 상호작용 파트너를 식별하는 고콘텐츠 현미경 분석법을 통해 세포 내 신호 전달 메커니즘을 탐구하는 방법을. HEK293 세포에서 GFP-Grb2의 아세포내 재배치를 관찰하여 생리학적 맥락에서 단백질 복합체 형성을 시각화합니다.

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이 작품은 의학 연구위원회와 마리 퀴리 국제 재 통합 기금 제도 (JKV까지)에 의해 지원되었다.

1. cDNA 표현 클론를 선택 <ol><li> cDNA 라이브러리는 96 - 웰 형식으로 글리세롤 주식의 단일 박테리아 클론으로 제공됩니다. Norgen CP7200의 선택기 메뉴에서 Rearray 명령을 사용하여 96 deepwell (1 ML 잘) 판의 1.5 ML의 LB / A로 소스 플레이트와 예방에서 박테리아 클론을 선택합니다. </li><li> 가스 투과성의 밀폐와 deepwell 판을 봉쇄하고 흔드는에서 37 ° C에서 하루 아침에 품다. </li></ol> 2. cDNA 표현 도서관의 작성 <ol><li> 테이블 탑 원심 분리기에 판 어댑터를 사용 20 분에 2,000 rpm으로 박테리아를 포함하는 deepwell 판을 봐. </li><li> 박테리아 펠렛은 그대로두고, 우물에서 미디어를 대기음. </li><li> 그림 2와 같이 실험실 자동화 워크 스테이션의 데크를 구성합니다. 플라스미드 준비 솔루션은 골짜기 1-5로 배포되고 deepwell 판은 갑판에 배치됩니다. 용출 솔루션 multiwell 트로프deepwell 판에 인접 배치됩니다. 팁은 팁 랙에로드됩니다. </li><li> 진공 매니 폴드를 조립. 플라스미드 바인딩 플레이트는 매니 폴드 내부에 배치되어 있으며 플라스미드 필터 플레이트는 매니 폴드의 상단에 위치합니다. </li><li> 아래로 pipetting과에 250 μl 솔루션 1 (Resuspension 버퍼)로 알약을 Resuspend. </li><li> 250 μl 솔루션 2 (용해 버퍼)의 추가에 의해 박테리아를 Lyse. 플레이트는 봉인하고 완전한는 혼합 수 있도록 거꾸로되어 있습니다. </li><li> 2 분 타이머를 시작합니다. </li><li> 350 μl 솔루션 3 (Neutralisation 버퍼)를 추가합니다. 판을 봉쇄와 3 번 반전. </li><li> 플라스미드 필터 플레이트에 세균 lysates을 전송합니다. </li><li> 5 분에 진공을 적용합니다. </li><li> 필터 플레이트를 제거하고 매니 폴드 상단에 구속력 판을 놓습니다. 1 분에 진공을 적용합니다. </li><li> 추가 세척 (AW) 버퍼 500 μl를 추가합니다. </li><li> 2 분에 진공을 적용합니다. </li><li> 세탁 버퍼 해결 방법 4 900 μl를 추가합니다. 2 분에 진공을 적용합니다. </li><li> 반복의2.14 tep. 추가 15 분에 진공을 적용합니다. </li><li> 매니 폴드 내부의 DNA 수집 판을 놓습니다. 바인딩 플레이트에 용출 버퍼 100 μl를 추가하고 2 분에 품다. </li><li> 10 분에 진공. </li><li> Nanodrop 8000을 사용하여 수집 플레이트 및 측정 DNA 농도를 제거합니다. 일반적으로 ~의 수율은 100 NG / μl이 방법으로 예상 할 수 있습니다. </li></ol> 3. 셀 심는 <ol><li> HEK293 세포는 trypsinized 및 계산됩니다. </li><li> 2 X 10 4 셀은 ThermoFisher 96 - 웰 multidrop을 사용하여 PerkinElmer의 Viewplate의 각도에 투여합니다. </li><li> 세포는 37 하룻밤 incubated 아르 ° C 5 % CO 2. </li></ol> 4. Transfection <ol><li> 25 μl 혈청이없는 미디어의 당 잘 96 - 웰 플레이트 원형 바닥에 cDNA의 100 NG 100 NG GFP-Grb2 플라스미드 DNA의 믹스를 준비합니다. </li><li> 물론 당 0.5 μl Transfectin를 포함하는 25 μl 혈청이없는 미디어를 추가 할 수 있습니다. </li><li> 믹스 및 타이머 구경 시작R 30 분. </li><li> 부드러운 분배 방법을 사용하여 셀에 Transfectin / cDNA 믹스의 50 μl를 전송합니다. 또는 transfection 믹스는 접시에 처음 투여 한 후 세포가 상단에 추가 할 수 있습니다 (역 transfection). </li><li> 37 세포가 하루 아침에 길러 ° C 5 % CO 2. </li></ol> 5. 이미지 수집 <ol><li> 오페라 소프트웨어를 시작합니다. 실험 설정의 화면 스냅 샷은 그림 3에 표시됩니다. &quot;구성&quot;탭을 선택하고 20x 객관적이고 정확한 판 유형을 선택합니다. &quot;칼라&quot;를 확인하는 것은 다른 판 유형 초점을 할 수 있도록 목적에 올바른 값으로 설정되어 있습니다. </li><li> &#39;현미경&#39;탭을 선택합니다. 로 FITC (488 레이저) 및 노출 2로 노출 정의 1 UV (365 레이저). 두 노출에 UV 필터를 활성화 및 카메라 1과 카메라 2 노출 2 노출 1 지정할 수 있습니다. 노출 1, 노출이 40 밀리 초 800 밀리 초에 대한 노출 시간을 설정합니다. </li><li> &#39;현미경&#39;탭을 선택합니다. 전자를 정의UV (365 레이저)로 FITC (488 레이저) 및 노출이 같은 xposure 1. 두 노출에 UV 필터를 활성화 및 카메라 1과 카메라 2 노출 2 노출 1 지정할 수 있습니다. 노출 1, 노출이 40 밀리 초 800 밀리 초에 대한 노출 시간을 설정합니다. </li><li> 노출 1을 선택합니다. 높이 0 μm에 초점을 설정합니다. &quot;포커스&quot;를 선택하십시오. 일단 초점을 맞추고, 카메라 1 노출. 노출 비행기를 최적화하고 &quot;촬영 높이&quot;를 클릭하여 초점 높이를 조정합니다. ~ 3,000의 최대 픽셀 강도를 제공 노출 시간 및 레이저 파워를 변경합니다. 노출 매개 변수를 저장합니다. 노출 2 반복합니다. </li><li> &quot;실험 정의 &#39;탭을 선택합니다. 레이아웃 및 sublayout을 만듭니다. 드래그 및 관련 레이아웃, 노출, 참조 이미지, skewcrop 파일과 sublayout을 놓습니다. 실험을 저장합니다. </li><li> &quot;자동 실험 &#39;탭을 선택하고 이미지를 획득. </li></ol> 6. (ImageJ 1.46h 버전을 기반으로합니다.) 이미지 분석 <ol><li> 를 사용하여 독점 PerkinElmer을 변환합니다. 플렉스 파일은 태그가 지정된 이미지 형식으로. TIF 파일Flex2Volocity 그럼 아카펠라 스크립트. </li><li><ol><li> 스택의 결과, 이미지 시퀀스로 ImageJ에서 이미지를 가져옵니다. </li><li> Hyperstack 메뉴 항목에 이미지 / Hyperstack / 스택을 선택하여 2 채널 hyperstack에 스택을 변환합니다. 조각의 수는 수입 스택의 반으로 설정해야합니다. </li><li> 이미지 / 중복 명령을 사용하여 GFP 채널을 중복 : 중복 hyperstack 확인란을 선택합니다 및 채널 지정 : 1-1하십시오. 향후 중복 스택을 사용합니다. </li></ol></li><li> 프로세스를 선택 / 0.01 % 포화 픽셀과 대비를 향상, 스택 히스토그램을 사용하고 Image/Type/8-bit와 8 비트를 변환합니다. </li><li> 반대로 임계 값 (매개 변수 1) Q = 30으로 Bernsen 알고리즘을 사용하여 15 픽셀 반경 현지 적응 세분화를 정의합니다. 이미지 / 조정 / 자동 지역 임계 값 메뉴에서 검정색 배경 확인란에 흰색 개체을 선택합니다. </li><li> 세분화 품질 관리 : 원본 이미지에 분할 객체 윤곽 오버레이를 생성합니다. </li><li> Featu입자를 분석하여 추출 다시 : 측정 지역, 그리고 각 세포 기관의 총 강도. 결과 파일을 저장합니다. </li><li> R의 기능에 결과 파일을 열고 막대 그래프를 생성합니다. </li></ol> 7. 대표 결과 정상 상태에서는 Grb2은 전체 셀에 걸쳐 현지화되어 있습니다. 성장 인자 수용체의 자극하면 그것은 플라즈마 막에 translocates 및도 4에 도시 된 바와 같이 이후 endosomes에 internalized 있습니다. 바인딩 Grb2 할 수있는 세포 표면 수용체의 표현이 translocation을 유발하기에 충분합니다. 전형적인 심사 실험에서 GFP-Grb2 현지화에 변화가 관찰되지 않습니다. 그러나, 단백질이 표현 될 때 하위 휴대 사이트에 모집의 Grb2는 형광 현미경으로 쉽게 시각화 할 수 있습니다 현지화에 변화가 있다는 것을. endosome과 같은 구조로 GFP-Grb2의 relocalization에서 EGFR 결과의 예를 들어, 표현 (그림4). 따라서, 게놈 전체 라이브러리를 적용 할 때, 그것은 소설 Grb2 바인딩 세포 표면 단백질을 식별 할 수있는 예상 할 수 있습니다. 이 방법은 세포 표면 단백질의 검출에 국한되지 않습니다. 예를 들어, Dynamin2는 GFP-Grb2는 endosome과 같은 모집합니다 (그림 5) 표시의 하위 세포의 현지화에 변화를 유도한다. Dynamin2는 Grb2의 C-터미널 SH3 도메인에 바인딩이 복잡한 9,10의 endocytosis에 관한 일을하고있다. 따라서, 이러한 방식은 일반적으로 단백질 바인딩 단지의 식별을 가능하게하고 SH2 도메인에 대한 상호 작용 파트너의 식별에 국한되지 않습니다. translocation 여러 가지 종류가 다른 세포질 기공을 갖는 구조 또는 핵에가 endosomes하는 등 플라즈마 막에 현지화로 예상 할 수 있습니다. 따라서,이 모든 이미지도 눈으로 검사를하는 것이 좋습니다. 그러나, 많은 세트를 검사 할 때하는 것은 자동을 cDNAs이미지 분석 알고리즘이 더 실용적입니다. 이 경우, 알고리즘의 조합은 세포 모양 변경을 식별 할 수 shuttling 핵 및 일반 형태학 알고리즘을 식별 할 수 endosomes, 세포질 / 핵 감지를 식별 할 장소 검색으로 바람직하다. 서로 다른 phenotypic 검출 방법의 사용은 다른 11 개 상세하게 설명되어 있습니다. <img alt="그림 1" src="/files/ftp_upload/4382/4382fig1.jpg" /> 그림 1. 실험의 전체 구조. 실험 내용 cDNA 라이브러리의 증폭 및 준비, 무료 오픈 소프트웨어 IMAGEJ를 사용하여 cDNA 벡터 플러스 기자 구조, 이미지 수집 및 이미지 분석의 transfection으로 시작하는 완벽한 높은 콘텐츠를 검사 워크 플로우를. <img alt="그림 2" src="/files/ftp_upload/4382/4382fig2.jpg" /> 에프Tecan 덱의 igure 2. 구성. (1) 왼쪽에 다섯 100 ML 골짜기는 버퍼 1 (40 ML), 2 (40 ML), 3 (50 ML), AW (60 ML)와 A4 (100 ML)로 가득해야합니다. 트로프의 A4는 절차를 수행하는 동안 한 번 다시 작성해야합니다. (2) 진공 매니 폴드는이 예에서 위치 14에 위치해 있습니다. (3) 세균 펠릿있는 deepwell 판은 25 ML의 용출 버퍼로 용출 버퍼 트로프 옆에 위치 30에 위치하고 있습니다. (4) 8 채널 머리에 일회용 팁 위치 40 작성해야하는 채널 머리를 왼쪽과 도움말에 팁 랙에로드해야합니다. 이 실험에 사용 된 Tecan FreedomEvo 액체 처리기는 500 μl 주사기가 구비되어 있습니다. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/4382/4382fig2large.jpg" target="_blank">더 큰 그림을 보려면 여기를 클릭하십시오</a> . <img alt="그림 3" src="/files/ftp_upload/4382/4382fig3.jpg" /> 그림오페라 LX에 이미지 수집 3. 자동화. A) 구성 탭 (1)을 선택합니다. 실험 (2)에 필요한 레이저 라인을 활성화합니다. 이미지 획득 (3)의 카메라를 선택합니다. 실험 (4)의 플레이트 종류와 목적 렌즈를 선택합니다. B) 현미경 탭 (1)을 선택합니다. 광원 및 노출 1 (2,3)에 대한 노출 시간을 정의합니다. 물론 하나를 집중와 높이 (4) 걸릴. C) 실험 정의 탭 (1)을 선택합니다. 드래그 앤 노출, skewcrop, 참조, 레이아웃 및 sublayout 파일 (2) 놓습니다. 드래그하고 실험 파일 (3) 놓습니다. D) 자동 실험 (1)를 선택합니다. 드래그 앤 실험 파일 (2) 놓습니다. 해당 바코드 (3) 할당합니다. 시작 버튼 (4)을 클릭하여 이미지 획득을 시작합니다. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/4382/4382fig3large.jpg" target="_blank">큰 그림을 보려면 여기를 클릭하십시오</a> . <img alt="그림 4" src="/files/ftp_upload/4382/4382fig4.jpg" /> <strocDNA 표현에 의한 것이다&gt; 그림 4. GFP-Grb2의 translocation. GFP-Grb2의 transmembrane의 성장 인자 수용체의 overexpression시 endosome과 같은 구조에 지배적 인 세포질 현지화에서 relocates과 이후 endosomes에 물질이. 왼쪽에서 COS M6 세포의 현미경 이미지는 transiently GFP-Grb2 (상단) 또는 GFP-Grb2 플러스 EGFR (아래)와 transfected 않은 표시됩니다. endosome과 같은 구조로 GFP-Grb2의 이전에 EGFR 결과의 공동 표현. <img alt="그림 5" src="/files/ftp_upload/4382/4382fig5.jpg" /> 그림 5. GFP-Grb2의 cDNA 유발 translocation의 예. Grb2로 인한 endocytosis에 관여하는 GTPase Dynamin2는 endosome과 같은 구조 (원)에 GFP-Grb2을 relocates. 이 실험에서 GFP-Grb2는 HEK293T 셀에 DNM2와 공동으로 transfected되었습니다. 24 H 및 이미지는 Ope에 인수 된 후 셀은 Hoechst 33342 물들되었습니다RA LX. 하나의 녹색 (GFP) 채널의 시야와 UV (파란색, Hoechst 33342)이 표시됩니다.

<ol><li>Sastry, L., Cao, T., King, C. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multiple+Grb2-protein+complexes+in+human+cancer+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Int.+J.+Cancer%22%5BJournal%5D)">Multiple Grb2-protein complexes in human cancer cells.</a> Int. J. Cancer. 70, 208-213 (1997).</li>
<li>Li, S., Couvillon, A. D., Brasher, B. B., Van Etten, R. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tyrosine+phosphorylation+of+Grb2+by+Bcr%2FAbl+and+epidermal+growth+factor+receptor%3A+a+novel+regulatory+mechanism+for+tyrosine+kinase+signaling%5BTitle%5D)+AND+%22Embo.+J%22%5BJournal%5D)">Tyrosine phosphorylation of Grb2 by Bcr/Abl and epidermal growth factor receptor: a novel regulatory mechanism for tyrosine kinase signaling.</a> Embo. J. 20, 6793-6804 (2001).</li>
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<li>Ketteler, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Feynman+trajectories%3A+determining+the+path+of+a+protein+using+fixed-endpoint+assays%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biomol.+Screen%22%5BJournal%5D)">The Feynman trajectories: determining the path of a protein using fixed-endpoint assays.</a> J. Biomol. Screen. 15, 321-326 (2010).</li>
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<li>Su, J., Batzer, A., Sap, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Receptor+tyrosine+phosphatase+R-PTP-alpha+is+tyrosine-phosphorylated+and+associated+with+the+adaptor+protein+Grb2%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biol.+Chem%22%5BJournal%5D)">Receptor tyrosine phosphatase R-PTP-alpha is tyrosine-phosphorylated and associated with the adaptor protein Grb2.</a> J. Biol. Chem. 269, 18731-18734 (1994).</li>
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<li>Miki, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Association+of+Ash%2FGrb-2+with+dynamin+through+the+Src+homology+3+domain%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biol.+Chem%22%5BJournal%5D)">Association of Ash/Grb-2 with dynamin through the Src homology 3 domain.</a> J. Biol. Chem. 269, 5489-5492 (1994).</li>
<li>Seedorf, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dynamin+binds+to+SH3+domains+of+phospholipase+C+gamma+and+GRB-2%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biol.+Chem%22%5BJournal%5D)">Dynamin binds to SH3 domains of phospholipase C gamma and GRB-2.</a> J. Biol. Chem. 269, 16009-16014 (1994).</li>
<li>Carpenter, A. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((CellProfiler%3A+image+analysis+software+for+identifying+and+quantifying+cell+phenotypes%5BTitle%5D)+AND+%22Genome+Biol%22%5BJournal%5D)">CellProfiler: image analysis software for identifying and quantifying cell phenotypes.</a> Genome Biol. 7, R100(2006).</li>
<li>Seed, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Developments+in+expression+cloning%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Opin.+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Developments in expression cloning.</a> Curr. Opin. Biotechnol. 6, 567-573 (1995).</li>
</ol>

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표현 복제는 바이러스 수용체와 혈액 세포 항원 12 소설 세포 구성 요소를 식별하기 위해 과거에 사용 된 강력한 도구입니다. 여기, 우리는 Grb2에 바인딩 소설 putative 신호 전달 수용체의 식별을 용이하게하는 방법을 설명합니다. 프로토콜의 몇 가지 중요한 단계가 있습니다. <ol><li> 자동화 된 플라스미드 준비는 박테리아 펠렛의 완전한 resuspension가 절대적으로 중요합니다. 때때로, 그것은 엄격한 흔들림 단계 또는 피펫에 대한 추가 혼합을 포함 할 필요가 있습니다. </li><li> 솔루션 2와 3의 추가 후, 혼합 완료 필수적이며, 우리는 수동으로 반전 밀봉 된 판은 자동으로 흔드는의 사용을보다 효율적 것으로 나타났습니다. 이 DNA의 전단으로 이어질 것 같은 Pipetting이 단계에서 피해야한다. </li><li> 모든 진공 단계에서, 하나는 액체가 완전히 배수되어 있는지 확인합니다판에서. 그렇지 않으면 낮은 수율이 예상 할 수 있습니다. </li><li> 용출되면, 그것은 eluate는 플라스미드 바인딩 플레이트의 하단에있는 양식을 떨어 것이 매우 일반적입니다. 이 물방울 용출 판에서 수집 할 필요가 있으므로이 플라스미드 바인딩 플레이트가 신중하게 해제되어 하단에 잔여 물방울이주의 깊게 eluate 판으로 전송하는 것이 좋습니다. </li><li> transfection 동안, 복잡한 형성의 시간이 중요합니다. 우리는 보통 20-30 분을 준수합니다. 짧은 시간이 권장되지 않는 동안 한 H에 더 이상 시간까지는 생산량의 감소없이 잘됩니다. </li><li> 현미경의 경우 배율의 선택이 중요합니다. 여기에 사용 된 오페라 LX 시스템에서 20x의 해상도는 높은 품질의 이미지를 얻을 수 충분합니다. 높은 해상도의 이미지가 필요한 경우, 목표는 세포의 통계적으로 의미있는 번호를 받기 위해 변경하지만, 할 수 필드와 높은 수집 시간 더 많은 정보가 필요합니다. 일반적으로, 우리는 목표물론 당 이미지로 최소 100 세포를합니다. </li></ol> Grb2의 translocation 분석은 EGFR 키나아제 활성화 6 작은 분자 억제제를 식별하는 다른 그룹에 의해 사용되었습니다. 이 경우 EGFR은 특히 리간드는 플라즈마 막에 Grb2 모집의 원인으로 활성화됩니다. 이 상호 작용의 중단 그 다음 작은 분자 화합물을 사용하여 조사 할 수 있습니다. 마찬가지로, 그것은 siRNA 화면이 EGFR-Grb2 신호 또는 C-KIT 또는 erythropoietin 수용체와 같은 다른 Grb2 바인딩 성장 인자 수용체에 참여 내생 유전자를 식별하기 위해 고용 할 수 envisaged 할 수 있습니다. 따라서,이 기법에 대해 여러 가능성이 응용 프로그램이 있습니다. 유사한 접근 방식은 이러한 SHC, 갭 또는 IRS와 같은 다른 어댑터 분자에 대한 GFP 태그 기자 시스템에 적용 할 수 있습니다. 포유류의 세포에서이 셀 기반 분석을 사용하여 중 하나 큰 장점은 생리 학적으로 상대의 식별을 가능하게하는 것입니다evant 상호 작용을 확인할 수 있습니다. 분석은 단백질 복잡한 형성을위한 표시 장치이지만, 더 중요한 것은 관련 상호 작용이 올바른 하위 세포의 사이트에서 모니터링됩니다. 이런 점에서,이 기술은 효모 - 두 하이브리드 또는 체외 assays에서와 같은 다른 단백질 단백질 상호 작용 방법과 유물을 극복. 그것은 간접적 인 상호 작용도 Grb2 모집 될 수,하지만 주목해야한다. 마찬가지로, 바인딩 파트너의 전사까지 규제는 cDNA 식에 의해 유도 될 수 있습니다. 이러한 가능성을 구별하려면, 직접 및 간접 구속력 효과를 구별 할 수있는 적절한 보조 assays를 수행 할 필요가 있습니다. 결론적으로, GFP-어댑터 분자 translocation 분석은 게놈 전체 검사 및 약물 발견 응용 프로그램에 대한 높은 가능성을 약속드립니다.

<table border="1"><tr><td> 시약의 이름 </td><td> 회사 </td><td> 카탈로그 번호 </td><td> 코멘트 (선택 사항) </td></tr><tr><td> cDNA 라이브러리 </td><td> Origene </td><td></td><td></td></tr><tr><td> LB + A </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> 가스 투과성의 물개 </td><td> ThermoScientific </td><td> AB-0718 </td><td></td></tr><tr><td> Nucleospin 96 플라스미드 키트 </td><td> Macherey-Nagel </td><td> 740625.4 </td><td></td></tr><tr><td> Transfectin </td><td> BioRad </td><td> 170-3351 </td><td></td></tr><tr><td> Hoechst33342 </td><td> 분자 프로브 </td><td> H3570 </td><td></td></tr><tr><td> Viewplate 96 F TC </td><td> PerkinElmer </td><td> 6005182 </td><td></td></tr><tr><td> RapidPick </td><td> 허드슨 강 </td><td></td><td> Norgren CP7200 </td></tr><tr><td> 자유 에보 (Evo) </td><td> Tecan </td><td></td><td> 진공 매니 폴드와 </td></tr><tr><td> Multidrop 384 </td><td> 열 </td><td></td><td></td></tr><tr><td> 오페라 LX </td><td> PerkinElmer </td><td></td><td></td></tr></table>

표현 복제가 grb2 신호 복합 단지를 공부하기 위해 높은 콘텐츠 이미징 워크 플로우

A High-content Imaging Workflow to Study Grb2 Signaling Complexes by Expression Cloning

성장 인자 수용체의 신호 전달은 확산과 차별화를 유지하는 셀을 위해 필수적이며, 꼭 컨트롤이 필요합니다. 신호 전달은 transmembrane 수용체 및 다운 스트림 신호 폭포의 활성화에 외부 리간드의 결합에 의해 시작됩니다. mitogenic 신호의 핵심 레귤레이터는 Grb2, 효소 활동을 부족이 SH3 도메인으로 둘러싸인 내부 SH2 (SRC의 호몰 로지 2) 도메인으로 구성된 모듈 단백질입니다. Grb2는 constitutively의 N-말단 SH3 도메인을 통해 GTPase 쟁이 Sevenless (SOS)와 연결되어 있습니다. Grb2의 SH2 도메인 따라서 SOS - 라스 - MAP 키나제 신호 캐스케이드에 수용체 활성화를 커플 링 phosphorylated 티로신 잔류 물에서 성장 인자 수용체에 바인딩합니다. 또한, 신호 및 수용체의 endocytosis의 긍정적이거나 부정적인 레귤레이터와 같은 Grb2에 대한 다른 역할이 설명되어 있습니다. Grb2의 모듈 구성은 수용체와 transduc의 다양한 고정 할 수 있습니다하는 것이 좋습니다e는 1-3 다른 경로의 수많은 따라 신호. 여기에서 설명하는 것은 플라즈마 막에 Grb2 모집을 모니터링하는 간단한 현미경 분석이다. 그것은 녹색 형광 단백질의 하위 세포의 현지화 (GFP) 태그 자극 4-6에 대응 Grb2의 변화를 측정하는 분석에서 구성된다. 이러한 활성화 표피 성장 인자 수용체로 Grb2을 구속 플라즈마 막 수용체 (EGFR) 플라즈마 cDNA 표현시 멤브레인 및 이후 셀에 endosomal 구획에 옮겨 놓을 방법을 모집 GFP-Grb2. Grb2의 생체 단백질 단지에 식별하기 위해이 기술은 Grb2 하위 세포 현지화의 변화에 따라 게놈 차원 높은 콘텐츠를 화면을 수행하는 데 사용할 수 있습니다. cDNA 표현 클론, transfection 및 이미지 수집의 준비는 아래에 자세히 설명되어 있습니다. 이러한 효모 - 두 HY 등의 단백질 상호 작용 파트너를 식별하는 데 사용되는 다른 게놈 방법에 비해brid,이 기술은 간단한 현미경 기반의 분석에 의한 상호 작용의 하위 휴대 사이트에서 포유류의 세포에 단백질 단지의 시각화 할 수 있습니다. 따라서 이러한 현지화의 패턴을 둘 질적 기능뿐만 아니라 상호 작용의 양적 강도로서 평가 될 수있다.

관할 transmembrane 수용체를 신호 소설의 식별을위한 높은 콘텐츠를 심사 방법은 설명되어 있습니다. 이 방법은 대규모 자동화 의무가 있으며, 수에 대한 예측<em&gt; 생체 내</em&gt; 단백질 바인딩과 포유류의 세포에 단백질 단지의 하위 세포 현지화.

표현 복제가 Grb2 신호 복합 단지를 공부하기 위해 높은 콘텐츠 이미징 워크 플로우

성장 인자 수용체에 의한 신호 전달은 세포가 증식과 분화를 유지하는 데 필수적이며 엄격한 제어가 필요합니다. 신호...

다음 실험의 전반적인 목표는 cDNA 발현 클로닝과 녹색 형광 단백질이 태그된 Grab two의 변화 관찰을 통해 grab two의 상호작용 파트너를 식별하는 것입니다. 이는 먼저 박테리아 용해물로부터 cDNA 라이브러리를 준비함으로써 수행됩니다. 그 다음 단계로, cDNA를 인간 배아 신장 세포에 형질전환시키면 관심 유전자와 함께 리포터 컨스트럭트가 발현됩니다.다음으로, 세포 내 Grb2 국소화의 변화를 시각화하기 위해 형질전환된 플레이트를 Opera 현미경으로 분석하며, 형광 현미경 분석을 통해 상피세포 성장인자 수용체(epidermal growth factor receptor) 매개로 GFP 태그된 Grb2가 엔도솜으로 모집되는 결과가 얻어집니다. 이 기술이 yeast two-hybrid와 같은 기존 방법과 비교했을 때 갖는 주요 장점은 상호작용 파트너의 세포 내 분포를 고려한 생리적 상황에서 Grb2의 상호작용 파트너를 식별할 수 있다는 점입니다.본 방법은 Grab two에 의한 신호 전달을 식별하는 데 사용될 수 있지만, 다른 관심 단백질과 같은 다른 시스템에도 적용 가능합니다. cDNA 라이브러리는 글리세롤 스탁 내의 단일 박테리아 클론 형태로 제공됩니다.Hudson Rapid pick light의 picker 메뉴에 있는 re ray 명령을 사용하여 96웰 포맷으로 진행합니다. 소스 플레이트에서 박테리아 클론을 피킹하여 96 deep well 플레이트의 1.5 mL lb amp에 접종합니다. deep well 플레이트를 가스 투과성 씰로 밀봉하고, 쉐이커에서 37 °C로 하룻밤 동안 배양합니다. 다음 날, 박테리아가 포함된 deep well 플레이트를 2000 RPM에서 20분 동안 원심분리합니다.탁상용 원심분리기에 플레이트 어댑터를 사용하여, 박테리아 펠릿은 그대로 둔 채 웰에서 배지를 흡입하여 제거합니다. 다음으로, 여기에 표시된 것과 같이 Tecan Freedom Evo 자동화 워크스테이션의 데크를 구성합니다. 플라스미드 준비를 위한 용액들을 1번부터 5번 트러프에 분배하고, 데크 위에 딥웰 플레이트를 배치합니다.alucian 용액이 담긴 멀티웰 트러프를 딥웰 플레이트 옆에 둡니다. 팁 랙에 팁을 장착합니다. 진공 매니폴드를 조립합니다. 플라스미드 결합 플레이트를 매니폴드 내부에 배치하고 플라스미드 필터 플레이트를 매니폴드 위에 올립니다. 250 µL의 solution one으로 펠렛을 재현탁합니다.피펫팅을 통해 Resus 현탁 완충액을 섞어줍니다. 펠릿이 완전히 재현탁되었는지 확인하는 것이 이 실험 과정의 성공에 있어 매우 중요합니다. 피펫팅만으로 펠릿이 완전히 재현탁되지 않을 경우 쉐이커(shaker)를 사용할 수 있습니다.펠릿이 완전히 재현탁되면 250 µL의 용해 버퍼 용액을 첨가하여 박테리아를 용해시킵니다. 플레이트를 밀봉하고 뒤집어 완전히 혼합합니다. 타이머를 2분으로 설정합니다.다음으로, 중화 완충액인 용액 3을 350 µL 첨가합니다. 플레이트를 밀봉하고 3회 반전시켜 섞어줍니다.박테리아 용해물을 플라스미드 필터 플레이트로 옮깁니다. 5분 동안 진공을 가합니다. 필터 플레이트를 제거하고 매니폴드 위에 결합 플레이트를 놓습니다.1분 동안 진공을 가합니다. 추가 세척 버퍼 500 µL를 넣고 2분 동안 진공을 가합니다. 세척 버퍼 용액 4 900 µL를 넣고 2분 동안 진공을 가합니다.그 후, 세척 완충액 900 µL를 네 번 더 추가하고 15분 동안 진공을 가합니다. DNA 수집 플레이트를 매니폴드 내부에 배치합니다. 결합 플레이트에 용출 완충액 100 µL를 추가하고 2분 동안 배양합니다.10분 동안 진공을 가합니다. 마지막으로, 수집 플레이트를 제거하고 NanoDrop 8, 000을 사용하여 DNA 농도를 측정합니다. 일반적으로 이 절차를 시작하기 위해 본 방법으로는 µL당 약 100 nanograms의 수율을 기대할 수 있습니다.hec 2 9 3 세포를 트립신 처리하여 단일 세포로 분리하고 수를 측정합니다. 자동 분주기를 사용하여 Perkin Elmer 뷰 플레이트(View plate)의 각 웰에 2 × 10⁴개의 세포를 분주합니다. 트랜스펙션을 위해 세포를 37 °C, 5% CO2 조건에서 하룻밤 동안 배양합니다.자동 액체 핸들러를 사용하여 라운드 바텀 96-웰 플레이트의 각 웰에 다음과 같은 혼합물을 준비합니다. 25 µL의 무혈청 배지(serum free medium)에 100 ng의 GFP 플라스미드 DNA와 100 ng의 CD NA를 넣습니다. 다음으로, 0.5 µL의 transfect in이 포함된 무혈청 배지 25 µL를 각 웰에 추가하여 혼합하고 30분 동안 타이머를 작동시킵니다.30분 후, cDNA transfection mix 50 µL를 세포에 옮겨줍니다. 이때 부드럽게 분주하는 방법을 사용하십시오. 세포를 37 °C, 5% CO₂ 조건에서 하룻밤 동안 배양합니다.이미지 획득을 시작하려면 Opera 소프트웨어를 실행하십시오. 구성 탭을 선택하고 20배 대물렌즈와 올바른 플레이트 유형을 선택하십시오. 다양한 플레이트 유형에서 초점을 맞출 수 있도록 대물렌즈의 칼라(collar)가 올바른 값으로 설정되었는지 확인하십시오.다음으로, 현미경 탭을 선택합니다. 노출 1은 fite 4 88 레이저로, 노출 2는 UV 365 레이저로 정의하십시오. 두 노출 설정 모두에서 UV 필터를 활성화하고 노출을 할당합니다.1번을 카메라 1번과 노출에 설정하십시오. 2번을 카메라 2번에 설정하십시오. 노출 시간은 노출 1의 경우 800 milliseconds로, 노출 2의 경우 40 milliseconds로 설정하십시오.둘째, 노출을 선택하고, 초점 높이를 0 µm로 설정합니다. 초점이 맞으면 Focus를 선택합니다. 카메라 1을 노출시킵니다.노출 평면을 최적화하기 위해 초점 높이를 조정한 후 높이 측정(take height)을 클릭하십시오. 노출 파라미터를 저장하고, 노출 2(exposure Two)에 대해 동일하게 반복하십시오. 실험 정의(experiment definition) 탭을 선택하고 레이아웃 및 서브 레이아웃을 생성하십시오.적절한 레이아웃, 노출, 참조 이미지, 왜곡, 크롭 파일 및 서브 레이아웃을 드래그 앤 드롭하십시오. 실험 설정을 저장합니다. 자동 실험 탭을 선택하고 일반 조건에서 이미지를 획득하십시오.Grab two는 세포 전체에 걸쳐 국소화되어 있습니다. 성장 인자 수용체가 자극되면, 이는 세포막으로 전이된 후 엔도솜 내부로 내입됩니다. 이 그림의 상단 패널은 GFP grab two가 일시적으로 형질전환된 CO M six 세포를 보여주며, 예상대로 형광이 세포 전체에 분포되어 있습니다.하지만 GFP-GRB2와 세포 표면 수용체인 EGFR를 일시적으로 형질전환시킨 세포에서는 하단 패널에 표시된 것과 같이 GRB2가 엔도솜 유사 구조로 재배치됩니다. 따라서 게놈 와이드 라이브러리를 적용하면, 새로운 GRB2 결합 세포 표면 단백질을 식별할 수 있을 것으로 기대됩니다. 이 방법은 세포 표면 단백질 검출에만 국한되지 않습니다.예를 들어, Grab 2 매개 엔도사이토시스(endocytosis)에 관여하는 GPA의 DYNAMIN 2는 Grab 2의 전위(translocation)를 유도합니다. 본 실험에서는 HEC 2 93 T 세포에 GFP Grab 2와 DNM 2를 공동 형질전환(cot transfected)시켰습니다. 빨간색 원 내부의 세포들은 GFP Grab 2가 엔도솜 유사 구조(endosome like structures)로 재배치된 모습을 보여줍니다.이 절차 이후에 면역침전법이나 생화학적 분석과 같은 다른 방법을 사용하여 상호작용이 직접적인지 또는 간접적인지와 같은 추가적인 질문에 대한 답을 얻을 수 있습니다. 이 영상을 시청한 후에는 하위 세포 내 단백질 상호작용을 확인하기 위해 발현 클로닝을 사용하는 방법에 대해 충분히 이해하게 될 것입니다.

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따라서, 그것이 관여 단백질의 공간적 및 시간적 행위를 파악하는 것이 중요 신호 전달 이해하기 위해, 플라즈마 막 내에서 또는 세포 내 위치에 두 단백질의 compartmentalization 크게 신호 결과에 영향을 미칠 수있는 규제 메커니즘입니다. 우리는 여기서 T 세포의 신호 전달을 연구하는 TIRF 현미경 기반 시스템을 설명하지만, 광범위하게 적용됩니다.

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