Name: 연속 신경 근육 분기점에서 싱글 Schwann 세포를 윤곽을 그리다하는 사진 표백 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-01-11T13:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 12 s
Description: 배우세요 연속 사진 표백을 이용해 신경근육 접합부의 단일 슈반 세포를 윤곽화하는 방법을. 공초점 현미경과 GFP 발현 형질전환 마우스를 활용하여 개별 세포 형태를 시각화하고 신경 재생 연구에 활용할 수 있습니다.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

우리는 우수한 기술 지원을위한 마뉴 Budak, Ljiljana Marinkovi와 크리스티나 Wullimann 감사드립니다. 우리는 PLP-GFP 마우스를 제공하기 위해 W. 맥클린 감사드립니다. 알렉산더 - 폰 - 훔볼트 재단에 의해, 그리고 국가 기금 기관 ( &quot;Bundesministerium 모피 Bildung 숙녀 Forschung&quot;로, TM은 독일 Forschungsgemeinschaft (Sonderforschungsbereich SFB 596 DFG)의 고급 연구 연구소 (Technische Universität 뮌헨)에 의해 지원됩니다 ) ERA-NET 뉴런 &#39;iPSoALS &quot;와&quot;2 광자 이미징 &quot;의 프레임 인치 TM과 MB가 통합 단백질 과학 (뮌헨)의 센터에 의해 지원됩니다. PM은 Technische Universität 뮌헨 (죽을 차례-GS)의 대학원에 의해 지원되었다.

1. Triangularis Sterni Explant (그림 1) 시간 : 15 분. <ol><li> 포셉 2 켤레, 가위 1 쌍, 스프링 가위 1 쌍, 1 조직 문화 요리 (10 cm) : 수술기구를 준비합니다. (15 분에 대한 최소) 미리 부풀어 오른 냉각 (4 ° C) 5 % CO 2 / 95% O 2 벨소리의 솔루션입니다. 얼음 15 cm 조직 문화 접시를 작성하고 금속 플레이트로 다룹니다. 해부 현미경을 준비하고 해부하는 동안 explant을 냉각하기 위해 절개 범위에서 얼음을 15 cm 접시를 놓습니다. </li><li> Lethally isoflurane 과다 복용 (또는 희생의 다른 승인 된 방법)에 의해 마우스를 마취. explant 털의 오염을 방지하기 위해 70 % 에탄올로 마우스를 스프레이. SC는 표백을 위해, 우리는 축삭의 동시 시각화를 위해 Thy1 - OFP3 또는 Thy1 - Membow13에 발을 담그 할 수 있습니다 PLP-GFP 마우스를 사용했습니다. </li><li> 큰 가위의 쌍을 사용하여,의 중간 선 절개를가슴과 흉곽의 아래쪽 가장자리에 평행이 절개를 통해 피부. </li><li> 큰 가위의 쌍을 사용하여, 피부를 제거 복부 벽을 열고 척추 컬럼에 다시 먼길을 흉곽에 절개를 병렬합니다. 그런 다음 가슴의 근육 삽입에 가까운 절개를하여 가슴 근육을 해부. </li><li> 그냥 칼 모양의 연골 아래에 열려있는 가로막을 잘라과 늑골 삽입을 따라 횡경막을 해부. </li><li> 포셉의 집합으로 칼 돌기에 의해 갈비​​를 개최, 가까이의 삽입에 가능한 한, 척추 열에서 갈비뼈를 절단 시작합니다. 왼쪽 및 오른쪽 상처는 흉골 병 sterni에 대한 가슴 위에 수렴해야합니다. 주요 혈관을 (특히 빗장 밑 정맥) 절단 방지하기 위해보십시오. 더 나은 가시성을 집게로 칼 돌기에 누른 상태 부드럽게 준비를 리프팅에 의해 달성된다. </li><li> 단지 흉골 병 sterni 아래 가로 컷을및 냉각 5 % CO 2 / 95% O 2 - 부풀어 오른 벨소리의 솔루션을 10 cm 그릇에 explant를 전송합니다. 얼음 가득 15 cm 조직 배양 접시를 덮고있는 금속 판에 10 cm 접시를 놓습니다. 모든 자세한 단계는 해부 현미경 아래에서 수행해야합니다. </li><li> 작은 봄 가위를 사용하여 thymus, 늑막, 격막 (내부)과 가슴 근육의 나머지 제거 (외부, 그림 1B-D). </li><li> 3.5 cm 요리에 explant를 맞추려면 가슴에 삽입하지 않은 모든 갈비를 해부. 이것은 가장 작은 봄 가위를 사용하고 갈비 (그림 1E) 사이에있는 조직을 절단 이루어집니다. </li><li> minutien 핀을 (; 그림 1G &lt;4 mm까지 단축)를 사용하여 Sylgard 코팅 3.5 cm 조직 배양 접시에 triangularis sterni 신경 근육 explant를 핀. 두 핀은 흉골의 연골 성의 (흰색) 부분을 통과해야합니다. 두 번째의 왼쪽과 오른쪽에있는 갈비를 두 개 이상 핀을 삽입전자 explant은 부드러운 연골 성의 부품을 목표로하고 아래에있는 갈비뼈을 피하거나 triangularis 근육을 닫습니다. 더 핀이 사용하는, 더 나은 (우리가 일반적으로 8-10을 사용). 당신이 준비를 핀으로 약간 늘어 위치로 근육을 고정, 갈비뼈가 다소 전파되어 있는지 확인합니다. </li><li> 선택 사항 : 알렉사 염료 (5 % CO 2 / 95% O 2 - 부풀어 오른 벨소리의 솔루션에서 0.8 μg / ML의 농도)에 커플 링 bungarotoxin을 추가하여 아세틸 콜린 수용체를 포함하는 신경 사이트를 표시합니다. 실내 온도 15-20 분에 대한 Sylgard 코팅 접시에 고정 explant를 배양 한 다음 5 % CO 2 / 95% O 2 - 부풀어 오른 벨소리의 솔루션으로 여러 번 씻는다. </li></ol> 2. 표백 SCS 및 선택 시간 경과 현미경 (그림 2) 타이밍 : 30 - 45 분 + 옵션 1 - 시간 경과 5 시간. <ol><li> 공 촛점 현미경 시설 지혜로 전송 3.5 cm Sylgard - 코팅 접시를H 아르곤 레이저 (488 nm의 파장)와 물 침지 목표 (배속, 0.13 NA, 20x, 0.5 NA와 100x, 1.0 NA 또는 60x, 0.9 NA). </li><li> 시간 경과 현미경을위한 선택 사항 : 삽입 난방 링에 요리 3.5 cm Sylgard - 코팅, superfusion 시스템과 온도 프로브 (그림 2A)를 설치합니다. 그들 중 아무도 explant, 요리 나 Sylgard 코팅의 가장자리를 만지지 없는지 확인합니다. 33-35에 샘플을 가열 ° C. 세포가 표백 단계들 사이에서 덜 역학을 표시로 SC 시간이 경과하지 않고 표백를 들어, 방 온도는 더 나은 것입니다. </li><li> 4 배 공기 목적은 triangularis sterni 근육의 innervation 패턴을 관찰하고 triangularis sterni의 endplate 밴드를 찾아 함께. 20x 찍기 - 콘 목표로 전환하여 endplate 밴드 (지역에 놓인 갈비 좋은 후보입니다) 내 표면 지역을 찾고 시작합니다. 개인 NMJs에 확인 100x 또는 60x 찍기 - 콘 목표로 목표를 변경합니다. 이상적인는 여러 SCS이 적용되어 매우 superfic에 위치하고 있습니다 NMJ입니다ially (그림 2B). 당신은 표백 후 시간 경과 영상을 수행하는 경우, 상대적으로 수율을 높이기 위해 함께 가까운 거리에 있습니다 3 NMJs까지 선택합니다. </li><li> 사진 표백 개인 SCS (그림 2B) 전에 NMJ의 공 촛점 이미지를 취득. (올림푸스 FV1000 현미경에 예 전체 해상도 이미지의 경우 픽셀 당 ~ 0.1 μm의 나이 퀴 스트 (Nyquist) - 제한된 샘플링에 결과 100x, 1.0 NA 목표 및 2.5 줌을 사용합니다.) </li><li> &quot;공원&quot;중심에 오초 (또는 같은 올림푸스 현미경에서 &quot;토네이도 검색&quot;기능으로 사용할 수있는 관심의 작은 지역에서 효율적으로 스캔 패턴에 대한 최대 전력을 사용하여 SC의 핵심에있는 488 nm의 레이저 빔, 우리가 공 촛점 현미경을 사용으로, 레이저는 1.0 NA의 목적으로 488 나노 미터에서 따라서 이미지 켤레의 비행기에 초점을 맞춘되고, 직경 &lt;0.5 μm). 결과를 표백 셀 판사에 다시 초점을 맞 춥니 다. GFP 수준까지 다시 단계를 표백 필요한 반복 줄일 수있는 경우가까운 배경 수준으로 D. (그림 2C) 표백 후 이미지를 취득. 그것은 표백 지역 두 셀 사이에 중복되는 외부되어 있는지 확인하는 것이 중요합니다 - 중복이있을 경우, 두 번째 셀에 표백하는 것은 분명합니다. </li><li> 하나를 제외한 모든 SC는 (그림 2D-E) 표백 될 때까지 위의 단계를 반복합니다. 마지막으로 &quot;표백하지 않은&quot;SC는 공 촛점 시간 경과 현미경에 적합합니다. 이미지의 뺄셈에 의해 하나의 세포를 재구성, 예를 들어 하나의 SC의 형태 및 지역 (그림 2 층)을 윤곽을 그리다하기 위해 포토샵 소프트웨어를 사용합니다. 이 마법사를 빼는 것은 소음 (포토샵의 연속 &quot;레이어&quot;에 가져 오기 한 후 채널 탭의 상단에있는 드롭 다운 메뉴에서 &quot;차이&quot;로 상위 채널을 설정하여 예를 들어) 추가에 유의해야합니다. 이것은 빼기 전에 채널에있는 &quot;despeckle&quot;기능을 사용하고 분명히에서 보낸 않는 배경을 멀리 자르기에 의해 피할 수표백 세포. 대비를 최적화하려면,이 &#39;수준&#39;창에서 두 개 채널의 밝기를 조정해야 할 수 있습니다. 표백 세포의 결과 이​​미지는 독특​​한 색조의 의사 색 시냅스의 원래 이미지에 겹쳐과 (모든 표백을 위해이 일을에서 원본 이미지의 표백 셀의 영역을 색상으로 투명 만들어 마지막 , 표백하지 않은 세포 그림 2 층 결과에 표시되는 이미지). </li><li> 선택 사항 : 하나를 제외한 모든 SCS를 표백 한 후 시작 공 촛점 시간 경과 현미경. 고정 간격 (예를 들어 모든 5-10 분)에 이미지를보세요. 가능한 한 작은 레이저 전원으로 사용합니다. 최대 3 NMJs은 같은 세션에서 이미징 할 수 있습니다. </li><li> 다음, 확대하지 않고 100x에서 20x 및 4X 목표를 (그림 2G-I)를 사용하여 지역의 이미지를 이미지를 활용하여 시간 실효 NMJs의지도를합니다. 이 &quot;지도&quot;는 고정 근육의 immunohistochemistry에 따라 NMJs을 찾기 위해 필요합니다. </li><li> 이미지처리, 최대 강도 계획에 개별 이미지 변환 및 TIFF 형식으로 저장합니다. 스택에 모든 Z-예상 시간 포인트를 결합하고 XY로 정렬 예 : (오픈 소스 소프트웨어 ImageJ에 따라 패키지, 보건 국립 연구소) 피지에서 &quot;stackreg&quot;플러그인 (10)을 사용. </li></ol> 3. 고정과 Immunohistochemistry (그림 3) 타이밍 : 숙박. <ol><li> 조심스럽게 핀을 제거하여 적어도 15 ML 4퍼센트 PFA를 포함하는 50 ML 반응 관에 explant를 전송합니다. 얼음에 1 시간 동안 triangularis sterni 근육을 포함하는 앞 가슴 벽을 게시 - 수정. 적어도 10 분 동안 PBS에 0.​​1 M 글리신 (잔류 정착액을 해소하고 따라서 배경을 줄이기 위해)로 고정 조직을 씻어. 샘플은이 시점에서 저장하고 나중에 처리 할 수​​ 있습니다. </li><li> 0.01 M PBS로 가득 찬 10 cm Sylgard 코팅 조직 배양 접시에 고정 explant를 전송합니다. 일시와 사다리꼴 모양을 잘라가슴과 뼈 - 투 - 연골 전환을 통해 다른 사람에게 드 병렬 -이는 표면에 triangularis 근육이 포함되어 있습니다. 수평 (예 횡단 흉골) triangularis 근육의 꼬리 끝이 자유롭게 액세스 할 수 있도록 기준으로 낮은 갈비를 제거합니다 (그림 3A-D). </li><li> 사다리꼴의 위쪽 부분 (그림 3E)에 핀으로 피하 주사기 바늘을 삽입합니다. 부드럽게 근육의 꼬리 코너에 집중하고 마이크로 메스로 바늘을 사용하여 표면에 triangularis 근육을 제거하는 1 ML의 주사기와 포셉에 부착 된 피하 주사기 바늘을 사용합니다. 상처는 가슴 벽의 평면에 평행 한되어 있는지 확인합니다. 근육의 꼬리 부분이 출시되면, 가슴 벽을 통해 근육 아래 핀으로 다른 피하 주사기 바늘을 삽입 -이 준비를 움직이게하고 포셉 (그림 3 층)를 사용하여 근육에 부드러운 풀을 발휘 할 수 있습니다. 당신은 결합 tiss를 절단하기 때문에UE의 삽입, &quot;껍질&quot;떨어져 가슴의 근육. 봄 가위로 마지막 꼬리 첨부 파일을 자른다. 집게를 사용하여 지방과 혈액 혈관 유적을 제거합니다. . 라이브 및 고정 조직 작업을위한 도구와 요리 별도의 세트를 사용하여 신경을 멀리 추출하지 않습니다주의하십시오. </li><li> 실온에서 흔드는에서 1 시간에 차단 솔루션으로 조직 샘플을 전송하여 immunohistochemistry를 (표준 프로토콜을 사용하여)를 시작합니다. 착색에 대한 가능한 가장 작은 볼륨 96 - 웰 플레이트를 사용하여 200 μl입니다. </li><li> 4에 밤새 차단 솔루션, 잘 당 200 μl, ° 흔드는에서 C에 희석 주요 항체을 적용합니다. </li><li> 10 분에 0.01 M PBS 세 번에 씻으십시오. </li><li> 솔루션을 차단에 희석 실온에서 1-2 시간에 적합 차 항체을 적용합니다. </li><li> 10 분에 0.01 M PBS 세 번에 씻으십시오. </li><li> 반 변색 매체 (예 Vectashield)와 coverslip에 탑재합니다. </li><li> 자기 금속 접시에 장소 슬라이드, 상단에 장소 자석4 ° C.에서 몇 시간이나 야간에 평평하게 할 수있는 샘플의 매니큐어와 함께 밀봉합니다. </li></ol>

<ol><li>Feng, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Imaging+neuronal+subsets+in+transgenic+mice+expressing+multiple+spectral+variants+of+GFP%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">Imaging neuronal subsets in transgenic mice expressing multiple spectral variants of GFP.</a> Neuron. 28, 41-51 (2000).</li>
<li>Mallon, B. S., Shick, H. E., Kidd, G. J., Macklin, W. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Proteolipid+promoter+activity+distinguishes+two+populations+of+NG2-positive+cells+throughout+neonatal+cortical+development%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Proteolipid promoter activity distinguishes two populations of NG2-positive cells throughout neonatal cortical development.</a> J. Neurosci. 22, 876-885 (2002).</li>
<li>Brill, M. S., Lichtman, J. W., Thompson, W., Zuo, Y., Misgeld, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Spatial+constraints+dictate+glial+territories+at+murine+neuromuscular+junctions%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+cell+biology%22%5BJournal%5D)">Spatial constraints dictate glial territories at murine neuromuscular junctions.</a> The Journal of cell biology. 195, 293-305 (2011).</li>
<li>Livet, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transgenic+strategies+for+combinatorial+expression+of+fluorescent+proteins+in+the+nervous+system%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Transgenic strategies for combinatorial expression of fluorescent proteins in the nervous system.</a> Nature. 450, 56-62 (2007).</li>
<li>Thompson, W. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transgenic+mice+with+photoswitchable+GFP+in+Schwann+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Society+for+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Transgenic mice with photoswitchable GFP in Schwann cells.</a> Society for Neuroscience. Program 241, (2008).</li>
<li>Williams, P. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+development+of+outer+retinal+synapses+in+the+absence+of+glial+contact%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">In vivo development of outer retinal synapses in the absence of glial contact.</a> J. Neurosci. 30, 11951-11961 (2010).</li>
<li>Kerschensteiner, M., Reuter, M. S., Lichtman, J. W., Misgeld, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ex+vivo+imaging+of+motor+axon+dynamics+in+murine+triangularis+sterni+explants%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Protoc%22%5BJournal%5D)">Ex vivo imaging of motor axon dynamics in murine triangularis sterni explants.</a> Nat. Protoc. 3, 1645-1653 (2008).</li>
<li>McArdle, J. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Advantages+of+the+triangularis+sterni+muscle+of+the+mouse+for+investigations+of+synaptic+phenomena%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci.+Methods%22%5BJournal%5D)">Advantages of the triangularis sterni muscle of the mouse for investigations of synaptic phenomena.</a> J. Neurosci. Methods. 4, 109-115 (1981).</li>
<li>Marinkovi, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Axonal+transport+deficits+and+degeneration+can+evolve+independently+in+mouse+models+of+amyotrophic+lateral+sclerosis%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">Axonal transport deficits and degeneration can evolve independently in mouse models of amyotrophic lateral sclerosis.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 109, 4296-4301 (2012).</li>
<li>Thevenaz, P., Ruttimann, U. E., Unser, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+pyramid+approach+to+subpixel+registration+based+on+intensity%5BTitle%5D)+AND+%22IEEE+Trans+Image+Process%22%5BJournal%5D)">A pyramid approach to subpixel registration based on intensity.</a> IEEE Trans Image Process. 7, 27-41 (1998).</li>
<li>Brill, M. S., Lichtman, J. W., Thompson, W., Zuo, Y., Misgeld, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Spatial+constraints+dictate+glial+territories+at+murine+neuromuscular+junctions%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+cell+biology%22%5BJournal%5D)">Spatial constraints dictate glial territories at murine neuromuscular junctions.</a> The Journal of cell biology. 195, 293-305 (2011).</li>
<li>Zuo, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fluorescent+proteins+expressed+in+mouse+transgenic+lines+mark+subsets+of+glia%2C+neurons%2C+macrophages%2C+and+dendritic+cells+for+vital+examination%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Fluorescent proteins expressed in mouse transgenic lines mark subsets of glia, neurons, macrophages, and dendritic cells for vital examination.</a> J. Neurosci. 24, 10999-11009 (2004).</li>
</ol>

관심 없음 충돌이 선언 없습니다.

여기에 제시된 SC 표백 방법은 간단 신속하고 다양한입니다은 (i)는 하나의 transgene에 따라 공 촛점 현미경에 의해 단일 SC의 형태와 역학을 공개 가능 - 추가 대립 유전자를 필요로 질병 모델로 접근 예를 결합 할 때 상당한 장점 . 해부에서 고정으로 절반이 하루에 수행 할 수 있으므로 (ii) 본 방법은 빠른 것입니다. 이 같은 셀 ablations, 이미징 세포 소기관, 전기 생리학 또는 immunohistochemistry와 같은 다른 방법과 결합 될 수 있기 때문에 (III) 응용 프로그램의 숫자가 넓다. 또한, 손쥐 NMJs에서 SCS에 대한 여기에 제시된 접근 방법은 다른 세포, 조직 또는 종에 일반화 될 수 있습니다 - zebrafish에서 관련 기술의 응용 프로그램의 한 예는 참조 6 제공됩니다. 또한 GFP 외에 다른 형광 단백질은 예를 YFP 또는 CFP에 대해 경과 현미경을 표백와 시간에 사용할 수 있습니다. 우리는 SCS, bleachi에서 이러한 형광 단백질을 사용하지 않은 반...

<table border="1"><tbody><tr><td> 시약의 이름 </td><td> 회사 (예) </td><td> 카탈로그 번호 </td><td> 코멘트 (선택 사항) </td></tr><tr><td> 70 % (권 / 권) 에탄올 솔루션 </td><td> 로스 </td><td> T913.1 </td><td> 스프레이 병에 </td></tr><tr><td> isoflurane </td><td> Forene, 애보트 </td><td></td><td> 다른 승인 된 마취가 치명적인 마취 사용할 수 있습니다 </td></tr><tr><td> 유전자 변형 마우스 (PLP-GFP) </td><td></td><td></td><td> 인용 출처에서 획득 할 </td></tr><tr><td> 추위에 빛 조명과 해부 현미경 </td><td> 올림푸스 SZ51 </td><td></td><td> SCHOTT KL 1500 LCD가 장착 </td></tr><tr><td> 포셉 #이 </td><td> 정밀 과학 도구 </td><td> 11233-20 </td><td></td></tr><tr><td> 포셉 # 5 </td><td> 정밀 과학 도구 </td><td> 11295-00 </td><td></td></tr><tr><td> 가위, 대형 의료 </td><td> 정밀 과학 도구 </td><td> 14108-09 </td><td></td></tr><tr><td> 가위, 작은 각진 봄 </td><td> 정밀 과학 도구 </td><td> 15033-09 </td><td></td></tr><tr><td> 인라인 (in-line) 히터 </td><td> 워너 악기 </td><td> SF-28 </td><td></td></tr><tr><td> 3.5 cm 요리에 링을 가열 </td><td> 워너 악기 </td><td> 64-0110 DH-35 </td><td></td></tr><tr><td> 이 채널 온도 제어 시스템 </td><td> 워너 악기 </td><td> TC-344B </td><td></td&gt; </tr><tr><td> superfusion 펌프 시스템 </td><td></td><td></td><td> 주문품의 </td></tr><tr><td> 15 cm 조직 문화 요리 </td><td> Sarstedt </td><td> 83.1803.003 </td><td> 얼음 가득과 금속 플레이트에 의해 적용 </td></tr><tr><td> 10 cm 조직 문화 요리 </td><td> Sarstedt </td><td> 83.1802.003 </td><td> 산소 벨소리의 솔루션 </td></tr><tr><td> 3.5 cm 조직 문화 요리 </td><td> Sarstedt </td><td> 83.1800.003 </td><td> Sylgard 폴리머로 가득 </td></tr><tr><td> Sylgard 폴리머 </td><td> 다우 코닝 </td><td> Sylgard 184 실리콘 엘라스토머 키트 </td><td></td></tr><tr><td> 공 촛점 현미경 </td><td> 하늘 </td><td> FV1000 </td><td> 아르곤 레이저로 </td></tr><tr><td> 50 ML 반응 관 </td><td> Sarstedt </td><td> 62.547.254 PP </td><td></td></tr><tr><td> PBS의 4퍼센트 PFA </td><td> 시그마 </td><td> P6148 </td><td></td></tr><tr><td> 캐뉼라 0.5 mm X 25mm </td><td> Neolab </td><td> E-1510 </td><td></td></tr><tr><td> 주사기 1 ML </td><td> Neolab </td><td> E-1496 </td><td></td></tr><tr><td> synaptophysin 항체 </td><td> Invitrogen </td><td> 18-0130 </td><td> 토끼 </td></tr><tr><td> 이차 항체 </td><td> Invitrogen </td><td> A-11012 </td><td> 알렉사 594 </td></tr><tr><td> 24 잘 판 </td><td> Sarstedt </td><td> 83.1836 </td><td></td></tr><tr><td> 0.01 M PBS </td><td> 시그마 </td><td> P4417 </td><td></td></tr><tr><td> PBS에 0.​​1 M 글리신 </td><td> 로스 </td><td> 3790.1 </td><td></td></tr><tr><td> coverslips </td><td> Neolab </td><td> E-4132 </td><td></td></tr><tr><td> 슬라이드 </td><td> Neolab </td><td> E-4121 </td><td></td></tr><tr><td> Vectashield </td><td> 벡터 실험실 </td><td> H-1000 </td><td></td></tr><tr><td> minutien 핀 × 10 </td><td> 정밀 과학 도구 </td><td> 26002-20 </td><td> &lt;4 mm까지 단축 </td></tr><tr><td> α-Bungarotoxin 알렉사 594에 커플 링 </td><td> Invitrogen (분자 프로브) </td><td> B-13423 </td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td> 솔루션을 차단 </td></tr><tr><td> 0.01 M PBS </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> 0.2 % 트리톤 - X100 </td><td> 로스 </td><td> 3051.3 </td><td></td></tr><tr><td> 10% 일반 염소 세럼 </td><td> Abcam </td><td> ab7481 </td><td></td></tr><tr><td> 1퍼센트 소 혈청 알부민 </td><td> 시그마 </td><td> A7030 </td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td> 종을 울리는 사람 95% O 5분의 2 %의 CO 2 부풀어 오른 </td></tr><tr><td> 125 MM NaCl </td><td> 시그마 </td><td> S7653 </td><td></td></tr><tr><td> 2.5 MM KCl </td><td> 시그마 </td><td> P9333 </td><td></td></tr><tr><td> 1.25 MM 아뇨 2 PO 4 </td><td> 시그마 </td><td> S8282 </td><td></td></tr><tr><td> 26 MM NaHCO 3 </td><td> 시그마 </td><td> S6297 </td><td></td></tr><tr><td> 이 MM CaCl 2 </td><td> 시그마 </td><td> 21,114 </td><td></td></tr><tr><td> 1 ㎜ MgCl 2 </td><td> 시그마 </td><td> 63,020 </td><td></td></tr><tr><td> 20 MM 포도당 </td><td> 시그마 </td><td> G7528 </td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td> 표 1. 특정 시약 및 장비. </td></tr></tbody></table>

연속 신경 근육 분기점에서 싱글 schwann 세포를 윤곽을 그리다하는 사진 표백

Sequential Photo-bleaching to Delineate Single Schwann Cells at the Neuromuscular Junction

사진 표백 순서는 NMJ에서 개인 SCS에 라벨을 할 수있는 비 침습적 방법을 제공합니다. NMJ는 포유류의 신경계의 가장 큰 시냅스이며, 시냅스 구조와 기능을 연구 모델을지도로 제공하고 있습니다. 마우스 NMJs 모터 축삭 터미널에서 근육 섬유와 꽈배기 같은 연락처 사이트 구성합니다. 모터 축삭과 터미널 SCS에 끼 우고 있습니다. 지난 수십 년 동안, 여러 가지 유전자 변형 생쥐는 각각 Thy1-XFP 1 PLP-GFP 마우스 2 예를 들어, 모터 뉴런과 SCS를 시각적으로 생성되었습니다. 모터 axons 함께 myelinating axonal SCS는 약진 액션 잠재적 인 전파를 사용하려면, Ranvier의 노드로 구분하여 겹치지 internodes에 배치된다. 대조적으로, 시냅스에서 터미널 SCS는 모니터링 및 neurotransmission를 홍보 파편과 가이드 재생의 axons을 소화 전문 glial 세포입니다. NMJs는 단단 대여섯 비 myel까지이 적용됩니다터미널 SCS를 inating - 그들이 직접 멤브레인 연락처 세에 이러한 그러나, 개별적으로, 가벼운 현미경에 의해 해결 될 수 없습니다. 여러 접근법은 개별적으로 터미널 SCS을 시각화하기 위해 존재합니다. 이 중 어느 것도하지만, 완벽한 없습니다. 예를 들어, 하나의 세포가 염색이 가득한 microelectrode에 찔려 죽은 아르 염료 충전은 두 번째 하나를 작성하기 전에 표시된 셀을 파괴해야합니다. 이 이후의 시간 경과 녹음 3 호환되지 않습니다. SCS의 멀티 스펙트럼 &quot;Brainbow&quot;라벨은 형광 단백질의 조합 표현 사를 사용하여 달성되었습니다. 그러나,이 기술은 여러 transgenes을 결합 필요하며 사용 발기인의 표현 패턴에 의해 제한됩니다. 앞으로 SCS에서 &quot;사진 전환 가능한&quot;단백질의 표정은 또 다른 대안이 다섯 수 있습니다. 여기 순차 사진 표백 한 셀이 표백 곳, 그리고 빼기 얻은 자신의 이미지를 제시한다. 우리는 믿고이 접근하는 -의 편리함과 다양성으로 인해이 -이 생체에 사용하고 다른 세포 유형, 해부학 사이트 또는 종 6 이전 할 수 있습니다 특히 neuroscientist의 기술 팔레트에 지속적인 추가를 나타냅니다. triangularis sterni 근육의 explants에서 터미널 SCS에 대한 표백 순서와 후속 공 촛점 시간 경과 현미경의 다음 프로토콜에서, 우리는 세부 응용 프로그램을. 이, 얇은 표면 쉽게 해부하는 신경 근육 준비 7,8는 NMJ 개발, 생리와 병리 9 연구에 유용 입증되었습니다. 마지막으로, 우리는 고정 고해상도 공 촛점 이미징, immunohistochemistry 또는 ultrastructural 시험 상관 수행 한 후 triangularis sterni 근육이 준비 방법에 대해 설명합니다.

이미징 요리 준비 triangularis sterni의 explant의 예는 그림 1G에 표시됩니다. triangularis 근육이 근육 섬유의 몇 층으로 만 구성으로 explant는 영상 NMJs 예를 생체에 특히 적합합니다. 이 유전자 변형 마우스 라인에서 파생 explants에서 고해상도 이미지를 얻을 수 있도록하는 하이라이트 SCS (PLP-GFP 2) 및 / 또는 axons (Thy1-XFP 1) 중. 고품질 영상을위한 중요한 요인은 다음과 같습니다 :은 (i) 근육 섬유 부상을 방지하기 위해 explant 준비하는 동안 triangularis 근육을 만지면 피하는 경우, (ii) (&gt; 37 (III) 과열되지 샘플, 깊이 - 관련 aberrations을 줄이기 위해 표면과 평면 시냅스를 선택 (V)주의 깊게 샘플을 만지지 않도록 superfusion 관 및 온도 프로브를 삽입뿐만 아니라, K, ...

이러한 신경 근육 접합 (NMJs)에서 터미널 Schwann 세포 (SCS)과 같은 밀도가 높은 포장 조직에 개별 셀을 표시하는 것은 도전입니다. &quot;선형 사진 표백&quot;표백 순서는 시간 경과 영상과 결합 할 수있는 triangularis sterni의 근육 explant, 편리하게 신경 근육 준비에 예를 들어, 단일 터미널 SCS를 delineating 수 있으며<em&gt; 후 특별</em&gt; immunostainings.

연속 신경 근육 분기점에서 싱글 Schwann 세포를 윤곽을 그리다하는 사진 표백

순차적 광퇴색(Sequential photo-bleaching)은 신경근 접합부(NMJ)에서 개별 슈반 세포(SCs)를 표지할 수 있는 비침습적인 방법을 제공합니다. 신경근 접합부는 포유류 신경계에서 가장 큰 시냅스입니다...

다음 실험의 전반적인 목표는 공초점 현미경을 사용하여 신경근 접합부의 단일 슈반 세포를 묘사하는 것입니다. 이 프로토콜에서는 말단 및 축삭 슈반 세포에서 GFP를 발현하는 형질전환 생쥐를 사용합니다. 첫 번째 단계는 신경-근육 조직편을 적출하는 것입니다.다음으로, 특정 신경근 접합부에서 단 하나의 슈반 세포를 제외한 모든 세포를 순차적으로 탈색하여 단일 세포의 형태를 확인합니다. 마지막으로, 저배율 지도를 작성합니다. 조직을 고정시킨 후 면역조직화학 염색을 실시하여, 남아 있는 탈색되지 않은 슈반 세포와 관련하여 원하는 마커를 시각화합니다.결과는 단일 세포의 형태를 보여주며, 필요에 따라 공초점 이미징을 기반으로 고정된 조직 내의 타임랩스 현미경 관찰 또는 면역조직화학적 공동 국소화 분석을 수행할 수 있습니다. 이 방법은 신경근 접합부에서 단일 swan 세포의 형태와 영역에 대한 통찰을 제공할 수 있습니다. 또한 세포주, 살아있는 뇌 절편, 또는 제브라피시와 같은 다른 종을 포함한 다른 시스템에도 적용 가능합니다.일반적으로 이 방법에 익숙하지 않은 연구자는 충분히 표면에 위치한 신경근 접합부를 식별하고, 노력할 가치가 없는 구조물에 시간을 낭비하지 않기까지 어느 정도의 경험이 필요하기 때문에 어려움을 겪을 수 있습니다. 수술을 시작하기 전, ringer solution을 최소 15분 동안 산소화하고 냉각하십시오. 얼음이 담긴 15 centimeter 조직 배양 접시를 현미경 아래에 놓으십시오. 그 위를 금속판으로 덮으십시오.링거액이 채워진 10 centimeter 조직 배양 접시를 금속판 위에 놓습니다. 산소 공급용 스톤을 용액 안에 넣습니다. 다음 단계는 슈반 세포와 축삭이 서로 다른 색으로 표지된 마우스를 선택하는 것입니다.마우스를 안락사시킨 후, 에탄올을 분사합니다. 털로 인한 오염을 방지하기 위해, 큰 가위를 사용하여 흉골 위로 정중선 절개를 가하고 늑골 하단 가장자리와 평행하게 두 군데를 절개합니다. 피부를 제거하고 복부를 연 뒤, 흉골의 근육 부착 부위와 가깝게 절개하여 흉근을 박리합니다. 포셉으로 검상연골을 잡고 검상연골 바로 아래에서 횡격막을 절개하여 엽니다.늑골 부착 부위를 따라 횡격막을 박리합니다. 핀셋으로 검상돌기를 잡아 흉곽을 고정한 상태에서, 조직이 건조해지지 않도록 가끔 링거액(ringer solution)을 적셔줍니다. 척추와 늑골의 부착 부위에 최대한 가깝게 늑골을 절단하기 시작합니다.좌우 절개선은 심장 위쪽 흉골병(manubrium sterni) 방향으로 모여야 합니다. 주요 혈관, 특히 쇄골하정맥(subclavian veins)을 절단하지 않도록 주의하십시오. 가시성을 높이기 위해.포셉으로 검상돌기를 잡은 상태에서 표본을 부드럽게 들어 올립니다. 이제 흉골병 바로 아래를 가로로 절개하여 흉부를 제거하고, 준비된 링거 용액이 담긴 10 centimeter 디쉬로 X 표본을 옮깁니다. 디쉬를 금속판 위에 놓고, 얼음이 채워진 디쉬와 함께 현미경 아래에 배치합니다.소형 스프링 가위를 사용하여 흉선, 흉막, 횡격막 및 흉근의 잔해를 제거합니다. 소형 스프링 가위를 사용하여 흉골에 부착되지 않은 모든 갈비뼈를 절제합니다. 갈비뼈 사이의 조직을 절개합니다.이를 통해 X 설명편이 3.5 centimeter SIL 코팅 가드 접시에 맞게 들어갑니다. 이제 8~10개의 짧은 미누친 핀(minuchin pins)을 사용하여, 여기 표시된 삼각형 모양의 흉안근을 피해 X 설명편을 고정합니다. 핀 2개는 흉골의 연골 부위를 통과시켜 고정하고, 다른 핀 2개는 갈비뼈 사이의 더 부드러운 연골 부위를 통과시켜 고정해야 합니다.삼각근 아래 또는 인접한 갈비뼈를 찌르지 않도록 주의하십시오. 갈비뼈가 어느 정도 벌어질 때까지 핀 고정을 계속합니다. 근육이 약간 신장된 상태로 고정되도록 합니다.Argonne 레이저와 수침 렌즈가 장착된 공초점 현미경으로 3.5 centimeter sill guard 코팅 디쉬를 옮깁니다. 타임랩스 현미경 관찰을 위해 3.5 centimeter sill guard 코팅 디쉬를 가열 링에 삽입합니다. 슈퍼퓨전 시스템과 온도 프로브를 설치합니다.explan, 디쉬의 가장자리 또는 시가 코팅에 아무것도 닿지 않도록 주의하십시오. 타임랩스 현미경 관찰 시에는 X explan을 가열하되, 슈반 세포(schwan cell) 표백 시에는 실온이 더 적합합니다. 이제 Forex 공기 렌즈를 사용하여 삼각형 흉안근(triangular stern eye muscle)의 신경 분포 패턴을 관찰하고 삼각형 흉안 종판 띠(triangular stern eye end plate band)를 찾으십시오.20x 침수 콘 대물렌즈로 교체한 후 nplate 밴드 영역 내의 표면 부위를 찾기 시작합니다. 늑골 위쪽과 늑간 신경에 인접한 부위가 적합한 후보 영역입니다. 100x 또는 60x 침수 콘 대물렌즈로 교체하여 개별 mjs를 확인합니다.이상적으로는 여러 개의 슈반 세포(Schwann cells)로 덮여 있으며 매우 표면에 위치한 신경근접합부(NMJ)를 찾으십시오. 이 프로토콜의 성공을 위해 가장 중요한 것은 표면에 평평하게 위치한 신경근접합부를 찾는 것입니다. 신경근접합부는 원통형 근섬유를 지배하므로 섬유를 둘러싸는 경향이 있어, 영상 촬영에 적합한 각도가 나오지 않는 경우가 많습니다. 표면에 평평하게 위치한 신경근접합부만을 선택하십시오. 이제 100x, 수치구경(numerical aperture) 1.0 대물렌즈를 사용하십시오.2.5배 줌으로 신경근접합부(NMJ)의 공초점 이미지를 획득합니다. 이 설정은 약 0.1 µm의 픽셀 크기를 제공하여 나이퀴스트 기준(nyquist criterion)에 따른 적절한 공간 샘플링을 보장합니다. 이제 488 nm 레이저 빔을 핵 중심에 맞추고 최대 출력으로 5초 동안 조사하여 슈반 세포를 광퇴색시킵니다.다음으로, 세포에 다시 초점을 맞추고 표백 결과를 판단합니다. 필요한 경우 GFP 수준이 배경 수준에 가까워질 때까지 표백 단계를 반복한 후, 다른 이미지를 획득합니다. 표백된 영역이 두 세포가 겹치는 부분 외부에 있는지 확인하는 것이 매우 중요합니다.중첩되는 부분이 있다면, 두 번째 세포의 표백이 뚜렷하게 나타날 것입니다. 적절하게 수행되었을 때, 이 방법은 최종 세포를 명확하게 드러내며, 종종 절차를 시작하기 전에는 예측할 수 없었던 매우 놀라운 형태를 보여줍니다. 슈반 세포 중 하나만 남을 때까지 표백 과정을 반복하십시오.마지막으로 탈색되지 않은 슈반 세포는 공초점 타임랩스 현미경 관찰에 적합합니다. 타임랩스 이미징을 완료한 후, 줌 없이 100배율로 이미지를 촬영하여 이 nj들의 지도를 만들고, 이어서 20배 대물렌즈를 사용하여 해당 영역의 이미지를 촬영하며, 4배 대물렌즈를 사용하여 이 과정을 반복하십시오. 이 지도는 고정된 근육의 면역조직화학 염색 후 nj들을 찾는 데 필요합니다.이미징과 블리칭(bleaching)이 끝나면 설명(explan)의 핀을 제거하고 4% PFA 15 mL 이상이 들어있는 50 mL 튜브로 옮깁니다. 그런 다음 튜브를 얼음에 1시간 동안 두어 조직을 냉각시킨 후, PBS에 녹인 0.1 M glycine으로 10분 이상 헹굽니다. 이후 고정된 설명(explan)을 0.01 M PBS가 채워진 5cm 실크 가드(silk guard) 코팅 조직 배양 접시로 옮겨 추가 해부를 준비합니다.먼저, 한 면은 흉골과 평행하고 다른 면은 뼈에서 연골로 전환되는 부위를 지나도록 사다리꼴 모양으로 절개합니다. 이 부위의 표면에는 삼각근이 포함되어 있습니다. 다음으로, 수평 또는 흉골 횡단 절개를 통해 아래쪽 갈비뼈를 제거하여 삼각근의 미측 끝부분에 자유롭게 접근할 수 있도록 합니다.이제 피하 주사 바늘을 핀처럼 사용하여 승모근 상부에 삽입합니다. 다음으로, 삼각형 모양의 근육을 제거합니다. 먼저, 핀셋을 사용하여 근육의 모서리 부분을 부드럽게 잡습니다.둘째로, 주사기와 바늘을 마이크로 메스와 같이 사용하여 흉벽 평면에 평행하게 절개합니다. 근육의 외측 부분이 분리되면, 또 다른 바늘을 흉벽을 통해 근육 아래로 삽입하여 표본을 고정합니다. 결합 조직 삽입부를 절개하는 동안, 포셉으로 부드럽게 당겨 흉곽에서 근육을 박리합니다.마지막으로, 핀셋을 사용하여 지방과 혈관 잔해를 제거합니다. 이때 신경이 뜯겨 나가지 않도록 주의하십시오. 이제 삼각근을 면역조직화학 염색에 사용할 수 있도록 준비한 것입니다.슈반 세포의 ex vivo 시각화를 위해 PLP 프로모터 하에서 GFP를 발현하는 마우스를 이용한 삼각한 형태의 시신경 설명이 준비되었습니다. P-L-P-G-F-P를 thigh one OFP three 마우스와 교배함으로써 축삭을 동시에 시각화할 수 있었습니다. 설명된 프로토콜을 사용하여, 인접한 두 개의 종말 슈반 세포와 첫 번째 축삭 슈반 세포를 살아있는 상태에서 표백함으로써 단일 종말 슈반 세포의 형태를 놀라울 정도로 정밀하게 확인할 수 있었습니다.사전 제작된 지도를 사용하여 이미징된 신경근 접합부를 추적하였으며, 라이브 공초점 현미경 관찰 후 고정된 조직을 고해상도로 스캔하고, 삼각형 모양의 흉판(stern explan)을 고정 및 염색하였습니다. 여기에는 Alexa 647이 결합된 bungalow toin으로 표지된 적색의 아세틸콜린 수용체와 antis synaptophysin 항체로 표지된 백색의 시냅스 소포가 나타나 있습니다. 이 영상을 시청한 후에는, 처음에는 모두 동일한 형광 단백질로 표지되어 개별적으로 분해하기에는 너무 밀집되어 있던 단일 세포들의 형태를 시각화하는 방법에 대해 충분히 이해하게 될 것입니다.본 예시에서는 신경근接合部(neuromuscular junction)를 보여주지만, 이 외에도 많은 다른 잠재적 응용 분야가 있습니다.

sequential-photo-bleaching-to-delineate-single-schwann-cells-at

Research

연구

JoVE Journal

Neuroscience

신경과학

접근 시냅스에 전기 생리학의 응용 프로그램 시냅스 돌연변이를 분석에 유용 시냅스 활동의 같지는 조치를 제공합니다. 이 문서 신경근육학 분기점 (NMJ)의 노출하는 데 사용되는 절개 방법을...

해부 및 C. 엘레간스 신경근육학 융티온에서 레코딩

의 활성 영역의 해부 및 이미징 Drosophila 신경근육학 융티온

출처: Marinello, M., et al. 결합된 공초점 현미경과 초고해상도 현미경에 의한 마우스의 신경근 접합부의 특성화. J. Vis. 경험. (2021년)이 비디오는 시냅스 전 및 시냅스 후 구조를 시각화하고 분석하기 위해 공초점 및 초고해상도 현미경을 사용하여 쥐 근육 조직의 신경근 접합부의 준비, 면역염색 및 이미징을 보여줍니다.

결합된 공초점 현미경과 초고해상도 현미경에 의한 마우스의 신경근 접합부의 특성화

사차원 (4D) 영상은 척추 신경 터미널을 살고있는 엔도 좀의 두 가지 유형 사이의 행동과 상호 작용을 연구하기 위해 사용된다. 이 작은 구조의 이동은 같은 엔도 좀의 융합과 세포 외 유출 등의 이벤트의 확인을 허용, 세 가지 차원을 특징으로한다.

네 차원 형광 이미징과 신경 말단 생활에 엔도 좀 역학의 시각화

신경근 접합부(NMJ)는 때때로 시냅스 실패로 이어질 수 있는 다양한 조건에서 변경됩니다. 이 보고서는 이러한 구조적 변화를 정량화하기 위한 형광 현미경 기반 방법을 설명합니다.

신경 근육 접합 : 측정 시냅스 크기, 공 초점 형광 현미경을 사용하여 시냅스 단백질 농도의 분열 및 변경

여기에 우리는 세 번째 instar 애벌레의 neuromuscular 접합 (NMJ)에서 모터 뉴런의 신경 퇴화를 시각화하고 계량하기 위해 초파리 유충의 분절 신경을 손상시키는 간단하고 널리 액세스 할 수있는 방법을 설명합니다.

학습 할 간단한 신경계 상해 방법론<em&gt; Drosophila</em&gt; 모터 뉴런 변성

이 문서에 설명 된 프로토콜 neuromuscular 접속점에 자발적인 기록 마우스 levator auris longus (LAL) 근육 및 신경 갖는 postsynaptic 잠재력 (전류 클램프)과 전류 (전압 클램프)를 사용 합니다. 이 기술 사용 하 여 정상과 질병 조건 하에서 시 냅 시스 전송의 기계 장치에 중요 한 통찰력을 제공할 수 있습니다.

Levator Auris Longus 포유류 신경 근육 학 전송 전압 클램프 조건에서의 시험을 위한 준비

신경 근육 접합 구성 요소를 정확하게 검출하는 능력은 병리학적 또는 발달 과정으로 인해 아키텍처의 수정을 평가하는 데 중요합니다. 여기서 우리는 정량 적 측정을 수행하는 데 사용할 수있는 전산 신경 근육 접합의 고품질 이미지를 얻기 위해 간단한 방법에 대한 완전한 설명을 제시합니다.

면역형광및 전체산 신경근육 접합의 형태 분석에 대한 단일 골격 근육 섬유의 해부

이 프로토콜은 SMA 및 ColQ 관련 CMS의 마우스 모델에서 병리학 적 변화를 정량화하는 데 사용되는 컨 포칼 및 STED 현미경을 결합하여 신경근 접합부의 형태 측정 분석 방법을 설명합니다.

결합된 공초점 및 초분해능 현미경에 의한 마우스의 신경근 접합부 특성 분석

상기 프로토콜은 상이한 바이오마커, 즉, 뉴로필라멘트 200, 수포성 아세틸콜린 수송체, 알파-분가로톡신 및 S100을 갖는 형광 면역조직화학을 사용하여 래트 내측 위장관근에서 시냅스 전 말단, 시냅스 후 수용체, 및 시냅스 주변 슈완 세포 사이의 공간적 상관관계를 조사하는 방법을 나타낸다.

쥐 내측 위장근에서 신경근 접합부의 형태학적 특성 시각화

여기에서는 신경근 접합부와 근육 세포의 미세소관 네트워크를 시각화하기 위한 자세한 프로토콜을 제시합니다. Drosophila melanogaster의 강력한 유전 도구와 결합된 이 프로토콜은 신경계에서 미세소관 네트워크 조절 단백질의 역할에 대한 유전자 스크리닝 및 미세소관 역학 분석을 크게 용이하게 합니다.

초파리 유충 신경근 접합부 및 근육 세포를 사용하여 미세소관 네트워크 시각화

배우세요 연속 사진 표백을 이용해 신경근육 접합부의 단일 슈반 세포를 윤곽화하는 방법을. 공초점 현미경과 GFP 발현 형질전환 마우스를 활용하여 개별 세포 형태를 시각화하고 신경 재생 연구에 활용할 수 있습니다.

연속 신경 근육 분기점에서 싱글 Schwann 세포를 윤곽을 그리다하는 사진 표백

더 많은 동영상 탐색