Name: 뇌 조직의 만성 Optogenetic의 자극을위한 광섬유 주입 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-10-29T13:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 18 s
Description: 배우세요 광섬유 임플란트를 이용한 마우스 뇌 조직의 만성 광유전학적 자극 방법을. 이 기술은 뇌 조직 손상을 최소화하며 장기적인 신경 회로 기능 연구에 활용됩니다.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

이 기술은 원래 스파르타 외., 2012 년까지 설명한 쉽게 우리가 실험실에서 사용하기 위해 적응 된 것을 인정하고 싶다.

각 제조업체 및 / 또는 공급 업체와 함께 * 모든 자료는 프로토콜 아래에 나열되어 있습니다. 1. 임플란트의 조립 <ol><li> 수지의 1g에 경화제의 100 밀리그램을 추가하여 열 경화 ​​광섬유 에폭시의 혼합물을 준비한다. </li><li> 측정 및 쐐기 팁 초경 서기로 골의 100 μm 코어와 광 125 μm 섬유의 약 35mm를 잘라. 단일 방향 운동에서 광 섬유 및 점수에 서기 수직를 배치합니다. 섬유를 절단하는 것은 완전히 섬유 코어가 손상됩니다. </li><li> 부회장에 구멍 127 μm로 물미 LC 세라믹을 삽입, 볼록면은 아래 지적했다. </li><li> 페럴에 광 섬유를 삽입합니다. 광 섬유 부드럽게 밀어과 영특 페럴 (그림 1a)의 볼록 넘어 돌출한다. </li><li> 에폭시는 검은 색 변까지 열 총을 평면 엔드와 열에 열 경화 ​​광섬유 에폭시 한 방울을 적용합니다. 에폭시는해야이 가열 및 이전 치료 될 때 페럴을 입력합니다. 에폭시는 일정한 열 응용 프로그램의 ~ 1 분 이내에 치료해야합니다. </li><li> 이 커플러와 인터페이스를 방해하므로, 페럴의 측면을 따라 모든 에폭시를 제거합니다. </li><li> 연마 패드의 알루미늄 산화물 연마 시트 (그림 1b)에 LC 광섬유 연마 디스크 (FOPD)를 사용 페럴의 볼록 끝을 폴란드어. 원형 회전 패턴을 확인하고 다음과 같은 순서로 네 개의 등급에 폴란드어 : 5, 3, 1 0.3 μm의 모래. </li><li> 가 관심 지역을 대상으로하는 등의 적절한 길이로 평면 끝 부분에 광 섬유를 잘라. 길이는 stereotaxic지도 책을 사용하여 결정될 수있다. </li><li> 아래에 설명 된 커플러 코드를 통해 레이저에 연결하여 임플란트를 테스트합니다. 임플란트의 광택 끝은 커플러의 슬리브에 삽입되고 반대 페럴과 연락해야합니다. 임플란트는 일의 끝에서 측정, 광 출력의 10 MW를 유지 할 수 있어야한다전자 주입 섬유. 나쁜 임플란트는 광 섬유의 끝 근처에 약한 초점을 갖게됩니다. </li><li> 사용까지 폼의 완성 이식을 (그림 1C) 저장합니다. </li></ol> 2. 광섬유 커플러 코드의 조립 <ol><li> 위와 같이 열 경화 ​​광섬유 에폭시의 혼합물을 준비한다. </li><li> 측정 및 쐐기 팁 초경 서기로 점수를하여 200 μm 코어와 광 220 μm 섬유의 적절한 길이를 잘라. 섬유의 길이는 마우스가 주택 주변에 자유롭게 이동할 수 있지만, 마우스가 섬유를 통해 씹을 할 수 없습니다. </li><li> 광섬유 길이보다 약간 긴 분기 관의 길이에 광 섬유를 삽입합니다. 튜브는 광 섬유보다 약간 큰 내부 직경이 있어야합니다. </li><li> 스트립 ~ 25mm 광학 섬유의 한쪽 끝에서와 멀티 FC의 MM의 금속 끝에 삽입은 멈출 때까지 230 μm는 지루한 회의를 페럴. 광 섬유 ferru을 통해 내밀다한다르 엔드 (그림 2A). </li><li> 금속 끝에서 (슈퍼 접착제) 시아 노 아세틸렌과의 연결을 고정합니다. 커넥터 부팅과의 연결을 커버하고 FC FOPD와 페럴 끝을 폴란드어. 5, 3, 1, 0.3 μm 그릿 (그림 2B) : 원형 회전 패턴 및 다음과 같은 순서로 네 개의 등급에 폴란드어를 확인합니다. </li><li> 말초 볼록 끝과 LC 세라믹 페럴 (230 μm ID 구멍)에 광 섬유의 다른 쪽 끝을 샅샅이 삽입합니다. 치유 될 때까지 평면 엔드와 열에 에폭시 한 방울을 적용합니다. </li><li> 위에서 설명한대로 알루미늄 산화물 연마 시트에 FC FOPD를 사용 페럴의 볼록 끝을 폴란드어. </li><li> 슬리브의 중간 지점까지 페럴의 볼록 끝으로 LC 페럴 슬리브를 슬라이드. </li><li> 장소 열 수축 분기 관과 연결합니다 (그림 2C)를 확보하고 보호하는 슬리브와 열을 통해 튜브를. </li><li> 레이저 소스에 연결하고 빛 outp를 측정하여 커플러을 테스트분광 광도계와 커플러를 통해 UT. 레이저 출력과 측정 된 커플러 출력 사이의 빛 손실이 30 %를 초과 할 수 없습니다. </li></ol> 3. 외과 이식 *이 팁 전용 절차입니다. 장비는 살균이지만 장갑 악기 및 장비 사이의 지속적인 조작으로 인해 할 필요가 없습니다. <ol><li> intraperitoneal 주사 케타민 / Xylazine 혼합 100 30 게이지 바늘을 사용하여 각각 10 밀리그램 / kg으로 마우스를 마취. </li><li> 가위로 두피를 면도. Betasept 번 반복, 두 분을 위해 (4 % Chlorhexidine 솔루션) 닦아 다음 70% 이소 프로필 알코올과 두피를 닦아주십시오. </li><li> sterotaxic 장비에 마우스를 놓고 두개골 레벨이되도록 머리를 보호합니다. 건조 및 수술 통증을 방지하기 위해 눈에 안과 연고를 적용합니다. 산소가 MOU의 생리적 상태에 따라 희석 volatized isoflurane (1-3 %를 사용 마취를 유지계속 꼬리 핀치에 대응하여 모니터링해야 SE). </li><li> 람다에 눈 궤도에서 두개골을 노출, 두피의 중간 선을 통해 절개를합니다. 필요에 따라 결합 조직을 버리고 밀어 넣습니다. </li><li> 피부를 막아 Serafin 클램프를 사용하여 두개골 (그림 3A)에 대한 액세스를 유지합니다. </li><li> 치과 피크와 두개골의 표면에 걸쳐 엣지 바둑판 무늬로하는 패턴. 멸균 식염수에 떨어진 파편을 씻으십시오. 철저하게 말린다. </li><li> micropores를 만들려면 ~ 2-3 초에 면봉으로 노출 된 두개골에 과산화수소 (3 %)을 적용합니다. 여러 번 씻고 완전히 건조 시키십시오. 스파르타 외에 설명 된대로 또는 앵커는 두개골에 실수 할 수 있습니다. (2012). </li><li> 다시 말하지만, 에칭 바둑판 무늬로하는 치과 곡괭이로 두개골에 걸쳐 패턴과는 식염수에 파편을 씻어. 철저하게 말린다. </li><li> 회전 도구를 사용 멸균 드릴 비트와 함께 작은 버 구멍 craniotomy을 (직경 &lt;1 ㎜) 확인(autoclaved) 위의 bregma와 람다로 조정 stereotaxic지도 책에 의해 결정 관심 지역. 경질을 어기거나 조직을 손상하지 않도록주의하십시오. 쓰레기를 씻어 철저히 건조 시키십시오. </li><li> 프로브 홀더에 광섬유 페럴 (임플란트)을 삽입하고 stereotaxic 팔에 연결합니다. </li><li> 직접 stereotaxic 팔 (그림 3B)를 사용하여 관심 지역 위 자리에 임플란트를 배치합니다. 뇌 조직에 광섬유를 삽입하면 섬유 ~ 2 ㎜ / 분의 속도로 천천히 전진해야합니다. 페럴은 남아있는 두개골에 휴식을해야합니다. </li><li> 치과 시멘트의 혼합물을 준비한다. 혼합물은 쉽게 두개골에 걸쳐 적용 할 수있는 낮은만큼 점도가 있어야합니다. 혼합 2-4 분에 대해서는 사용이 될 것입니다. </li><li> 멸균 이쑤시개 사용하여 두개골에서와 임플란트의 하부로 치과 시멘트의 얇은, 심지어 레이어를 적용합니다. 로 치과 시멘트의 기본 층은 두개골에 많은 면적을 커버해야합니다수. 마우스의 피부와 접촉 치과 시멘트를 짓게하지 마세요. 이 증가 suturing에 어려움뿐만 아니라 마우스에 자극을 야기합니다. 치과 시멘트가 피부에 접촉 않는 경우, 부분적으로 시멘트의 전체 레이어가 설정되기 전에 벗겨 될 수 있도록 건조 할 수 있습니다. </li><li> 완전히 건조하도록 허용합니다. </li><li> 각 층 (그림 3C) 완전히 건조 할 수 있도록 두개골을 극복하고 임플란트 주위로 작은 마운드를 형성하기 위해 치과 시멘트도 층을 적용합니다. 부드러운, 탁 트인 연결을 할 수 있도록 시멘트의 깨끗한 페럴의 볼록 월말 ~ 3~5밀리미터 둡니다. </li><li> 치과 시멘트의 마운드 위에와 C22 바늘로 멸균, 단일 사용 실크 편조 봉합 (6-0)를 사용하여 임플란트 주변의 두피를 봉합 해. 7 일 후 제거합니다. 선택 사항 : suturing 이후 추가 바인딩을 사용 뇌려 본드. 최소한의 뇌려 본드를 사용하십시오. 초과는 긁힘으로 인해 심각한 피부 손상을 초래할 수 있습니다. </li><li> Immediatel수술 후 Y는 마우스 피하에 수술 통증을 줄일 Ketprophen (5 밀리그램 / kg)을 주입해야합니다. 이 24 시간 이상 반복해야합니다. 임플란트의 기초 봉합 피부와 주변 국소 진통제 (Bupivicaine)와 항생제를 (Neosporin) 적용됩니다. </li><li> 마취에서 회복을위한 난방 담요 새장에 마우스를 놓습니다. 멸균, 수술 후 회복 케이지에 마우스를 놓습니다. 복구 케이지 온도를 유지하고 질식을 방지하기 위해 모든 침구를 포함 할 수 없습니다. 마우스는 원래 케이지 또는 한 번 깨어 새로운 케이지에 반환 할 수 있습니다. </li></ol> 광원과 관심 지역의 광 섬유 끝 사이에 최소한의 광자 손실 광섬유 임플란트 및 커플러 결과의 적절한 조립. 잘 연마 광섬유는 단일, 동심 원에게 (그림 2D)에 빛을 전송해야합니다. 주의 주입 및 suturing으로 임플란트가에 눈에 띄는 자극을 발생하지 않습니다마우스와 광 섬유 또는 전송 빛의 양의 큰 저하없이 장기 연구 (그림 3D,&gt; 1 달되지 않은 관찰)에 장소에 남아있을 수 있습니다. 부적절한 주입 또는 suturing는 자극을 일으킬 수 있으며, 영구적 인해 조작에 치과 시멘트, 또는 치과 시멘트에서 페럴의 파손 노출의 두피를 긁는 마우스 될 수 있습니다. 조립 시스템의 개략도는 그림 4에서 볼 수 있습니다. <img alt="그림 1" src="/files/ftp_upload/50004/50004fig1.jpg" /> 그림 1. implantable 광섬유 조립. (A) 광섬유는 영특 화살촉으로 표시 볼록 넘어 돌출, 페럴에 삽입됩니다. (b)는 페럴의 볼록 끝을 연마 시트 점차적으로 미세한 성적에 FOPD를 사용하여 연마하고 있습니다. (C) 마감 implantable 섬유 선택집적 회로. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/50004/50004fig1large.jpg" target="_blank">큰 그림을 보려면 여기를 클릭하십시오</a> . <img alt="그림 2" src="/files/ftp_upload/50004/50004fig2.jpg" /> 그림 2. 보형물로 테 더링 광섬유 로터리 조인트를하는 데 광섬유 커플러 조립. 페럴 어셈블리를 통해 (가) 광섬유 꽂 혔지. (b)는 어셈블리의 페럴 측면은 광택 용지를 사용하여 FOPD과 광택이 점진적으로 세밀한 등급으로 삽입됩니다. (C) 페럴 슬리브는 페럴 위에 장착 및 열 수축 튜브로 고정된다. (D) 완료 광섬유 커플러는 최소 광자 손실이있는 동심 빛을 생산해야합니다. <img alt="그림 3" src="/files/ftp_upload/50004/50004fig3.jpg" /> 그림 3. 외과 주입 섬유 광학. craniu의 (A)는 표면 전체m이 노출되어 있으며 결합 조직이 지워집니다. (B) 광섬유 보형물은 stereotaxic 팔 위치에 개최됩니다. (C) 치과 시멘트는 두개골에 광섬유 임플란트를 수정 적용됩니다. (D) 주입 후&gt; 1 월 피부는 임플란트 주변에 치유하고 염증의 흔적이 없습니다. <img alt="그림 4" src="/files/ftp_upload/50004/50004fig4.jpg" /> 그림 4. 기능 시스템의 개략도

<ol><li>Boyden, E. S., Zhang, F., Bamberg, E., Nagel, G., Deisseroth, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Millisecond-timescale%2C+genetically+targeted+optical+control+of+neuronal+activity%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Millisecond-timescale, genetically targeted optical control of neuronal activity.</a> Nat Neurosci. 8, 1263-1268 (2005).</li>
<li>Arenkiel, B. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+Vivo+Light-Induced+Activation+of+Neural+Circuitry+in+Trangenic+Mice+Expressing+Channelrhodopsin-2%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">In Vivo Light-Induced Activation of Neural Circuitry in Trangenic Mice Expressing Channelrhodopsin-2.</a> Neuron. 54, 205-218 (2007).</li>
<li>Gradinaru, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Molecular+and+cellular+approaches+for+diversifying+and+extending+optogenetics%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Molecular and cellular approaches for diversifying and extending optogenetics.</a> Cell. 141, 165-16 (2010).</li>
<li>Luo, L., Callaway, E. M., Svoboda, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genetic+dissection+of+neural+circuits%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">Genetic dissection of neural circuits.</a> Neuron. 57, 634-660 (2008).</li>
<li>Arenkiel, B. R., Ehlers, M. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Molecular+genetic+and+imaging+technologies+for+circuit+based+neuroanatomy%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Molecular genetic and imaging technologies for circuit based neuroanatomy.</a> Nature. 461, 900-907 (2009).</li>
<li>Zhang, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optogenetic+interrogation+of+neural+circuits%3A+technology+for+probing+mammalian+brain+structures%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Protoc%22%5BJournal%5D)">Optogenetic interrogation of neural circuits: technology for probing mammalian brain structures.</a> Nat. Protoc. 5, 439-456 (2010).</li>
<li>Adamantidis, A. R., Zhang, F., Aravanis, A. M., Deisseroth, K., de Lecea, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neural+substrates+of+awakening+probed+with+optogenetic+control+of+hypocretin+neurons%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Neural substrates of awakening probed with optogenetic control of hypocretin neurons.</a> Nature. 450, 420-424 (2007).</li>
<li>Sparta, D. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Construction+of+implantable+optical+fibers+for+long-term+optogenetic+manipulation+of+neural+circuits%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Protocols%22%5BJournal%5D)">Construction of implantable optical fibers for long-term optogenetic manipulation of neural circuits.</a> Nature Protocols. 7, 12-23 (2012).</li>
<li>Stuber, G. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Excitatory+transmission+from+the+amygdala+to+nucleus+accumbens+facilitates+reward+seeking%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Excitatory transmission from the amygdala to nucleus accumbens facilitates reward seeking.</a> Nature. 475, 377-380 (2011).</li>
<li>Liu, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optogenetic+stimulation+of+a+hippocampal+engram+activates+fear+memory+recall%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Optogenetic stimulation of a hippocampal engram activates fear memory recall.</a> Nature. 484, 381-385 (2012).</li>
</ol>

Optogenetics 특정 neuronal 하위 유형 통해 전례없는 제어를 할 수있는 강력하고 새로운 기술입니다. 전극을 통해 셀 타입 무차별 및 전기 자극의 침해 효과를 피하는 동안이는 해부학과 측두엽 정밀도와 신경 회로를 조절하기 위해 악용 할 수 있습니다. 섬유 광학의 주입은 조직에 최소한의 손상과 쥐 행동, 깨어에서 여러 세션을 통해 신경 회로의 일관성, 만성 자극 할 수 있습니다. 이 시스템은 원래 스파르타 외에 의해 개척. 8 우리의 목적에 맞게 수정이 주입 된 캐뉼라보다 한 단계에 들어갔 및 장기 연구에서 세션 사이에 타겟팅 일관성을 보장하기 위해 관심 영역의 위치에 광 섬유를 해결할 수 있습니다. 임플란트는 뇌의 다른 영역을 자극하도록 구성 할 수 있습니다. 이 방법에서 다양한 단계 세부에 정밀도와 관심이 필요합니다. 광섬유 커플 링의 각 교차점입​​니다반드시 최소한의 빛 손실을 보장하기 위해 연마. 연마 후, 끝은 섬유 코...

<table border="1"><tbody><tr><td> 시약이나 장비의 이름 </td><td> 회사 </td><td> 카탈로그 # </td><td> 코멘트 </td></tr><tr><td> LC 페럴 슬리브 </td><td> 정밀 섬유 제품 (PFP​​) </td><td> SM-CS125S </td><td> 1.25 mm의 ID </td></tr><tr><td> FC MM 사전 조립 된 커넥터 </td><td> PFP </td><td> MM-CON2004-2300 </td><td> 230 μm은 페럴 </td></tr><tr><td> 밀러 FOPD-LC 디스크 </td><td> PFP </td><td> M1-80754 </td><td> LC ferrules에 대한 </td></tr><tr><td> 분기 관 </td><td> PFP </td><td> FF9-250 </td><td> 900 μm OD, 250 μm의 ID </td></tr><tr><td> MM LC 스틱 1.25 mm를 페럴 </td><td> PFP </td><td> MM-FER2007C-1270 </td><td> 127 μm의 ID 보어 </td></tr><tr><td> MM LC 스틱 1.25 mm를 페럴 </td><td> PFP </td><td> MM-FER2007C-2300 </td><td> 230 μmID 보어 </td></tr><tr><td> 열 경화 ​​에폭시, 경화제와 수지 </td><td> PFP </td><td> 동부 표준시 - 353ND-16OZ </td><td></td></tr><tr><td> FC / PC와 SC / PC 커넥터 연마 디스크 </td><td> ThorLabs </td><td> D50-FC </td><td> FC ferrules에 대한 </td></tr><tr><td> 디지털 광학 전력 및 에너지 미터 </td><td> ThorLabs </td><td> PM100D </td><td> 분광 광도계 </td></tr><tr><td> 폴리싱 패드 </td><td> ThorLabs </td><td> NRS913 </td><td> 9 &quot;X 13&quot;50 Durometer </td></tr><tr><td> 0.3, 1, 3, 5 μm 모래 : (폴리싱) 시트를 래핑 알루미늄 산화물 </td><td> ThorLabs </td><td> LFG03P, LFG1P, LFG3P, LFG5P </td><td></td></tr><tr><td> 표준 하드 Cladding 멀티 섬유 </td><td> ThorLabs </td><td> BFL37-200 </td><td> 낮은 OH, 200 μm 코어, 0.37 NA </td></tr><tr><td> 섬유 스트리핑 도구 </td><td> ThorLabs </td><td> T10S13 </td><td> 클래드 / 공동의 : 200 μm / 300 μm </td></tr><tr><td> 실리카 / 실리카 광섬유 </td><td> Polymicro 기술 </td><td> FVP100110125 </td><td> 높은-OH, UV 향상된, 0.22 NA </td></tr><tr><td> 1x1 Fiberoptic 로타리 조인트 </td><td> 도리스 식 렌즈 </td><td> FRJ_FC - FC </td><td></td></tr><tr><td> 모노 Fiberoptic Patchcord </td><td> 도리스 식 렌즈 </td><td> MFP_200/230/900-0.37_2m_FC-FC </td><td></td></tr><tr><td> 튜브, 1 / 8 인치를 축소 가열 </td><td> 연합 전자 </td><td> 689-0267 </td><td></td></tr><tr><td> 열 총 </td><td> 연합 전자 </td><td> 972-6966 </td><td> 250 W, 750-800 ° F </td></tr><tr><td> 면화는 applicators 팁을 </td><td> 청교도 의료 제품 회사 </td><td> 806-WC </td><td></td></tr><tr><td> VetBond 조직 접착제 </td><td> 피셔 과학 </td><td> 19-027136 </td><td></td></tr><tr><td> 플래시 의치베이스 아크릴 </td><td> 예이츠 Motloid </td><td> ColdPourPowder + Liq </td><td></td></tr><tr><td> 본 미니 창포 가위 </td><td> Integra Miltex </td><td> 18-1392 </td><td> 3-1/2 &quot;(8.9cm), 직선, 15mm 블레이드 </td></tr><tr><td> 존스 홉킨스 불독 클램프 </td><td> Integra Miltex </td><td> 7-290 </td><td> 곡선 1-1/2 &quot;(3.8 cm), </td></tr><tr><td> 메가 토크 전기 모터 연구실 </td><td> 벡터 </td><td> EL-S </td><td></td></tr><tr><td> 팬더 Burs - 볼 # 1 </td><td> 클락슨 연구소 </td><td> 77.1006 </td><td></td></tr><tr><td> 바이올렛 블루 레이저 시스템 </td><td> CrystaLaser </td><td> CK473-050-O </td><td> 파장 : 473 nm의 </td></tr><tr><td> 레이저 전원 공급 장치 </td><td> CrystaLaser </td><td> CL-2005 </td><td></td></tr><tr><td> 뒤몽 # 2 Laminectomy의 포셉 </td><td> 에프오프라인 과학 도구 </td><td> 11223-20 </td><td></td></tr><tr><td> 탐침 </td><td> 정밀 과학 도구 </td><td> 10140-02 </td><td></td></tr><tr><td> 5 &quot;스트레이트 Hemostat </td><td> Excelta </td><td> 35-PH </td><td></td></tr><tr><td> 가중치 기반으로 바이스 </td><td> Altex 전자 </td><td> PAN381 </td><td></td></tr></tbody></table>

뇌 조직의 만성 optogenetic의 자극을위한 광섬유 주입

Fiber-optic Implantation for Chronic Optogenetic Stimulation of Brain Tissue

neuronal 연결의 Elucidating 패턴은 임상과 기초 모두 신경 과학에 대한 도전이었다. 전기 생리학은 시냅스 연결의 패턴을 분석 황금 표준 왔지만 짝 electrophysiological 레코딩 성가신와 실험적으로 제한을 모두 할 수 있습니다. optogenetics의 발달은 체외 1과 생체 2,3에서 모두 뉴런과 회로를 자극 할 수있는 우아한 방법을 도입하였습니다. 이산 neuronal 인구에 옵신 표현을 유도 세포 유형의 특정 발기인의 활동을 이용하여, 하나는 정확하게 구별 회로 4-6에서 유전자 정의 neuronal 하위 유형을 자극 할 수 있습니다. 전기 자극 및 / 또는 약리 조작 등의 뉴런을, 자극에 잘 설명 방법은 종종 침입 세포 유형의 무차별이고, 주변 조직에 손상을 줄 수 있습니다. 이러한 제한은 전형적인 시냅스 기능 및 / 또는 회로의 동작을 변경 수 있습니다. 또한, 인해조작의 성격에, 현재의 방법은 종종 급성 및 단말 있습니다. Optogenetics는 비교적 무해한 방식으로 뉴런을 자극하고, 유전자 타겟으로 뉴런에 할 수있는 능력을 갖게. 생체 optogenetics에 관한 연구의 대부분은 현재 주입 캐뉼라 6,7를 거치게 광학 섬유를 사용하지만,이 방법의 한계는 광섬유의 반복 삽입과 손상된 뇌 조직과 캐뉼라 내부의 섬유의 잠재적 인 파손이 포함되어 있습니다. optogenetics의 급성장 분야 감안할 때, 만성 자극의 더 신뢰할 수있는 방법은 최소한의 부수적 인 조직 손상과 장기 연구를 촉진 할 필요가 있습니다. 여기 효과적이고 우아 스파르타 외에 설명 된 방법을 보완하기 위해 비디오 기사 등의 수정 프로토콜을 제공합니다. 8 anesthetized 마우스의 두개골로 광섬유 이식 및 영구 고정의 제조뿐만 아니라의 조립에 섬유광 커플러는 광원에 임플란트를 연결. 고체 레이저를 광섬유로 연결 임플란트는 만성 적은 조직 손상 9 작은 분리, tethers을 사용하여 기능 neuronal 회로를 photostimulate 할 수있는 효율적인 방법을 할 수 있습니다. 광섬유 임플란트를 영구적으로 고정을 제공 일관 최소한의 조직 손상을 갖춘 10 개 깨어 행동 쥐 neuronal 회로의 생체 optogenetic 연구의 장기.

optogenetics의 개발은 이제 정확하게 유전자 정의 뉴런과 회로를 자극 할 수있는 방법을 모두 제공합니다<em&gt; 체외에서</em&gt;와<em&gt; 생체 내</em&gt;. 여기 뇌 조직의 만성 photostimulation에 광 섬유의 조립 및 주입을 설​​명합니다.

뇌 조직의 만성 Optogenetic의 자극을위한 광섬유 주입

Elucidating patterns of neuronal connectivity has been a challenge for both clinical and basic neuroscience. Electrophysiology has been the gold standard ...

다음 실험의 목적은 깨어 있고 행동하는 쥐에서 장기간 신경 회로를 활성화하고 연구하는 것입니다. 이 방법은 원래 Sparta etal에서 설명한 개념에서 채택되었습니다. 이것은 먼저 광학 회전 조인트를 광섬유 임플란트에 연결하는 광섬유 커플 코드를 조립함으로써 달성됩니다.다음으로, 광섬유는 관심 있는 뇌 조직 위에 이식되어 빛이 뉴런을 발현하는 채널로 직접 이동할 수 있는 통로를 만듭니다. 마지막으로, 광원은 광학 회전 관절에 연결되어 광원에서 뇌 조직까지 직렬로 연결된 경로를 만듭니다. 궁극적으로, 채널 redsin 발현 뉴런의 광 유도 발사는 생체 내, 전기 생리학 및 행동 연구를 기반으로 평가할 수 있습니다.가이드 캐뉼러와 같은 기존 방법에 비해 이 기술의 주요 장점은 광섬유의 반복적인 삽입 및 제거로 인한 뇌 조직의 손상을 최소화한다는 것입니다. 이 방법은 신경 회로 기능에 대한 통찰력을 제공할 수 있지만 특정 유형의 신경 장애의 기저에 있는 시냅스 및 회로 의존 메커니즘을 더 잘 이해하기 위해 다른 시스템에도 적용할 수 있습니다. 이 방법을 시각적으로 보여주는 것이 중요합니다.이식 단계는 마스터하기 어렵기 때문에 사소해 보이는 각 단계는 방법의 전반적인 안정성과 신뢰성에 크게 기여합니다. 먼저 100미크론 코어가 있는 125미크론 직경의 광섬유 35mm를 절단하여 쐐기 팁 카바이드 스크라이브를 광섬유에 수직으로 배치하고 단일 단방향 동작으로 광섬유를 채점한 다음 똑바로 당겨 빼냅니다. 이제 직경 127 미크론의 볼록한 면이 바이스로 향하는 볼록한 면이 있는 lc 세라믹 야성을 삽입한 다음 광섬유 조각을 야성에 삽입합니다.광섬유는 부드럽게 미끄러져 들어가야 하며 야생의 볼록한 끝 부분 너머로 약간 돌출되어야 합니다. 다음으로 갓 준비한 열경화 광섬유 에폭시 한 방울을 야생의 평평한 끝 부분에 바르고 에폭시에 히트 건을 바릅니다. 에폭시는 가열될 때 야생을 채워야 하고 검게 변할 때 경화되어야 합니다.경화 후 야생의 측면에서 에폭시를 청소한 다음 lc 광섬유 연마 디스크를 사용하여 원형 회전 패턴을 만들어 4 가지 감소 등급의 연마 패드에서 산화 알루미늄 연마 시트의 볼록한 끝을 연마합니다. 그런 다음 평평한 끝의 광섬유를 관심 영역을 대상으로 하는 적절한 길이로 자릅니다. 광택 처리된 광섬유를 테스트하려면 임플란트의 광택 처리된 끝을 커플러의 슬리브에 삽입합니다.반대편 야생동물과의 직접적인 접촉이 느껴질 때까지 불량 임플란트는 광섬유 팁 근처의 초점이 약한 반면, 좋은 임플란트는 출력 없이 부드러운 동심원 빛을 투과합니다. 최대 10밀리와트의 출력은 완성된 임플란트를 사용할 때까지 거품에 저장합니다. 이 단계를 시작하여 200미크론 코어가 있는 220미크론 직경의 광섬유를 측정한 다음 점수를 매겨 마우스가 자유롭게 움직일 수 있지만 마우스가 섬유를 씹을 수 없도록 합니다.그런 다음 내경이 광섬유보다 약간 크고 길이가 약간 짧은 퍼레이션 튜빙 조각에 광섬유를 삽입합니다. 이제 광섬유의 한쪽 끝에서 약 25mm를 벗겨내고 다중 모드 FC MM 야생 어셈블리의 금속 끝에 삽입합니다. 직경이 230미크론인 보어가 멈출 때까지 광섬유는 야생 끝을 통해 튀어나와야 합니다.다음으로, 금속 끝에서 시아노아크릴레이트로 연결을 고정하고 커넥터로 연결을 덮습니다. 방금 시연한 것처럼 FC 연마 디스크로 야생 끝을 연마합니다. 광섬유의 다른 쪽 끝을 벗겨낸 후 볼록한 끝 원위만 있는 lc 세라믹 야성체에 삽입합니다. 그런 다음 평평한 끝 부분에 에폭시 한 방울을 바르고 방금 설명한 대로 경화될 때까지 가열합니다.방금 시연한 대로 야생의 볼록한 끝을 연마한 후 야생이 슬리브의 중간 지점에 도달할 때까지 lc 야생 슬리브를 야생의 볼록한 끝 부분 위로 밉니다. 그런 다음 ation 튜브와 슬리브 위에 열 수축 튜브를 놓고 열 수축 튜브를 가열하여 연결을 고정하고 보호합니다. 마지막으로, 야생을 레이저 소스에 연결한 다음 분광 광도계로 커플러를 통해 출력되는 광을 측정하여 테스트하고, 레이저 출력과 측정된 커플러 출력 사이의 광 손실은 수술을 시작하기 전에 30%를 초과해서는 안 됩니다.isop 프로필 알코올과 클로르헥시딘 용액으로 수술 부위를 소독합니다. 다음으로, 마우스를 입체 리그에 놓고 두개골이 수평이 되도록 머리를 고정합니다. 건조함과 수술 후 통증을 예방하기 위해 동물의 눈에 안과 연고를 바르십시오.이제 두피의 정중선을 절개하여 안와에서 람다 봉합사까지 두개골을 노출시킵니다. 세라핀 클램프를 사용하여 피부를 억제하고 두개골에 대한 접근을 유지하십시오. 그런 다음 치과 픽을 사용하여 두개골 표면 전체에 체크 무늬 패턴을 에칭합니다.생성된 파편을 멸균 식염수로 씻어냅니다. 충분히 건조시킨 후 면봉을 사용하여 노출된 두개골에 약 2-3초 동안 3%의 과산화수소를 바르면 미세 기공이 생성됩니다. 그런 다음 더 멸균된 식염수로 두개골을 여러 번 씻고 철저히 말리십시오.바둑판 패턴을 두개골에 에칭, 세척 및 건조시킨 후 다시 광섬유 야생 임플란트를 프로브 홀더에 삽입한 다음 입체 암에 연결합니다. bgma 및 lambda로 보정된 정위 아틀라스를 사용하여 버 홀 위치를 결정합니다. 그런 다음 회전식 치과 드릴을 사용하여 관심 영역보다 직경이 1mm 미만인 작은 구멍 개두술을 만들고 경막이 부러지거나 조직이 손상되지 않도록 주의하십시오.입체성 팔을 사용하여 임플란트를 관심 영역 바로 위에 배치하고 야생은 주변 두개골 조직에 놓여야 합니다. 이제 멸균 이쑤시개를 사용하여 갓 준비한 치과 시멘트의 얇고 균일한 층을 두개골을 가로질러 임플란트의 아래쪽 부분에 적용합니다. 동물의 피부에 닿지 않도록 주의하면서 치과 시멘트의 기저층은 두개골의 표면적을 최대한 많이 덮어야 합니다.이 절차의 가장 어려운 점은 치과 시멘트가 덩어리 피부에 닿지 않도록 적용하는 것입니다. 성공을 보장하려면 한 번에 소량의 시멘트를 얇은 층으로 바르고 각 층이 완전히 마를 때까지 기다렸다가 다음 층을 추가하십시오. 치과용 시멘트를 균일하게 바르고 두개골 위와 임플란트 주위에 작은 둔덕을 형성합니다.방해받지 않는 부드러운 연결을 허용하기 위해 시멘트를 깨끗하게 청소하는 볼록한 끝의 3-5 밀리미터를 남겨 두십시오. 그런 다음 치과 시멘트 더미와 임플란트 주위에 두피를 봉합하면 봉합 후 추가 바인딩을 위해 수의사 접착 접착제를 사용할 수 있습니다. 마지막으로, 국소 진통제와 항생제를 봉합사 피부와 임플란트 바닥 주변에 바르고 수술 후 회복을 위해 마우스를 케이지에 넣습니다.광섬유 임플란트와 커플러를 적절하게 조립하면 관심 영역에서 광원과 광섬유 끝 사이의 광자 손실이 최소화됩니다. 광택이 나는 광섬유는 이 이미지에서 볼 수 있듯이 신중한 이식 및 봉합을 통해 여기에 표시된 원과 유사한 균일한 동심원으로 빛을 투과해야 하지만, 임플란트는 마우스에 눈에 띄는 자극을 일으키지 않으며 광섬유의 심각한 저하 또는 투과되는 빛의 양 없이 장기 연구를 위해 제자리에 남아 있을 수 있습니다.깨어 있는 마우스의 기능적 행동 분석은 자극의 직접적인 반응을 보여줍니다. 이에 의해 입증된 바와 같이 운동 피질에 이식된 광섬유를 통해 생체 내 전기생리학 비디오 데이터는 임플란트를 통한 표적 뉴런의 활성화와 뇌 자극 중 동물의 행동 반응을 보여줍니다. 이 절차에 따라, 표적 세포와 관련된 회로 연결 패턴은 무엇입니까?이 비디오를 시청한 후에는 광섬유 임플란트 및 커플러 코드를 조립하는 방법과 광유전학적 포터를 발현하는 뇌 조직에 이식하는 방법을 잘 이해하게 될 것입니다.

fiber-optic-implantation-for-chronic-optogenetic-stimulation-brain

Research

연구

JoVE Journal

Neuroscience

신경과학

후각 망울의 성인에서 태어난 뉴런은 optogenetically Channelrhodopsin2 - 표현 이식 미니어처와 함께 주동이의 철새 스트림과 만성 photostimulation에서 lentiviral 주사를 LED를 사용하여 조절할 수 있습니다.

만성에 대한 성인 태어나 강한 뉴런의 선택 바이러스성 전달 생체내에 Optogenetic의 자극

유전학과 광학을 결합 신경 과학 도구의 최근 개발, 공간 및 시간 해상도의 전례없는 수준의 신경 회로의 활동을 제어 할 수 있습니다, "optogenetics"라고. 여기에서 우리는 전두엽 피질과 subicular 피라미드 뉴런의 유전 정의 된 부분 집합의 optogenetic 조작과 생체 녹화에 통합하기위한 프로토콜을 제공합니다.

개별 피라미드 뉴런의 고 충실도 Optogenetic 제어하는​​ 방법<em&gt; 생체 내</em

광유전학은 행동 신경과학 실험에 사용할 수 있는 강력한 도구가 되었습니다. 이 프로토콜은 레이저 시스템의 설계 및 설정에 대한 단계별 가이드를 제공하며, 대부분의 설치류 행동 테스트 패러다임과 호환되는 다중 및 동시 생체 내 광유전학적 자극을 수행하기 위한 전체 프로토콜을 제공합니다.

설치류 중추 신경계의 생체 Optogenetic 자극

이 프로토콜은 광유전학적 기능적 자기공명영상(ofMRI)을 성공적으로 수행하는 데 필요한 단계와 데이터 분석을 설명합니다. ofMRI는 고자기장 fMRI 판독과 광유전학적 자극을 결합한 새로운 기술로, 살아있는 뇌 전체에 걸쳐 기능적 신경 회로와 그 역학의 세포 유형별 매핑을 가능하게 합니다.

Optogenetic 기능 MRI

여기, 우리는 바이러스 성 식 벡터 실크 fibroin 영화를 사용 하 여 뇌에 전달 하는 방법을 제시. 이 메서드는 식 벡터 실크/AAV 코팅된 광섬유, 광섬유 테이퍼 및 두개골 창 사용의 대상된 배달 수 있습니다.

Vivo에서 실크/AAV 영화를 사용 하 여 Optogenetic 단백질의 표적으로 표현

특정 신경 인구 또는 뇌 영역의 광유전학 적 조작으로, 행동은 자유롭게 움직이는 동물에 있는 높은 시간 및 공간 해상도로 수정될 수 있습니다. 만성 이식 된 광섬유와 함께 다른 광유전학 도구를 사용하여 다양한 신경 변조 및 행동 테스트를 수행 할 수 있습니다.

자유롭게 움직이는 마우스에 있는 행동을 조절하기 위하여 신경 활동의 광유전학 조작

여기에서는 광 전달을위한 광섬유와 신경 기록을위한 전극 어레이가있는 옵트로드 시스템의 제조 방법을 제시합니다. 채널로돕신-2를 발현하는 트랜스제닉 마우스를 이용한 생체내 실험은 광유전학적 자극 및 전기생리학적 기록을 동시에 위한 시스템의 실현가능성을 보여준다.

동시 광유전학적 변조 및 전기 신경 기록을 위한 광섬유 어레이

이 프로토콜은 척수 수술을 수행하고 설치류의 척수 위에 광학 생크를 이식하고 고정하기 위한 수술 절차를 자세히 설명합니다.

설치류 척수에 광전자 장치 이식

우리는 전극 제조를 위한 간단하고 비용 효율적인 접근 방식을 개발했으며 자유롭게 움직이는 마우스에서 여러 영역에 걸쳐 신호를 기록했습니다. 다중 지역 전기 생리학 및 칼슘 신호 기록과 함께 광유전학을 활용하면 발작 점화 모델에서 여러 지역의 신경 활동을 밝힐 수 있었습니다.

Multi-Region In vivo Recording을 위한 유연하고 편리한 전기생리학적 Optrodes를 제작하기 위한 통합 방법

이 프로토콜은 바이러스 전달, 광혈전 이식, 광혈전 유도, 성상교세포 및 신경세포 활동의 동시 기록, 성상교세포의 광유전학적 자극을 포함하는 통합 방법을 제공합니다. 이 통합 방법은 허혈성 뇌졸중의 급성기부터 만성기까지의 성상교세포-뉴런 관계를 동시 조사하는 것을 목표로 합니다.

광혈전성 뇌졸중 모델링과 행동하는 쥐의 신경 및 성상세포 활동의 생체 내 옵트로드 기록을 위한 통합 방법

배우세요 광섬유 임플란트를 이용한 마우스 뇌 조직의 만성 광유전학적 자극 방법을. 이 기술은 뇌 조직 손상을 최소화하며 장기적인 신경 회로 기능 연구에 활용됩니다.

뇌 조직의 만성 Optogenetic의 자극을위한 광섬유 주입

더 많은 동영상 탐색