Name: 세포 배양에서 RNA 합성, 처리 및 부패의 높은 해상도 유전자 발현 프로파일에 대한 새로 전사 RNA 대사 라벨링 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-08-08T12:00:00.000+00:00
Duration: 11 min
Description: 배우세요 진핵세포 배양에서 4-티오우리딘 대사 라벨링을 활용한 RNA 합성·처리·분해 동역학 측정법. 이 방법은 유전자 발현 변화 감지 민감도를 10배 향상시켜 RNA 반감기 정밀 측정과 처리 메커니즘 연구에 활용됩니다.

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우리는 원고의주의 읽기 에이미 레이건에게 감사의 말씀을 전합니다. 이 작품은 LD와 CCF에 DFG 부여 FR2938/1-1에 NGFN 플러스 부여 # 01GS0801, MRC 교제를 부여 G1002523 및 NHSBT 부여 WP11-05에 의해 지원되었다

1. 4 thiouridine과 신진 대사 라벨링 실험 설정 / 일정 세부 계획을 만들어 세포 배양에 4SU를 추가 할 때 샘플을 채취 할 때 예를 들어. 각 조건 사이에 적어도 5 분 계획. 한 번에 하나의 조건의 세포를 처리합니다. 최대 처리 할 수​​ 있습니다. 3 - 주어진 시간에 5 접시. 온도와 CO 2 농도의 변화를 최소화하기 위해 가능한 한 빨리 전지를 처리합니다. 이 세포 단백질 4SU - 라벨 RNA의 가교 될 수 있으므로 4SU가 추가 된 후 밝은 빛에 세포를 노출시키지 마십시오. 라벨의 시작 <ol><li> 해동 4 thiouridine (4SU) 단지 멸균 팔콘 튜브에 각 조건에 대한 4SU의 사용과 피펫 필요한 양 전. </li><li> 요리 떨어져 세포 배양 매체의 필요한 금액 (10cm 접시 당 5 ML)를 타고 4SU 함유 팔콘 튜브에 첨가하고 잘 섞는다. 제거하고 요리의 나머지 매체를 폐기하십시오. </li> &lt;리&gt; 요리에 4SU 함유 배지를 다시 적용합니다. </li></ol> 라벨의 끝 <ol start="4"><li> 세포에서 세포 배양액을 제거합니다. 각 플레이트에 TRIZOL의 5 ML을 추가합니다. 여러 시간 지점 또는 조건을 포함 복잡한 실험을 위해,이 단계가 가장 두 사람이 중간 TRIZOL을 추가하고 해물을 수확 기타를 제거 하나에 의해 이루어집니다. </li><li> 완전한 세포 용해 실온에서 5 분 알을 품다. </li><li> 추가 TRIZOL으로 조심스럽게 접시를 헹굴 10 ㎖ 피펫을 사용합니다. 이 완전한 세포 용해 및 샘플 복구 제품. 피부 나 눈에 접촉 가져올 때 TRIZOL 매우 위험한 상태로 취급주의! 손 페놀 화상 (예를 들면 폴리에틸렌 글리콜 300 또는 산업 메틸화 영혼 (70:30) 400)에 대한 해독제가있다. 폴리 프로필렌 튜브에 샘플을 전송합니다. 표준 팔콘 ​​튜브)이 높은 G의 힘에 저항하지 않도록주의하시기 바랍니다. 샘플은 내가 총 RNA 때까지 적어도 한 달 동안 -20 ° C에 저장할 수 있습니다들 준비. </li></ol> 2. 수정 TRIZOL 프로토콜을 사용하여 RNA 준비 <ol><li> 1 ML 클로로포름 (ML TRIZOL 당 0.2 ML) 추가하고 15 초 동안 격렬하게 흔들어. 3 분 - 2 실온에서 알을 품다. </li><li> 4시 15 분 13,000 × g에서 원심 분리기 ° C. </li><li> 새로운 15 ML의 폴리 프로필렌 튜브에 수성 상위 단계 (RNA 포함) 전송합니다. </li><li> 추가 ½ RNA 침전 버퍼와 이소프로판올 모두의 반응 볼륨 (3 ML 상층에 예를 들어, 1.5 ML RNA 침전 버퍼와 1.5 ML 이소프로판올 추가). </li><li> 잘 섞는다. 10 분 실온에서 알을 품다. </li><li> 4에서 10 분간 13,000 × g에서 원심 분리기 ° C. 상층 액을 버린다. </li><li> 간단히 스핀 다운 (5,000 × g에서 30 초) 200 μL 피펫 잔류 이소프로판올을 제거합니다. </li><li> 75 % 에탄올의 동일한 볼륨을 추가하고 펠렛 분리 될 때까지 튜브를 흔들어. residua이 같은 여러 개의 작은 조각으로 파손되지 않도록하는 것은 만들 수 있습니다 제거L의 에탄올 어렵다. </li><li> 4에서 10 분간 13,000 × g에서 원심 분리기 ° C. 상층 액을 버린다. </li><li> 간단히 RNA를 회전하고 200 μL 피펫으로 남아있는 에탄올을 제거합니다. 20 μL 피펫으로 남아있는 에탄올 단계를 제거를 반복합니다. 이 두 단계 후, 펠렛의 더 건조가 수행되지 않아야합니다. </li><li> 100 μg 예상 RNA 수율 당 H 2 O의 100 μl를 추가하고 5를 위아래로 pipetting에 의해 잘 섞는다 - 6 번 RNA를 용해에 도움. </li><li> 용해와 65 가열하여 RNA를 변성 ° C 10 분 (뿌리)에 대한 즉시 얼음에 배치합니다.을 </li><li> 제조업체의 지침에 따라, Nanodrop 분광 광도계를 사용하여 260 nm에서 농도를 RNA 측정합니다. 이 RNA는 적어도 한 달 동안 -80 ° C에 저장할 수 있습니다. </li></ol> 3. 새로 전사 RNA의 싸이 특정 Biotinylation <ol><li> 60로 시작 - 전체 세포 RN​​A 80 μg합니다. </li><li> 반응에 레이블을 구성합니다. 다음의 피펫순서 (당 μg의 RNA) <ol class="lalpha"><li> 1 μL 10X Biotinylation 버퍼 </li><li> 7 μL RNA (핵산 무료 H 2 O에 희석 1 μg의 RNA를 포함) </li><li> 2 μL 비오틴 HPDP (1 MG / ML DMF) </li></ol></li></ol> 항상 비오틴 HPDP 마지막으로 추가하고 pipetting하여 즉시 섞는다. 비오틴은 침전물 경우에, DMF 콘텐츠는 40 %의 최종 농도를 증가시킬 수있다. <ol start="3"><li> 회전 1.5 시간 동안 실온에서 알을 품다. </li><li> 클로로포름의 동일한 볼륨을 추가합니다. 적극적으로 섞는다. 단계 분리하기 시작하고 거품이 사라 시작할 때까지 삼분 - 2 품어. </li><li> 4 ℃에서 5 분간 20,000 × g에서 원심 분리 조심스럽게 새로운 튜브로 위 수성 단계를 전송합니다. </li><li> 한 단계 3.4 및 3.5를 반복합니다. 당신은 RNA의 손실을 줄이기 위해 2 ㎖ 위상 잠금 젤 무거운 관이 단계를 수행 할 수 있습니다. </li><li> RNA 강수량 : 추가 1 / 10 5 M NaCl을의 부피와 같은 부피의물 단계로 이소프로판올. </li><li> 4 ℃에서 20 분간 20,000 × g에서 원심 분리 상층 액을 버린다. </li><li> 상층 액을 버리고, 4시 10 분 ° C에 대해 20,000 75 % 에탄올, 원심 분리기의 동일한 볼륨 × g을 추가합니다. </li><li> 간단히 스핀 200 μL 피펫 잔류 에탄올을 제거합니다. </li><li> 간단히 스핀 20 μL 피펫 잔류 에탄올을 제거합니다. </li><li> RNA 건조 할 수 없습니다. 50에 다시 일시 중지합니다 - 100 μL H 2 O (1 μg 입력 RNA 당 ~ 1 μL). 6 번 - 5 아래로 피펫에 의해 잘 섞는다. </li><li> RNA 저하를 제외 electrophoretical 분석 RNA의 품질을 확인합니다. </li></ol> 4. 4SU​​ - 정관 점 오점 분석 (선택 사항) 4SU​​ 법인은 쉽게 바이오틴 RNA의 점 blot 분석에 의해 결정하실 수 있습니다. 이 문제 해결과 바이오틴 DNA 올리고 컨트롤을 기준으로 4SU 편입 비율의 추정을 허용하는 선택적 단계입니다. 이 분석 우리 연구에 대한단계 3.2 4SU - 라벨 RNA의 biotinylation 대​​신에 바이오틴 HPDP의 iodoacetyl-비오틴 사용 ecommend. 4SU​​-RNA의 돌이킬 수없는 biotinylation이 결과. 따라서 열 기반의 방법 (예 RNeasy) 바이오틴 RNA의 매우 적은 양 (예를 들어, 5 μg)의 복구에 사용할 수 있습니다. RNA는이 분석에 적합합니다 비오틴 - HPDP를 사용하여로 만들었다하지만, 그 결과 신호는 (그림 3) 약한 신호 대 잡음 비율 덜 유리한 것입니다. <ol><li> 섹션 1과 2에 설명 된대로 전체 세포 RN​​A의 4SU-라벨 및 격리를위한 프로토콜을 따르십시오. </li><li> iodoacetyl - 비오틴과 비오틴 - HPDP 교체 3 장에서 설명한 완전히 과도한 iodoacetyl-비오틴 잔류 물을 제거하기 위해 두 클로로포름 추출을 수행 할 때 Biotinylate RNA 4SU - 라벨. </li><li> 설명이나 사건 RNA의 소량 (에 (예를 들어, RNeasy) 컬럼 기반 접근 방법을 사용하는 것과 이소 프로필 알코올 / 에탄올 침전 바이오틴 RNA를 복구 &lt;10 μg) 사용됩니다. </li><li> 10 분 동안 흔들 nuclease가없는 물 제타 막 품어. </li><li> 핵산이없는 물에서 막 가지고 두 개의 깨끗한 종이 타월 단단히 눌러 중간에 막 배치하여 과도한 액체를 제거합니다. 공기 건조 5 분 막하는 것이 더 좋은 점 발생합니다. </li><li> 각 샘플은 차가운 얼음 점 오점 바인딩 버퍼 (10 MM NaOH를 1 mM의 EDTA)를 사용하여 200 μL / NG RNA의 20 μl를 준비합니다. pipetting하여 제타 막이 희석의 5 μL (RNA 즉 1 μg)뿐만 아니라 세 이후에 10 배 희석 (각각 즉, 100, 10, 1 NG RNA를) 적용 할 수 있습니다. 피펫 팁의 빈 선반을 피펫은 고르게 분포 간격을 제공하기 위해 사용될 수있다. 또한, 제조업체의 지침에 따라 점 오점 장치를 사용합니다. </li><li> 긍정적 연속으로 20 일부터 μL / NG 20 PG / μL (즉, 100-0.1 NG 올리고)에 이르기까지 농도에서 비오틴 - 라벨 DNA 올리고의 5 μl를 적용pipetting하여 막 ROL. 대조군으로 바이오틴, 4SU - 순진 샘플을 사용합니다. </li><li> 공기 건조 5 분 막. </li><li> 락 40 ML 차단 버퍼에 30 분 동안 막 품어. </li><li> 15 분 (5 ML PBS가 + 5 ML 20 % SDS + 10 ㎕의 스트렙 타비 딘 - 고추 냉이 과산화 효소)에 대한 1:1,000 스트렙 타비 딘 - 고추 냉이 퍼 옥시 데이즈 10 mL로 막을 배양 </li><li> 5 분 40 ML PBS + 10 % SDS (20 ML PBS가 + 20ml를 20 % SDS)에 두 번 막 씻으십시오. </li><li> 40 ML PBS로 두 번 막 씻어 5 분 + 1 % SDS (38 ML PBS가 + 2 ML 20 % SDS). </li><li> 40 ML PBS로 두 번 막 씻어 5 분 + 0.1 % SDS (40 ML PBS가 + 200 ㎕의 20 % SDS). </li><li> 두 깨끗한 종이 타월 사이에 막 배치하고 단단히 그들을 눌러 과도한 액체를 제거합니다. </li><li> 제조업체의 지침에 따라 ECL을 사용하는 멤브레인 바인딩 HRP을 시각화. </li><li> 플라스틱 호일 / 가방에 막 배치, 공기 방울을 제거하고 어둠 속에서 2 분 동안 품어. </li><li> 막에 노출1 막 - 5 분​​. </li></ol> 5. 스트렙 타비 딘 - 코팅 자석 구슬을 사용하여 레이블과 레이블없는 RNA의 분리 <ol><li> 열 ° C의 물을 욕조에 65 (샘플 당 3 mL)에 버퍼를 세척. </li><li> nuclease가없는 H 2 O에 신선한 100 MM의 디티 올 트레이 톨 (DTT)를 준비 초 미세 규모에 배치 깨끗한 50 ML 팔콘 튜브에 DTT 분말의 30 MG - 15 경사 분리하여이를 수행. nuclease가없는 H 2 O의 필요한 양을 달아 추가 </li><li> 열 ° C 10 변성하는 분, 얼음에 즉시 장소를 65 RNA 샘플로 만들었다. </li><li> 장소는 마그네틱 스탠드에 열을 μMacs. 우리는 한 번에 12 개 이상의 샘플 (- 8 샘플이 최적이다 6) 처리를하지 않는 것이 좋습니다. </li><li> 1 ML 실온 버퍼를 세척으로 미리 평형 소개 Miltenyi 열. 이 약 15 분 소요됩니다. </li><li> 한편, 50 스트렙 타비 딘 구슬 100 μL를 추가합니다 - 바이오틴 RNA의 100 μl를. 회전 15 분 실온에서 알을 품다. </li> &lt;<html> 리&gt; 열 중 하나가 지금까지 배출 시작되지 않은 경우이를 부드럽게 장갑을 낀 손가락으로 열 상단을 눌러 의해 촉진 될 수있다. 일단 흐름은 열이 쉽게 배출하기 시작했다. </li><li> 열에 RNA / 비즈를 적용합니다. 흐름을 통해 당신은 레이블이없는 RNA 분획 (7 항 참조)를 복구하려는 경우가 아니면 폐기하십시오. </li><li> 0.9 65 ML ° C 세척 버퍼 (65 ° C에서 버퍼를 피펫 팅 할 때 1 ML 피펫 팁 축소).로 3 회 세척 </li><li> 0.9 ML 실온 버퍼 세탁 3 회 씻는다. </li><li> 피펫 700 μL 버퍼 새로운 2 ㎖ 튜브에 RLT (RNeasy MinElute 정리 키트 퀴 아젠)와 열 아래에 배치합니다. </li><li> 열을 100 MM의 DTT의 100 μl를 추가하여 RLT 버퍼에 새로 전사 RNA를 용출. </li><li> 100 MM의 DTT의 또 다른 100 μl를 추가하여 나중에 동일한 튜브에 두 번째 용출 라운드 3 분을 수행합니다. </li></ol> 6. 새로 전사 RNA 복구 ontent는 &quot;&gt; 제조 업체의 지침에 따라 RNeasy MinElute 정리 (Qiagen의) 프로토콜을 계속 진행합니다. 25 μL nuclease가없는 H 2 O 측정 RNA 농도에서 용출이 Nanodrop 분광 광도계를 사용하여. 제출하기 전에 RNA를 해동하고 다시 동결하지 않으려면 그것은 높은 처리량 분석에, 우리는 즉시 새로 전사 RNA 후 cDNA를 준비하는 것이 좋습니다이 정화됩니다. 제조업체의 지침에 따라 cDNA를 합성 20 μL의 cDNA 합성 믹스 새로 전사 RNA의 2.5 μl를 사용합니다. 1을 사용 QRT-PCR 컨트롤을 수행 : cDNA를 혼합 10 희석 -80에서 보관 RNA ° C.. 7. 레이블이없는, 언 바운드 RNA (선택 사항) 복구 경우에 언 바운드 RNA 복구 할 필요가; 흐름을 통해 (열을 RNA-스트렙 타비 딘 비즈 솔루션을 추가 한 후) 이후의 강수량에 대한 첫 번째 세척을 수집하고 결합한다. 보통 생로 언 바운드 RNA의 50 %가 침전 충분하다s는 출발 물질의&gt; 80 %를 포함합니다. <ol><li> 이소프로판올의 동일한 볼륨을 추가 (아무런 소금 세척 버퍼가 이미 1 M의 NaCl을 포함으로 추가 할 필요가 없습니다). </li><li> 4 ℃에서 20 분간 20,000 × g에서 원심 분리 상층 액을 버린다. </li><li> 상층 액을 버리고, 4시 10 분 ° C에 대해 20,000 75 % 에탄올, 원심 분리기의 동일한 볼륨 × g을 추가합니다. </li><li> 간단히 스핀 200 μL 피펫 잔류 에탄올을 제거합니다. </li><li> 간단히 스핀 20 μL 피펫 잔류 에탄올을 제거합니다. </li><li> RNA 건조 할 수 없습니다. 100 μL H 2 O에 resuspend을 6 번 - 5 아래로 피펫에 의해 잘 섞는다. 동요와 함께 10 분 동안 65 ° C에서 알을 품다과 얼음에 직접 전송할 수 있습니다. </li><li> RNA 저하를 제외 electrophoretical 분석 RNA의 품질을 확인합니다. </li></ol>

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</ol>

저자는 그들이 더 경쟁 재정적 이익이 없다는 것을 선언합니다.

새로 전사 RNA 대사 라벨이 실질적으로 관심의 생물학적 문제를 해결하기 위해 더 적합한 템플릿을 제공하여 마이크로 어레이 및 RNA-SEQ와 같은 높은 처리량 기술의 힘을 강화한다. 본 프로토콜은 광범위한 최적화를 받았다. 그것은 새로 전사 RNA의&gt; 1,000 배 농축을 허용하고 재현성이 높은 결과를 제공합니다. 새로 전사 RNA는 4SU에 세포의 노출 시간 동안 실시간으로 전사 활동을 묘사하므로 4SU 태깅 실험의 실험 설계는 매우 중요합니다. 자극에 따라 전사 요금의 실제 변화는 이미 가라 경우 총 RNA 수치의 변화는 여전히 감지 할 수 있더라도 새로 전사 RNA를 분석 할 때, 이러한 누락됩니다. 따라서, 기본 생물학의 좋은 이해는 실험 장치뿐 아니라 최적의 기간 (을)를 정의하는 것이 중요합니다4SU​​ 노출 F 시간. 아래, 우리는 추천과 가장 중요한 단계는 일반적인 함정을 피할 수있는 방법을 제공합니다. 주식...

유전자 발현 프로파일 링은 세포 프로세스와 관련된 복잡한 상호 작용 네트워크를 연구하는 데 중요한 도구입니다. mRNA의 풍요 로움에 대한 연구는 일반적으로 기본 분자 메커니즘에 대한 기본적인 통찰력을 얻기 위해 선택의 방법이었다. 전체 - 사체 마이크로 어레이 1, RNA (RNA-SEQ) 2-4 최근에는 차세대 시퀀싱의 개발이 방법을 연료. 이 기술은 세포의 유전자 발현의 복잡성에 대한 우리의 이해를 혁명을 가지고 있지만, 그들은 그들의 템플릿 샘플의 고유 특성 즉, 전체 세포 RNA로 인해 큰 한계에 직면하고 있습니다. 총 RNA 수준에서 첫째, 단기 변화는 전사 속도의 변화와 일치하지만, RNA 해당 증명서의 반감기에 근본적으로 의존하지 않는다. 전사 인자에 대한 짧은 증명서, 예를 들어, 인코딩의 다섯 배 유도, 총 RNA에서 쉽게 감지 할 수있을 것입니다 반면시간 내에, 대사 효소 수명이 긴 증명서, 예를 들어, 인코딩 같은 유도가 거의 보이지 않는 상태로 유지됩니다. 또,이 셧다운 (&gt; 1,000 배 아래로 조절) RNA 오시간의 반감기는 평균 유전자의 전사 속도 완료는 단순히 단지 두 가지에 의해 감소​​하기 위해 총 RNA 수준에 대한 다섯 시간 소요됩니다 . 따라서 총 RNA의 분석은 규제 기능 5와 전사 인자와 유전자 인코딩 중 많은 짧은 성적의 최대 규제의 검출을 선호. 또한, 규제의 진정한 운동 폭포가 가려 및 기본 신호 이벤트는 보조 구별 할 수 없습니다. 모두 차례로 하류 생물 정보학 분석에 상당한 편차가 발생할 수 있습니다. 둘째, 총 RNA 수준의 변화는 RNA 합성 또는 붕괴의 변화에​​ 기인 할 수 없습니다. 후자의 측정 transcripti을 차단하는 세포 침입 방법, 예를 들면 필요actinomycin D 6 시간이 지남에 지속적인 RNA 붕괴의 확장 된 모니터링을 사용합니다. 5 포유류 세포에서 평균 mRNA의 반감기 - 10 시간 5,7, 대부분의 유전자의 mRNA 수준은 두 가지 전사 체포 몇 시간에 따라보다 감소 할 것이다. 이 오히려 작은 차이는 기본 수학 방정식의 지수 특성으로 인해 세포의 유전자의 대부분 mRNA의 반감기 심하게 부정확 한 측정의 결과. 마지막으로, 동시에 전체 세포 RNA의 RNA-SEQ는 우리의 유전자의 절반 정도가 대안 접합 이벤트 8, 기본 역학뿐만 아니라 제대로 이해 남아 RNA 가공의 조직 및 상황 별 규제 지침 동적 메커니즘이 적용됩니다 것으로 나타났습니다. 또한, RNA의 기여, 특히 비 코딩 RNAs를 위해 결정되어야 유지, 차등 유전자 발현을 처리. 모두 이러한 제한에 대한 주요 장애물을 나타냅니다기본 분자 메커니즘의 생물 정보학 운동 모델링. 우리는 최근에 이러한 문제에게 5,7,9을 극복하기 위해,라고 고해상도 유전자 발현 프로파일 링 방법을 개발했다. 그것은 4 thiouridine (4SU 태깅), 자연적으로 발생 딘 유도체를 사용하여 새로 전사 RNA의 대사 라벨에 따라 세포 성장과 유전자 발현의 최소한의 간섭 (그림 1 참조) 5를 새로 전사 전사에 직접 액세스를 제공합니다 10-12. 급속한 흡수, 4SU - 인산을 인산화, 그리고 새로 전사 RNA에 결합의 4SU 결과 진핵 세포의 노출. 전체 세포 RN​​A의 분리 후, 4SU - 라벨 RNA 분획은 티올, 특히 비오틴하고 새로 전사 RNA 사이의 이황화 결합을 생성로 만들었다이다. &#39;전체 세포 RN​​A&#39;는 다음 정량 ( &#39;새로 전사&#39;)과 레이블 ( &#39;사전 existin 표시로 구분 될 수있다스트렙 타비 딘 - 코팅 자석 구슬을 사용하여 고순도 G &#39;) RNA. 마지막으로, 라벨 RNA는 단순히 이황화 결합을 쪼개서 환원제 (예를 들면 디티 올 트레이 톨)을 추가하고 구슬에서 새로 전사 RNA를 풀어 구슬에서 복구됩니다. 새로 전사 RNA는 4SU 노출의 기간 동안 모든 유전자의 전사 활성을 보여줍니다. 분의 척도에 4SU 태깅 따라서 진핵 생물의 유전자 발현의 스냅 사진과 다운 스트림 생물 정보학 분석 (예 : 프로모터 분석)를위한 이상적인 템플릿을 제공합니다. 정상 상태를 가정 할 수 경우의 비율 새로 전사 / 전체 새로 베껴 / 레이블이와 레이블이없는 / 총 RNA 정확한 RNA 반감기 7,13에 대한 비 침습 액세스를 제공합니다. 또, 4SU - 태깅으로 작은 5로 분 (5 분 4SU-RNA) 후 정제가 새로 전사 RNA를주의하는 것이 중요하다 15, 60 분 4SU-RNA 미만이다.RNA-SEQ와 함께 하나의 실험 설정에서 4SU를 붙이고는 매우 짧고 점차적으로 더 이상 모두를 수행 할 때, RNA 프로세싱의 반응 속도는 염기 해상도 9시에 공개된다. 마지막으로, 전산 모델링과 함께 새로 베껴 총 RNA 시간 코스 분석은 RNA 합성과 부패 14의 통합 분석을 할 수 있습니다. 결론적으로,이 방법은 진핵 세포의 RNA 합성, 처리 및 분해의 역 동성을 직접 분석 할 수 있습니다. 그것은 포유 동물, 곤충 (초파리), 양서류 (Xenopus의), 효모 5,15,16 포함한 모든 주요 모델 생물에 적용됩니다. 그것은 마이크로 어레이 분석 5,17, RNA-SEQ 9,13,14과 직접 호환 및 생체 12,15에 적용됩니다. 여기에, 우리는 세부 방법론, 라벨 분리, 배양 포유 동물 세포에서 새로 전사 RNA를 정화. 또한, 적합한 한쌍에게있는알 문제와 함정을 설명합니다.

<table><tbody><tr><td>4-thiouridine</td><td>Carbosynth</td><td>T4509</td>는 <td>메마른 H2O에 있는 50 mM 주식을 준비하고, -20 &deg에 저장한다; 50-500 &mu의 부분 표본 중 C; l, 사용하지 않은 시약을 버리고 다시 얼리지 마십시오.</td></tr><tr><td>Trizol</td><td>Invitrogen</td><td>15596026 (100 ml), 15596018 (200 ml)</td><td>경고 - 부식성 및 건강에 해롭습니다! 페놀 해독제 (PEG-메탄올)에 대한 즉각적인 접근을 보장합니다; 4 &deg;C에 보관하십시오.</td></tr><tr><td>클로로포름</td><td>시그마</td><td>372978</td><td>WARNING - 건강에 유해</td></tr><tr><td>이소프로판올</td><td>시그마</td><td>650447</td><td></td></tr><tr><td>구연산나트륨, 뉴클레아제 무함유</td><td>Sigma</td><td>C8532</td><td>뉴클레아제가 없는 물을 사용하여 1.6M 원액을 준비합니다.</td></tr><tr><td>5M 뉴클레아제가 없는 NaCl</td><td>Sigma</td><td>71386</td><td>원액</td></tr><tr><td>뉴클레아제가 없는 H2O</td><td>Sigma</td><td>W4502</td><td>뉴클레아제가 없는 튜브에서 1ml의 분취액을 만듭니다.</td></tr><tr><td>RNA 침전 완충액</td><td></td><td></td><td>1.2 M NaCl, 뉴클레아제가 없는 물에 0.8 M 구연산나트륨. 엄격하게 뉴클레아제가 없는 조건에서 미리 준비하십시오. 50ml 팔콘 튜브에 넣어 실온에서 보관하십시오.</td></tr><tr><td>에탄올</td><td>시그마</td><td>459844</td><td>뉴클레아제가 없는 물과 함께 사용하여 80% 에탄올을 준비하고 -20°C에서 보관합니다.</td></tr><tr><td>1 M 뉴클레 아제가없는 Tris Cl, pH 7.5</td><td>Lonza</td><td>51237</td><td>원액</td></tr><tr><td>500 mM 뉴클레아제가없는 EDTA, pH 8.0</td><td>Invitrogen</td><td>15575-020</td><td>원액</td></tr><tr><td>10x 비오틴화 완충액 (BB)</td><td></td><td></td> <td>100 mM 트리스 pH 7.4, 10 mM EDTA 뉴클레아제가없는 물에서 1ml의 분취액을 만듭니다.</td></tr><tr><td>디메틸포름아미드(DMF)</td><td>Sigma</td><td>D4551</td><td></td></tr><tr><td>EZ-Link 비오틴-HPDP</td><td>Pierce</td><td>21341</td><td>50mg 비오틴-HPDP를 50ml DMF에 용해하여 1mg/ml 원액을 준비합니다. 부드러운 온난화는 용해를 향상시킵니다. 4 &deg에 저장; C는 1ml의 분취액에 있습니다.</td></tr><tr><td>Phase Lock Gel Heavy tubes 2.0 ml</td><td>Eppendorf</td><td>0032 005.152</td><td>클로로포름 추출 단계 옵션.</td></tr><tr><td>Zeta membrane</td><td>BIORAD</td><td>162-0153</td><td></td></tr><tr><td>10x Dot blot binding buffer</td><td></td><td></td><td>100 mM NaOH, 10 mM EDTA</td></tr><tr><td>Biotin-oligo</td><td></td><td></td><td>5'-biotin, 25 nucleotides, any</td></tr><tr><td>sequence 도데실황산나트륨</td><td>Fisher</td><td>BPE9738</td><td>100 ml 20% 원액의 경우 80 ml PBS pH 7-8에 20 g SDS를 첨가하고 부피를 100 ml로 조절합니다. 20 °C 이상의 모든 고함량 SDS 용액을 유지하십시오. 따뜻함 SDS가 약간 침전되어야 합니다.</td></tr><tr><td>EZ-Link Iodoacetyl-LC-Biotin</td><td>Pierce</td><td>21333</td><td>50mg 요오도아세틸-비오틴을 50ml DMF에 용해하여 1mg/ml 원액을 준비합니다. 부드러운 온난화는 용해를 향상시킵니다. 4 &deg에 저장; C는 1ml의 분취액에 있습니다. 비가역적인 티올 특이적 비오틴화(biotinylation)를 생성합니다.</td></tr><tr><td>인산염 완충액 식염수</td><td>Gibco</td><td>10010-015</td><td></td></tr><tr><td>도트 블롯 차단 완충액</td><td></td><td></td><td>20ml 20% SDS와 20ml 1 x PBS pH 7-8을 혼합하고 최종 농도 1mM에 EDTA를 첨가합니다.</td></tr><tr><td>Streptavidin-horseradish peroxidase </td><td>Vector Laboratories</td><td>SA5004</td><td>-20 &deg;C. 10 ml 1 x PBS와 10 ml 20% SDS를 혼합합니다. 20 추가 &mu; l 사용 전 Streptavidin-HRP. </td></tr><tr><td>ECL 시약</td><td>GE Healthcare</td><td>RNP2109</td><td>제조업체의 지침에 따라 사용하십시오.</td></tr><tr><td>Super RX, X-RA 필름, 18x24 cm</td><td>후지필름</td><td>47410 19236</td><td></td></tr><tr><td>&mu; Macs Streptavidin Kit</td><td>Miltenyi</td><td>130-074-101</td><td>4 &deg;C에 구슬을 보관하십시오.</td></tr><tr><td>트윈 20</td><td>시그마</td><td>P1379</td><td></td></tr><tr><td>세척 버퍼</td><td></td><td></td><td>100mM 트리스 pH 7.4, 10mM EDTA, 1M NaCl, 0.1% 뉴클레아제가 없는 H2O의 트윈 20.</td></tr><tr><td>디티오트레이톨 (DTT)</td><td>Sigma</td><td>43817</td><td>뉴클레아제가 없는 H2O에서 100 mM DTT로 준비하고, 사용하기 전에 항상 신선하게 준비하십시오.</td></tr><tr><td>RNeasy MinElute Kit</td><td>Qiagen</td><td>74204</td><td>4°C에 열 저장; C, 실온에서 키트의 나머지 구성 요소.</td></tr><tr><td>1.5ml 스크류탑 폴리프로필렌 튜브</td><td>Sarstedt</td><td>72.692.005</td><td>Dimethylformamide</td></tr><tr><td>2.0ml 스크류탑 폴리프로필렌 튜브</td>와 호환 <td>Sarstedt</td><td>72.694.005</td><td>Dimethylformamide</td></tr><tr><td>15ml 튜브</td>와 호환 BD <td>Falcon</td><td>352096</td><td>Dimethylformamide</td></tr><tr><td>50ml 튜브</td>와 호환 BD <td>Falcon</td><td>352070</td><td>Dimethylformamide와 호환</td></tr> 가능<tr><td colspan="4">달리 명시되지 않는 한 모든 용액/시약은 실온에서 보관해야 합니다.</td></tr><tr><td colspan="4">Equipment </td></tr><tr><td>UV/VIS 분광 광도계</td><td>Thermo Scientific</td><td>NanoDrop 1000</td><td>또는 동급. 낮은 볼륨(1-2 &mu; l) 과도한 샘플 손실을 방지하기 위해 낮은 RNA 농도를 측정합니다.</td></tr><tr><td>폴리프로필렌 15 ml 원심분리기 튜브</td><td>VWR International</td><td>525-0153</td><td>표준 15 ml 튜브와 대조적으로, 이들은 최대 15,000 &#215를 견딜 수 있습니다;</td></tr><tr><td>g 고속 원심분리기</td><td>Beckman Coulter</td><td>Avanti J-25</td><td>또는 13,000&#215에 도달할 수 있는 동등한 장비; g</td></tr><tr><td>고속 로터</td><td>Beckman Coulter</td><td>JLA-16250</td><td>또는 13,000&#215에 도달할 수 있는 동등한 장비; g</td></tr><tr><td>15 ml 튜브용 어댑터</td><td>Laborger&#228; te Beranek</td><td>356964</td><td>또는 13,000&#215에 도달할 수 있는 동등한 장비; g</td></tr><tr><td>냉장 탁상형 원심분리기</td><td>Eppendorf</td><td>5430 R</td><td>또는 동급.</td></tr><tr><td>Thermomixer</td><td>Eppendorf</td><td>Thermomixer compact</td><td>Or 동급.</td></tr><tr><td>자기 스탠드</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-042-109</td><td>한 스탠드는 8 &mu를 보유; Macs 열.</td></tr><tr><td>Waterbath</td><td>Grant</td><td>SUB Aqua 5</td><td>또는 동급.</td></tr><tr><td>초미세 스케일</td><td>A& D</td><td>GR-202</td><td>또는 동급.</td></tr><tr><td>E-Gel iBase Power System</td><td>Invitrogen</td><td>G6400UK</td><td>RNA 겔용; 또는 이와 동등한.</td></tr><tr><td>E-Gel EX 1% 아가로스 프리캐스트 겔</td><td>Invitrogen</td><td>G4020-01</td><td>RNA 겔용; 또는 이와 동등한.</td></tr></tbody></table>

세포 배양에서 rna 합성, 처리 및 부패의 높은 해상도 유전자 발현 프로파일에 대한 새로 전사 rna 대사 라벨링

Metabolic Labeling of Newly Transcribed RNA for High Resolution Gene Expression Profiling of RNA Synthesis, Processing and Decay in Cell Culture

전체 - 사체 마이크로 어레이 차세대 시퀀싱의 개발은 세포의 유전자 발현의 복잡성에 대한 우리의 이해를 혁명하고 있습니다. 참여 분자 메커니즘에 대한 이해와 함께, 기본 역학의 정확한 측정은 점점 중요 해지고있다. 여기에 이러한 강력한 방법론 템플릿 샘플들이 연구 즉, 전체 세포 RNA의 고유 특성으로 인해 주요 한계에 직면하고 있습니다. 대부분의 경우 전체 세포 RN​​A의 변화는 충분한 해상도를 기본 분자 사건과 반응 속도를 나타내는 하나 너무 느리게 혹은 너무 빨리 발생합니다. 또한, RNA 합성, 처리 및 부패의 변화의 기여도는 쉽게 구별되지 않습니다. 우리는 최근 이러한 한계를 극복하기 위해 고해상도 유전자 발현 프로파일을 개발했습니다. 우리의 접근 방식은 4 thiouri에 새로 전사 RNA의 대사 라벨에 근거식사는 (따라서도 4SU를 붙이기로 함) 티올 특정 biotinylation와 스트렙 타비 딘 - 코팅 자석 구슬을 사용하여 새로 전사 RNA의 엄격한 정화가 따랐다. 그것은 척추 동물, 초파리, 효모 등 미생물의 넓은 범위에 적용 할 수 있습니다. 우리는 성공적으로, 전사 인자의 활동을 실시간으로 속도를 연구 RNA 반감기의 정확한 측정을 제공하며, RNA 처리 속도론에 새로운 통찰력을 얻을 수 4SU - 태그를 적용했다. 마지막으로, 전산 모델링은 기본 분자 메커니즘의 통합, 포괄적 인 분석을 생성하기 위해 사용될 수있다.

1. 원료 및 예상 수익률 4SU​​ 노출 1 시간 (시간)에 따라 새로 전사 RNA는 약 1 대표 - 전체 세포 RN​​A의 4 %를. 그들은 더 이상 세포 성장 / 복제 계정에 RNA를 합성하지 않기 때문에이 성장 체포 세포에서 낮은 것입니다. 총 RNA의 80 μg - 1 시간 동안 붙일 경우, 우리는 60와 분석을 시작하는 것이 좋습니다. biotinylation 단계 이후 확인하기 어려운 작은 RNA 펠렛 총 RNA 결과보다 30 μg으로 시작하기 때문에 쉽게 손실 될 수 있습니다. 입력 RNA 수준은 라벨의 매우 짧은 기간 (- 10 분 예를 들면 5)를위한 많은 150으로 μg 증가 될 수 있습니다. RNA 라벨의 지속 시간은 1 시간에 5 ​​분 ~ 60 %에서 ~ 80 % 9 새로 전사 RNA 증가의 짧은 인트론 서열의 기여에서 단축됩니다. 인트론은 상당히 긴 시퀀스를 코딩뿐만 아니라, 5&#39;-및 3&#39;-UTRs 비교되...

전체 세포 RN​​A 단기 RNA 합성과 붕괴의 변화뿐만 아니라 RNA 처리 속도론을 연구 가난한 템플릿을 제공합니다. 여기에, 우리는 4 thiouridine에 새로 전사 RNA의 대사 라벨을 설명하는 이러한 한계를 극복 할 수 있도록 새로 전사 RNA의 싸이 특정 biotinylation 및 정제에 의해 따랐다.

세포 배양에서 RNA 합성, 처리 및 부패의 높은 해상도 유전자 발현 프로파일에 대한 새로 전사 RNA 대사 라벨링

The development of whole-transcriptome microarrays and next-generation sequencing has revolutionized our understanding of the complexity of cellular gene ...

이 방법은 진핵 세포 배양에서 RNA 합성, 가공 및 분해의 역학을 직접적이고 정밀하게 측정하는 것을 목적으로 합니다. 4-thiouridine이 존재하는 환경에서 세포를 배양하여 새로 전사된 RNA를 대사적으로 표지한 다음, 표지된 세포를 용해하여 총 세포 RNA를 정제하고, 티올 특이적 비오틴 결합을 수행하여 새로 전사된 RNA 분자만을 선택적으로 비오틴화합니다. 그 다음, streptavidin 코팅 자성 비드를 사용하여 기존 RNA로부터 4-thiouridine으로 표지된 새로 전사된 전사체를 캡처하며, 이를 통해 총 RNA, 새로 전사된 RNA 및 표지되지 않은 기존 RNA 분획을 얻습니다.그 후 RNA를 Q-R-T-P-C-R, 마이크로어레이 또는 차세대 염기서열 분석을 포함한 하위 분석에 사용할 수 있습니다. 새로 전사된 RNA 분석은 전체 세포 RNA 분석 연구와 비교하여 유전자 발현의 단기적 변화를 검출하는 데 약 10배 높은 민감도를 제공합니다. 또한, 이는 RNA 반감기의 정밀한 측정을 가능하게 하며, 처음으로 RNA 가공의 역학을 실제로 밝혀냅니다. 새로 합성된 전사체의 대사 표지는 유전자 발현의 조절 분자 기전을 분석하는 데 성공적으로 적용될 수 있습니다.또한 이 방법은 ops, oph 및 효모와 같은 다른 모델 생물에도 적용할 수 있습니다. 각 조건 사이에 최소 5분의 간격을 두는 상세한 실험 계획을 세우고 시작하십시오. 사용 직전에 4-thio uridine 라벨을 해동하고, 각 조건에 필요한 양을 멸균 falcon tube에 분주하십시오.각 처리 조건에 대해, 10 centimeter 배양 접시 각각에서 5 mL의 세포 배양 배지를 thiopurine이 들어 있는 튜브로 옮기고 충분히 혼합한 후, 배양 접시에 남은 배지를 흡입하여 제거합니다. 그 다음, 해당 배지를 다시 세포에 첨가하고 실험적으로 정의된 시간 동안 배양합니다. 세포 배양 배지를 제거한 후, 각 플레이트에 5 mL의 triol을 첨가합니다.완전한 세포 용해를 위해 상온에서 5분 동안 배양합니다. 첨가한 triol로 플레이트를 조심스럽게 헹군 다음, 13,000 G의 원심분리를 견딜 수 있는 폴리프로필렌 튜브로 샘플을 옮깁니다. 이후 샘플을 -20 °C에서 보관하거나 triol 프로토콜에 따라 즉시 총 세포 RNA를 준비하는 데 사용할 수 있습니다. 60 내지 80 µg의 총 세포 RNA 샘플로 시작하십시오. 표지 반응을 위해, 7 µL의 nuclease free water에 희석된 1 µg의 RNA에 1 µL의 10 x biotin buffer를 첨가합니다.그 다음, RNA 1 µg당 1 mg/mL 농도의 biotin HPDP 2 µL를 DMF에 넣어 첨가하고 피펫팅으로 즉시 혼합합니다. biotin이 침전될 경우 DMF 함량을 높일 수 있으며, 최종 농도는 40%가 되도록 합니다. 반응물을 회전시키며 실온에서 1.5시간 동안 배양합니다.다음으로, 동일한 부피의 클로로포름을 첨가하고 층이 분리되기 시작하고 기포가 사라질 때까지 2~3분 동안 격렬하게 혼합하여 배양합니다. 샘플을 원심 분리한 후, 상층의 수성층을 조심스럽게 새 튜브로 옮깁니다. 두 번째 클로로포름 추출을 마친 후, 5 M 염화나트륨을 부피의 1/10만큼 첨가하고 동일한 부피의 이소프로판올을 넣습니다.수성 층에서 RNA를 침전시키기 위해 원심분리를 통해 RNA를 펠렛화합니다. 상층액을 버리고 원심분리 후 동일한 부피의 75% ethanol로 펠렛을 한 번 세척한 다음, 상층액을 버립니다. 짧게 원심분리하고 200 µL 피펫으로 잔류 ethanol을 제거합니다.다시 원심 분리하고 20 µL 파이펫으로 잔류 에탄올을 제거한 후, 50~100 µL의 물에 RNA를 재현탁하고 파이펫팅으로 잘 섞어줍니다. 전기영동을 통해 RNA 품질을 평가하여 RNA 분해 여부를 확인합니다.샘플당 3 mL의 세척 버퍼를 항온수조에서 65 °C로 평형화합니다. 또한 비오틴화된 RNA 샘플을 65 °C에서 10분 동안 변성시킵니다. 그 다음 즉시 얼음에 배치합니다.Microm Max 컬럼을 자석 스탠드에 배치합니다. Milton e 컬럼을 실온의 세척 완충액 1 mL로 미리 평형화합니다. 그동안, 비오틴화된 RNA에 streptavidin 비드 100 µL를 첨가하고 회전시키며 실온에서 15분 동안 배양합니다.컬럼 중 배수가 시작되지 않은 것이 있다면, 장갑을 낀 손가락으로 컬럼 윗부분을 부드럽게 누르십시오. 흐름이 시작되면 컬럼은 원활하게 배수됩니다. RNA 비드 혼합물을 컬럼에 적용하십시오. 라벨링 되지 않은 RNA를 분석해야 하는 경우, 라벨링 되지 않은 RNA 분획의 통과액을 수집한 다음, 65 °C 세척 완충액 0.9 mL로 3회 세척하고, 이어서 상온 세척 완충액 0.9 mL로 3회 세척하십시오.다음으로 2 mL 튜브에 700 µL의 RLT 버퍼를 분주하여 컬럼 아래에 놓습니다. 새로 전사된 RNA를 RLT 버퍼로 용출시키기 위해, 갓 제조한 100 mM DTT 100 µL를 컬럼에 첨가합니다. 3분 후, 100 mM DTT 100 µL를 컬럼에 추가로 첨가하고 EENT를 동일한 튜브에 수집합니다.제조사의 지침서에 기술된 RN easy mini loot cleanup 프로토콜을 계속 진행하며, 컬럼에 25 µL의 nuclease free water를 추가하고 컬럼이 담긴 튜브를 원심분리기에 넣습니다. 1분간 원심분리한 후 튜브에서 컬럼을 제거하고 nano drops 분광광도계를 사용하여 RNA 농도를 측정합니다. 새로 전사된 RNA의 분광광도법 측정값은 신뢰도가 낮으며 실제 RNA 함량을 과대평가하는 경향이 있음에 유의하십시오.고처리량 분석(high throughput assay)에 제출하기 전 RNA를 해동하고 다시 냉동해야 하는 번거로움을 피하기 위해, 새로 전사된 RNA를 정제한 직후에 cDNA를 준비하는 것을 권장합니다. 제조사의 지침에 따라 20 µL의 cDNA 합성 반응에 새로 전사된 RNA 템플릿 2.5 µL를 사용하십시오. cDNA 샘플을 1:10으로 희석하고, 희석된 cDNA 5 µL를 qRT-PCR로 분석하십시오.새롭게 전사된 RNA의 효율적인 회복에 필요한 최소 4SU 농도를 결정하기 위해 CD NA 샘플을 -80 °C에서 보관하십시오. 증가하는 농도의 4SU로 라벨링한 후 새롭게 전사된 RNA를 정제하고 전기영동으로 분석하십시오. 여기에서, 일차 인간 섬유아세포에서 1시간 동안 라벨링된 새롭게 전사된 RNA의 회복률은 50에서 200 µM 4SU 사이에서 상당히 증가했으나, 이후 정체되기 시작했습니다. 또는, 스트렙타비딘 호르스래디시 퍼옥시다아제 접합체를 사용하여 비오틴화된 RNA의 도트 블롯 분석으로 4SU의 통합 정도를 측정하십시오.biotin HPDP의 비오틴화 효율은 Otto acetyl biotin보다 약 3배 더 낮습니다. 따라서 새롭게 전사된 수 residues 중 3~4개 중 하나가RNA는 실제로 biotin HPDP에 의해 비오틴화됩니다. 신호 강도는 비오틴화된 대조군과의 비교를 통해 정량화할 수 있습니다. 새롭게 전사된 RNA의 DNA 올리고 회수율은 매우 정량적입니다.Agilent Bioanalyzer에서 얻은 이 데이터는 새로 전사된 RNA에 거대 미스플라이스된 전사체가 상당히 더 많이 포함되어 있음을 보여줍니다. 마지막으로, 새로 전사된 RNA 내 4가지 su의 통합률은 분광 광도 분석을 통해 직접 정량화할 수 있습니다. 이를 위해서는 글라이코젠과 이소프로판올 및 에탄올을 사용하여 새로 전사된 RNA를 침전시켜야 합니다.330 nanometers에서의 추가 피크는 새로 전사된 RNA에 네 개의 SU가 통합되는 속도를 반영합니다. TRIzol을 사용하는 것은 매우 위험할 수 있다는 점을 잊지 마십시오. 따라서 polyethylene glycol 300과 공업용 메틸알코올을 70:30 비율로 혼합한 페놀 화상용 해독제를 즉시 사용할 수 있도록 준비해야 합니다.이 영상을 시청하신 후, 여러분은 새로 전사된 RNA를 대사 표지하고 정제하는 방법에 대해 충분히 이해하시게 될 것입니다. 6~12개의 샘플을 처리하는 데 총 8시간 정도가 소요됩니다.

metabolic-labeling-newly-transcribed-rna-for-high-resolution-gene

Research

연구

JoVE Journal

Biology

생물학

우리는 촬상을 사용 저산소증 글로벌 RNA 합성의 분석을위한 기술을 설명한다. RNA의 클​​릭 - 화학 라벨은 이전에 저산소증에서 수행하고 단일 세포 수준에서 글로벌 RNA 변화의 시각화를 허용하지 않았습니다. 이 접근법은 해외 RNA 합성 세포 간 변화의 직접적인 시각화를 허용하며, 기존의 평균화 RNA 기술을 보완한다.

저산소증에 따라 단일 세포 수준에서 글로벌 RNA의 합성 분석

비례 생체 분자 비콘 (RBMBs)는 살아있는 세포에서 이미지를 하나의 설계 RNA 전 사체로 사용할 수 있습니다. 여기서 우리는 RBMBs, microporation 실시간으로 단일 RNA 전 사체의 형광 이미징에 의해 세포로 RBMBs 전달의 준비 및 정제에 대해 설명합니다.

비례 생체 분자 비콘을 사용하여 살아있는 세포의 단일 엔지니어링 RNA 성적 증명서의 실시간 영상

이 원고 붙일 표시 된 DNA 프로브, 대장균에 있는 단일 분자 형광 제자리에서 교 잡 (smFISH) 실험에 사용 하기 위해 개별 메신저 RNA (mRNA) 성적표를 라벨에 대 한 방법을 설명 합니다. smFISH 동시 탐지, 지역화, 고 고정된 개별 셀에 단일 mRNA 분자의 정량화를 허용 하는 시각화 방법입니다.

단일 분자 형광 제자리에서 교 잡 실험에 대 한 개별 대장균 세포에 성적표를 라벨에 대 한 방법

이 프로토콜 칩 seq, 4sU-seq, seq-총 RNA, 리보솜 세포 선 및 1 차 셀에 대 한 프로 파일링의 조합 사용을 설명 합니다. 전사-요소 바인딩, 드 노 보 전사, RNA 가공, 회전율 및 시간이 지남에, 번역 활성화 및 급변 셀에서 이벤트의 전체 과정을 표시 하 고 변경 내용을 추적을 수 있습니다.

바인딩, 전사, 번역, 및 회전율 세포 활성화 중 글로벌 이벤트를 표시 하는 녹음 방송 요인의 실시간 분석

우리는 원래 전송 RNA 분석 플랫폼 자리 (유선형 플랫폼 관찰 하는 tRNA) 라는 설명 합니다. 자리 동시에 세포 수준의 생물 학적 샘플, 3 단계, 그리고 24 시간 이내에 모든 tRNAs 측정합니다.

신진 대사 라벨 및 Macroarrays를 사용 하 여 전송 RNAs의 프로 파일링

RNA 합성을 측정 하기 위해이 메서드를 사용할 수 있습니다. 5-Bromouridine 셀에 추가 하 고 합성된 RNA에 통합 됩니다. RNA 합성은 반전 녹음 방송 및 정량적 중 합 효소 연쇄 반응 이라는 분석과 RNA의 5-Bromouridine-타겟 immunoprecipitation 다음 라벨, 직후 RNA 추출에 의해 측정 됩니다.

5-Bromouridine 라벨 및 Immunoprecipitation를 사용 하 여 RNA 합성의 조사

여기에 설명 된 프로토콜 4-thiouracil으로 표시 하는 효 모 세포에서 정화 하는 새로 합성된 mRNA의 게놈 넓은 정량화를 기반으로 합니다. 이 방법은 mRNA 합성 mRNA 감퇴에서 연결을 측정할 수 있게 그리고, 따라서, RNA 중 합 효소 II 전사의 정확한 측정을 제공 합니다.

Saccharomyces cerevisiae 4-thiouracil와의 정량화로 대사 새로 합성 mRNA로 RNA 중 합 효소 II 활동에 대 한 프록시

효모 사카로미세세스 세레비시아에서새로 전사된 RNA를 민감하게 그리고 구체적으로 정화하기 위해 티오레이드 우라실을 사용한다.

4-티우라실(Ers4tU)을 가진 생체내 RNA의 매우 신속하고 특정한 대사 라벨링

우리는 5-에티닐-우리딘(5-EU)을 사용하여 Xenopus 초기 배아에서 전사체 분석을 위해 신생 전사체를 대사적으로 표지하고 정제하는 상세한 방법을 제공합니다.

백발유 초기 배아 발생에서 신생 전사체의 대사 표지

이 절차는 murine 골수에서 조혈 세포 기본 문화를 확립하고 진 Pulser MXCell의 electroporation 시스템을 사용 transfection하여 다음 방법을 설명합니다.

Electroporation에 대한 Murine 골수에서 조혈 세포 차 문화의 준비

배우세요 진핵세포 배양에서 4-티오우리딘 대사 라벨링을 활용한 RNA 합성·처리·분해 동역학 측정법. 이 방법은 유전자 발현 변화 감지 민감도를 10배 향상시켜 RNA 반감기 정밀 측정과 처리 메커니즘 연구에 활용됩니다.

세포 배양에서 RNA 합성, 처리 및 부패의 높은 해상도 유전자 발현 프로파일에 대한 새로 전사 RNA 대사 라벨링

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