Name: 비 침습적 기관 내 삽관 마우스 폐의 병리학 및 생리학을 연구하는 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-11-08T22:00:00.000+00:00
Duration: 5 min 15 s
Description: 배우세요 비침습적 기관 내 삽관법을 이용하여 마우스 폐에 실험적 처리를 전달하고 폐 생리학 및 병리학을 연구하는 방법을. BioLite 조명 시스템으로 기관을 정확히 위치시켜 처리 분포를 시각화할 수 있습니다.

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이 작품은 국립 암 연구소 암 연구 센터의 교내 연구 프로그램에 의해 지원되었다.

다음 프로토콜은 마우스의 폐에 그 자료를 제공 할 수있는 비 침습적, 간단하고 빠른 방법을 설명합니다. 이 절차는 국립 암 연구소 동물 관리 및 사용위원회에 의해 승인되었습니다. 1. 마취 <ol><li> 먼저, 케타민 (ketamine)과 자일 라진 (각각 100 ㎎ / kg 체중 및 10 ㎎ / kg 체중)의 혼합물을 사용하여 마우스를 마취. 이 ACUC 마취 및 복용량을 권장합니다. 이 금액으로, 마우스는 적어도 ~ 20 분에 대한 의식이 있습니다. </li><li> 마취 동안 눈의 건조를 방지하기 위하여 마우스 눈 수의사 연고를 적용한다. </li><li> 몇 분 후, 의식을 확인하기 위해 마우스의 다리를 꼬집어. 일단 의식 확인, ~ 60 °로 각도 삽관 스탠드에 마우스를 놓고 받침대의 상단에있는 작은 고무 밴드를 통해 상부 앞니를 후킹하여 제자리에 고정. </li></ol> 2. 기관 내 삽관 </p&gt; <ol><li> 부드럽게 Q-팁을 사용하여 한쪽으로 마우스의 혀를 철회. </li><li> BioLITE 삽관 조명 시스템을 사용하는 경우 후두가 광섬유 라이트 가이드의 도움으로 가시화 될 때까지주의 깊게 삽관 시스템을 삽입합니다. </li><li> 후두개와 조각으로 부서져 연골이 가시화되면 카테터의 적절한 길이가 삽입 될 때까지, 후두개에와 조각으로 부서져 연골 사이에 섬유를 삽입하고 사전. </li></ol> 참고 : 삽입되는 카테터의 적절한 길이를 얻기 위해서는, 처음에 사전에 유사한 크기의 연습 마우스 (도 1)를 사용하여 입과 기관지 분기점 사이의 길이를 측정한다. 길이는 크게 마우스의 크기에 따라 달라집니다. 카테터의 삽입은 분기점 위에 중지해야합니다 (~ 체중 25 ~ G와 마우스 1.5 cm). 이 삽관 물질이 모든 엽 (叶)에 갈 것이라는 점을 보증한다. 적어도 50 연습 마이크전자 기술에 숙달 될 수있는 삽관 법을 수행하는 사람을 위해 요구 될 수있다 (능숙은 삽관의 성공률이 95 % 이상임을 의미합니다). <ol start="4"><li> 카테터가 삽입되면, 신속하게 동물이 일반적으로 숨을 쉴 수 있도록 카테터에서 광섬유 라이트 가이드를 제거합니다. 삽관 조명 시스템을 사용하지 않을 경우 직접 바와 같이 카테터를 삽입한다. </li><li> 카테터의 관심 물질을 함유하는 용액을 추가. 용액을 즉시 첨가 한 후 폐에 흡입되어 있는지 확인합니다. ~에 대한 쉰 마이크로 리터는 25g의 마우스 체중은 일상적으로 사용됩니다. </li></ol> 3. 동물 복구 <ol><li> 즉시 솔루션이 폐에 흡입 될 때 받침대에서 마우스를 내려, 원래의 케이지에 다시 넣어. </li><li> 이 이동 시작할 때까지 마우스를 관찰합니다. </li><li> 일단 마우스가 좋은 상태에 있음을 확인, 랙에 케이지를 반환합니다. </li></ol>

<ol><li>Das, S., Macdonald, K., Chang, H. Y., Mitzner, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+simple+method+of+mouse+lung+intubation%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">A simple method of mouse lung intubation.</a> J. Vis. Exp. (73), e50318(2013).</li>
<li>Miller, M. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Visualization+of+murine+intranasal+dosing+efficiency+using+luminescent+Francisella+tularensis%3A+effect+of+instillation+volume+and+form+of+anesthesia%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Visualization of murine intranasal dosing efficiency using luminescent Francisella tularensis: effect of instillation volume and form of anesthesia.</a> PLoS One. 7, e31359(2012).</li>
<li>Rayamajhi, M., Redente, E. F., Condon, T. V., Gonzalez-Juarrero, M., Riches, D. W., Lenz, L. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Non-surgical+intratracheal+instillation+of+mice+with+analysis+of+lungs+and+lung+draining+lymph+nodes+by+flow+cytometry%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">Non-surgical intratracheal instillation of mice with analysis of lungs and lung draining lymph nodes by flow cytometry.</a> J. Vis. Exp. (51), e2702(2011).</li>
<li>Riesenfeld, E. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Inhaled+salmeterol+and%2For+fluticasone+alters+structure%2Ffunction+in+a+murine+model+of+allergic+airways+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Respir.+Res%22%5BJournal%5D)">Inhaled salmeterol and/or fluticasone alters structure/function in a murine model of allergic airways disease.</a> Respir. Res. 11, 22(2010).</li>
<li>Rivera, B., Miller, S., Brown, E., Price, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+method+for+endotracheal+intubation+of+mice+and+rats+used+in+imaging+studies%5BTitle%5D)+AND+%22Contemp.+Top.+Lab+Anim.+Sci%22%5BJournal%5D)">A novel method for endotracheal intubation of mice and rats used in imaging studies.</a> Contemp. Top. Lab Anim. Sci. 44, 52-55 (2005).</li>
<li>Bonniaud, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Progressive+transforming+growth+factor+beta1-induced+lung+fibrosis+is+blocked+by+an+orally+active+ALK5+kinase+inhibitor%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Res.+Crit.+Care+Med%22%5BJournal%5D)">Progressive transforming growth factor beta1-induced lung fibrosis is blocked by an orally active ALK5 kinase inhibitor.</a> Am. J. Res. Crit. Care Med. 171, 889-898 (2005).</li>
<li>Bivas-Benita, M., Zwier, R., Junginger, H. E., Borchard, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Non-invasive+pulmonary+aerosol+delivery+in+mice+by+the+endotracheal+route%5BTitle%5D)+AND+%22Eur.+J.+Pharm.+Biopharm%22%5BJournal%5D)">Non-invasive pulmonary aerosol delivery in mice by the endotracheal route.</a> Eur. J. Pharm. Biopharm. 61, 214-218 (2005).</li>
<li>Haegens, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Myeloperoxidase+deficiency+attenuates+lipopolysaccharide-induced+acute+lung+inflammation+and+subsequent+cytokine+and+chemokine+production%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Myeloperoxidase deficiency attenuates lipopolysaccharide-induced acute lung inflammation and subsequent cytokine and chemokine production.</a> J. Immunol. 182, 7990-7996 (2009).</li>
<li>Jackson, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Exposure+of+pregnant+mice+to+carbon+black+by+intratracheal+instillation%3A+toxicogenomic+effects+in+dams+and+offspring%5BTitle%5D)+AND+%22Mutat.+Res%22%5BJournal%5D)">Exposure of pregnant mice to carbon black by intratracheal instillation: toxicogenomic effects in dams and offspring.</a> Mutat. Res. 745, 73-83 (2012).</li>
<li>Bodewes, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pathogenesis+of+Influenza+A%2FH5N1+virus+infection+in+ferrets+differs+between+intranasal+and+intratracheal+routes+of+inoculation%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Pathol%22%5BJournal%5D)">Pathogenesis of Influenza A/H5N1 virus infection in ferrets differs between intranasal and intratracheal routes of inoculation.</a> Am. J. Pathol. 179, 30-36 (2011).</li>
<li>Winslow, M. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Suppression+of+lung+adenocarcinoma+progression+by+Nkx2-1%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Suppression of lung adenocarcinoma progression by Nkx2-1.</a> Nature. 473, 101-104 (2011).</li>
</ol>

저자는 더 경쟁 재정적 이익이 없다는 것을 선언합니다.

여기에 설명 된 기관 내 삽관은 균등하게 마우스의 폐에 그 자료를 제공 할 수있는 간단하면서도 우수한 비 침습적 인 방법입니다. 이 방법은 폐의 생리 및 / 또는 병리에서 관리 물질의 효과 및 / 또는 역할의 연구를 할 수 있습니다. 관리되는 재료는 사이토 카인, 또는 생체 이물 화학 / 의약품, 발암 물질, 오염 물질, 알레르기, 또는 다양한 인간의 질병 6-10 공부를위한 모델을 나타낼 수있는 다양한 폐 상태가 발생할 바이러스와 같은 이물 등의 내인성 분자가 될 수 있습니다. 이 기술은 또한 항상성, 생리학, 병리 및 / 또는 폐의 발암에 이러한 유전자의 역할을 연구하기 위하여기도 상피 세포에 대한 관심의 유전자의 과발현 또는 결실을 도입하는 재조합 아데노 바이러스 또는 렌티 바이러스와 함께 사용될 수있다. 유전자의 중단은 일시적에서의 floxed 유전자를 방해하는 상피 세포에 Cre 호텔 재조합 효소를 발현에 의해 달성 될 수있다상피 세포 (11)의 terest. <p cla...

폐는 많은 파괴적인 질병은 일반적으로 진단 기관이다. 그 중에서도, 폐암은 남성과 여성 모두에서 두 번째로 가장 암 진단, 암 사망의 가장 흔한 원인이다. 또한 폐기종과 만성 기관지염으로 알려진 만성 폐쇄성 폐 질환은 매우 심각한 질환과 미국에서 사망의 세 번째 주요 원인이다. 2011 년, 그것은 25900000 미국인이 18 세 미만의 710 만 어린이를 포함, 천식을 한 것으로 추정되었다. 천식은 15 일 (미국 폐 협회, 세 미만의 어린이들에게 입원의 세 번째 주요 원인이다 <a href="http://www.lung.org" target="_blank">http://www.lung.org</a> ). 이러한 파괴적인 질병과 그 기본 메커니즘의 병태 생리 및 / 또는 원인을 연구하기 위해, 정확한 모델의 사용은 폐 관심을 다양한 재료의 편리하고 비 침습적 인 관리와 함께 중요합니다. 쥐에게 최고의 모델 중 하나를 제공때문에 녹아웃 및 형질 전환 마우스 및 사용 가능한 유전 정보의 광대 한 양의 증가 가용성의 병리 및 폐 질환의 생리의 기초가되는 분자 메커니즘을 연구. 다양한 방법 흡입, 비강 내 점적, 기관 내 점안 및 기관 내 삽관 1-4를 포함하여 마우스의 폐에 그 자료를 제공하기 위해 다른 설정에서 수사관들에 의해 사용되어왔다. 이를 수행하기 다소 어려운 것으로 간주되기 때문에 후자의 과정은 일상적으로 사용되지 않았다. 여기에 기술 기관 내 삽관 법은 유전자 발현 패턴, 병리 및 / 또는 폐 5의 생리에 전달 물질의 효과를 연구하기 위해 마우스의 폐에 대한 관심의 자료를 제공 할 수있는 비 침습적 간단하고 빠른 방법입니다. 이 기술은 전체 폐에 외인성 물질의 전달을 보장하고 생존 수술을 포함하지 않으며, 따라서 likel 것Y는 기관 동물 관리 및 사용위원회에 의해 승인 된 것이어야합니다.

<table><tbody><tr><td>KetaVed</td><td>Vedco</td><td></td><td>케타민</td></tr><tr><td>AnaSed 주사 20 mg</td><td>LLOYD</td><td></td><td>Xylazine</td></tr><tr><td>BioLite 스탠드</td><td>Braintree Scientific</td><td>RIS100</td><td>마우스 용</td></tr><tr><td>BioLite 삽관 조명 시스템</td><td>Braintree Scientific</td><td>BIO MI-KIT</td><td>마우스</td></tr><tr><td>용 22 G, 1 인치 iv 카테터</td><td>Terumo</td><td>SR-OX2225CA</td><td>생쥐 <강한>이하</강한> 30 g.&nbsp; 카테터는 삽관 조명 시스템을 사용하지 않는 경우에만 사용됩니다.</td></tr><tr><td>20 G, 1 인치 i.v. 카테터</td><td>Terumo</td><td>SR-OX2025CA</td><td>생쥐용 <강한>오버</강한> 30 g.&nbsp; 카테터는 삽관 조명 시스템을 사용하지 않는 경우에만 사용됩니다.</td></tr></tbody></table>

비 침습적 기관 내 삽관 마우스 폐의 병리학 및 생리학을 연구하는

Noninvasive Intratracheal Intubation to Study the Pathology and Physiology of Mouse Lung

인간 폐 질환의 상태를 본뜬 모델의 사용은 특정 질환의 병태 생리학 및 / 또는 병인을 연구 및 치료 적 개입을 개발에 중요하다. 함께 유전 정보의 광대 한 양의 녹아웃 및 유전자 변형 파생 상품의 증가 가용성, 마우스는 폐 질환의 병리 생리학의 기초가되는 분자 메커니즘을 연구하는 가장 좋은 모델 중 하나를 제공합니다. 흡입, 비강 내 점적, 기관 내 점안 및 기관 내 삽관 마우스 폐에 그 자료를 관리 할 수​​있는 연구자들에 의해 가장 널리 사용되는 기술이다. 연구의 목적에 따라 각각의 기술에 대한 장점과 단점이 있습니다. 여기에 직접 마우스의 폐에 외인성 물질을 제공 할 수있는 비 침습적 인 기관 내 삽관 방법이 제시된다. 이 기술은 폐 섬유증을 연구하는 모델로 마우스의 폐에 블레오 마이신을 관리하기 위해 적용되었다. &lt;/ P&gt;

처음에는 녹색으로 염색 한 솔루션은 연습을 위해 마우스를 삽관하는 데 사용되었다. 폐는 색이 폐 (그림 2)에 배포 된 방법을 균일하게 조사 할 삽관 후 즉시 절제했다. 이 기술은 C57BL / 6 마​​우스를 이용하여 블레오 마이신 유발 폐 섬유증을 연구하기 위해 적용되었다. 마우스가 intratracheally 제어 나중에 부검 삼주로 블레오 마이신 또는 식염수 1.2 U / kg으로 삽관 때, 마우스는 조직학 및 증가 된 하이드 록시 프롤린 내용 (그림 3)에 의해 지원, 폐 전체에 블레오 마이신 유도 성 섬유증을 개발했다. 손상된 영역은 20 배 목표 만든 폐 이미지와 121 점의 격자 격자를 사용하여 평가 하였다. 섬유 분야 떨어지는 교차로 (점)의 수는 총 (121) 점의 비율로 계산 표현했다. 따라서 계산 손상된 부위의 비율은 관리 블레오 마이신의 양 (그림 4)에 비례했다. &quot;j...

인간 폐 질환의 상태를 본뜬 모델의 사용은 특정 질환의 병태 생리학 및 / 또는 병인을 연구 및 치료 적 개입을 개발에 중요하다. 여기에 직접 마우스의 폐에 외인성 물질을 제공 할 수있는 비 침습적 인 기관 내 삽관 방법이 제시된다.

The use of a model that mimics the condition of lung diseases in humans is critical for studying the pathophysiology and/or etiology of a particular ...

본 절차의 전반적인 목적은 기관 내 삽관을 통해 실험적 처치가 대조측 폐의 생리와 병리에 미치는 영향을 연구하는 것입니다. 이를 위해 먼저 실험군 생쥐와 크기가 비슷한 대조군 생쥐의 입부터 폐의 기관 분지점까지의 거리를 측정합니다. 그다음, BioLite 삽관 조명 시스템을 사용하여 기관의 위치를 찾습니다.삽입 후 광섬유를 빠르게 제거하여 카테터만 그대로 둡니다. 마지막 단계로, 카테터를 통해 실험 처리제가 포함된 용액을 폐에 주입합니다. 최종적으로, 함께 첨가한 녹색 염료를 통해 관심 분자가 폐 전체에 고르게 퍼진 것을 시각적으로 확인할 수 있습니다.다른 삽관 방법과 비교했을 때 이 기술의 주요 장점은, 본 기술의 광섬유 제거 시스템이 기관의 위치 파악과 카테터 배치를 용이하게 하여 관심 물질이 폐로 최적으로 전달되도록 보장한다는 점입니다. 절차 시연은 본 연구실의 post-OC를 통해 현장에서 진행될 것입니다. 절차를 시작하기 전, 비슷한 크기의 연습용 마우스를 사용하여 입에서 기관 지점까지의 길이를 측정함으로써 삽관 시 삽입할 카테터의 적절한 길이를 결정하십시오. 그 후, 마취된 실험 동물의 양쪽 눈에 동물용 연고를 도포하십시오.몇 분 후, 발가락을 집어 진정 상태를 확인한 다음, 동물을 기관 삽관대 위에 놓습니다. 거치대를 약 60도 각도로 세웁니다. 동물을 고정하기 위해 상악 절치(upper incisors)를 거치대 상단의 작은 고무줄에 겁니다. 그런 다음 면봉을 사용하여 마우스의 혀를 한쪽으로 부드럽게 밀어냅니다.이 절차에서 가장 어려운 점은 카테터를 삽입해야 하는 기관을 식도와 구분하여 정확하게 찾는 것입니다. 성공적인 삽입을 위해 후두가 광섬유에 의해 충분히 조명되었는지 확인하고, 카테터가 삽입되어야 할 방향을 숙지하십시오. 광섬유 가이드의 도움으로 후두가 보일 때까지 삽관 시스템을 조심스럽게 삽입하십시오.후두개와 설골 연골이 보이면, 광섬유를 후두개 위쪽과 설골 연골 사이로 삽입하여 미리 결정된 카테터 길이만큼 시스템을 전진시킵니다. 카테터가 제자리에 위치하면, 동물이 정상적으로 호흡할 수 있도록 광섬유 가이드를 빠르게 제거한 다음 카테터로 대상 용액을 투여합니다. 삽관이 제대로 이루어졌다면 용액이 튜브를 통해 즉시 폐로 흡입됩니다.용액이 폐로 흡입되면 즉시 마우스를 스탠드에서 분리하여 원래의 케이지로 옮깁니다. 마우스가 움직이기 시작할 때까지 관찰하십시오. 동물의 상태가 회복된 것이 확인되면

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쥐 호흡 생리학과기도 염증 세포의 샘플링의 반복 측정이 바람직하지만, 일반적으로 가능하지 않습니다. 여기 구두기도 염증 세포의기도 기능 항 진성과 샘플링의 반복 측정을 허용 쥐를 intubating에 대한 반복 방법을 설명합니다.

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