Name: 지주막 하 출혈의 생쥐 모델 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-11-21T14:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 40 s
Description: 학습하세요 생쥐에서 지주막 하 출혈을 유도하는 표준화된 방법을. 혈관 내 필라멘트 천공 기법과 다중 생리학적 모니터링을 활용하여 뇌졸중 메커니즘 연구에 활용할 수 있습니다.

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현재의 연구는 Solorz - 잭은 연구 재단에 의해 투자된다.

모든 수술은 윤리적 검토를 실시하고 바이에른 북부의 정부 (참조 번호 : 55.2-1-54-2532.3-13-13 및 -2532-136-11)에 의해 승인되었다. 동물은 약 ​​25 g의 체중을 가진 남성 C57BL / 6 마​​우스입니다. 1. 동물 준비 <ol><li> 챔버에 마우스를 넣어 마취를 유도한다. 동물이 의식을 잃을 때까지 5 % 이소 플루 란과 챔버를 세척합니다. </li><li> 복강 예 혼합 마취제를 주입 : 펜타닐 (0.05 ㎎ / ㎏), 미다 졸람 (5 ㎎ / ㎏)과 medetomidine (0.5 ㎎ / ㎏). 절차를 수행하는 동안 이전과 정기적으로 반사를 확인합니다. 마취를 유지하기 위해 시간당 초기 금액의 3 분의 1을 재 주입. </li><li> 20 G 정맥 카테터 (11)에서 만든 튜브 삽관 orotracheally. 삽관이 기울어 진 플랫폼 (30 °)에 동물을 해결하기 위해, 구부러진 집게로 혀를 철회 작업 현미경으로 성대를 시각화하고 기관에 튜브를 삽입영감시. </li><li> 발생하기 쉬운 위치에 마우스를 놓고면의 조각 또는 microcapnograph와 튜브의 정확한 위치를 확인합니다. </li><li> 호흡기에 삽관 튜브를 연결합니다. 180-220 호흡 / 분, 200 ~ 250 μL의 스트로크 양의 주파수와 25 %의 산소 보충, 실내 공기와 마우스를 환기. </li><li> microcapnograph에 삽관 튜브를 연결합니다. 환기 주파수를 조정하여 30 mmHg로에서 기말 PCO 2를 유지한다. </li><li> 직장 온도 프로브를 삽입하고 37 ° C의 코어 체온을 유지하기 위해 가열 패드 위에 동물을 배치. </li><li> 오른쪽 뒷발에 환상 pulsoximeter 센서를 적용합니다. </li><li> 가위로 머리 위의 피부를 엽니 다. 절개는 약 0.5 ㎝ 길이와 귀와 눈 사이에 있어야한다. </li><li> 측두골에서 메스와 왼쪽 시간 근육을 해부하다. </li><li> 레이저 도플러 유량계 (LDF) 프로브에 접착제좌측 측두골. 접착제가 경화 할 때까지 고정 된 위치에 프로브를 잡아. </li><li> 좌측 측두골에 치과 드릴로 약 1.5 mm 직경의 구멍을 뚫습니다. 열 손상을 방지하기 위해 식염수로 뼈 쿨. </li><li> 두개골 구멍에 ICP 프로브를 삽입합니다. 뇌 조직의 손상과 출혈을 방지하기 위해 등쪽으로 최대한 앞으로 밀어 넣습니다. </li><li> 프로브가 올바른 위치에있는 경우, 수정, 시멘트로 밀봉. 5 분 동안 시멘트를 건조 시키십시오. </li><li> 앙와위로 조심스럽게 마우스를 켭니다. </li><li> 지속적인 혈압 모니터링의 경우, 왼쪽 대퇴 동맥 카테 테르를 꽂다. </li><li> 혈압 감시 장치에 대퇴 카테터를 연결한다. </li></ol> 2. SAH 유도 <ol><li> 턱 흉골에서 가위 (2cm)로 피부를 엽니 다. 퉁명스럽게 결합 조직을 해부하다 옆 침샘을 누릅니다. </li><li> 왼쪽 경동맥 (CCA)를 노출하고 동원. 보존CCA와 같은 결합 조직 칼집에서 실행 미주 신경. 뇌신경 이동하고 동일한 기술을 사용하여 ICA와 ECA를 노출하고 동원. </li><li> 지금까지 cranially 가능한 ECA을 결찰. </li><li> ECA 주변의 필라멘트 두 개 더 lig​​ations을 사전에 미리 협의. </li><li> microclips으로 일시적으로 CCA와 ICA를 막다. microclip 어플리케이터와 microclips를 배치합니다. 클립을 조심스럽게 그들을 다시 잡아 당겨 올바르게 적용되었는지 확인합니다. </li><li> 선박 가위로 ECA에 필라멘트의 삽입을위한 구멍을 잘라 버릴거야. </li><li> ECA에 12mm의 길이 Prolene으로 5-0 필라멘트를 삽입합니다. </li><li> 한 사전 협의 결찰 삽입 사이트를 닫습니다. </li><li> CCA와 ICA에서 microclip 주걱으로 microclips를 제거합니다. </li><li> ICP가 상승 할 때까지 ICA에 집게로 필라멘트를 사전. ICP의 급격한 상승은 출혈 유도를 나타냅니다. </li><li> 즉시 필라멘트를 철회 및 홍보를 모두 닫아 ECA을 결찰연속 earranged ligations. 이 삽입 부위의 출혈 방지 할 수 있습니다. </li><li> 피부의 상처를 봉합. </li><li> 20 분 동안 동물의 생리 학적 파라미터를 모니터링합니다. </li><li> ICP와 LDF 프로브를 제거하고 피부의 상처를 봉합. </li></ol> 3. 실험 종료 <ol><li> PBS에서 20 ㎖ 4 % PFA (4 ° C) 다음에 생리 식염수 (실온) 20 ㎖로 transcardially 동물을 Perfuse. </li><li> 두개골의 두뇌를 해부하다. 중간 선 및 궤도 구멍 사이의 두개골을 잘라. 그런 다음 머리에서 뼈 껍질. </li><li> 지주막 하 공간에 혈액 분포를 평가합니다. </li></ol> 4. 생존 수술의 케이스에있는 고려 사항 (비디오에 표시되지 않음) <ol><li> 직접 마취 유도 수술 후 진통을 위해 Carprofen을 (4 ㎎ / ㎏ 피하) 주사. 수술 후 관찰 기간 동안 Carprofen은 (4 ㎎ / ㎏ 피하) 매 24 시간을 주입한다. </li&gt; <li> 대신 침습적 혈압 측정은 비 침습적 혈압 모니터링 시스템을 사용한다. </li><li> 날록손 (1.2 ㎎ / ㎏), 플루 마제 닐 (0.5 ㎎ / ㎏)과 atipamezole (2.5 ㎎ / ㎏) : 피하 에이전트를 반감 마취 주사의 종료하십시오. </li><li> 동물을 튜브를 빼내. </li><li> 반사 신경의 회복 후 예열 실에 동물을 넣어. 24 시간 동안 약 32 ° C에서 동물을 유지합니다. </li><li> 동물은 수술 후 첫 번째 시간 동안 자발적 호흡과 자신의 일반적인 상태를 정기적으로 확인합니다. 뇌간이 영향을받는 경우 동물 문제를 호흡하고 안락사되어야한다. </li><li> 동물은 자신의 일반적인 상태와 체중뿐만 아니라 신경 및 감각 적자 15 매일 확인합니다. </li></ol>

<ol><li>Cahill, J., Zhang, J. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Subarachnoid+hemorrhage%3A+is+it+time+for+a+new+direction%5BTitle%5D)+AND+%22Stroke%22%5BJournal%5D)">Subarachnoid hemorrhage: is it time for a new direction.</a> Stroke. 40, 86-87 (2009).</li>
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</ol>

저자가 공개하는 게 없다.

SAH 후 처리 옵션이 부족하고 대부분 효력이없는 수 있습니다. 따라서 사후 출혈성 뇌 손상의 병태 생리 더욱 새로운 치료 표적을 식별하고 새로운 치료 방법을 개발하기 위해 이해되어야한다. 표준화 및 유전자 변형 동물 즉, 마우스, 잘 재생 가능한 동물 모델은 조사를 위해 매우 중요하다. 그것은 밀접하게 인간의 병태 생리와 유사한으로 CWP 모델은 SAH를위한 널리 사용되는 모델이되고 있습니다하지만, 마우스에서의 사용은 낮은 재현성이 높은 대인 관계 변화에 의해 방해된다. 모델의 변화는 생리적 조건을 변경 다른 마취 프로토콜에 의해 발생합니다. 출혈의 양으로 인해 혈관 반응성, 혈압 및 응고의 차이 (12)에 동물간에 변화한다. 따라서이 과정을 통하여 생리적 조건을 모니터링 및 VA를 감소 수술 및 모니터링 프로토콜을 확립하는 것이 중요이 모델의 riability. SAH 후 혈액 분포는 종 사이 다를 수 있습니다. 쥐 모델의 혈액에서 동일...

SAH 환자를위한 가장 유익한 결과에 뇌졸중 서브 타입입니다 : 환자의 40 %는 출혈 후 1 개월 이내에 사망하고 생존자는 거의 임상 적으로 유리한 결과가 없습니다. 자연 SAHs (80 %)의 대다수는 대부분 동맥, 기저 동맥과 중대 뇌동맥 (MCA) 2 통신 전방과 후방을 따라 위치한 두개 내 동맥류의 파열에 의해 발생합니다. 이러한 동맥류는 동물 모델하기가 어렵습니다 때문에 SAH의 동물 모델은 하나 지주막 하 공간 / 대뇌 심실로 또는 지주막 혈관의 혈관 천공에 의해 혈액의 주입에 의해 수행된다. 혈액량은 직접 3을 제어 할 수 Cisterna의 마그나로자가 혈액 주입이 수행하기 쉽고 재현성이다. 불행하게도 SAH의 병태 생리의 일부 측면은, 예를 들어혈관 손상이 절차에 의해 모델링 할 수 없습니다. SAH의 유도를위한 또 다른 기술 방식은 수조 내 정맥 4의 시작입니다. 그러나, MCA 지점에서 관내 CWP 모델 인간의 병태 생리에 가장 가까운 5 절차로 나타납니다. 방법은 Veelken와 동료 6,7 의해 Bederson 및 동료와 동시에 개발되어 제 래트에서 설명 하였다. 나중에 관내 천공 모델은 마우스 8,9에 적응했다. 필라멘트는 외부 경동맥 (ECA)에 삽입하고 내 경동맥 (ICA)를 통해 두개골 바닥으로 전진된다. MCA의 분기점에서 필라멘트는 배를 관통하고 및 두개골 바닥에서 지주막 하 공간에 출혈을 유도한다. 혈액은 균열 및 혈관을 따라 잔존 막밑 공간으로 분배한다. 출혈은 천공 부위에 혈전 형성에 의해 중지,하지만 rebleedings, 어있다무형 문화 유산 환자 10 발생할 수 있습니다 종종 해로운. 따라서, 혈관 필라멘트 모델은 지난 몇 년 동안 널리 사용 SAH 모델이되었다. 필라멘트 천공 모델의 가장 자주 언급 한 단점은 출혈 볼륨이 직접 제어 될 수없고, 따라서 가변 될 수 있다는 것이다. 이 변화는 크게 동물 생리학 및 사후 출혈성 ICP의 엄격한 제어에 의해 감소​​ 될 수있다. 마우스는 유전자 변형 종자의 큰 숫자가 사용할 수있는 큰 장점이 있습니다. 그러나, 작은 크기로 수술 과정이 더 큰 종, 예를 들면 래트 또는 토끼에서보다 더 복잡한 경향이있다. 따라서 생쥐 래트 위해 개발 기술의 다운 스케일링은 종종 마우스 헤모글로빈 포화 및 심박수 모니터링 매우 제한된 체중과 혈액 부피 비 침습적 혈압과 혈액 가스 분석을위한 기술뿐만 아니라이 같은 예 원하는 결과로 이어질없는가능한 적용되어야한다. 따라서, 현재 출판의 목표는 생쥐의 SAH의 필라멘트 천공 모델을 설명하는이 모델은 표준화되고 재현성이 높은 방식으로 수행 할 수있는 방법을 설명하는 것입니다.

<table><tbody><tr><td colspan="4">Equipment</td></tr><tr><td>operation microscope</td><td>Leica</td><td>KL2500</td><td></td></tr><tr><td>isoflurane vaporizer</td><td>Harvard Instruments</td><td>Continuous Flow vaporizer</td><td></td></tr><tr><td>respirator</td><td>Hugo Sachs</td><td>Minivent 845</td><td></td></tr><tr><td>microcapnograph</td><td>Hugo Sachs</td><td>Type 340</td><td></td></tr><tr><td>temperature controller</td><td>FHC</td><td>DC 온도 조절기</td><td></td></tr><tr><td>치과 드릴</td><td>Paggen</td><td>Labset- N</td><td></td></tr><tr><td>ICP 모니터</td><td>Codman</td><td>ICP 모니터</td><td></td></tr><tr><td>혈압 모니터</td><td>AD Instruments</td><td>Bridge Amp FE221</td><td></td></tr><tr><td>주사기 펌프</td><td>세계 정밀 기기</td><td>SP101IZ</td><td></td></tr><tr><td>맥산소 측정기</td><td>Kent Scientific</td><td>MouseSTAT</td><td></td></tr><tr><td>LDF</td><td>Perimed</td><td>Periflux 5000</td><td></td></tr><tr><td>아날로그 데이터 모니터</td><td>AD Instruments</td><td>Power Lab 16/35</td><td></td></tr><tr><td colspan="4">Material</td></tr><tr><td>cement for ICP 프로브 고정</td><td>Speiko</td><td>Carboxylate 시멘트</td><td></td></tr><tr><td>접착제 LDF 프로브 고정 Bob</td><td>Smith Industries</td><td>Cyanoacrylate 접착제 (Maxi Cure 및 Insta Set)</td><td></td></tr><tr><td>정맥 카테터</td><td>Johnson Johnson</td><td>Jelco 날개 모양 i.v. 카테터; REF 4076</td><td></td></tr><tr><td>대퇴 카테터용</td> 수정 삽관 튜브 <td>튜브 Smiths Medical</td><td>Fine Bore Polythene 튜브; ID 0.28 mm OD 0.61 mm; REF 800/100/100</td><td></td></tr><tr><td>혈관 천공을 위해</td> 30cm 길이 필라멘트로 절단 <td>Ethicon</td><td>Prolene 5-0</td><td>12mm 길이</td></tr><tr><td>절단 수술 장비</td><td>Fine Scientific Instruments</td><td>겸자 의료 #5, 혈관 가위 8cm, 마이크로클립 4mm 턱</td><td></td></tr></tbody></table>

지주막 하 출혈의 생쥐 모델

A Murine Model of Subarachnoid Hemorrhage

이 비디오 발행물에서 지주막 하 출혈 (SAH)의 표준화 된 마우스 모델을 제시한다. 출혈은 윌리스의 천공 (CWP)의 혈관 내 서클에 의해 유도 및 두개 내압 (ICP) 모니터링에 의해 입증된다. 이에 동맥 순환을 둘러싼 막밑 공간 및 소뇌에서 균열 균질 혈액 분포가 달성된다. 체온, 전신 혈압, 심박수, 및 헤모글로빈 포화 : 동물 생리학은 삽관, 기계 환기, 다양한 생리 학적 및 심혈관 파라미터의 연속 온라인 모니터링에 의해 유지된다. 따라서 대뇌 관류 압력이 단단히 extravasated 혈액의 적은 변수 볼륨의 결과를 모니터 할 수 있습니다. 이 생쥐의 혈관 필라멘트 천공의 더 나은 표준화를 허용하고 모든 모델은 높은 재현성 있습니다. 따라서 야생 유형과 유전학의 약리학 적 및 병리 생리 학적 연구를 위해 쉽게 사용할 수 있습니다LY 쥐를 변경.

사망 수술 기술이 숙달되면 절차는 수술 사망률을 유도하지 않습니다. 또한 출혈은 거의 모든 동물에서 달성 될 수있다. 수술 후 사망률은 대부분의 동물은 수술 후 (그림 5) 1 일에 죽어 가고 30~40%입니다. ICP는 SAH 후 값 출혈 전에 ICP은 약 4 mmHg로합니다. 최대 120 mmHg로에 ICP의 급격한 증가에 결과를 출혈. ICP 값은 5 분으로 약 30 mmHg로 (도 1) 내에서 안정. 24 시간에서 ICP 출혈 후에도 약간 10 mmHg로 5로 상승. SAH 후 혈압 혈압은 즉시 유도 (그림 2) 출혈 후 상승한다. 이것은 높은 ICP에 의해 시작됩니다 쿠...

윌리스 천공의 관내 서클 지주막 하 출혈의 표준화 된 마우스 모델을 설명한다. 선박 천공 및 지주막 하 출혈은 두개 내 압력 모니터링에 의해 모니터링된다. 또 각종 중요한 파라미터는 기록 및 생리적 조건을 유지하도록 제어된다.

In this video publication a standardized mouse model of subarachnoid  hemorrhage (SAH) is presented. Bleeding is induced by endovascular Circle of  Willis ...

이 절차의 전반적인 목표는 마우스에서 표준화된 지주막하 출혈을 유도하는 것입니다. 이는 먼저 마취된 동물을 모니터링 장치에 연결하여 수술 중 생리학적 상태를 감독함으로써 이루어집니다. 두 번째 단계는 뇌 관류 및 두개내압 측정을 위한 센서를 출혈 유도를 위한 핵심 매개변수로 적용하는 것입니다.다음으로, 지주막하 출혈은 혈관 내 필라멘트 천공에 의해 유발됩니다. 마지막 단계는 동물을 관류하고 뇌를 분리하여 유출된 혈액 분포를 시각화하는 것입니다. Rex 대신 생쥐에서이 기술을 수행하는 주요 이점은 형질 전환 동물을 사용할 수 있다는 것입니다.일반적으로 이 방법을 처음 접하는 개인은 삽관, 다중 모드 생리학 모니터링 및 혈관 준비는 생쥐에서 수행하기가 매우 어렵기 때문에 어려움을 겪을 것입니다. 이 방법의 시각적 시연은 수술 단계를 배우기 어렵기 때문에 매우 중요합니다. 이 절차를 시연하는 사람은 제 연구실의 박사 과정 학생인 Catherine Shula입니다.그녀는 이 SAH 모델을 수행하는 데 2년 이상의 경험을 가지고 있습니다. 먼저 마취된 동물이 비스듬한 플랫폼 위에서 현미경으로 작업하면서 구부러진 집게로 혀를 집어넣어 성대를 찾습니다. 시각화되면 20게이지 정맥 카테터로 만든 튜브로 흡인하는 동안 삽관합니다.그런 다음 마우스를 엎드린 위치에 놓고 올바르게 배치된 경우 면 조각이나 마이크로 카프노그래프로 튜브가 올바르게 배치되었는지 확인합니다. 삽관 튜브를 인공호흡기에 연결합니다. 25%의 산소가 보충된 실내 공기로 마우스를 환기시킵니다.삽관 튜브를 마이크로 카프노그래프에 연결합니다. 환기 빈도를 조정하여 이산화탄소의 끝 호기 분압을 수은 30mm로 유지합니다. 직장 온도 프로브를 삽입한 후 동물을 발열 패드에 올려 체온을 유지합니다.섭씨 37도에서 오른쪽 뒷발에 환형 맥박 산소 측정기 센서를 놓습니다.다음으로 눈에서 귀까지 절개합니다. 피부를 수축시키고 측두골에서 왼쪽 측두근을 절개합니다. 노출되면 레이저 도플러 유량계 프로브를 왼쪽 측두골에 붙입니다.접착제가 굳을 때까지 프로브를 고정된 위치에 잡습니다. 드릴링하는 동안 왼쪽 측두골에 직경 약 1.5mm의 구멍을 뚫습니다. 식염수로 뼈를 식히십시오.열 손상을 방지하려면 두개내 압력 프로브를 두개강에 삽입하고 가능한 한 등쪽으로 밀어 조직 손상과 출혈을 방지하십시오. 프로브가 올바르게 배치되면 시멘트로 고정하고 밀봉한 다음 5분 동안 건조시킵니다. 시멘트가

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Research

연구

JoVE Journal

Medicine

의학

Aneurysmal subarachnoid 출혈 (SAH)은 때 동맥 파열 subarachnoid 공간에 발생합니다 출혈이 있습니다. subarachnoid의 출혈이 몇 년 전 예전처럼 될 수 계속 한 후이 행사의 병적 상태와 사망률이 개선 치료 방법으로 인해 감소, vasospasm의 위험에 왔지만. 뇌성 vasospasm의 시작 이벤트를 식별하기 위해 포괄적이고 재현 동물 모델을 확립의 중요성은 배리의 1979 년 실험 vasospasm 모델 쥐의 첫 번째 사용하기 때문에 연구의...

실험 Subarachnoid의 출혈 후 뇌 지연 Vasospasm을 평가하기 위해 낮은 사망 쥐 모델

이 비디오는 마우스 모델에서 혈관 내 천공을 통한 지주막하 출혈의 유도를 보여줍니다. 마취된 마우스의 목 부위를 절개하여 총경동맥과 그 분기점에 접근합니다. 동맥을 통해 필라멘트를 삽입하여 두개내 동맥 가지를 천공하여 지주막하 출혈을 유발합니다.

혈관내 천공을 통한 마우스 모델에서 지주막하 출혈 유도(Induction of a arachnoid hemorrhage in a Mouse Model through endovascular perforation)

이 비디오는 지주막하 출혈 쥐 모델을 설정하는 절차를 보여줍니다. 마취된 쥐에게는 두개내압과 뇌혈류를 측정하기 위해 프로브를 이식합니다. 표적 부위가 확인되고 바늘이 chiasmatic 전 위치에 삽입됩니다. 그런 다음 자가 혈액을 지주막하 공간으로 주입하여 두개내 압력을 높이고 뇌 혈류를 감소시켜 모델을 확립합니다.

자가 혈액 주입에 의해 유도된 지주막하 출혈 쥐 모델 구축

토끼를 대상으로 한 실험적 두개내 압력 조절 혈액 션트 지주막하 출혈(SAH) 모델은 쇄골하 동맥 삽관 및 경피적 수조 마그나 천자라는 표준 절차를 결합하여 SAH 후 인간의 병태생리학적 상태를 밀접하게 모방할 수 있습니다. 단계별 지침을 제시하고 성공적인 실험적 SAH 생성을 위한 주요 수술 포인트에 대해 논의합니다.

지주막 하 출혈의 급성과 늦은 후유증의 연구에 대한 토끼 피 션트 모델 : 기술적 측면

이 기사의 목적은 마이크로 계산 된 단층 촬영 및 전체 선박 세그먼트에 대뇌 vasospasm을 계량 하는 데 사용할 수 있는 볼륨의 결정 후 마우스에서 뇌혈관 나무의 3 차원 재구성을 허용 하는 방법을 제시 하는 것입니다. 거미 막 밑 출혈의 murine 모델입니다.

거미 막 밑 출혈의 Murine 모델에 대뇌 Vasospasm의 정량화에 대 한 체적 메서드

우리는 이 프로토콜에서 시스테나 마그나에 자가 전혈을 이중 으로 주입하여 표준화된 지주막 출혈(SAH) 마우스 모델을 기술하였다. 이중 주사 절차의 높은 수준의 표준화는 사망률에 관한 상대적 안전과 SAH의 중간-급성 모델을 나타낸다.

수브라크누드 출혈의 모델로 시스테나 마그나에 혈액을 이중 직접 주입

지주막하 출혈은 계속해서 사람의 사망률과 이환율에 대한 높은 부담을 안고 있습니다. 상태와 병태생리학에 대한 추가 연구를 용이하게 하기 위해 pre-chiasmatic, 단일 주입 모델이 제시됩니다.

쥐 모델에서 실험적 지주막하 출혈을 유도하기 위한 자가 혈액의 Pre-chiasmatic, 단일 주사

여기서 우리는 정확한 출혈 부위를 보장하고 다른 관련 두개내 병리를 배제하기 위해 수술 후 24 시간 동안 자기 공명 영상 (MRI)과 결합 된 혈관 내 필라멘트 천공에 의해 유도 된 표준화 된 SAH 마우스 모델을 제시합니다.

자기 공명 영상(MRI)과 결합된 Subarachnoid 출혈에 대한 혈관 내 천공 모델

생리와 병리 설정에서 치료 화합물을 평가하는 데 사용할 수있는 피부 상처 치유의 쥐 모델.

상처 치유의 생쥐 모델

동맥류 endograft 제외 후 조직 학적 및 생화학 적 수정은 아직 불분명하다. 우리는 쥐 동맥류에 endograft 이식의 새로운 모델을 설명합니다. 영속적 인 순환 혈액 스트림 인터페이스, 새로운 혈관 생체 적합 물질 평가와와없는 혈전 분석을 통해,이 모델은 더 나은 혈관 동맥류 제외 pathobiology을 이해하는 데 도움이 될 것입니다.

혈관 동맥류 수리의 새로운 쥐과 모델

학습하세요 생쥐에서 지주막 하 출혈을 유도하는 표준화된 방법을. 혈관 내 필라멘트 천공 기법과 다중 생리학적 모니터링을 활용하여 뇌졸중 메커니즘 연구에 활용할 수 있습니다.

지주막 하 출혈의 생쥐 모델

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