Name: 단백질 A 멤브레인 흡착제 및 간소화된 워크플로우를 사용하여 키메라 인간 Fc 발현 단백질의 격리 및 특성화 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-01-08T14:15:00.000+00:00
Duration: 10 min 33 s
Description: 학습하세요 단백질 A 멤브레인 흡착제를 사용하여 키메라 인간 Fc 발현 단백질을 효율적으로 격리하고 특성화하는 방법을. 이 간소화된 워크플로우는 처리 시간을 단축하고 단백질 수율을 높여 연구 생산성을 향상시킵니다.

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저자들은 루이스 F. 델가딜로(오하이오 대학교 화학 분자 공학부), 매튜 H. 윌리엄스(오하이오 대학교 화학 분자 공학부), 필리베르토 세데노 로랑 박사(브리검 여성 병원 및 하버드 의과 대학)에게 전문적인 기술 지원을 부탁드립니다. 저자는 또한 겨울 감사 를 원한다 2011 CHE 404/BME 504 그리고 가을 2012 CHE 4830/BME 5830 학생 (화학 및 생물 분자 공학 및 생물 의학 공학 프로그램 학과, 오하이오 대학) 기술 조언 및 토론에 대 한. 이 작품은 국립 과학 재단 (NSF) 주요 연구 계측 보조금 CBET-1039869 (MMB), NSF CBET-1106118 (MMB), 피부과 재단 연구 보조금 A050422 (SRB), 국립 보건원 (NIH) NCI 보조금 1R15CA1611에 의해 지원되었다 (MMB), NIH Kirschstein-NRSA 박사 후 펠로우십 F32CA144219-01A1 (SRB), NIH/NCI R01CA173610 (CJD), NIH NCCAM 보조금 R01AT004628 (CJD).

1. 단백질 A의 선호도 확인
<ol><li>Fc-expressing 단백질(재조합 융합 단백질 또는 IgG 항체, 본선 "단백질"이라고 불리는 IgG 항체)이 단백질 A14-17을 사용하기 전에 단백질A에 대한 허용 가능한 친화력을 가지고 있는지 확인하고, 주식 용액에 단백질의 존재를 테스트한다(예를들어, 세포 배양 과민제는 1,00분에서 원심분리에 의해 정제됨). 유동 세포측정, 서양 블로팅, ELISA 등을 사용하십시오. 실험실 선호도에 따라 Fc의 단백질 기능 및/또는 존재를 감지합니다. 이상적으로, 단백질을 초과하는 것을 피하기 위해 세포 배양 상수(step 6)에서 단백질을 정량화하여 단백질A 막 흡착 용량을 초과하지 않도록 한다. 단백질이 검출되면 진행합니다.</li>
</ol>2. 단백질 A 막 흡착및 세포 배양 상수 준비
<ol><li>멤브레인 흡착기를 준비하기위한 제조업체의 지침을 따르십시오. 공기가 멤브레인 흡착제에 들어가지 마십시오. 멤브레인 흡착을 통해 퍼진 모든 솔루션은 실온에서 0.22 μm 필터를 사용하여 사전 필터링되어야 합니다. 0.22 μm 여과 Dulbecco의 인산완충식염(DPBS) 또는 선택 및 방전 기포버퍼로 10ml 주사기를 채웁니다. DPBS를 퍼퓨즈하여 저장 용액을 제거하고 사용 직전에 멤브레인 흡착기를 평형화합니다.</li>
	<li>진공 구동 0.22 μm 멸균 여과 장치를 사용하여 멤브레인 흡착장치를 통해 관류 직전에 세포 배양 상류제를 필터링합니다.</li>
</ol>3. 단백질 A 멤브레인 애드버로드
<ol><li>흡인 세포 배양은 루어 록 주사기 (30ml 이상)로 상류하고 기포를 배출합니다.</li>
	<li>그림 1에표시된 바와 같이 재료와 장비를 조립합니다. 주사기를 멤브레인 흡착기의 입구에 연결합니다. 멤브레인 흡착 콘센트에 유연한 튜브를 부착합니다. 원하는 경우 주사기와 멤브레인 흡착기 사이에 0.22 μm 주사기 필터를 놓습니다. 플라스크 나 병을 사용하여 흡착기에서 (여과라고도 함)을 통해 흐름을 잡습니다.</li>
	<li>주사기 펌프를 원하는 체피흐름으로 설정하지만 제조업체의 권장유량(예: 10ml/min)을 초과하지 는 않습니다. 멤브레인 흡착을 통해 세포 배양 상류체를 퍼퓨징하여 비커 또는 기타 용기에서 흐름을 수집합니다. 필요한 슈퍼나티로 주사기를 다시 로드합니다.</li>
	<li>원하는 경우, 유동 세포측정, 서양 블로팅, ELISA 등을사용하여 단백질의 존재를 통해 흐름을 테스트한다. 랩 기본 설정에 따라. 일반적으로 흐름을 다시 활성화하는 것은 필요하지 않습니다.</li>
</ol>4. 멤브레인 흡착기의 엘루트 단백질
<ol><li>10ml DPBS로 멤브레인 흡착기를 세척하여 비바운드 단백질을 제거합니다.</li>
	<li>10-15 ml의 용출 완충액(예: 아민 계 용출 완충제(예: 아민 계 용출 완충제(pH 2.8)을 사용하여 원하는유량(예: 1 ml/min)에서 멤브레인 흡착으로부터의 엘루트 단백질. 용출 부피(1.0-1.5 ml)의 10%에서 중성 화완충(예: 1M Tris(pH 9.4)을 함유한 튜브에서 용출을 잡으세요.</li>
	<li>또는, 1ml 단위로 엘루트 단백질은 10-15ml용출 버퍼의 총 부피를 사용하여 중화 버퍼 100 μl을 포함하는 튜브로 증가한다. 선호하는 특성화 방법을 사용하여 단백질의 존재에 대해 각 분획을 테스트합니다.</li>
	<li>제조업체의 지침에 따라 멤브레인 흡착기를 재생합니다. 0.22 μm 여과DPBS 또는 선택의 버퍼의 10ml, 다음 1 N NaCl에서 0.22 μm 필터링 50 mM NaOH의 10 ml, 그리고 마지막으로 0.22 μm 필터링 DPBS의 10 ml. 4ºC에서 장기 저장을 위해 DPBS에 20 %의 에탄올로 멤브레인 흡착을 채웁니다.</li>
</ol>5. 단백질을 농축하고 투석합니다.
<ol><li>10kDa 분자량 컷오프 원심 필터 유닛에 모든 용출(또는 4.3단계에서 결정된 단백질을 함유한 용출 분수)을 증착한다. 원심분리에 대한 제조업체의 지침을 따르십시오.</li>
	<li>제조업체의 지시에 따라 소량 투석 장치(10kDa 분자량 컷오프)로 재텐테이트를 선택한 버퍼에 대해 투석합니다. 단백질 강수량이 우려되는 경우 완충제는 투석 된 물질에 첨가해야 할 수도 있습니다. 원하는 경우, 투석된 물질은 6단계까지 냉장보관할 수 있지만 방부제 없이 장기간 보관하는 것은 권장되지 않는다.</li>
</ol>6. 신속한 서부 블로팅 절차에서 정제 된 제품을 정량화하고 특성화하십시오.
<ol><li>원하는18-20으로감소 또는 비감소 조건하에서 SDS-PAGE에 의해 선택된 젤에 대한 정제 단백질 및 Fc 표준을 해결한다. 미디 젤이 아닌 미니 젤을 사용하여 런타임을 최소화하십시오.<ol>
<li>아직 알려지지 않은 경우로드량(예: 0.1-1 mg)에 대해 역역 신호가 선형으로 달라지는 Fc 표준 범위를 결정합니다. 정제 된 단백질을 정량화하고 특성화하는 데 사용되는 동일한 젤, 실행 조건, 이송 조건 및 시약을 사용합니다.</li>
			<li>정제된 단백질 밴드 신호가 이미지 분석에서 Fc 표준의 선형 신호 범위 내에 있는지 확인하기 위해 DPBS로 희석된 샘플을 포함하여 다량의 정제된 단백질을 적재합니다.</li>
		</ol>
</li>
	<li>블로터 제조업체의 지시에 따라 반건조블로터(13)를이용하여 불연속 완충 시스템에서 젤에서 폴리비닐리덴 불소(PVDF) 멤브레인으로 단백질을 전달한다. 전송 시간은 일반적으로 5-10 분입니다. 원하는 경우, 쿠마시는 전송효율(21)을확인하기 위해 이송 후 젤을 염색한다.</li>
	<li>진공 보조 단백질 검출 시스템을 사용하여 실험실 선호도에 따라 알칼리인스파타제(AP) 또는 말 무 과산화제(HRP)에 공주된 안티-Fc 또는 안티-IgG로 면역블로팅을 수행한다. 면역 블로팅 시간은 전형적으로 1시간 미만이다.</li>
	<li>기판 및 선택방법(예: AP 기질 및 향상된 케미발광)을 사용하여 면역블롯을 개발한다.</li>
	<li>이미지 분석에 의한 정제 단백질을 정량화합니다. Fc 표준에서 밴드 신호에 선형 회귀를 수행합니다. R2>0.90인 경우, 선의 방정식을 사용하여 대역 신호에서 단백질 양을 계산합니다. 필요한 경우 샘플 희석을 고려합니다. 단백질의 정량화는 Fc에 기초하여 수행되기 때문에, 단백질과 Fc 사이의 분자량 차이에 대한 값을 조정합니다<.</li>
	<li>기능적 분석이나 방법을 사용하여 단백질을 검증하여 유동 세포측정, 서양 블로팅, ELISA 등을통해 Fc를 검출한다. 랩 기본 설정에 따라.</li>
	<li>단백질을 원하는 농도로 희석및/또는 장기간 보관, 냉동 또는 기타 용액을 알리쿼팅하기 전에 정제된 단백질 용액에 원하는 방부제 또는 안정제를 추가하십시오.</li>
</ol>

<ol><li>Gagnon, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Technology+trends+in+antibody+purification%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Chromatogr.+A%22%5BJournal%5D)">Technology trends in antibody purification.</a> J. Chromatogr. A. 1221, 57-70 (2012).</li>
<li>Gottschalk, U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bioseparation+in+antibody+manufacturing%3A+The+good%2C+the+bad+and+the+ugly%5BTitle%5D)+AND+%22Biotechnol.+Prog%22%5BJournal%5D)">Bioseparation in antibody manufacturing: The good, the bad and the ugly.</a> Biotechnol. Prog. 24, 496-503 (2008).</li>
<li>Liu, H. F., Ma, J., Winter, C., Bayer, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Recovery+and+purification+process+development+for+monoclonal+antibody+production%5BTitle%5D)+AND+%22MAbs%22%5BJournal%5D)">Recovery and purification process development for monoclonal antibody production.</a> MAbs. 2, 480-499 (2010).</li>
<li>Low, D., O'Leary, R., Pujar, N. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Future+of+antibody+purification%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Chromatogr.+B+Anal.+Technol.+Biomed.+Life.+Sci%22%5BJournal%5D)">Future of antibody purification.</a> J. Chromatogr. B Anal. Technol. Biomed. Life. Sci. 848, 48-63 (2007).</li>
<li>Boi, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Membrane+adsorbers+as+purification+tools+for+monoclonal+antibody+purification%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Chromatogr.+B+Anal.+Technol.+Biomed.+Life.+Sci%22%5BJournal%5D)">Membrane adsorbers as purification tools for monoclonal antibody purification.</a> J. Chromatogr. B Anal. Technol. Biomed. Life. Sci. 848, (1016).</li>
<li>Cuatrecasas, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Protein+purification+by+affinity+chromatography.+Derivatizations+of+agarose+and+polyacrylamide+beads%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biol.+Chem%22%5BJournal%5D)">Protein purification by affinity chromatography. Derivatizations of agarose and polyacrylamide beads.</a> J. Biol. Chem. 245, 3059-3065 (1970).</li>
<li>Shukla, A. A., Gottschalk, U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Single-use+disposable+technologies+for+biopharmaceutical+manufacturing%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Single-use disposable technologies for biopharmaceutical manufacturing.</a> Trends Biotechnol. 31, 147-154 (2013).</li>
<li>Boi, C., Dimartino, S., Sarti, G. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Performance+of+a+new+protein+a+affinity+membrane+for+the+primary+recovery+of+antibodies%5BTitle%5D)+AND+%22Biotechnol+Prog%22%5BJournal%5D)">Performance of a new protein a affinity membrane for the primary recovery of antibodies.</a> Biotechnol Prog. 24, 640-647 (2008).</li>
<li>Dancette, O. P., Taboureau, J., Tournier, E., Charcosset, C., Blond, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Purification+of+immunoglobulins+g+by+protein+a%2Fg+afinity+membrane+chromatography%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Chromatogr.+B%22%5BJournal%5D)">Purification of immunoglobulins g by protein a/g afinity membrane chromatography.</a> J. Chromatogr. B. 723, 61-68 (1999).</li>
<li>Thommes, J., Etzel, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Alternatives+to+chromatographic+separations%5BTitle%5D)+AND+%22Biotechnol.+Prog%22%5BJournal%5D)">Alternatives to chromatographic separations.</a> Biotechnol. Prog. 23, 42-45 (2007).</li>
<li>Boi, C., Dimartino, S., Sarti, G. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Modelling+and+simulation+of+affinity+membrane+adsorption%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Chromatogr.+A%22%5BJournal%5D)">Modelling and simulation of affinity membrane adsorption.</a> J. Chromatogr. A. 1162, 24-33 (2007).</li>
<li>van Beijeren, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Computer-aided+process+design+of+affinity+membrane+adsorbers%3A+A+case+study+on+antibodies+capturing%5BTitle%5D)+AND+%22Chem.+Pap%22%5BJournal%5D)">Computer-aided process design of affinity membrane adsorbers: A case study on antibodies capturing.</a> Chem. Pap. 62, 458-463 (2008).</li>
<li>Lauriere, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+semidry+electroblotting+system+efficiently+transfers+both+high-+and+low-molecular-weight+proteins+separated+by+sds-page%5BTitle%5D)+AND+%22Anal.+Biochem%22%5BJournal%5D)">A semidry electroblotting system efficiently transfers both high- and low-molecular-weight proteins separated by sds-page.</a> Anal. Biochem. 212, 206-211 (1993).</li>
<li>Darcy, E., Leonard, P., Fitzgerald, J., Danaher, M., O'Kennedy, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Purification+of+antibodies+using+affinity+chromatography%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol.+Biol%22%5BJournal%5D)">Purification of antibodies using affinity chromatography.</a> Methods Mol. Biol. 681, 369-382 (2011).</li>
<li>Hjelm, H., Hjelm, K., Sjoquist, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Protein+a+from+staphylococcus+aureus.+Its+isolation+by+affinity+chromatography+and+its+use+as+an+immunosorbent+for+isolation+of+immunoglobulins%5BTitle%5D)+AND+%22FEBS+Lett%22%5BJournal%5D)">Protein a from staphylococcus aureus. Its isolation by affinity chromatography and its use as an immunosorbent for isolation of immunoglobulins.</a> FEBS Lett. 28, 73-76 (1972).</li>
<li>Hober, S., Nord, K., Linhult, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Protein+a+chromatography+for+antibody+purification%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Chromatogr.+B+Analyt.+Technol.+Biomed.+Life+Sci%22%5BJournal%5D)">Protein a chromatography for antibody purification.</a> J. Chromatogr. B Analyt. Technol. Biomed. Life Sci. 848, 40-47 (2007).</li>
<li>Kronvall, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+surface+component+in+group+a%2C+c%2C+and+g+streptococci+with+non-immune+reactivity+for+immunoglobulin+g%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Immunol%22%5BJournal%5D)">A surface component in group a, c, and g streptococci with non-immune reactivity for immunoglobulin g.</a> J. Immunol. 111, 1401-1406 (1973).</li>
<li>Cedeno-Laurent, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+a+nascent+galectin-1+chimeric+molecule+for+studying+the+role+of+leukocyte+galectin-1+ligands+and+immune+disease+modulation%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Development of a nascent galectin-1 chimeric molecule for studying the role of leukocyte galectin-1 ligands and immune disease modulation.</a> J. Immunol. 185, 4659-4672 (2010).</li>
<li>Laemmli, U. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cleavage+of+structural+proteins+during+the+assembly+of+the+head+of+bacteriophage+t4%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage t4.</a> Nature. 227, 680-685 (1970).</li>
<li>Towbin, H., Staehelin, T., Gordon, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Electrophoretic+transfer+of+proteins+from+polyacrylamide+gels+to+nitrocellulose+sheets%3A+Procedure+and+some+applications%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.S.A%22%5BJournal%5D)">Electrophoretic transfer of proteins from polyacrylamide gels to nitrocellulose sheets: Procedure and some applications.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 76, 4350-4354 (1979).</li>
<li>Reisner, A. H., Nemes, P., Bucholtz, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+use+of+Coomassie+brilliant+blue+g250+perchloric+acid+solution+for+staining+in+electrophoresis+and+isoelectric+focusing+on+polyacrylamide+gels%5BTitle%5D)+AND+%22Anal.+Biochem%22%5BJournal%5D)">The use of Coomassie brilliant blue g250 perchloric acid solution for staining in electrophoresis and isoelectric focusing on polyacrylamide gels.</a> Anal. Biochem. 64, 509-516 (1975).</li>
<li>Cedeno-Laurent, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Metabolic+inhibition+of+galectin-1-binding+carbohydrates+accentuates+antitumor+immunity%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Invest.+Dermatol%22%5BJournal%5D)">Metabolic inhibition of galectin-1-binding carbohydrates accentuates antitumor immunity.</a> J. Invest. Dermatol. 132, 410-420 (2012).</li>
<li>Bradford, M. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+rapid+and+sensitive+method+for+the+quantitation+of+microgram+quantities+of+protein+utilizing+the+principle+of+protein-dye+binding%5BTitle%5D)+AND+%22Anal.+Biochem%22%5BJournal%5D)">A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding.</a> Anal. Biochem. 72, 248-254 (1976).</li>
<li>Desjardins, P., Hansen, J. B., Allen, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microvolume+Protein+Concentration+Determination+using+the+NanoDrop+2000c+Spectrophotometer%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">Microvolume Protein Concentration Determination using the NanoDrop 2000c Spectrophotometer.</a> J. Vis. Exp. (33), (2009).</li>
<li>Ernst, O., Zor, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Linearization+of+the+Bradford+Protein+Assay%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">Linearization of the Bradford Protein Assay.</a> J. Vis. Exp. (38), (2010).</li>
<li>Simonian, M. H., Smith, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Spectrophotometric+and+colorimetric+determination+of+protein+concentration%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Protoc.+Mol.+Biol.+Chapter%22%5BJournal%5D)">Spectrophotometric and colorimetric determination of protein concentration.</a> Curr. Protoc. Mol. Biol. Chapter. 10, 10-1002 (2006).</li>
<li>Smith, P. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Measurement+of+protein+using+bicinchoninic+acid%5BTitle%5D)+AND+%22Anal.+Biochem%22%5BJournal%5D)">Measurement of protein using bicinchoninic acid.</a> Anal. Biochem. 150, 76-85 (1985).</li>
<li>Gravel, C., Li, C., Wang, J., Hashem, A. M., Jaentschke, B., Van Domselaar, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantitative+Analyses+of+all+Influenza+Type+A+Viral+Hemagglutinins+and+Neuraminidases+using+Universal+Antibodies+in+Simple+Slot+Blot+Assays%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">Quantitative Analyses of all Influenza Type A Viral Hemagglutinins and Neuraminidases using Universal Antibodies in Simple Slot Blot Assays.</a> J. Vis. Exp. (50), (2011).</li>
</ol>

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본 명세서에 기재된 프로토콜은 제품 회수 또는 팽창 비용을 크게 손상시키지 않으면서 인간 Fc(Gal-1hFc)를 발현하는 키메라 융합 단백질을 신속하게 분리하고 특성화하기 위해 개발되었다. 간소화된 워크플로우의 주요 구성 요소는 절연을 위한 단백질 A 멤브레인 흡착제, 서양 블로팅에 의한 특성화를 위한 반건조 전달 및 진공 보조 면역블로팅입니다.
세포 배양 상류체 300ml에서 Gal-1hFc의 격리 및 특성화를 위한 처리 시간이 급격히 감소(기존 프로토콜에서 20시간 이상에 비해 유선형 프로토콜에서 약 9시간)은 전술한 주요 성분, 특히 멤브레인 흡착제의 통합에 크게 기인한다. 최대 권장 유량10ml 의 수퍼나탄트/분에서 멤브레인 흡착제 적재는 30분 안에 완료할 수 있습니다. 단백질 A 멤브레인 흡착제에서 Gal-1hFc 회복은 일반적으로 실험실에서 10-30%까지 다양하며, 세포 배양 슈퍼나탄의 Gal-1hFc 농도가 5-10 mg/ml일 때 숙련된 실험실 인력에 의해 정...

세포 배양 초월제로부터 면역글로불린 G(IgG) Fc 단편을 발현하는 항체 및 재조합 단백질의 분리및 희석 된 세포 용액은 단백질 A 친화 크롬 토그래피를 사용하여 달성 될 수있다. 기초 과학 및 공학 실험실 및 산업에서다공성 단백질 A-코팅 아가로즈, 유리 또는 폴리머 비드로 포장 된 컬럼은 높은 재정적 비용과 긴 처리 시간1-3에도불구하고 친화성 크로마토그래피에 가장 일반적으로 사용됩니다. 친화성 크로마토그래피는 실험실 및 산업 설정2,4모두에서 가장 큰 비용과 처리 병목 현상을 나타낸다는 것이 좋습니다. 그 결과, 공정열차1,2,5-7에서전체적인 제품 회수를 희생하지 않고 비용 및 처리 시간을 줄이기 위해 수많은 개선이 개발되었다. 특히 항체 및 기타 Fc-발현 단백질의 분리에 대한 유망한 단백질A막흡착제 2,5,7-10을이용한 친화성 크로마토그래피이다. 컬럼 크로마토그래피에서 의Fc 포획은확산제한(즉, Fc-표현 단백질은 내부 모공을 통해 확산되어 단백질 A의 대부분에 도달해야 한다)와 고압 강하량, 멤브레인 흡착제의 질량 수송은 대량 대류에 의해 구동되어 확산한계를 8,9,11,12로방지한다. 또한 멤브레인 흡착기를 가로지르는 압력 강하가 낮기 때문에 구슬이 가득한 컬럼8,9,11,12에비해 관류 유량이 더 빨라집니다. 따라서, 실험실 스케일 절연을 위해 막 크로마토그래피는 절연 시간을 몇 시간 단축하고 컬럼 크로마토그래피에 비해 제품 캡처를 증가시킬 것으로 예상된다. 또한 멤브레인 흡착제에서 IgG 흡착에 대한 수학적 모델이제안되어최종 사용자가 실험실에서 성능을 예측할 수 있도록 합니다.
기초 과학 및 공학 실험실의 또 다른 병목 현상은 Fc 표현 단백질의 특성입니다. 그러나 서양 얼룩과 같은 특성화 를 완료하는 적절한 방법을 선택하면 제품 테스트에 소요되는 시간을 크게 줄일 수 있습니다. 예를 들어, 불연속 완충 시스템에서 반건조 전달은 연속 완충계통(13)에서탱크(젖은) 이송에서 1-2시간 반대로 SDS-PAGE 젤에서 폴리비닐 디플루오리딘(PVDF) 멤브레인으로 단백질의 전기전도 전달을 달성할 수 있다.
인간 IgG의 Fc 단편을 발현하는 키메라 융합 단백질을 분리하고 특성화하는 신속하고 저렴하며 효과적인 프로토콜은 본원에 기재된다. 대부분의 장비는 표준 기본 생체 의학, 생물학, 화학 및 (바이오) 화학 공학 실험실에서 쉽게 사용할 수 있으며 모든 시약은 시판됩니다. 대표적인 결과는 뮤린 갈렉틴-1/인간 Fc 키메라 융합 단백질(Gal-1hFc)의 격리 및 특성화로부터 생성되었지만, 유선형 프로토콜은 항체, Fc 단편 자체 또는 다른 융합 Fc 단백질과 같은 Fc 단편을 소유한 다른 분자의 격리에 적용될 수 있다. 우리의 개선은 표준 방법에 비해 유사하거나 개선 된 제품 복구를 달성하는 동안 (4 시간 이상 일반적으로 ~ 9 시간) 처리 시간을 극적으로 감소.

<table><tbody><tr><td>단백질 A 멤브레인 흡착제 (Sartobind Protein A 2 ml)&nbsp;</td><td>Sartorius-Stedim</td><td>93PRAP06HB-12--A</td><td></td></tr><tr><td>Amicon Ultra 원심 필터, 10 kDa, 4</td><td>ml Millipore</td><td>UFC801008</td><td>필요한 경우 15 ml 용량 사용</td></tr><tr><td>멸균 진공 필터 유닛, 0.22 &micro; m, 500ml</td><td>Millipore</td><td>SCGPU05RE</td><td></td></tr><tr><td>Luer Lock 팁이 있는 10ml 주사기</td><td>BD</td><td>301604</td><td></td></tr><tr><td>Luer Lock 팁이 있는 30ml 주사기</td><td>BD</td><td>309650</td><td></td></tr><tr><td>Tygon lab tubing (1/16 in x 1/8 in x 50 ft)</td><td>Cole Parmer</td><td>WU-95903-16</td><td></td></tr><tr><td>Slide-A-Lyzer MINI 투석 기기(10K MWCO)</td><td>Thermo Scientific</td><td>69576</td><td></td></tr><tr><td>Snap i.d. 항체 수집 트레이</td><td>EMD Millipore</td><td>WBAVDABTR</td><td></td></tr><tr><td>Snap i.d. 단일 웰 블롯 홀더</td><td>EMD Millipore</td><td>WBAVDBH01</td><td></td></tr><tr><td>용리 완충액</td><td>Thermo Scientific</td><td>21004</td><td></td></tr><tr><td>Tris, 초순수</td><td>Fisher Scientific</td><td>819623</td><td></td></tr><tr><td>염화나트륨</td><td>Fisher Scientific</td><td>7647-14-5</td><td></td></tr><tr><td>Tween 20</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP337-100</td><td></td></tr><tr><td>DPBS</td><td>Thermo Scientific</td><td>SH30028.02</td><td></td></tr><tr><td>DPBS with Ca2+/Mg2+</td><td>Life Technologies</td><td>14080-055</td><td></td></tr><tr><td>BSA</td><td>Sigma</td><td>A9647</td><td></td></tr><tr><td>Human Fc</td><td>Bethyl Research Laboratories</td><td>P80-104</td><td></td></tr><tr><td>Anti-human Fc-APC</td><td>Jackson Immunoresearch</td><td>109136170</td><td></td></tr><tr><td>Anti-human Fc-AP</td><td>Bio-Rad</td><td>170-5018</td><td></td></tr><tr><td>알칼리성 포스파타제 기질</td><td>Promega</td><td>S3841</td><td></td></tr><tr><td>유세포 분석 튜브(5ml 폴리스티렌 또는 폴리프로필렌)</td><td>BD</td><td>352054</td><td></td></tr><tr><td>주사기 펌프</td><td>Harvard Apparatus</td><td>55-2226</td><td>연동 펌프도 허용</td></tr><tr><td>단백질 겔 전기영동 시스템</td><td>Bio-Rad Laboratories</td><td>552BR094876</td><td>모든 겔 전기영동 시스템은 허용되지만 미니 겔 시스템은 가장 빠르게 실행됩니다</td></tr><tr><td>Semidry 블로터</td><td>Bio-Rad Laboratories</td><td>690BR006163</td><td>모든 전달 시스템은 허용되지만 중단 전달 시스템은 전기영동 전달을 가장 빠르게 수행합니다</td></tr>. <tr><td>SNAP i.d. 진공 보조 단백질 검출 시스템</td><td>EMD Millipore</td><td>WBAVDBASE</td><td>업그레이드된 모델이 이 특정 기기를 대체했지만 둘 다 잘 작동해야 합니다</td></tr></tbody></table>

단백질 a 멤브레인 흡착제 및 간소화된 워크플로우를 사용하여 키메라 인간 fc 발현 단백질의 격리 및 특성화

Isolation and Characterization Of Chimeric Human Fc-expressing Proteins Using Protein A Membrane Adsorbers And A Streamlined Workflow

세포 배양 체와 용세포 용액으로부터 생체 분자의 산업 규모의 정제에 대한 실험실 규모는 친화성 크로마토그래피를 사용하여 달성 될 수있다. 다공성 단백질A아가로즈 구슬을 사용하여 열에 포장된 친화성 크로마토그래피는 틀림없이 IgG의 Fc 단편을 발현하는 항체 및 재조합 단백질의 실험실 스케일 절연의 가장 일반적인 방법이지만, 시간이 많이 걸리고 비용이 많이 드는 과정이 될 수 있다. 희석 솔루션에서 수백 마이크로그램의 단백질을 밀리그램으로 회수해야 하지만 고압 액체 전달 시스템 및/또는 생체 분리 에 대한 전문 지식을 갖춘 인력에 대한 접근이 부족한 소규모 기초 과학 실험실에서는 시간과 재정적 제약이 특히 어렵습니다. 또한, 제품 정량화 및 특성화는 또한 여러 근무일에 걸쳐 처리 시간을 과도하게 연장하고 비용(소모품, 임금 등)을부풀릴 수 있습니다. 따라서, 실험실 규모 격리 및 항체 및 Fc 단편을 소유한 다른 단백질의 특성화를 위해서는 빠르고 저렴하면서도 효과적인 프로토콜이 필요합니다. 이를 위해 20시간 이상의 근무 시간을 요구하는 기존의 방법과는 달리 9시간 미만(약 1일 근무)과 4시간 이내에 제한된 경험의 기술 직원이 완료할 수 있는 프로토콜을 고안했습니다. 대부분의 필수 장비는 표준 생의학 과학, 생화학 및 (바이오) 화학 공학 실험실에서 쉽게 사용할 수 있으며 모든 시약은 시판됩니다. 이러한 프로토콜을 입증하기 위해, 대표적인 결과는 키메라 뮤린 갈렉틴-1이 세포 배양 상수로부터 인간 Fc(Gal-1hFc)에 융합되어 단백질 A막 흡착기를 사용하여 분리되었다는 것을 제시한다. 정제 된 Gal-1hFc는 신속한 서양 블로팅 분석 절차를 사용하여 정량화되었으며 유동 세포 측정을 사용하여 특징지어졌습니다. 간소화된 워크플로우는 항체와 같은 다른 Fc 발현 단백질을 위해 수정하거나 대체 정량화 및 특성화 방법을 통합하도록 변경할 수 있습니다.

Fc 발현 단백질의 격리 및 특성화를 위한 간소화된 프로토콜은 희석세포 배양 초나티로부터 인간 Fc(Gal-1hFc)에 융합된 키메라 뮤린 갈렉틴-1을 처리하는 데 일상적으로 사용됩니다. 그림 2의 순서도는 프로토콜의 각 단계에 대한 워크플로우와 시간을 보여 줍니다. 300ml의 전형적인 미퍼나탄의 경우, 용출 분획의 선택적 유동 세포측정 시험이 수행될 때 총 처리 시간은 약 9시간입니다. 모든 유동 세포측정 분석이 생략되면, 유동 세포계 또는 개별 실험실 선호도의 부족으로 인해 총 처리 시간은 4시간으로 짧을 수 있다. 일반적으로 처리 시간은 작업자 경험, 처리된 상주 처리량 및 정량화 및 특성화 방법에 따라 달라집니다.
유동 세포측정은 개시 세포 배양 상신체에서 기능성 Gal-1hFc(즉, 유방암 세포에 대한 리간드를 검출할 수 있는 Gal-1)의 존재를 테스트하기 위해 사용되었다. 신선한 세포 배양 배지는 음의대조군(1...

단백질 A 아가로즈 비드가 포장된 컬럼을 이용한 전통적인 친화성 크로마토그래피와 비교하여, 단백질 A 멤브레인 흡착제는 항체 및 기타 Fc 단편 발현 단백질의 실험실 규모 절연을 크게 가속화할 수 있습니다. 적절한 분석 및 정량화 방법은 단백질 처리를 더욱 가속화할 수 있으므로 20시간 이상의 근무 시간이 아닌 한 작업 시간에 격리/특성을 완료할 수 있습니다.

단백질 A 멤브레인 흡착제 및 간소화된 워크플로우를 사용하여 키메라 인간 Fc 발현 단백질의 격리 및 특성화

Laboratory scale to industrial scale purification of biomolecules from cell culture supernatants and lysed cell solutions can be accomplished using ...

이 프로시저의 전반적인 목표는 단백질 A 막 흡착제와 간소화된 워크플로우를 사용하여 chimeric human FC 발현 단백질을 효율적이고 효과적으로 분리하고 특성화하는 것입니다. 이는 먼저 0.22 micron 필터로 세포 배양 상층액을 정제함으로써 수행됩니다. 두 번째 단계는 유동 시스템을 조립하고 단백질 A 막 흡착제를 통해 세포 배양 상층액의 관류를 시작하는 것입니다.다음으로, 인간 FC 발현 단백질을 막 흡착제로 분리하고, 결과물인 EIT를 한외여과를 통해 농축한 후 투석을 통해 완충액 교환을 수행합니다. 마지막 단계에서는 유세포 분석법과 웨스턴 블로팅을 사용하여 농축된 단백질의 품질과 양을 결정합니다. 결과적으로, 단백질 A 막 흡착제와 효율화된 워크플로우는 단백질 A aro speed 충진 컬럼을 이용한 전통적인 친화성 크로마토그래피에 비해 처리 시간의 단축과 단백질 수율의 잠재적 증가를 보여줍니다.따라서 컬럼 친화성 크로마토그래피와 같은 기존 방법보다 이 기술이 갖는 주요 장점은 멤브레인 흡수기를 통해 처리 시간을 단축하면서도 단백질의 수율을 잠재적으로 더 높일 수 있다는 점입니다. 적절한 분석 방법의 선택 또한 처리 시간을 단축할 수 있습니다. 제조업체의 지침에 따라 멤브레인 흡수기를 준비하고, 통과시키는 모든 용액이 실온 상태이며 0.22 micron 필터로 사전 여과되었는지 확인하십시오. 우선, 10 milliliter 주사기에 0.22 micron 여과된 KO's phosphate buffered saline 또는 DPBS를 채우고 공기 방울을 제거합니다.막 흡수체 내로 공기가 유입되지 않도록 하기 위해, 사용 직전에 보관액을 제거하고 막 흡수체를 평형화시키기 위해 DPBS를 주입하십시오. 진공 구동식 0.22 micron 멸균 여과 장치를 사용하여 세포 배양 상층액을 막 흡수체에 주입하기 직전에 여과하여 단백질 A 막 흡수체를 로딩하고, 루어 락 주사기에 세포 배양 상층액을 흡입한 후 공기 방울을 모두 제거하여 재료와 장비를 준비하십시오. 먼저, 주사기를 막 흡수체의 입구에 연결하십시오.필요한 경우 멤브레인 흡수기 출구에 유연한 튜빙을 연결하십시오. 시린지와 멤브레인 흡수기 사이에 0.22 micron 시린지 필터를 장착하십시오. 플라스크나 병을 사용하여 흡수기에서 나오는 액체를 받으십시오.시린지 펌프를 원하는 부피 유량으로 설정하되, 제조사 권장 유량을 초과하지 마십시오. 세포 배양 상층액을 막 흡착제에 통과시켜 관류하고 통과액을 수집하십시오. 필요에 따라 시린지에 상층액을 다시 채우십시오.필요한 경우, 실험실의 선호도에 따라 유세포 분석법(flow cytometry), 웨스턴 블로팅(western blotting) 또는 ELISA를 사용하여 통과액(flow through) 내 단백질 존재 여부를 테스트하십시오. 일반적으로 막 흡수체(membrane absorber)에서 단백질을 용출시키기 위해 통과액을 다시 흘려보낼 필요는 없습니다. 먼저 10 milliliters의 DPBS로 막 흡수체를 세척하여 결합되지 않은 단백질을 제거하십시오. 원하는 유속으로 막 흡수체에서 단백질을 용출시키십시오.10 내지 15 mL의 용출 버퍼를 사용하십시오. 용출 부피의 10%에 해당하는 중화 버퍼가 담긴 튜브에 EIT를 받으십시오. 단백질을 용출한 후, 제조사의 지침에 따라 멤브레인 흡착제를 재생하십시오.4°C에서 장기 보관하기 위해 멤브레인 흡수체를 DPBS 내 20% ethanol로 채웁니다. 모든 EIT를 10 kilodalton 분자량 컷오프 원심분리 필터 유닛에 넣습니다.원심분리 투석 시 제조사의 지침을 따르십시오. 선택한 버퍼를 사용하여 10 kilodalton 분자량 컷오프의 소량 투석 유닛에서 잔류물을 투석하십시오. 투석된 물질에 버퍼를 추가해야 할 수도 있습니다.단백질 침전이 우려되는 경우, 원하는 대로 환원 또는 비환원 조건 하에서 SDS page를 통해 선택한 젤 상에서 정제된 단백질과 FC 표준물질을 분리하십시오. 런타임을 최소화하기 위해 미니 젤을 사용하고, 정제된 단백질 밴드 신호가 FC 표준물질의 선형 신호 범위 내에 있도록 DPBS로 희석한 샘플을 포함하여 다양한 양의 정제된 단백질 샘플을 로딩하십시오. 젤 분리 후 이미지 분석 단계에서는 제조사의 지침에 따라 세미 드라이 블로터(semi-dry blotter)와 불연속 완충액 시스템을 사용하여 젤의 단백질을 폴리 불화비닐리덴(poly vinylidene fluoride) 막으로 전이시키며, 전이 시간은 일반적으로 5~10분입니다.전이 효율을 확인하기 위해 전이 후 젤을 Kumasi로 염색합니다. 진공 보조 단백질 검출법을 사용하여 알칼라인 포스파타아제 또는 서양와사비 peroxidase가 결합된 anti FC 또는 anti IgG로 면역 블로팅을 수행합니다. 면역 블로팅 시간은 일반적으로 1시간 미만입니다.선택한 기질과 방법을 사용하여 면역 블롯(immuno blot)을 현상합니다. 이미지 분석을 통해 정제된 단백질을 정량합니다. FC 표준품의 밴드 신호에 대해 선형 회귀 분석을 수행합니다.R 제곱(R squared) 값이 0.90보다 크면, 직선 방정식을 사용하여 밴드 신호로부터 단백질 양을 계산하되, 필요한 경우 시료 희석 배수를 고려하십시오. 단백질 정량이 fc를 기준으로 수행되므로, 단백질과 fc 간의 분자량 차이에 따라 값을 보정하십시오. R 제곱 값이 0.90보다 작으면, 신속 웨스턴 블로팅(expedited western blotting) 절차를 반복하십시오.마지막으로, 기능적 분석 또는 유세포 분석을 통한 FC 검출 방법을 사용하여 단백질을 검증합니다. Western blotting 또는 EISA 유세포 분석을 사용하여 초기 세포 배양 상층액 내 기능적 GAL one HFC의 존재 여부를 테스트하였으며, 이는 파란색 히스토그램으로 표시되었습니다. 여기서 빨간색으로 표시된 신선한 세포 배양 배지가 음성 대조군으로 사용되었으며, 이 히스토그램과 겹쳐진 녹색 부분은 멤브레인 흡착제가 GAL one HFC를 효율적으로 포획하고 유지했음을 나타내는 flow through입니다. GAL one HFC는 아민 기반 산성 완충액을 사용하여 분당 1 mL의 속도로 1 mL씩 멤브레인 흡착제로부터 용출되었습니다. 이후 중화된 용출 분획물들을 유세포 분석으로 테스트하여 기능적 GG one HFC의 존재 여부를 확인하였습니다. GL one HFC 신호는 음성 대조군과 거의 동일했던 용출액 1부터 순차적으로 증가하여 용출액 3에서 최대치에 도달했으며, 이후 용출액 9와 10에서는 거의 일정한 수준으로 감소하였습니다.최종 EEU 10은 일부 흡착제 흡수제 유지로 인해 음성 대조군 신호와의 동등성에 도달하지 못했습니다. 정제된 GL one HFC의 정량 및 특성 분석은 세미-드라이 트랜스퍼(semi-dry transfer)와 진공 보조 면역 블로팅(vacuum assisted immuno blotting)으로 가속화된 웨스턴 블로팅 절차를 통해 수행되었습니다. GA one HFC 신호를 HFC 정량 표준물질과 비교함으로써, 정제된 물질의 양과 질이 모두 결정되었습니다.GAL one HFC 및 분해된 GAL one HFC 신호는 표준 범위 내에 있었습니다. HFC 표준 밴드의 신호 강도는 존재하는 HFC의 양과 선형 관계를 보였습니다. 이미지 프로세싱을 통해 HFC를 기준으로 측정한 정제된 GAL one HFC의 농도는 450 µg/mL로 결정되었습니다.G1HFC의 분자량을 보정합니다. 정제된 물질의 농도는 720 µg/mL였습니다. 반면, 여기에 제시된 웨스턴 블롯의 6번 및 7번 레인에는 정제된 GAL1HFC가 너무 많이 로딩되어 신호가 HFC 표준 범위를 포화하거나 초과하였으며, 이로 인해 정량이 불가능했습니다.웨스턴 블로팅의 대안으로 쿠마시 젤 염색은 신속한 품질 관리 확인 또는 정량 방법으로 활용될 수 있습니다. 분해된 GAL one HFC 샘플에서는 약 25 kilodaltons 및 40 kilodaltons의 밴드 외에 약 10 kilodaltons의 밴드가 나타났음에 유의하십시오. 이 밴드는 웨스턴 블롯에 사용된 검출 항체와 반응하지 않는 분해된 GAL one HFC입니다.본 영상을 시청하신 후에는 막 흡착제(membrane absorbers)를 사용하여 키메라 인간 FC 발현 단백질을 분리하는 방법과 해당 단백질들을 최소 4시간 이내에 특성화하는 방법에 대해 충분히 이해하시게 될 것입니다.

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Research

연구

JoVE Journal

Bioengineering

생명공학

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단백질 A 멤브레인 흡착제 및 간소화된 워크플로우를 사용하여 키메라 인간 Fc 발현 단백질의 격리 및 특성화

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