Name: 타운 웨스턴 가장 빠른 : 클래식 웨스턴 블롯 분석에 현대 트위스트 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-02-05T18:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 43 s
Description: 배우세요 개선된 웨스턴 블롯 기법으로 단백질 분석의 해상도와 민감도를 높이는 방법을. Bis-Tris 겔 시스템과 적외선 형광 이미징을 활용하여 더 정확한 정성·정량 데이터를 빠르게 얻을 수 있습니다.

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우리는 그들의 도움과 지원을 맥마흔 연구소의 모든 구성원에게 감사의 말씀을 전합니다. 이 연구는 NIH / NCI R01 CA176839-01 (MM에) 및 기관 연구 및 학술 경력 개발 상 (JS에 IRACDA)에서 교부금에 의해 지원되었다.

1. 세포 배양에서 전체 세포 용 해물의 준비 <ol><li> 얼음에 세포 배양 접시를 놓고 5 밀리미터 EDTA (PBS의 예를 들어, 5 ㎖ 5 mM의 EDTA/10 cm 2 플레이트)와 차가운 PBS를 추가합니다. 세포 스크레이퍼를 사용하여 요리에서 자기편 세포를 제거하고 차가운 15 ML 원뿔 튜브에 세포 현탁액을 전송합니다. </li><li> 4 ℃에서 5 분 동안 1,000 rpm으로 (230 XG)에서 저속 원심 분리하여 세포 현탁액을 펠렛 얼음에 원뿔 튜브를 놓고 조심스럽게 펠렛을 방해하지 않고 뜨는을 대기음. </li><li> 5 밀리미터 EDTA (에틸렌 다이아 민 테트라 초산)과 PBS 1 ㎖와 펠렛을 씻고 감기에 1.5 ㎖의 원심 분리기 튜브에 세포 현탁액을 전송합니다. 펠렛 세포를 10 초 동안 13,000 RPM (13,226 XG)에서 빠른 스핀 정지. 조심스럽게 얼음에 펠릿과 장소 튜브를 방해하지 않고 뜨는을 제거합니다. </li><li> 에서, (예 : 3 × 10 6 세포에 RIPA 버퍼 ~ 150 μl를 추가 펠릿의 크기에 따라) 25 ~ 200 μL에 펠렛을 재현 탁RIPA 완충액 (50 mM 트리스, 150 mM의 염화나트륨, 0.5 mM의 EDTA, 10 mM의 불화 나트륨, 0.1 % SDS, 0.5 % 나트륨 데 옥시 콜레이트, 1 % NP-40) 2X 최종 농도 갓 첨가 프로테아제 및 포스파타제 억제제를 포함. 간단히 각 튜브 와동과 얼음에 20 ~ 30 분 동안 현탁액을 품어. 주 : 단백질 및 그들의 변성 세제 (즉 SDS, 트리톤 X-100, 또는 NP-40)의 강도를 용해하는 능력이 다른 단백질을 추출하는 데 사용할 수있는 몇개의 용해 버퍼가있다. RIPA 버퍼는 전체 세포 용 해물을 준비하고 단백질 - 단백질 상호 작용을 방해하는 데 유용합니다. </li><li> 4 ℃에서 5 분 동안 14,000 RPM (15,339 XG)에서 포스트 핵 분수, 원심 분리기 해물을 만들려면 얼음 핵 농축 펠릿과 장소 튜브를 중단하지 않고 새로운 튜브에 뜨는을 전송합니다. 참고 : 상층 액을 추출하는 동안 핵 농축 펠릿은 또한 튜브에서 분리 할 수​​ 있습니다. 핵 농축 펠렛을 수집 방지하기 위해, 내가 직접 피펫 팁을 배치점성 핵 농​​축 펠릿 n을하고 처리하기 위해 피펫으로 그려. </li><li> BCA 또는 브래드 같은 단백질 정량 분석​​법을 사용하여 제조업체의 지시에 따라 각 샘플의 단백질 농도를 결정한다. </li></ol> 2. 샘플 준비 및 전기 <ol><li> 아래에 설명 된 다음 표에 따라 각 샘플을 준비합니다. 대안으로, β-메르 캅토 에탄올로는 2.5 %의 최종 농도로 사용할 수있다. 그러나, 환원제 겔을 적재하기 전에 시간에 각각의 샘플까지 첨가한다. 각 제조 된 샘플의 20 μL와 피펫의 변화에​​ 대한 전체 볼륨의 계정이 아니라 당로드. <table border="1"><tbody><tr><td> 시약 </td><td> REDUCED SAMPLE </td></tr><tr><td> 단백질 샘플 </td><td> X μL </td></tr><tr><td> 배 LDS 샘플 버퍼 </td><td> 6 μL </td></tr><tr><td> 500 nm의 DTT 레드ucing 에이전트 </td><td> 2.4 ㎕의 </td></tr><tr><td> 탈 이온수 </td><td> 최대 15.6 μL </td></tr><tr><td> 총 양 </td><td> 24 μL </td></tr></tbody></table></li><li> 10 분 동안 70 ° C에서 열 샘플. 샘플을 가열하는 동안 (50 ㎖의 20 배의 MES 또는 버퍼를 실행 MOPS 플러스 950 ㎖의 탈 이온수) 버퍼를 실행 1X MES 또는 MOPS 1000 ML을 준비합니다. 버퍼를 실행 MES는 MES 빠르게 MOPS 4 이상 실행 버퍼를 실행 할 수있는 하부의 pKa와 2-200 kDa의 사이의 작은 분자량의 단백질을 해결하는 반면 버퍼를 실행 MOPS는 14-200 kDa의 사이에 중간 크기의 단백질을 해결합니다. 따라서,이 두 버퍼는 단백질 밴드 4의 분리의 차이로 연결 스태킹 겔 내에서 이온의 이동에 영향을 대조했다. 옆으로 설정하고 최소의 위 버퍼 챔버를 채우는 데 사용됩니다 (200) 1X MES의 ML 또는 산화 방지제의 500 μL로 버퍼를 실행 MOPS를 결합I-세포 전기 영동 장치. </li><li> 샘플은 얼음을하기 전에 난방, 빠른 스핀 샘플을 완료하면. </li><li> 전기의 소형 휴대 기기에 프리 캐스트 비스 - 트리스 젤의 어셈블리에 대한 제조 업체의 지침을 따르십시오. 주 : 각 젤이 각 겔의 짧은 (작은) 카세트 버퍼 핵심을 향해 안쪽으로 향하고 젤 레벨 강력히 어퍼 버퍼 상공 회의소에서 누출을 방지하기 위해 버퍼 코어에 대해 가압 그런 방식으로 지향되어 있는지 확인합니다. </li><li> 1X MES 또는 항산화 및 1X MES 또는 버퍼를 실행 MOPS 약 600 mL를 소형 휴대 기기의 낮은 버퍼 챔버를 포함하는 버퍼를 실행 MOPS의 200 ㎖로 위 버퍼 챔버를 입력합니다. 버퍼를 실행하는 별도의 200 ~ 300 ㎖를 나중에 사용하기 위해 저장할 수 있습니다. 그러나, 버퍼의 pH와 품질이 변경 될 수 있으므로 전기를 실행하는 동안 사용되는 버퍼를 재활용하지 않는 것이 좋습니다. </li><li> 각 단백질 SAMP의 20 μl를로드르 각 웰에. 여러 항체 (즉, 2 개 이상)를 조사하기 위해 여러 지구로 막 절편 경우, 그것은 매우이 될 것입니다 각 젤의 첫 번째와 마지막 우물 prestained 단백질 표준의 2-5 μl를로드하는 것이 좋습니다 단백질 밴드의 화상에 영향을주지 않고 막 다른 섹션을 분리하기위한 가이드 등을 절단. </li><li> 끝의 시작과 젤 당 70~80mA에서 110-125mA / 젤의 예상 전류를 35 분 동안 200 V 불변의 실행 젤. 추적 염료 버퍼 코어 따라 백금 와이어로 마이그레이션 할 때 전기가 완료됩니다. </li></ol> 3. iBlot 드라이 블로 팅 시스템을 사용하여 단백질 전송 <ol><li> 완전히 (이 지직 거리는 소음이 발생할 수 있습니다) 카세트 테이프의 접착면을 끊어서 미니 젤을 분리합니다. 짧은 (작은) 판을 취소하고 조심스럽게 탈 물을 용기에 이상 (슬롯) 판에서 젤을 전송하고아래쪽에있는 젤의 두꺼운 발 부분을 제거합니다. 참고 : 드문 경우에, 젤이 더 짧은 플레이트 대신에 연결할 수 있으며, 플레이트 성공 시켰습니다. 이 경우, 더 이상, 홈판을 폐기하고 하단에 위치한 겔의 두께 왼발 부분을 제거한다. 그런 다음 조심스럽게 탈 이온수에 짧은 플레이트에서 젤을 전송합니다. </li><li> 제조업체의 지시에 따라 양극과 음극 전송 스택을 조립한다. 참고 : 니트로 셀룰로오스 또는 PVDF 모두 세포막 단백질의 높은 품질과 효율적인 전송을 제공하고 형광 검출 8과 호환됩니다. 그러나, PVDF 막은 니트로 셀룰로스보다 높은 결합능 (240 ㎍ / cm 3) (200 ㎍ / cm 3) (8)를 가지고있다. </li><li> 조심스럽게 기포 또는이 같은 젤과 막 사이에 갇힌 공기를 전송하는 동안 단백질 밴드의 왜곡을 방지 할 수 있습니다 제거합니다. 참고 : 막 또는 TRANSF 트림하지 않습니다어이 양극과 음극 스택 사이의 직접 접촉을하게됩니다로 젤 크기에 맞게 스택. </li><li> 후 제대로 건조 블로 팅 장치에 전송 스택을 조립, 적절한 전압 프로그램 (즉, 프로그램 3 : 7 분 20 V)을 선택하고 전송을 시작합니다. 주 : 150 kDa의 단백질보다 더 느리게 이주 경향 8-10 분의 긴 전송 시간을 필요로 할 수있다. 또, 50-10 분 동안 20 % 에탄올에서 겔의 사전 인큐베이션은 또한이 큰 단백질의 전사 효율을 향상시키는 것을 도울 것이다. 전송 프로그램이 완료되면, 장치는 자동으로 전류를 차단한다. 그것은 바로 막을 제거하고 더 나은 단백질 검출을 확인하고 막을 건조 방지하기 위해 차단 절차를 진행하는 것이 가장 좋습니다. </li></ol> 4. 적외선 형광 단백질 검출 <ol><li> 오디세이는 1 시간 또는 버퍼 (트윈 20을 추가하지 마십시오) 차단의 0.8 ㎖ / cm 2의 최소의 블록 막 (들)하룻밤에 4 ° C. 막 (들)도 있지만이 높은 배경의 원인이 단백질 검출을 방해 할 수 있습니다, 탈지 분유와 차단 될 수 있습니다. </li><li> 4 ℃에서 하룻밤 동안 0.1 % 트윈 (20)와 버퍼를 차단 오디세이에서 원하는 농도 차 항체에 막 (들)을 품다 두 개의 다른 항원이 동일한 블롯에 시각화되는 두 색 검출을 위해,이 일차 항체는 다른 호스트 종으로부터 유도되어야하며 멤브레인 (들)에 동시에 첨가. 참고 : 이전에 일차 항체에 멤브레인 (들) 배양에, 막 (들) 같은 막에 여러 항체 (즉, 2 개 이상)를 조사하기 위해 여러 조각으로 절개 할 수있다. </li><li> TBS에서 10 분 플러스 0.1 % 트윈 - 20 부드러운 흔들림 함께 막 (들) 배를 씻으십시오. </li><li> Odysse에서 800 nm의 채널에 대한 700 nm의 채널과 1:6,000-1:10,000에 대한 1:20,000의 희석에 형광 표지 된 이차 항체와 막 (들)을 품다Y는 (이상 1 시간 동안 막 (들)을 배양하는 배경을 증가시킬 수있다) 30 ~ 60 분 동안 0.1 % 트윈 (20)와 버퍼를 차단. 빛으로부터 멤브레인 (들)을 보호합니다. 주 : 이차 항체는 일차 항체의 각각과 동일한 호스트 종 유래의 다른 형광체로 표지 할 필요가있다. </li><li> TBS에서 10 분 플러스 0.1 % 트윈 - 20 부드러운 흔들림 함께 막 (들) 배를 씻으십시오. 빛으로부터 멤브레인 (들)을 보호합니다. </li><li> 스캔 및 적외선 이미징 시스템 군데까지 막 (들) 트윈 20 4 ° C에서하지 않고 건조 또는 TBS 또는 PBS 중 하나에 저장 될 수있다. 제대로 빛으로부터 보호하는 경우 형광 신호가 몇 달 동안 안정적으로 유지됩니다. </li></ol>

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</ol>

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이 프로토콜에 따라 고품질, 정량적 웨스턴 말 생성에 중요한 단계는 다음과 같다 : 1) 단백질의 농도를 측정하는 단계 2) 샘플 준비, 3) 멤브레인을 차단하고, 4) 일차 항체의 품질과 그릇. 총 단백질 농도를 측정의 정확도는 적외선 형광 검출의 뛰어난 감도는 샘플의 단백질 농도에서 발견 된 약간의 차이를 증폭 때문에 단백질 밴드를 정량화에 큰 영향을 미칠 수 있습니다. , 단백질 농도를 결정하는 선형 회귀 직선 또는 (2 ≥ 0.99 이상이 R) 각 시료의 단백질 농도의 정확한 계산에 중요 한 최대한에 가깝게 R-제곱 값과 표준 곡선을 생성하는 불일치를 방지하려면 . 예를 들어, R이 값은 초순수로 신선한 BSA 표준을 준비하고 신중 반복, 0.99 아래로 떨어지면단백질 정량 분석은 R 2 값을 증가하는 데 도움이 될 수 있습니다. 그것은이 감소 R 시료의 단백질 농도의 2 값과 부정확성에 기...

<html> 웨스턴 블롯의 기술은 제 1-3 항체를 사용하여 단백질을 검출하기위한 더 나은 방법을 만들기 위해 1977 년과 1979 년 사이에 개발되었다. 이 절차는 이차 항체를 사용하여 시각 및 오토 라디오 그래피, UV 광, 또는 퍼 옥시 다제 반응 생성물 (3)에 의해 검출 된 표적 단백질과 함께 SDS-PAGE 젤에서 세포막 단백질의 전기 영동 이동을 이용했다. 따라서, 이와 같은 기본 원칙은 여전히​​ 널리 오늘날의 서양 얼룩 프로토콜에 사용됩니다. 그러나이 고전적인 웨스턴 블로 팅 기술은 저속 전기 실행 시간, 낮은 해상도와 인공 단백질 밴드, 단백질 분해에 대한 감수성, 그리고 감도를 제한뿐만 아니라 가난한 데이터 품질 4로 존재 많은 단점을, 않습니다. 따라서,이 프로토콜은보다 정확한 정성 및 정량 데이터를 생성하는 표준 웨스턴 블롯 절차에 상당한 발전과 개선에 대해 설명합니다. &quot;&gt; SDS-PAGE를 이용하여 단백질의 광범위한 분리 램리 시스템이 웨스턴 블롯 시스템의 인기에도 불구. 웨스턴 블롯 5 가장 널리 사용되는 겔 시스템이며,이 방법은 대역 왜곡, 해상도의 손실 및 초래할 수 스퓨리어스 대역 4.이 분리 겔 감소 디설파이드 겔의 다른 레 독스 상태에 의한 결합 및 아스 파르 틸-프 롤릴 개열의 재산 화의 높은 pH (9.5)에 의한 단백질의 탈 아미 노화 및 알킬화의 결과 일 수있다 램리 완충액 (pH 5.2) 4,6에서 단백질을 가열에 의한 펩티드 결합., 중성 pH (7.0)로 작동 Lamemmli 시스템에 비해 상당한 이점을 제공 비스 - 트리스 겔 시스템.이 시스템은 단백질 안정성, 최소화 향상 단백질 변형은 그들의 감소 된 상태로 유지하는 단백질을 전기 영동시 아스 파르 틸-프 롤릴 절단을 방지하고,보다 중요하게, 전기 영동 실행 시간은 t, 또. 35 분이다 4,6,7그는 비스 - 트리스 젤 시스템은 더 신뢰할 수있는 데이터 4의 결과로 선명 밴드, 더 높은 해상도와 분리, 증가 감도를 생산하고 있습니다. 비스 - 트리스 젤 시스템과 함께, iBlot 드라이 블롯 시스템은 크게 7 분으로 13 시간 이내 막 상 겔로부터 단백질의 전송 시간을 줄이기 위해 높은 전계 강도와 전류를 사용한다. 이 반송 시스템은 단백질 13의보다 효율적이고 신뢰성있는 전송을 생성 건조 블로 팅 방법에 근거한다. : 기존의 전송 시스템에 iBlot 전송 시스템의 효과에 대한 자세한 비교 내용은 다음 웹 사이트를 참조하십시오 <a href="http://www.invitrogen.com/site/us/en/home/Products-and-Services/Applications/Protein-Expression-and-Analysis/Western-Blotting/Western-Blot-Transfer/iBlot-Dry-Blotting-System/iBlot-Dry-Blotting-Comparison-to-Semi-Dry-and-Wet.html">http://www.invitrogen.com/site/us/en/home/Products-and-Services/Application</a>s/Protein-Expression-and-Analysis/Western-Blotting/Western-Blot-Transfer/iBlot-Dry-Blotting-System/iBlot-Dry-Blotting-Comparison-to-Semi-Dry-and-Wet.html . 이는 이온 공기통 8 역할 적절한 전송 버퍼를 포함 겔 매트릭스로 구성되는 양극과 음극 스택을 이용한다. 전송 동안, 물 전기 분해 대역 왜곡 8시키지 않고보다 일관된 단백질 전사 초래 구리 양극으로부터 산소의 발생을 방지하는 것을 돕는다. 또한,이 반송 시스템은 또한 전극 (8) 사이의 거리를 줄임으로써 전송 속도를 증가시킨다. 화학 발광은 서양 얼룩의 단백질 검출 분석을위한 가장 일반적이고 전통적인 기법이지만, 두 컬러 적외선 형광 검출이 크게 웨스턴 블롯 데이터의 민감도, 품질과 정확도를 향상시켜줍니다. 이 검출 방법이 최적의 파장 700 nm의 적외선 레이저 여기를 사용800 nm의 최대 신호 대 잡음 비 및 높은 감도를 가진 9 클리어 데이터 이미지를 생성한다. 따라서,이 목적 단백질은 700 nm 내지 800 nm의 형광 검출 채널을 사용하는 동일한 멤브레인 동시에 가시화 될 수있다. 더 중요한 것은, 적외선 형광의 선형성 및 동적 범위는 강하고 약한 두 단백질 밴드 (9)의 정확한 정량 분석을 할 수 있습니다. 또한,이 프로토콜은 이러한 공정의 효능을 손상하고 더 정량적 웨스턴 블롯 데이터를 생성하기 위하여 적외선 형광 단백질 검출을 이용하지 않고 본 실험의 전기 및 전송 시간을 감소시킴으로써 고전 웨스턴 블로 팅 기법을 통해 엄청난 장점 및 개선을 제공한다.

<table><tbody><tr><td>BCA 단백질 분석 키트</td><td>Thermo Scientific/Pierce</td><td>23225</td><td></td></tr><tr><td>4x NuPAGE LDS 샘플 버퍼&nbsp;</td><td>Invitrogen/Life Technologies</td><td>NP0007</td><td></td></tr><tr><td>10x NuPAGE 샘플 환원제&nbsp;</td><td>Invitrogen/Life Technologies</td><td>NP0004</td><td></td></tr><tr><td>20x NuPAGE&reg; MES SDS 러닝 버퍼</td><td>Invitrogen/Life Technologies</td><td>NP0002</td><td></td></tr><tr><td>20x NuPAGE MOPS SDS 러닝 버퍼</td><td>Invitrogen/Life Technologies</td><td>NP0001</td><td></td></tr><tr><td>NuPAGE 항산화</td><td>Invitrogen/Life Technologies</td><td>NP0005</td><td></td></tr><tr><td>NuPAGE Novex 4-12% Bis-Tris 젤 1.5 mm, 10-well&nbsp;</td><td>Invitrogen/Life Technologies</td><td>NP0335BOX</td><td></td></tr><tr><td>NuPAGE Novex 4-12% Bis-Tris 젤 1.5mm, 15웰</td><td>Invitrogen/Life Technologies</td><td>NP0336BOX</td><td></td></tr><tr><td>SeeBlue Plus2 Prestained Standard&nbsp;</td><td>Invitrogen/Life Technologies</td><td>LC5925</td><td></td></tr><tr><td>XCell SureLock 미니셀&nbsp;</td><td>Invitrogen/Life Technologies</td><td>EI0001</td><td></td></tr><tr><td>iBlot Transfer Stack, PVDF Regular</td><td>Invitrogen/Life Technologies</td><td>IB4010-01</td><td></td></tr><tr><td>iBlot Transfer Stack, PVDF Mini</td><td>Invitrogen/Life Technologies</td><td>IB4010-02</td><td></td></tr><tr><td>iBlot Transfer Stack, 니트로셀룰로오스 Regular</td><td>Invitrogen/Life Technologies</td><td>IB3010-01</td><td></td></tr><tr><td>iBlot Transfer Stack, 니트로셀룰로오스 Mini</td><td>Invitrogen/Life Technologies</td><td>IB3010-02</td><td></td></tr><tr><td>iBlot 젤 전송 장치&nbsp;</td><td>Invitrogen/Life Technologies</td><td>IB1001</td><td></td></tr><tr><td>&beta;-Actin</td><td>Sigma</td><td>A2228</td><td></td></tr><tr><td>Phospho-BIM (S69)</td><td>BD Biosciences</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>Total BIM</td><td>Epitomics</td><td>1036-1</td><td></td></tr><tr><td>Phospho-ERK1/2 (T202/Y204)</td><td>Cell Signaling Technology</td><td>4370</td><td></td></tr><tr><td>Total ERK1/2</td><td>Cell Signaling Technology</td><td>9107</td><td></td></tr><tr><td>오디세이 블로킹 버퍼&nbsp;</td><td>LI-COR Biosciences</td><td>927-40000</td><td></td></tr><tr><td>IRDye 800CW 염소 안티-토끼 IgG</td><td>LI-COR Biosciences</td><td>926-32211</td><td></td></tr><tr><td>IRDye 680LT 염소 안티-마우스 IgG&nbsp;</td><td>LI-COR Biosciences</td><td>926-68020</td><td></td></tr><tr><td>웨스턴 인큐베이션 박스, 중간&nbsp;</td><td>LI-COR Biosciences</td><td>929-97205</td><td></td></tr><tr><td>Odyssey Classic 이미징 시스템</td><td>LI-COR Biosciences</td><td>해당 사항 없음</td><td></td></tr><tr><td>Odyssey 애플리케이션 소프트웨어 v3.0.30</td><td>LI-COR Biosciences</td><td>해당 없음</td><td></td></tr></tbody></table>

타운 웨스턴 가장 빠른 : 클래식 웨스턴 블롯 분석에 현대 트위스트

The Fastest Western in Town: A Contemporary Twist on the Classic Western Blot Analysis

원래 1970 년대 후반에 설립 된 웨스턴 블롯 기술은 여전히​​ 적극적으로 오늘날 사용된다. 그러나, 웨스턴 블로 팅의 전통적인 방법은 낮은 품질의 해상도, 가짜 밴드, 감도를 감소, 불량 단백질의 무결성을 포함 몇 가지 단점이있다. 최근 비약적으로 진보는 더 높은 질적 및 양적 데이터를 생성하기 위하여 표준 웨스턴 블롯 프로토콜의 수많은 양상을 개선했다. 비스 - 트리스 젤 시스템, 종래 램리 시스템에 대한 대안은, 저렴한 단백질 분리 및 해상도가 발생하는 단백질의 무결성을 유지하고, 35 분의 실행 시간에 전기 영동을 감소시킨다. 또한, 건조 iBlot 블롯 시스템이 극적 종종 긴 전송 시간에 더 비효율적 전통적인 단백질 전송 방법 대조적이다 7 분에서 멤브레인 단백질 전달의 효율 및 속도를 개선한다. 이 매우 혁신적인 수정, 단백질 D와 함께금 속 탐, 고품질의 적외선 형광 이미징 결과를 사용하여보다 정확하고 화학 발광의 표준 웨스턴 블로 팅 기술에 비해 데이터의 일관성. 이 기술은 동시에 다른 형광 채널에서 시각화 두 색 근적외선 염료를 이용하여, 동일한 막에 두 가지 항원을 검출 할 수있다. 또한, 형광 촬상의 선형성과 넓은 다이내믹 레인지가 강하고 약한 모두 단백질 밴드의 정확한 정량을 허용한다. 따라서,이 프로토콜은 크게이 실험의 연주 시간을 줄이면서 이러한 진보는 현저 데이터의 품질을 높일 수있는 고전 웨스턴 블랏 방법을 개선 키를 설명한다.

두 컬러 적외선 형광 향상된 감도 및 클리어 웨스턴 블롯 이미지를 생성하기 위해 가장 높은 신호 - 대 - 잡음비와 같은 막에 강하고 약한 두 대역을 검출한다. 700 nm의 800 nm의 형광 채널 모두에서 시각화 두 가지 색상 웨스턴 블롯 검출에 의해 생성 된 전형적인 결과는 그림 1과 2에 예시되어있다. 그림 1의 최상위 웨스턴 블롯은 인간에서 해물의 두 가지 직렬 희석의 700 nm의 채널 (적색)의 800 nm의 채널 (녹색) 및 β-액틴 총 ERK1 / 2의 동시 (오버레이) 감지를 보여줍니다 흑색 종 세포주, WM793을 유도. 또,이 막도 동일 블롯에 피검 이상이 항체를 허용하기 위해 목적 단백질 표적 분자량에 근거 섹션으로 절단되었다. 예를 들어, 그림 1에서 분석 막 하부 포트를 조사하기 위해 반으로 잘라되었다총 ERK1 / 2와 β-액틴 모두의 검출을 추론하지 않고 세 번째 항체, 총 BIM (700 nm의 채널 빨간...

이 프로토콜은 웨스턴 블롯 분석을 수행의 최신 발전을 탐구한다. 이러한 신규 한 변형은 35 분간 전기 영동 실행 시간, 12 분 건조 블로 팅 전송 시스템, 및 고해상도, 고품질, 감도 및 서부 데이터의 개선 된 정확성을 생성하는 적외선 형광 단백질 감지 및 이미징 비스 - 트리스 겔 시스템을 이용한다.

The Western blot techniques that were originally established in the late 1970s are still actively utilized today. However, this traditional method of ...

이 절차의 전반적인 목표는 기존의 웨스턴 블로팅 기술을 개선하여 웨스턴 데이터의 해상도, 품질, 민감도 및 정확도를 높이는 주요 개선 사항을 확인하는 것입니다. 우선, 단백질의 무결성을 유지하면서 단백질 환원 및 알킬화에 최적의 조건을 제공하기 위해 리튬 ESAL 황산염이 포함된 버퍼로 시료를 준비함으로써 이를 달성합니다. 두 번째 단계는 35분 만에 전기영동을 완료하는 BIS tris 겔 시스템을 사용하여 단백질을 분리하는 것입니다.다음으로, eye blot 건식 블로팅 시스템을 사용하여 7분 만에 단백질을 막으로 전이시킵니다. 마지막 단계는 적외선 형광 이미징을 사용하여 단백질을 검출하는 것이며, 이는 두 개의 서로 다른 형광 채널의 근적외선 염료를 활용하여 동일한 막 상의 두 가지 서로 다른 항원을 동시에 시각화합니다. 결과적으로, 전통적인 웨스턴 블로팅 방법의 이러한 새로운 개선 사항들은 분석 시간을 크게 단축하는 동시에 더욱 정확한 정성적 및 정량적 데이터를 제공합니다.기존의 웨스턴 블로팅 방법과 비교했을 때 이 기술의 주요 장점은 웨스턴 데이터의 효율성, 일관성 및 민감도가 향상되어 동일한 막에서 여러 표적 단백질을 정확하게 정량화할 수 있으며, 동시에 이 기술을 수행하는 실험 시간을 크게 단축할 수 있다는 점입니다. 우선 15 mL 원추형 튜브와 거의 합쳐진(near confluent) 10 cm 정사각형 세포 배양 접시를 얼음에 둡니다. 그런 다음 세포 스크레이퍼를 사용하여 각 접시에 5 mM EDTA가 포함된 차가운 PBS 5 mL를 넣습니다.디쉬에서 부착 세포를 제거하고 세포 현탁액을 미리 냉각시킨 15 milliliter 원심 분리 튜브 중 하나로 옮깁니다. 다음으로, 230 GS의 저속 원심분리를 이용하여 4°C에서 5분 동안 세포 현탁액을 침전시킵니다. 완료 후, 원심 분리 튜브를 얼음 위에 두고 세포 펠릿이 흐트러지지 않도록 주의하며 상층액을 흡입하여 제거합니다.5 mM EDTA가 포함된 냉각된 PBS 1 mL로 펠릿을 세척하고, 세포 현탁액을 차가운 1.5 mL 원심분리 튜브로 옮깁니다. 그다음 현탁액을 약 13,000 Gs에서 10초 동안 원심분리하여 세포를 펠릿화합니다. 원심분리 후, 펠릿이 흐트러지지 않도록 상층액을 조심스럽게 제거하고 튜브를 얼음 위에 둡니다.다음으로, 2배 최종 농도의 신선한 protease 및 phosphate 억제제를 Ripa Buffer에 첨가합니다. 그

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Research

연구

JoVE Journal

Biology

생물학

이 기술 문서는 Invitrogen에서 상용 NuPAGE 전기 영동 미니 젤 시스템을 사용하여 표준 서양 모래 바닥 절차를 설명합니다.

웨스턴 Invitrogen NuPage Novex BIS 트리스 MiniGels를 사용하여 모래 바닥

모래 바닥 웨스턴 조직 homogenate 또는 추출 주어진 샘플에서 특정 단백질을 감지하는 데 사용되는 분석 기술입니다.

웨스턴 모래 바닥 : 샘플 준비를 탐지하기 위해

이 비디오는 면역침전된 용해물의 화학발광 기반 서부 블로팅에 대해 설명합니다. 이 기술은 단백질 처리 및 활성화를 결정하는 데 도움이 됩니다. 감지된 화학발광 신호는 활성화 중 단백질 처리 수준에 비례합니다.

단백질 가공을 위한 화학발광 웨스턴 블롯 분석

V3 워크플로우는 얼룩이 없는 젤을 사용한 웨스턴 블롯 시술입니다. 얼룩없는 기술은 연구원이 단백질 분리 품질을 시각화하고, 전달 효율을 검증하며, 가장 중요한 것은 신뢰할 수있는 적단백질 정량화를 사용하여 관심있는 단백질의 변화를 검증 할 수 있게합니다.

서부 블로팅에서 실용적이고 편리하며 신뢰할 수 있는 토탈 단백질 로딩 제어를 위한 V3 얼룩 없는 워크플로우

형광을 이용한 웨스턴 블로팅(western blotting)의 발전으로 단백질 발현의 미묘한 변화를 감지할 수 있게 되어 정량 분석이 가능해졌습니다. 여기에서는 다양한 종과 조직 유형에 걸쳐 다양한 단백질을 검출하기 위한 강력한 방법론에 대해 설명합니다. 일반적인 기술 문제를 극복하기 위한 전략도 제공됩니다.

문제 해결 전략 현대 양적 형광 웨스턴 블로 팅에 가이드

이 방법은 단백질 레벨과 다른 조직에서 표준화 된 양적 서쪽 더 럽 히 접근을 사용 하 여 다른 발달 timepoints에서의 비교에 대 한 강력 하 고 재현 가능한 방식을 설명 합니다.

단백질 수준 및 개발 표준화 양적 부 럽을 사용 하 여 전체 조직에 걸쳐 강력한 비교

초고속 서양 블로팅 기술은 면역 반응 강화 제와 함께 순환 배수 및 보충 (CDR) 기술을 통해 결합하는 항원 항체의 운동성을 개선하여 개발됩니다.

면역 반응 강화 기술을 이용한 초고속 웨스턴 블롯

상기 프로토콜은 해부된 마우스 배아 안면 과정 또는 배양된 마우스 배아 구개 중간엽 세포로부터 전체 세포 단백질 용해물을 단리하고 인산화된 단백질 수준을 평가하기 위해 후속 웨스턴 블롯팅을 수행하는 방법을 제시한다.

마우스 안면 과정으로부터 전체 세포 단백질 용해물을 분리하고 포스포단백질 분석을 위해 배양된 팔라탈 중간엽 세포

이 동영상은 수술 endolymphatic hydrops의 생산 실험용 돼지의 endolymphatic 덕트를 방해하는 방법을 보여줍니다.

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세포의 인구의 세포주기의 위치를​​ 결정, 또는 신호가 증식에 미치는 영향에 대해 이해하고, 쉽게이 프로토콜을 사용하여 유동세포계측법에 의해 측정할 수 있습니다. 우리는 세포를 얼룩 및 세포주기 자신의 지위를 quantifying하는 간단한 실험 방법을보고합니다.

포유 동물 세포의 세포주기의 위치 분석

배우세요 개선된 웨스턴 블롯 기법으로 단백질 분석의 해상도와 민감도를 높이는 방법을. Bis-Tris 겔 시스템과 적외선 형광 이미징을 활용하여 더 정확한 정성·정량 데이터를 빠르게 얻을 수 있습니다.

타운 웨스턴 가장 빠른 : 클래식 웨스턴 블롯 분석에 현대 트위스트

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