Name: 미세 구조의 분석을위한 효모 엔도 좀의 시스템 Nanogold 라벨링 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-07-14T15:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 49 s
Description: 배우세요 효모 Saccharomyces cerevisiae의 엔도좀 구획을 나노골드 라벨링으로 초미세 구조에서 가시화하는 방법을. 이 기법은 항체 의존 방식의 한계를 극복하여 세포 내 소포체 연구에 활용됩니다.

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저자는 그림의 준비와 지원 르네 Scriwanek 감사합니다. FR은 ALW 오픈 프로그램 (821.02.017 및 822.02.014), DFG-NWO 협력 (DN82-303) 및 ZonMW VICI (016.130.606) 보조금, ECHO (700.59.003)에 의해 지원된다.

1. 스페 준비 <ol><li> 실험의 디자인에 의해 결정되는 해당 매체의 10ml에 30 ° C에서 하룻밤 효모를 배양한다. </li><li> 하루 후, 광도계를 사용하여 600 nm의 (OD 600)에서 문화의 광학 밀도를 측정 OD 0.2 ~ 0.4의 600에 동일한 배지에서 세포를 희석의 디자인하지 않는 기하 급수적 인 성장 단계로 성장 실험은 다른 조건이 필요합니다. 문화 OD 1 ~ 600이 때 세포는 지수 상에 있습니다. </li><li> 50 ML 튜브에서 5 분 3,500 XG에서 원심 분리하여 세포의 10 OD 600 등가물을 수집합니다. 원심 분리 후, 상층 액을 버린다. </li><li> 100 ㎜ 파이프 (산도 9.6) 5 ㎖, 10 mM의 디티 오 트레이 톨, 1​​0 분 동안 30 ° C에서 배양에서 세포 펠렛을 Resuspend. </li><li> 5 분 3,500 XG에서 원심 분리하여 다시 세포를 수집합니다. 상층 액을 버린다. </li><li> 세포를 재현 탁 전n은 1 M 소르비톨 및 세포 용해 효소의 5 ㎎을 함유 (실험의 디자인에 의해 결정), 부드러운 30 분 동안 진탕 30 ° C의 혼합물을 배양 배지 5 ㎖. </li><li> spheroplasts에 해당 펠릿 분획을 수집하기 위하여 5 분 동안 300 XG에서 세포 현탁액을 원심 분리기. 상층 액을 버린다. </li><li> 얼음 냉 매체의 960 μL에 spheroplasts을 재현 탁 1 M 소르비톨을 포함 (매체 실험의 디자인에 의해 결정) 및 얼음 냉 2 ㎖ microcentrifuge 관에 혼합물을 전송합니다. </li></ol> 2. Nanogold 통풍 관 <ol><li> 피펫을 사용하여 부드럽게 물 40 μL에 재현 탁 적극적으로 청구 nanogold 입자의 4 nmol의와 스페 혼합. 혼합물의 최종 부피는 1 ㎖의 수 있습니다. </li><li> 15 분 동안 얼음에 얻은 세포 현탁액을 놓습니다. </li><li> 실온에서 현탁액을 전송하고 E로 nanogold 내재화를 허용하는 데 필요한 시간을 부화ndocytosis. 참고 : 15 분 흡수가 (초기와 후기 엔도 좀) 전체 엔도 좀 시스템을 표시 할 수 있도록 할 것이다 동안 5 분의 흡수는 주로, 세포 내 이입 소포 초기 엔도 솜 구획의 표시로 이어질 것입니다. 긴 배양 시간 (30 분)도 공포에 라벨을 허용합니다. 참고 : 펄스 추적 라벨 실험이 방법을 수행 할 수 없습니다. LE의 분석을 위해 라벨을 때 따라서, nanogold는 PM 및 inEE에서 찾을 수 있습니다. </li></ol> 3. 고정 및 단면 <ol><li> 강도 2 배 정착액 1 ㎖를 추가하여 nanogold 흡수를 정지 [4 % 파라 포름 알데히드 (PFA), 0.1 M PHEM 버퍼에 0.4 % 글루 타르 알데히드 (GA) (20 mM의 파이프, 50 mM의 HEPES, 산도 6.9, 20 MM의 EGTA, 4 mM의 MgCl2를 2)] 세포 현탁액에 1 M 소르비톨을 함유. 실온에서 튜브를 유지했다. </li><li> 부드럽게 (이것은에 spheroplasts을 유지하기 위해 허용합니다 30 분 동안 micocentrifuge 튜브 수동으로 여러 번 반전정지) 한 후 25 초 동안 1,700 XG에서 두 번 원심 분리. </li><li> 상층 액을 버리고 신선한 표준 강도의 정착액 1 ㎖ (2 % PFA, 0.1 M PHEM 버퍼에 0.2 % GA) 1 M 소르비톨을 포함하고 천천히 회전하는 바퀴에 실온에서 2 시간 동안 배양을 추가하여 정착을 교체합니다. </li><li> 이전 6 설명한 바와 같이 극저온 절편의 세포를 처리합니다. 참고 : nanogold 흡수 및 실버 향상 절차는 지정된 프로토콜에 설명 된 요오드 산 처리를 수행 할 수 없습니다. 요오드 산 처리는 더 나은 셀 벽 (26)을 투과하도록하지만,이 구조는 spheroplasts의 생성 중에 제거되었다. </li><li> 이전 8 설명한 바와 같이 UCT 인해 Ultramicrotome를 사용하여 건조 다이아몬드 나이프와 -120 ° C에서 50 nm의 얇은 저온부 컷 (50) 니켈 그리드 메쉬 코팅 Formvar 탄소에 배치. </li></ol> Nanogold 입자 기기, 비즈니스를위한 4.은 향상lization 주 : 반응 혼합물을 준비하는 절차는 기본적으로 제조업체가 표시 한 것입니다. 이 프로토콜을 이용하여 실용적인 적응는, 저온부에 실버 개선 절차는 효율적이고 신뢰할 수있다. <ol><li> 냉동실에서 실버 향상 키트를 제거하고 37 ° C의 배양기 또는 물을 욕조에 녹여. 해동 할 때 (4.7 참조​​) 사용할 때까지 어두운 방에 배치 된 24 ° C 배양기에서 장비를 배치합니다. </li><li> 어두운 방에 난방 격판 덮개를 놓고 24 ° C의 최종 온도로 따뜻하게 </li><li> 표면 보호, 광택면을 위로하고, 테이프로 고정으로 가열 플레이트의 상단을 커버. </li><li> Benchkote에 파라 필름을 놓고 어둠 속에서 파라 필름의 에지를 볼 수있는 검은 색 마커 가장자리를 표시합니다. </li><li> 가열 플레이트의 온도를 모니터링하기 위해 Benchkote의 상단에 온도계하는 테이프. 점차적으로 온도를 조정하지 않을 경우 24 ° C. </li><li> 괞 찮아증류수 안쪽은 강화 키트 50 ㎖ 튜브 CE. </li><li> 증류수와 작은 페트리 접시를 기입, 37 ℃에서 미리 예열 물에 그리드를 놓고 30 분 동안, 아래면을 표본. </li><li> 이 4.7 단계를 한 번 더 반복합니다. </li><li> 저장 상자에 격자를 전송하고 어두운 방에 가져. </li><li> 가열 플레이트에 고정 된 파라 필름에 배치 24 ° C에서 증류수 몇 방울에 (아래 시편면)을 전달하여 다시 그리드를 씻어. </li><li> 9 추가 증류수 방울은 강화 반응 후 헹굼, 파라 필름에 대한 준비가되어 있는지 확인합니다. </li><li> 빛을 끄고 모든 표시등이 꺼져 있는지 확인하십시오. 붉은 빛을 켭니다. </li><li> 24 ° C 배양기에서 실버 향상 키트의 A와 B 해결책을보십시오. </li><li> 먼저 솔루션의 6 방울 및 1.5 m의 B 솔루션의 다음 6 방울을 넣어L의 microcentrifuge 관, 거품을 만들 피하는 유리 파스퇴르 피펫으로 잘 섞는다. 용액은 매우 두껍고 수동 최종적 짧게 텍싱 전에 피펫과 혼합되어야한다. </li><li> 다시 24 ° C 배양기에서 A와 B 솔루션을 넣고 C 솔루션을 가지고. </li><li> A / B 믹스 C 용액 6 방울을 추가합니다. 그런 다음 파스퇴르 피펫 우선 다시 혼합 한 후 소용돌이로 교반하여 거품을 만드는 것을 피하십시오. </li><li> 파라 필름에 (~ 20 μL / 드롭) 방울을 배치하여 즉시 최종 혼합물을 사용합니다. </li><li> 깨끗하고, 항 자성 족집게로 얻을 수 싶다고 향상 (금 입자의 예. 크기)의 따라 6 - 15 분 동안 혼합물 (예.,은 강화 반응)에 그리드를 배치합니다. </li><li> 혼합물에서 그리드를 제거하고 세척을 위해 24 ° C에서 삭제 증류수의 상단에이를 전달합니다. 첫째, 빠른 속도로 연속 6 방울의 사용 후 드롭 당 7 분의 배양 시간과 3 방울, 조명을 켜기 전에. </li><li> 다음 단계, EM 조사에 대한 결과를 시각화하기 위해 면역 골드 라벨 또는 막 염색 27도 진행합니다. </li></ol>

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</ol>

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면역 전자 현미경은이 단백질이있는 사업자와 세포 소기관의 미세 해상도와 단백질의 현지화를 결합 할 수있는 기술이다. 그 구획은 형광 현미경에서와 구두점 구조를 표시하므로 효모 엔도 솜 시스템을 연구 할 때 특히 중요하다. 그것은 그것들을 구별하는 것이 곤란하다. 이러한 이유로 EM에 의해 검출 및 시간 의존적으로 세포 내 이입 경로를 입력하는 것은 매우 중요하다 프로브의 사용은 특별히 다른 엔도 좀을 표시한다. 이러한 유형의 프로브는 엔도 시토 시스 (6)의 기능을 평가하기 위해 귀중한이며 항혈청 검출 단백질 마커의 부족에 대한 대안이다. 여기에 설명 된 절차를 적극적으로 엔도 좀 구획 레이블을하는 프로브로 nanogold 청구 악용. 저온 절편 제작이 특수 장비와 기술을 필요로하지만, 제시된 프로토콜은 기술적으로 간단하고 다시 사용하지 않습니다특수 기계를 첩. 따라서 그것의 연구에 사용하고자하는 모든 실험실에 액세스 할 수 있습니다. 그러나, 몇 가지주의...

엔도 솜 시스템 1,2 수용체 리소좀 효소 선별 수용체의 매매와 원형질막 (PM)의 리사이클을 포함한 여러 중요한 역할을 담당하고 세포의 주요 막 선별 장치이다. 엔도 좀은 세 가지 구획, 즉 나누어집니다. 초기 엔도 좀 (EE), 후반 엔도 좀 (LE)와 재활용 엔도 좀. 이 분류는 그것이 특정 마커 단백질에 자신의 형태에, 그들에 도달하는 endocytosed 소재에 소요되는 시간을 기준으로합니다. PM에서 내면화 막, 즉 단백질과 지질 이중층은, 어느 저하에 엔도 좀을 통해 리소좀에 전달 될 ​​수 또는 재순환 될 수있다. 멤브레인은 리소좀에 계속하거나 다시 골지로 검색 할 수도 마찬가지로 골지체에서 엔도 좀으로 이송하고있다. 또한, 단백질은 경계 막 엔도 솜의 형성에 이르게하는 과정에서 내측 신진 내강 소체로 분류 될 수있다LE의 하위 범주, multivesicular 기관. 효모 엔도 솜 시스템은 비교적 덜 복잡한 높은 진핵 세포 중 하나 이상이다. 효모 엔도 좀은 EE와 LE로 구분됩니다. 그들이 리사이클 엔도 솜 또한 조직 특이 리소좀 - 관련 세포 기관을 포함하지 않는 포유 동물 세포 대조적. 결과적으로 그들은 엔도 좀 인신 매매 경로 3,4의 덜 복잡한 네트워크를 가지고. 따라서 효모 표현 여전히 엔도 좀 시스템에서의 기본 원칙 막 트래픽의 일부를 연구하는 유리한 실험 시스템을 나타내고있다. 이러한 장점은 엔도 좀의 경로에 관련된 다수의 유전자가 처음 효모 5 유전자 화면으로 고립되어 있다는 사실을 강조했다. 야생형 및 돌연변이 세포에서 효모 엔도 솜 시스템이 광범위 생화학 및 형광 현미경을 이용하여 접근 연구되어 있지만, 미세 구조 레벨에서 그 조사는왔다최소. 엔도 좀의 세포 기관의 대부분이 자신의 명백한 식별 6 어렵게 형광 현미경에 의해 구두점 구조로 감지하기 때문에 형태 학적 분석은 효모에 특히 적합하다. 불행하게도 효모 엔도 좀의 단백질 마커를 인식 항혈청의 단지 제한된 수의 (IEM) 준비 7-10 면역 전자 현미경에서 일하고있다. 일부 단백질의 경우,이 문제는 또한 유전자의 내생 태깅하고 7,11,12를 검출하는 태그를 인식하는 항체의 사용에 의해 회피되었다. 그러나, 종종 단백질 때문에 자신의 낮은 발현 수준의 IEM으로는 발견 할 수없는 경우가 있습니다. 이 방법은 세포 내 소기관의 형태 / 기능에 잘못를 지역화 및 / 또는 변경을 유도 할 수 있기 때문에 자신의 과발현은 해결책이 아니다. 따라서 전자 현미경 EM에 의해 검출 프로브 세포 내 이입 구획의 라벨은 효과적인 옵션입니다. 특히 경우에 최적의 솔루션을 홍보탑재 장치는 특정 소기관 6을 표시 할 때 알 수 시간 의존적으로 세포 내 이입 경로를 입력한다. 효모 spheroplasts (세포벽이 효소 제거 된 예. 효모)에 의해 적극적으로 청구 nanogold의 이해 성공적으로 효모 엔도 솜 (10)을 구획 식별하는 데 사용되었습니다. 이 입자들은 강하게 생체막을 구성하는 음으로 하전 된 지질에 결합. 따라서 PM과 함께 적극적으로 청구 nanogold 관계자는 엔도 시토 시스에 의해 세포를 관통하고 공포에 도달하기 전에 EE와 LE를 통해 전달합니다. 이러한 작은 금 입자는, 그러나, EM으로 보이는 적절한 크기를 갖고 있지. 그들이 볼 수 렌더링하려면, 그 크기는 금 프로브 13-15 주위에은이나 금의 퇴적으로 이어질 화학 반응에 의해 확대 될 수있다. 우리가 개발하고 성공적 아세포 수행 Tokuyasu 방법에 근거 IEM 방식을 적용한현지화는 8,16 연구. 이 방법은 형태 8,17-24의 우수한 해상도와 효모 준비에 immunogold 라벨을 수행 할 수 있습니다. 우리는 또한 6 구획은 효모 엔도 좀 시스템의 nanogold 라벨에이 IEM 프로토콜을 결합하는 과정을 설립했다. 우리는 형태 학적 결함 6,25 엔도 좀의 인신 매매와 돌연변이를 엔도 좀의 다른 서브 클래스를 특징으로하고 ultrastructurally 검사 한이 방법을 사용. 또한, 우리는이 nanogold 라벨이 immunogold labelings가 다른 엔도 좀의 모집단에 대한 관심의 단백질의 분포를 탐구 할 수있는 가능성을 제공하는 결합 될 수 있다는 것을 증명하고있다. 여기에 우리가 적극적으로 청구 nanogold와 효모 엔도 좀 시스템의 라벨을 실질적으로 수행하는 방법을 제시한다.

<table><tbody><tr><td>파이프 (piperazin-1,4-bis (2-ethansulfensaure)</td><td>Merck, Darmstadt, Germany</td><td>1,102,200,250</td><td></td></tr><tr><td>HEPES</td><td>Merck, Darmstadt,</td><td>Germany 391,340</td><td></td></tr><tr><td>EGTA</td><td>Sigma, St louis, MO</td><td>E4378</td><td></td></tr><tr><td>MgCl2&middot; 6H2O</td><td>Merck, 다름슈타트, 독일</td><td>1,058,330,250</td><td></td></tr><tr><td>DL-Dithiothreitol</td><td>Sigma, St louis, MO</td><td>D0632</td><td></td></tr><tr><td>Sorbitol</td><td>Sigma, St louis, MO</td><td>S1876</td><td></td></tr><tr><td>양전하를 띤 나노골드</td><td>나노프로브, Yaphank, NY</td><td>2022</td><td>-20 &deg; C</td></tr><tr><td>HQ-silver&trade; 향상 키트</td><td>Nanoprobes, Yaphank, NY</td><td>2012</td><td>-20 &deg; C</td></tr><tr><td>파라포름알데히드(PFA)</td><td>Sigma, St louis, MO</td><td>441244</td><td></td></tr><tr><td>글루타르알데히드 8% EM 등급</td><td>Polyscience, Inc., Warrington, PA</td><td>216</td><td>-20 &deg에 저장; C</td></tr><tr><td>용해 효소</td><td>MP Biomedicals, Santa Ana, CA</td><td>153526</td><td>-20 &deg에 저장; C</td></tr><tr><td>Parafilm M</td><td>Sigma, St louis, MO</td><td>P7793</td><td></td></tr><tr><td>50 메시 니켈 그리드&nbsp;</td><td>Agar Scientific, Stansted, 영국</td><td>G209N</td><td></td></tr><tr><td>극저온 면역 다이아몬드 나이프 35&deg;</td><td>Diatome AG, 스위스 비엘</td><td>N.A.</td><td></td></tr><tr><td>UCT 초박절편&nbsp;</td><td>라이카, Solms, 독일</td><td>N.A.</td><td></td></tr><tr><td>Formvar 15/95 resine</td><td>전자 현미경 과학, Hatfield, PA</td><td>15800</td><td></td></tr><tr><td>50 메시 니켈 그리드&nbsp;</td><td>Agar Scientific, Stansted, 영국</td><td>AGG2050N</td><td></td></tr><tr><td>Parafilm</td><td>Sigma, St louis, MO</td><td>P7793</td><td></td></tr><tr><td>그리드 보관함</td><td>Leica, Solms, Germany</td><td>162-50</td><td></td></tr><tr><td>Falcon 100 mm x 15 mm Petri dish</td><td>Corning, Corning, NY</td><td>351029</td><td></td></tr><tr><td>Pasteur capillary pipettes 150 mm</td><td>Van Bruggen Glas, Rotterdam, The Netherlands</td><td>10216234</td><td></td></tr><tr><td>1.5 ml 마이크로 원심분리기&nbsp;</td><td>사르스테트, N&uuml; mbrecht, 독일</td><td>72690001</td><td></td></tr><tr><td>50 ml 튜브</td><td>Bio-one, Alphen aan den Rijn, 네덜란드</td><td>210296</td><td></td></tr><tr><td>Benchkote 표면 보호기</td><td>Whatman, Maidstone, 영국&nbsp;</td><td></td><td></td>1159201</tr></tbody></table>

미세 구조의 분석을위한 효모 엔도 좀의 시스템 nanogold 라벨링

Nanogold Labeling of the Yeast Endosomal System for Ultrastructural Analyses

엔도 좀은 진핵 세포의 체크 포인트를 정렬 주요 막 중 하나이며 그들은 대부분 플라즈마 막과 골지체에서 단백질의 재활용 또는 파괴를 조절한다. 결과 엔도 솜 시스템은 세포의 항상성 유지에 중요한 역할을 담당하고, 소낭 수송에 의해 상호의 소기관이 네트워크에 속하는 유전자의 돌연변이, 암 및 신경 생물학적 장애 등 심각한 병변을 일으킨다. 이는 엔도 솜 시스템의 생합성 및 조직을 기본 메커니즘을 이해하는 것이 프라임 관련성이다. 효모 사카로 마이 세스 세레 비시 애의이 작업에 중요한되었습니다. 특히 라벨과 미세 수준에서이 모델 생물의 엔도 좀의 시스템을 분석하기 위해, 우리는 여기에 실버 향상 반응을 통해 이러한 입자의 시각화 다음 spheroplasts에 의해 적극적으로 청구 nanogold 흡수에 대한 자세한 프로토콜을 제시한다. 이 방법은 가치가 너무엔도 좀의 인신 매매에 결함이있는 돌연변이의 형태 학적 검사를위한 L. 또한, 그것은뿐만 아니라 미세 시험에 적용 할뿐만 아니라 단백질 현지화 수사 immunogold labelings와 결합 될 수있다.

제시된 프로토콜에 따라, 효모 엔도 좀 시스템의 형태가 전송 EM에 의해 액세스 할 수 있습니다. 그림 1에 도달하기 때문에 nanogold로 표지 된 엔도 좀 구획의 다른 유형을 보여줍니다. 은 강화 nanogold 명확 전자 고밀도 입자로 볼 수 있습니다. 실버 인핸스 반응 설정된 최적의 설정은 효모 세포의 미세 구조에 지장이없는 5 ~ 15 nm의 사이의 균일 크기 범위의 금 입자를 구비한다. 세포막뿐만 아니라, LE가 제시된 경우 multivesicular 몸에 흡수 적어도 30 분 (그림 후이 입자에 의해 도달하는 동안 초기 엔도 좀의 구획은 24 ° C에서 5 분간 배양 (그림 1A) 후 nanogold에 액세스 할 수 있습니다 1B). nanogold / 실버 향상 프로토콜과 함께 우리의 IEM 절차 8을 결합의 해상도 전력은 유엔 여기에 설명multivesicular 기관 ...

효모, 사카로 미세스 세 레비 시아는, 엔도 좀 시스템의 생합성과 기능을 조절하는 유전자를 확인하고 연구하는 중요한 모델 생물이다. 여기에서 우리는 초 미세 구조 연구를위한 엔도 좀 구획의 특정 표시에 대한 자세한 프로토콜을 제시한다.

미세 구조의 분석을위한 효모 엔도 좀의 시스템 Nanogold 라벨링

Endosomes are one of the major membrane sorting checkpoints in eukaryotic cells and they regulate recycling or destruction of proteins mostly from the ...

다음 실험의 전반적인 목적은 효모인 Saccharomyces cei의 엔도솜 구획을 초미세 구조 수준에서 시각화하는 것입니다. 이는 양전하를 띤 나노 금 입자의 엔도사이토시스 섭취가 일어나는 효모 스페로플라스트(Spheroplast)를 준비함으로써 달성됩니다. 두 번째 단계로, 샘플을 고정하고 절단하여 세포의 초박 절편 냉동 섹션을 얻습니다.다음으로, 냉동 절편을 은 증폭 반응에 처리합니다. 엔도사이토시스된 양전하 나노 금 입자를 확대하여 시각화함으로써, 본 절차의 특이적 표지를 바탕으로 서로 다른 효모 엔도솜 구획의 형태를 보여주는 결과를 얻습니다. 절편의 ImmunoGold 표지와 같은 기존 방법과 비교하여 이 기술의 주요 장점은, 전자현미경 표본 제작 시 제대로 작동하지 않는 경우가 많은 항체에 의존하지 않는다는 점입니다.이 방법은 효모 *Saccharomyces cerevisiae*의 리소좀 시스템에 대한 통찰을 제공할 수 있지만, 다른 효모 및 포유류 세포와 같은 다른 진핵생물 모델에도 적용 가능합니다. 구형 원형질체(Spheroplast)를 준비할 효모를 다음 날의 실험 설계에 따라 결정된 적절한 배지 10밀리리터에서 30도로 하룻밤 동안 배양합니다. 600나노미터에서 배양액의 광학 밀도를 측정한 후, 동일한 배양 배지를 사용하여 세포를 OD 600 기준 0.2에서 0.4가 되도록 희석합니다.OD 600이 1에서 2가 될 때까지 세포를 대수 성장기까지 배양한 후, OD 600 상당의 세포 10배 분량을 50밀리리터 튜브에 옮기고 2100 Gs에서 5분 동안 원심분리합니다. 원심분리 후 상층액을 제거하고 세포 펠렛을 100 millimolar PBS 및 10 millimolar DTT 5밀리리터에 재현탁하여 30 °C에서 10분 동안 배양합니다. 원심분리를 통해 세포를 회수합니다.상층액을 버린 후, 1 M sorbitol과 5 mg의 lytic enzyme이 포함된 배지 5 mL에 세포를 현탁합니다. 혼합물을 30 °C에서 부드럽게 흔들어주며 30분 동안 배양합니다. 세포 현탁액을 300 Gs에서 5분 동안 원심분리하여 Sphero plats에 해당하는 펠릿 분획을 수집합니다.상층액을 버리고 1 M sorbitol이 포함된 얼음처럼 차가운 배지 960 µL에 구상체(spheroplasts)를 재현탁합니다. 이 혼합물을 얼음처럼 차가운 2 mL 마이크로 원심분리 튜브로 옮깁니다. 나노 골드 흡수 절차를

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Research

연구

JoVE Journal

Biology

생물학

GFP - 퓨전 단백질은 널리 공촛점 현미경에 의해 organelles을 시각화하는 데 사용됩니다. 그러나, organelles의 형태에 영향을 변이에 대한 검사는 일반적으로 개별적인 돌연변이 유발이 필요하며 시간이 소요됩니다. 여기, 우리는 동시에 효모 거의 5000이 아닌 필수적인 유전자에 organelle - GFP 표식을 통합하는 방법을 보여줍니다.

세계 S. cerevisiae의에서 organelle 형태를 연구하기 위해 높은 처리량 방법

저하 및 재활용을위한 효모 공포의 산성 루멘에 organelles의 전달을 모니터링하는 강력한 방법이 설명되어 있습니다. 방법은 유전자 인코딩 듀얼 발광 형광 산도 - 바이오 센서 및 형광 현미경을 사용하여 개별 세포의 시각화와 대상 organelles의 특정 상표에 의존합니다.

효모에서 모니터링 Mitophagy을위한 형광 현미경 분석 Saccharomyces cerevisiae

이 문서에서는 합성 및 나노 입자의 형광 라벨 NPS ()하는 방법을 설명합니다. NPS는 진핵 세포의 엔도 - 리소좀 시스템에 레이블을 펄스 - 체이스 실험에 적용되었다. 세포 내 병원균 살모넬라 엔테의 활동에 의한 엔도 - 리소좀 시스템의 조작은 라이브 세포 이미징 및 정량화 따랐다.

형광 나노 입자의 응용 프로그램은 세포 내 세균에 의해 엔도 - 리소좀 시스템의 리모델링을 연구하기 위해

소포 수송 이벤트의 정확한 정량화는 종종 특정 단백질의 역할과 돌연변이의 영향에 대한 중요한 통찰력을 제공합니다. 본 논문은 정량적 형광 현미경 및 유세포 분석을 사용하여 살아있는 세포에서 세포내 이벤트를 정량화하기 위한 도구로 pH에 민감한 GFP 변이체인 초황도 pHluorin을 사용하는 방법을 제시합니다.

신진 효모의 세포 내 이입의 양적, 운동 및 높은 처리량 분석을위한 pHluorin의 응용 프로그램

이 논문은 투과형 전자 현미경으로 현탁 세포를 시각화하기위한 사용하기 쉽고 저렴한 cryofixation 방법을 설명한다.

플 런지 프리즈 : 투과 전자 현미경에서 서스펜션 세포의 초 구조 및 면역 로컬 ​​라이 제이션 연구를위한 도구

이 프로토콜은 다중 색상 4D (타임 랩스 3D) 공초점 현미경을 사용하여 신진 효모에서 형광 표지 된 세포 내 구획의 분석을 설명합니다. 이미징 매개 변수는 광손상을 제한하면서 적절한 신호를 캡처하도록 선택됩니다. 사용자 정의 ImageJ 플러그인은 레이블이 지정된 구조를 추적하고 정량적으로 분석할 수 있도록 합니다.

효모의 4D 현미경 검사법

여기에서, 우리는 연구원이 유사분열과 만두증 도중 살아있는 핵분열 효모 세포에 있는 단백질 행동 그리고 핵 역학을 공부하는 것을 허용하는 비 독성 현미경 검사법인 살아있는 세포 화상 진찰을 제시합니다.

형광 라이브 세포 현미경 검사법에 의한 미토틱 및 Meiotic 핵분열 효모 핵 역학의 검사

베이커의 효모 미토콘드리아 게놈은 8개의 폴리펩티드를 인코딩합니다. 현재 프로토콜의 목표는 모든 프로토콜에 레이블을 지정한 다음 별도의 대역으로 시각화하는 것입니다.

베이커효모사카로미세스 세레비시아에 미토콘드리아 게놈 발현 제품의 라벨링 및 시각화

이 프로토콜은 구조적으로 보존된 크로마틴에서 복제 부위의 고해상도 매핑을 위한 기술을 제시하며 , 이 기술은 사전 임베딩 EdU-스트렙타비딘-나노골드 라벨링과 ChromEMT의 조합을 사용합니다.

전자 단층 촬영에 의한 초구조적으로 보존 된 크로마틴의 복제 도메인 이미징

본 프로토콜은 새로운 자가핵형성 억제 메커니즘 기반 금 나노입자 합성 기술을 사용하여 세포에서 메탈로티오네인 태그가 부착된 단백질을 검출하기 위한 클로너블 전자 현미경 표지 기술을 설명합니다.

잘 보존된 미세 구조를 가진 단백질 국소화 분석을 위한 세포에서 EM-Visible Gold Nanoparticles의 직접 합성

배우세요 효모 Saccharomyces cerevisiae의 엔도좀 구획을 나노골드 라벨링으로 초미세 구조에서 가시화하는 방법을. 이 기법은 항체 의존 방식의 한계를 극복하여 세포 내 소포체 연구에 활용됩니다.

미세 구조의 분석을위한 효모 엔도 좀의 시스템 Nanogold 라벨링

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