Name: 사용 축삭화물을 이동하는 분자 모터의 구성을 특성화 화물 매핑분석 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-10-30T13:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 9 s
Description: 학습하세요 분자 모터 단백질이 화물 운반 방향성과 어떻게 연관되는지 밝히는 화물 매핑 분석법을. 마우스 해마 뉴런과 형광 현미경 기술을 활용하여 세포 내 수송 메커니즘을 정밀하게 규명합니다.

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화물 매핑 분석을 정량화하기 위한 소프트웨어의 적응 및 개발에 도움을 준 Ge Yang, Gaudenz Danuser, Khuloud Jaqaman 및 Daniel Whisler와 미세유체 장치 제작에 도움을 준 Emily Niederst에게 감사드립니다. 이 작업은 L.S.B.G.에 대한 NIH-NIA 보조금 AG032180와 Howard Hughes Medical Institute의 일부 지원을 받았습니다. L.S.는 NIH Bioinformatics Training Grant T32 GM008806, S.E.E.는 Damon Runyon Cancer Research Foundation Fellowship, NIH Neuroplasticity Training Grant AG000216, Ellison Medical Foundation New Scholar in Aging Award의 보조금으로 G.E.C는 NIH/NCATS 1 TL1 상 TR001114 및 Achievement Rewards for College Scientists 재단의 지원을 받았습니다.

모든 실험은 승인 된 프로토콜을 다음과 연구 동물의 인도적인 관리를위한 제도적 지침에 따라 수행되었다. 신생아 마우스는 잘린 안락사되었다. 세포 배양을위한 미세 유체 장치 1. 준비 <ol><li> 해리스와 동료 17 ~ 19에 의해 설명 된 해마 신경 세포의 성장을 위해 폴리 디메틸 실록산 (PDMS) 마이크로 유체 장치를 준비합니다. 이하화물 매핑 프로토콜에 적응 된 몇 가지 변형이있다. 참고 : 미세 유체 디바이스는 (자료 목록) 상업적으로 사용할 수 있으며, 제조 설비에 따라서 액세스가 필요하지 않습니다. </li><li> 그들에게 100 % 에탄올로 세 세척과 물 세 세척 한 다음, 아세톤으로 3 회를 세척하여 제 1.5 커버 유리 (24 × 40 mm)를 준비합니다. 사용할 때까지 4 ° C에서 물에 보관 된 커버. 이 치료 된 커버가 CEL의 도금 방해 할 수 파편 깨끗한 지 보장LS, 오염, 생존. 참고 : 아세톤과 에탄올은 흡입, 섭취의, 가연성 및 눈 접촉의 (자극물)의 피부 접촉 (자극물), 다음 경우 유해 있습니다. 규정에 따라 폐기 할 것. </li><li> 때 사용하는 미세 유체 디바이스 당 60mm 세포 배양 접시에 한 커버 유리를 배치하고, 건조 공기 오염을 방지하기 위해 생물 안전 캐비닛 내부에 45 분 동안 발견 할 준비가. </li><li> 장치가 마스터에서 잘라 펀치가 저수지 만들기 위해 절단 한 후 (그림 1A를, B), 살균 45 분 동안 UV 램프가 장착 된 생물 안전 캐비닛 내부의 미세 유체 채널 사이드 업으로 배치합니다. 참고 : 이상 2 시간 동안 UV 처리에서 장치를 그대로두면 PDMS의 무결성에 영향을 줄 수 있습니다. </li><li> 미세 유체 채널이 아래를 향하도록 60mm 플라스틱 세포 배양 접시에 각각 내측 커버 글래스 상에 하나의 장치를 배치하여 디바이스를 조립한다. 상단 O에 약간 힘을 주어장치 F를 커버 유리로 장치의 비 영구적 인 밀봉을 제공하기 위해 (마이크로 닿지 않도록). 뚜껑이 각 60mm 세포 배양 접시를 커버. </li><li> 마이크로 피펫을 사용하여, 물이 흐를 수 있도록, 상위 두 마이크로 유체 저장조 (도 1A 1, 2)을 세포 배양 등급의 물을 첨가하여 수화 장치. 마이크로 피펫으로 물을 제거하고 미세 유체 저수지 1 (200 μL) 및 2 (100 μL)에 1 ㎎ / ㎖ 폴리 -L- 라이신을 추가합니다. 볼륨 차동 마이크로 채널 (도 1A, B)를 통과하는 폴리 L 리신을 허용한다. </li><li> 60mm 세포 배양 접시 내부 장치가 37 ° C의 배양기 안에 위에 넘어지지 않도록하기 위해, 150mm 플라스틱 세포 배양 접시에 디바이스를 포함하는 세 가지 60mm 세포 배양 접시를 배치하고 뚜껑 덮으. 5 % CO 2와 37 ° C 배양기에서 O / N을 품어. 일반적으로 채널의 90 % 이상은 디바이스 당 가능하고 수행기포 또는 물리적 방해물을 포함하지. </li><li> 다음 날, 물에 폴리 -L- 라이신를 교체하고 적어도 1 시간 동안 인큐베이터에서 장치를 둡니다. 이 세탁을 세 번 반복합니다. 물을 제거하고 각 장치 (2 %에게 B-27 보충 및 500 μM 루타를 포함)로 Neurobasal-A 성장 매체를 추가합니다. 5 % CO 2와 37 ° C 배양기에서 O / N을 남겨주세요. </li><li> 후술하는 바와 같이, 다음 날, 해마 세포를 플레이트. </li></ol> 미세 유체 장치에서 마우스 해마 차 뉴런 2. 도금 주 : 신생아 쥐에서 배양 된 해마 신경 세포의 준비는 이전에 조브 (25)에 발표되었다. 다음은 마이크로 유체 장치에서 판 마우스 해마 신경 세포에 적응 된 일부 수정이 있고, 그 형질에 대한 최적이었다. <ol><li> 마우스 뇌 절개 전에 미리 따뜻한 둘 베코 변형 이글 중간 (DMEM)를 함유하는 10 % 태아 소 혈청(FBS; 항생제없이), 혼합물 A (125 mg을 DL 시스테인 125 mg을 소 혈청 알부민 (BSA)와 인산염 완충 생리 식염수 (PBS) 500 ㎖ 중의 D 글루코오스 3.125 g, 필터 0.22 μm의 필터를 통해 살균) 37 ° C의 물을 욕조에 : 그리고 내가 솔루션 ((50)의 DNase I의 MG 100 mL로 행크의 균형 소금 솔루션 (HBSS) 필터에 1.2 M 황산 용액 0.5 ml의 0.22 μm의 필터를 통해 살균 내가 DNase의를) 데 옥시 리보 뉴 클레아. <ol><li> 5 % CO 2로 37 ° C의 배양기 안에 사전 따뜻한로 Neurobasal-A 성장 배지는 pH를 평형화. </li></ol></li><li> 설립 프로토콜 (26)에 따라 1-3 일 된 신생아 쥐에서 해마를 해부하다. 얼음 (10 mM의 HEPES pH 7.4의 50 mM의 포도당, 100 U / ㎖ 페니실린 및 / ml의 스트렙토 마이신 100 μg의를 포함 HBSS) 10 ml의 해부 버퍼를 포함하는 15 ML 원뿔 튜브에 해마를 유지합니다. 15 ML 원뿔 튜브 당 4 개의 해마에 넣었습니다. </li><li> 나머지 프로토콜을 수행하는 것은 멸균 상태에있는바이오 안전성 캐비닛 내부의. </li><li> 혼합물 A, 소용돌이 5ml에 파파인 45 단위를 희석하고, 파파인 분말이 용해 될 때까지 37 ° C에서 5 분 동안 배양한다. DNase의 I 솔루션 1 ML을 추가합니다. 0.22 μm의 주사기 필터 부를 통해 믹스 필터. </li><li> 15 ML 원뿔 튜브를 포함하는 해마에서 조심스럽게 기음 HBSS &#39;. 추가 10 ml의 감기 (4 ° C) HBSS 해마에 그들을 튜브의 바닥에 정착하자. 조심스럽게 15 ML 원뿔 튜브에서 HBSS를 대기음. </li><li> 나는 최대 4 개의 해마에 혼합하고 37 ℃에서 20 ~ 30 분 동안 품어 1 ml의 파파인 / DNase를 추가합니다. 원뿔 튜브를 혼합하여 해마 목욕을 할 때마다 5 분을 기울입니다. 또한 부드러운 흔들림 (~ 100 RPM)와 37 ° C의 물을 욕조 통에서 해마를 배치합니다. </li><li> 기음 파파인 / I 믹스와 10 % FBS를 포함하는 미리 예열 DMEM (37 ° C)와 해마 두 번 씻어 DNase의. </li><li> 두 번째 세척 후에,이 해마, 10 % FBS를 함유하는 미리 가온 된 DMEM ml의 피펫에 의해 수동으로 분쇄시켜, 해마를 추가최대 및 신경 세포를 떼어 놓다 1 ml를 피펫 팁을 사용하여 10 ~ 12 배 ~ 다운. </li><li> 이 비 해리 신경 세포가 원뿔 튜브의 바닥에 정착 할 수 있도록으로 씹다가 ~ 1 분 동안 정착하자. 튜브의 바닥에 정착 한 더 큰 조직의 전송을 피하는 새로운 15 ML 원뿔 튜브에 해리 신경 세포를 포함하는 상층 액을 전송합니다. </li><li> 2 분 동안 1,000 XG에서 세포를 스핀 조심스럽게 세포 펠렛을 방해하지 않고 뜨는을 제거. 부드럽게 피펫 팅하여 80 μL로 Neurobasal-A 성장 배지에서 세포를 재현 탁. </li><li> 미세 유체 저수지 1, 1 &#39;에서 매체를 제거합니다. 미세 유체 저수지 1 세포의 20 μL (~ 275,000)를 적용하고,이를 통해 흐를 수 있도록. 20 분 동안 5 % CO 2와 37 ° C 배양기에서 장치를 놓습니다. </li><li> 세포는 커버 유리에 부착했는지 확인하기 위해 현미경으로 봐. 모든 저수지를 맨 위로로 Neurobasal-A 성장 매체를 추가합니다. 5 % CO와 37 ° C 배양기에 세포와 장치를 반환 <sub&gt; 2. </li><li> 장치마다 ~ (루타 제외)로 Neurobasal-A 포함 2 % B-27 보충 2-3 일 총수입 저수지 피하기 위해 증발을 확인합니다. 뉴런은 도금 후 ~ 미세 유체 채널을 통해 2~3일을 자신의 축삭을 확장하기 시작. 주제 뉴런은 도금 후 일반적으로 7-10일 형질 전환합니다. </li></ol> 미세 유동 장치에 재배 해마 뉴런 3. 형질 <ol><li> 장치 당 30 μL로 Neurobasal-A 1.2 μL의 리포 펙 타민 2000의 혼합, 30 μL로 Neurobasal-A 0.5 μg의 형광화물 융합 플라스미드의 혼합을 준비하고 RT에서 5 분을 품어. DNA 믹스에 리포 펙 타민 믹스를 추가하고 실온에서 20 분 동안 품어. DNA에 4 % B-27 보충을 포함로 Neurobasal-A의 60 μl를 추가 / 리포 펙 타민은 혼합 튜브를 쓸어 넘겨 섞는다. </li><li> &#39;미세 유체 저수지 2, 2에서 모든 미디어를 제거하고 조심스럽게 매체 INT 위에 흘리없이 2 % B-27 보충을 포함로 Neurobasal-A와 우물을 채우기다른 구획 오. </li><li> 미세 유체 저수지 1, 1 &#39;에서 미디어를 꺼내십시오. DNA의 120 μl를 추가 / 리포 펙 타민은 미세 유체 저수지 1로 혼합하고 흐름을 보자. 3 ~ 4 시간 동안 5 % CO 2와 37 ° C 배양기에 장치를 돌려줍니다. </li><li> &#39;미세 유체 저수지 1 일에서 모든 미디어를 제거하고 24 시간 동안로 Neurobasal-A 포함 2 % B-27 보충제로 교체 (또는 전까지 이미지). 일반적으로, 마이크로 채널을 통해 성장 5-7 축삭은 약 해마 배양 세포 (26)에 대한 게시 효율성과 일치 1~3% 형질 전환 효율을 대표하는 조건에서 형질 전환된다. </li></ol> 4. &quot;화물 매핑&quot;분석 <ol><li> 화물 운동의 라이브 영상 <ol><li> 37 ° C 배양기 및 CO 2 제어 챔버가 장착 된 거꾸로 표면 형광 광학 현미경의 이미징을 수행합니다. </li><li> MICR에서 재배 해마 신경 세포와 커버 슬립을 탑재현미경 스테이지로 ofluidic 장치. 신경 세포 사멸을 방지하기 위해 더 이상보다 1 시간 현미경의 샘플을 유지하기 위해 신속하게 작동한다. </li><li> 고해상도 대물 (100X)를 사용하여 미세 유체 채널을 통해 챔버의 연장 형질 축삭가 발견 된 채널의 수를 기록 형질 세포의 축삭을 발견한다. 손 탈리 계수기를 사용하여 채널의 수를 계산. <ol><li> 라이브 운동 이후 colocalization을 분석 최적의 녹화를 들어, 대부분의 소포의 영상이 초점을 수행 할 수 있도록 채널을 통해 비교적 평탄한 성장 축삭을 선택합니다. </li></ol></li><li> 1 ml의 플라스틱 전송 피펫과 저수지 2와 2 &#39;에서 매체의 대부분을 제거합니다. kymographs에 이동 궤적과 고정 된 이미지의 다음과 같은 작업을 용이하게하기 위해, 영상 (그림 1B, C) ​​중 시야와 마이크로의 오른쪽 가장자리를 맞 춥니 다. </li><li> 손만을 용이하게하기 위해이미징 동안 샘플의 G는 두 사람과 라이브 영상을 수행합니다. 라이브 화상이 하나의 사용자에 의해 수행되는 경우 또는, 드리프트 보정 구비 현미경 시스템을 사용한다. </li><li> (그림 2 및 재료 목록의 전설에 지정된 YFP-PRP C를 이미징 현미경 사양 및 설정) 시간 경과 분석되는화물의 수송 역학에 특정 사양의 영상 라이브화물 이동을 시작합니다. </li><li> 충분한 라이브 이동 데이터를 수집 한 후, 한 사람이 PBS에서 미리 예열 4 % 파라 포름 알데히드는 세포를 해결하기 위해 0.04 g / ㎖ 자당을 포함하여 &#39;저수지 2와 2를 채울 수 있습니다. 이것은 라이브 영상의 초점을 방해하므로, 미세 유체 소자를 만지지 마십시오. 고정액을 첨가하면서 상대방이 초점을 조정하게한다. 운동의 즉시 정지가 관찰 될 때 고정이 성공한 것입니다. 이후 1, 1 &#39;리저버 정착액을 추가합니다. 참고 : 임시 photoblea화물 형광 칭 또한 관찰 될 수 있지만, 모터 단백질 IF 염색 (다음 단계) 완료 후 형광 지속. 참고 : 파라 포름 알데히드는 피부 접촉, 흡입시 유해, 삼키면. 눈, 호흡계 및 피부를 자극 함. 규정에 따라 폐기 할 것. </li></ol></li><li> IF colocalization을 분석 모터 단백질의 염색 참고 : 개별 이동화물에 관련된 모터 단백질의 상대적 수준 (항체 염색으로 결정)의 정량, 확인하고 항체 - 항원 결합이 포화되어 있는지 확인하기 위해 항체를 적정한다. 이것은 관심있는 단백질 중 뜨렸다 아웃 된 뉴런 또는 노크 - 다운을 사용하여 항체의 특이성을 결정하는 단계에 의해 수행되고, 수행함으로써 IF 항체 농도의 증가와 함께 분석. 음성 대조군의 경우, 신경 세포 1 차 항체가없는 상태에서 이차 항체로 염색된다. 더 자세한항체 검증의 설명은 Encalada 등. (16), 및 Szpankowski 등. (20)에서 찾을 수 있습니다. <ol><li> 현미경 단계에서 미세 유체 장치에서 재배 해마 신경 세포와 커버 슬립을 제거합니다. 마이크로 라이브와 고정 이미지를 중첩하기 위해 그대로 유지해야하므로, 커버 슬립에서 미세 유체 장치를 분리하지 마십시오. 습도 챔버에서 다음 단계를 수행한다. </li><li> 마이크로 채널 내로 용액의 흐름을 보장하기 위해, 적어도 30 μL의 &#39;2, 2&#39;저수지 1, 1 사이의 버퍼 용적 차를 유지한다. 이후의 모든 단계에서. 예를 들어, &#39;미세 유체 저장조 (1) (1), 70 μl의 매체 볼륨&#39;미세 유체 저장조 (2), (2)에 100 μL 매체 볼륨을 추가한다. </li><li> 미세 유체 장치의 챔버에서 고정액을 제거하고 PBS는 세척 사이에 10 분을 기다리고 세포를 세 번 씻는다. </li><li> 0.1 % 트리톤 X-100를 거치도록 희석되지 않았어요 첨가하여 세포를 Permeabilize 하시려면모든 저수지에 5 분 동안 PBS에서 테드. </li><li> 모든 저수지에서 솔루션을 제거하고 PBS로 세척. 세탁을 세척 사이에 10 분을 기다리는 세 번 반복합니다. </li><li> 모든 저수지에서 솔루션을 제거하고 PBS 10 % 정상 당나귀 혈청 3 % 프로테아제 무료 및 면역 글로불린 G (IgG를) - 무료 BSA를 포함하는 버퍼를 차단 적용하고 실온에서 적어도 30 분 동안 품어. </li><li> 5 분 침전물을 제거하기 위해 20,000 XG에서 차 항체 원액을 스핀. 버퍼를 차단에 적절한 농도로 항체를 희석. 항체 용액과 미세 유체 장치에서 차단 버퍼를 교체합니다. 4 ° C에서 RT 또는 O / N에서 2 시간 동안 샘플을 품어. </li><li> 모든 저수지에서 솔루션을 제거하고 세척 사이에 10 분을 기다리고, PBS로 3 회 씻는다. </li><li> 5 분 침전물을 제거하기 위해 20,000 XG에서 이차 항체 원액을 스핀. 버퍼를 차단에 적절한 농도로 항체를 희석. 차 항체 용액을 PBS를 교체합니다. 품다실온에서 1 시간 동안 샘플. </li><li> 모든 저수지에서 솔루션을 제거하고 세척 사이에 10 분을 기다리고, PBS로 3 회 씻는다. </li><li> 직접 저수지를 연결하는 채널의 구멍에 장착 매체를 피펫 팅에 의해 10 ~ 20 μL 설치 매체 ~와 PBS를 교체합니다. 실온에서 1 시간 - ~ 20 분 동안 미디어 건조를 장착 할 수 있습니다. </li><li> 염색 이틀 (최대 일주) 내에서 photobleaching에 방지하기 위해 빛으로부터 보호 4 ° C에서 저장 장치, 이미지 축삭. </li><li> 염색 종료 후, 현미경 스테이지 상에 미세 유체 소자에서 배양 된 해마 뉴런과 커버 슬립을 장착. 단계 4.1.1-4.1.7에 이미징되는 형질 전환 된 축삭의 영역을 찾습니다. </li><li> 고해상도 목적 (예를 들어, 높은 개구 수 대물 오일 또는 물)를 사용하여,화물, 모터 (1), 모터 (2) : 세 개의 채널 각각에 대해 Z 스택 이미지 (300 nm의 단계)를 획득. 참고 : 축색 돌기는 종종 완전 평면 성장하지 않는 한 Z-스택의 획득이 중요하다모든 형광 눈물 점 마이크로에 따라서 동일하지 초점면에 있습니다. </li></ol></li><li> 화물 매핑 <ol><li> 이미지 분석 소프트웨어를 이용하여화물 이동 kymograph 생성. Rietdorf과 사이 츠 (BillSeitz) (EMBL)에 의해 개발 된 ImageJ에 플러그인이 kymographs를 생성하는 것이 좋습니다 (다운로드 참조 재료 목록). 참고 : ImageJ에 건강 (27, 28)의 국립 연구소에서 개발 된 공개, 자바 기반의 이미지 처리 프로그램 (다운로드 자료 목록 참조). </li><li> (재료, 고정 지점 (도 2A, B)에서 kymograph의 궤적의 위치에 그들을 중첩 시판 그래프 소프트웨어 프로그램을 사용하여 수동으로 (단계 4.2.14에서 생성) 형광화물의 고정 된 이미지를 정렬 목록). 수동 제 kymograph 상에 고정화물 화상을 중첩 수동에 특정 궤적에 대응화물 눈물 점을 선택하여 정렬kymograph. 가장 좋은 정렬 결과를 매핑 된화물에 가장 초점이 Z 슬라이스를 사용합니다. 몇몇 Z 슬라이스가 사용될 수있다. </li><li> XY 좌표 및 설정 알고리즘을 이용하여 각각의 형광 눈물 점에 대한 강도 진폭이 나타내는 점 분포 함수에 2 차원 가우시안 맞게 결정하고; 각각의 Z-스택 화상 (단계 4.2.14에서 생성화물, 모터 (1) 및 모터 (2))를 들면 세 개의 채널 16,20,21 (그림 2D)의 각각의 각 포인트에 원. 참고 : Jaqaman, Danuser와 동료 21 ~ 23에 의해 개발 된 가우시안 피팅 알고리즘을 통합 XY 좌표, 16, 20를 개발 한 &quot;자동차 colocalization을&quot;라는 사용자 지정 내장 된 MATLAB 소프트웨어 패키지를 구하십시오. 그것의 사용에 대한 소프트웨어 패키지 및 자세한 설명은 요청에 따라 얻을 수 있습니다. </li><li> kymograph에 이동 또는 정지 궤도에 매핑 된 개별화물 눈물 점의 각각에 대해, T 선택그는 &quot;자동차 colocalization을&quot;프로그램의 결과에서 좌표와 강도의 진폭 (이화물 개별적 그림 (b)에 표시되어 있습니다)를 XY. 다른 초점면에서 찾을 수있는 더 많은화물을 매핑하는 단계 4.2.14에서 획득 한 여러 Z 스택 이미지)를 사용합니다. </li><li> 개별 XY가 대응 Z 슬라이스 (도 2D)에 모터 채널들 각각에 대해 얻어진 것과 매핑화물 좌표 비교. 결정하고화물의 300 나노 미터 반경 내에있는 XY 모터 좌표를 선택합니다. 화물 및 같은 초점면 내에 신호가 모터를 들어, 300 나노 미터 반경 내에있는 눈물 점을 확인하기 위해 &quot;모터 colocalization을&quot;소프트웨어 패키지를 사용합니다. </li></ol></li></ol>

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여기에 제시된 프로토콜은 실시간 뉴런 상대적인 유형 및 연관된 모터 단백질의 양 개별 형광 미세 소관 기반 이동화물 입자의 이동 방향성의 상관을 가능하게한다. 이전 축삭 기공화물의 총 모터 조성물은 생화학 적 정제 소포와 세포 기관 9,15의 이기종 인구에 측정 하였다. 그러나, 전지 내부의화물 단일 유형 특성화 모터 조성물 때문에 균질 소포 개체군을 정제에 어려움 도전왔다. 모터 스톨 힘의 측정은 초파리 배아에서 활성 모터 번호의 추정치를 제공하면서 운동의 방향성 모터가 안정적으로화물 또는화물 12에 / 활성 모터의 빠른 연결 / 분리에 결합되는 상관 관계가 있는지 여부 또한 불분명했다. 따라서 &quot;화물 매핑&quot;프로토콜은 descri여기 베드는 상기 유형 개별적 라이브 뉴런화물 이동하도록 연관된 모터 상대적인 수 간의 상관 관계를 조사하기 위해 개발되었다. ...

세포 내 수송은 다양한 세포 도메인 1 단백질, 세포막, 세포 기관, 및 신호 분자의 전달을위한 모든 종류의 세포에 중요하다. 뉴런은 매우 비판적으로 여러 축삭 마이크로 도메인에 자신의 장거리 전송에 필수적인화물의 세포 내 수송에 의존 한, 편광 돌기 세포를 전문으로하고 있습니다. 두 개의 큰 분자 모터 단백질의 가족 - -이 교통 키네신과 dyneins에 의해 매개되는화물에 결합하는 각각 선행 성과 역행하는 방향으로 편광 미세 소관을 따라 추적 할 수 있습니다. 역행 이동은 주로 네인에 의해 매개되는 동안, 선행 성 방향의 움직임은 키네신 모터 크고 다양한 기능적 가족에 의해 촉진된다. 결과적으로, 축삭화물의 선행 성 전송은 키네신 상과 1-5의 다양한 가족에 의해 중재 될 수있다. 일부화물은 어느 방향으로, m에서 지속적으로 이동하지만OST화물은 양방향으로 이동하고 최종 목적지 1,5-13에가는 길에 자주 역. 또한, 도시 한 것,화물에 동시에 방향성 연관 대향화물의 이동이 규제 된 반대 극성의 모터 5-7에 의해 조정되는 방법에 대한 의문을 제기 모터. 함께, 축삭화물의 수송은 모터와 차례로 다양한 어댑터와 규제 바인딩 파트너 (14)에 의존하는 특정 생화학 적 활동의 구성에 의해 조절되는 공동의 프로세스입니다. 충실 특정화물 축삭 수송 메커니즘을 설명하기 위해, 그 전송의 기본 규정을 밝히기 위해서, 그들의 라이브 운송 중에 개별화물과 연관된 모터 단백질과 그 규제 결합 파트너의 조성을 결정하기 위해 가장 중요하다. 다른 방법은, 예를 생화학 적 접근법에 대해, 평균 경구의 추정치를 제공또는 정제 이기종 소포 인구에 조성하지만, 이러한 추정은 유형 또는 단일 이동 소포에 관련된 모터의 금액을 공개하지 않습니다. 또한, 시험관 내에서 미리 조립 된 미세 소관을 따라 소포 수송 재구성 단일 소포 레벨 (15) 상 모터의 한 형식의 양을 측정 가능. 그러나, 이들 실험은 직접 그 소포 수송 특성을 갖는 모터의 양의 상관 관계, 및 세포 조절 인자의 부재하에 수송을 측정하지 않았다. 내생 적 측정 (IF) 데이터가 모터 단백질을 발현 면역 개별 이동 소포의 모터 구성 (유형과 모터의 상대적인 양을) 결정하고, 신경 세포의 동일한 소포의 실시간 전송에 이러한 매개 변수의 상관 관계를 여기에 제시되는 프로토콜, 16. 이 방법은 IF 투 라이브화물 이동 데이터의 정확한 매핑을 수반한다. 이 기르고하여 수행됩니다마이크로 유체 장치에서 g 해마 마우스 뉴런 프로토콜 17-19 설립 다음. 이 장치는 고정 및 라이브 광학 현미경의 양식에 축삭과 하나의 이동화물의 식별 및 상관 관계 ( &quot;매핑&quot;) (그림 1)에 대한 수 있습니다. 배양 된 신경 세포는 그 전송 kymographs 플롯되는 상세한 움직임 정보를 얻기 위해 높은 공간 및 시간 해상도에 결상된다 형광 표지화물 단백질로 형질 감염된다. 이미징 과정에서 뉴런은 파라 포름 알데히드로 고정되고,이어서 모터 내인성 단백질에 대한 항체로 염색. 고정화물 및 모터 이미지는 운동이 16 탄도 라이브화물로 &quot;지도&quot;(colocalize) 라이브 이동 kymographs에 중첩된다. 모터 단백질의 연관으로화물의 실시간 움직임을 연관하기 colocalization을 &quot;은 모라는 주문품 MATLAB 소프트웨어 패키지를 사용하여 분석된다토르 colocalization을 &quot;16, 20. 형광 표지 된화물 및 모터 부분이 부분적으로 겹칠 수 회절 제한 반점 기능을 생성합니다. 눈물 점 겹치는 위치를 해결하기 위해, 소프트웨어는 제 자동으로 정확한 XY 서브 픽셀 위치를 결정하기 위해, 각각의 형광 눈물 점을 나타내는 각 점 분포 함수에 가우스 함수 맞는 좌표와 세기는 21-23 진폭이. 모터 및화물의 위치는 이어서 colocalization을 16, 20를 결정하는 서로 비교했다. 따라서,이 방법은 다른 방법들보다 정확하게는 24에 비해 형광 눈물 점 사이 colocalization을 할당한다. 이 방법의 장점은 실시간 이동 궤적 (예를 들면, 방향이되는들은 정착시 이동 하였다) 녹화왔다있는 고정 셀의 개별화물 모터 colocalization을 평가하는 기능이다orded. 이 방법 키네신과 dyneins은 (PRP C의 -cellular) 양방향으로 이동하거나 축색 돌기 (16)에 고정되어 neuronally 풍부한화물을 정상 프리온 단백질을 운반 소포에 동시에 연결할 발견되었다. 이 분석은화물 연관된하면서 선행 성 (키네신)와 역행 (네인) 모터가 어느 한 방향으로 소포를 이동 또는 고정 유지하기 위해 그들의 활동을 조정하는 PRP C 소포 운동 규제 작업 모델의 수립을 허용 . 이 방법의 또 다른 장점은 관심의 다른 단백질 (들)과, 거의 모든 세포 유형에서 이동 많은 형광 표지 된화물의 colocalization을 / 협회의 특성에 대한 잠재적 인 광범위한 적용이다. 따라서, 라이브 / 정 상관 잠재적 과도화물 단백질 상호 작용의 검출을 허용 할 수있는 입자를 이동 표지 많은 개별 형광는 원하는 페이지를 통해 분석 될 수있다시간의 eriod. 폭 넓은 적용이 방법은 처리 할 수​​ 질문의 유형을 감안할 때,이 프로토콜은 신경 세포에서 다른 세포 유형에서 그 공부 인신 매매 및 수송 등 세포 생물학의 다양한 관객들에게 관심이 될 것입니다.

<table><tbody><tr><td>폴리-L-라이신</td><td>시그마</td><td>P5899-20mg</td><td></td></tr><tr><td>D-MEM (Dulbecco' s Modified Eagle Medium) High Glucose, w/ L-Glutamine, w/o Sodium Pyruvate (1x)</td><td>Life Technologies</td><td>11965092</td><td></td></tr><tr><td>FBS (Fetal Bovine Serum)</td><td>Life Technologies</td><td>10082147</td><td></td></tr><tr><td>Neurobasal-A Medium (1x)</td><td>Life Technologies</td><td>10888022</td><td></td></tr><tr><td>B-27 Serum Free Supplement</td><td>Life Technologies</td><td>10888022</td><td></td></tr><tr><td>GlutaMAX I Supplement (100x)</td><td>Life Technologies </td><td>35050061</td><td></td></tr><tr><td>HBSS (1x) (Hank' s Balanced Salt Solution)</td><td>Life Technologies</td><td>24020117</td><td></td></tr><tr><td>DPBS (Dulbecco' s 인산염 완충 식염수, 마그네슘 없음, 칼슘 없음 (1x)</td><td>Life Technologies</td><td>14190250</td><td></td></tr><tr><td>페니실린/스트렙토마이신 (100x)</td><td>세포</td><td></td> 배양을 위한 Corning cellgro Water 15140122 <td></td>생명 과학&</tr><tr><td>nbsp;</td><td>Fisher Scientific</td><td>MT46000CM</td><td></td></tr><tr><td>Papain</td><td>USB Corporation</td><td>19925</td><td></td></tr><tr><td>DL-cysteine HCl</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>C9768</td><td></td></tr><tr><td>BSA (소 혈청 알부민)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A7906</td><td></td></tr><tr><td>D-글루코스</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>G6152</td><td></td></tr><tr><td>DNAse I 등급 II</td><td>Roche Applied Sciences</td><td>10104159001</td><td></td></tr><tr><td>리포펙타민 2000</td><td>라이프 테크놀로지</td><td>스&nbsp; </td><td></td>11668027</tr><tr><td>포름알데히드 해결책 16% EM 급료</td><td>피셔 과학</td><td>적인 50980487</td><td>주의: 흡입에 의해, 피부와 접촉하여 그리고 삼킨다면 유해한. 눈, 호흡기 및 피부에 자극적입니다. 공식 규정에 따라 폐기하십시오.</td></tr><tr><td>설탕</td><td>Fisher Scientific</td><td>S5-500</td><td></td></tr><tr><td>HEPES</td><td>Sigma</td><td>H-3375</td><td></td></tr><tr><td>Normal Donkey Serum</td><td>Jackson Immuno Research</td><td>017-000-0121</td><td></td></tr><tr><td>BSA 지방산 및 IgG 무료</td><td>Jackson Immuno Research</td><td>001-000-162</td><td></td></tr><tr><td>Acetone</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP2403-4</td><td></td></tr><tr><td>에탄올</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP2818-100</td><td></td></tr><tr><td>ProLong Gold antifade 시약</td><td>Life Technologies</td><td>P36934</td><td></td></tr><tr><td>커버 유리 1 1/2. 24 x 40 mm</td><td>Corning</td><td>2980-244</td><td></td></tr><tr><td>축 미세유체 장치, 450 &micro; m</td><td>Millipore</td><td>AX450</td><td></td></tr><tr><td>Adobe Photoshop</td><td>Adobe</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Nikon Eclipse TE2000-U&nbsp;</td><td>니콘</td><td></td><td></td></tr><tr><td>쿨스냅 HQ 카메라&nbsp;</td><td>Roper Scientific</td><td></td><td></td></tr><tr><td>60 mm 세포 배양 접시</td><td>Fisher Scientific</td><td>12-565-95</td><td></td></tr><tr><td>150 mm 세포 배양 접시</td><td>Fisher Scientific</td><td>12-565-100</td><td></td></tr><tr><td>항체 사용:</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Anti-Kinesin light chain, V-17</td><td>Santa Cruz&nbsp;</td><td>KLC1-/- 뉴런(Ref. 16)을 사용하여 sc-13362 특이도 검증, 권장 희석 1:100.</td><td></td></tr><tr><td>안티 다인인 헤비 체인 1, R-325</td><td>산타 크루즈&nbsp;</td><td>sc-9115</td><td>특이성 검증, DYN1HC1에 대한 shRNA (Ref. 16), 권장 희석 1:100</td></tr><tr><td>Alexa Fluor 568 Donkey Anti-Rabbit IgG 항체</td><td>Life Technologies</td><td>A10042</td><td>&nbsp; 권장 희석 1:200.</td></tr><tr><td>Alexa Fluor 647 당나귀 안티-래빗 IgG (H+L) 항체</td><td>Life Technologies</td><td>A31573</td><td>&nbsp; 권장 희석 1:200.</td></tr><tr><td>Alexa Fluor 568 당나귀 안티-염소 IgG (H+L) 항체 IgG 항체</td><td>Life Technologies</td><td>A11057</td><td>&nbsp; 권장 희석 1:200.</td></tr><tr><td>Alexa Fluor 647 당나귀 안티-염소 IgG (H+L) 항체</td><td>생명 기술</td><td>A21447</td><td>&nbsp; 권장 희석 1:200.</td></tr><tr><td colspan="4">플러그인 및 매크로</td></tr><tr><td>ImageJ</td><td></td><td></td><td><a href="http://imagej.nih.gov/ij/index.html">&nbsp; http://imagej.nih.gov/ij/index.html.&nbsp; </a></td></tr><tr><td>ImageJ Kymograph 플러그인</td><td></td><td></td><td><a href="http://www.embl.de/eamnet/html/body_kymograph.html">http://www.embl.de/eamnet/html/body_kymograph.html.</a></td></tr></tbody></table>

사용 축삭화물을 이동하는 분자 모터의 구성을 특성화 &quot;화물 매핑&quot;분석

Characterizing the Composition of Molecular Motors on Moving Axonal Cargo Using "Cargo Mapping" Analysis

분자 모터 신경 세포 내 소낭화물을 수송하는 그들의 활동을 조정하는 메커니즘을 이해하는 것은 하나의 소포 수준에서 모터 /화물 협회의 정량 분석​​이 필요합니다. 이 프로토콜의 목적은 동일한화물과 관련된 모터의 조성 및 상 대량으로 ( &quot;지도&quot;) 상관 라이브화물의 이동 위치와 방향성을 정량적 형광 현미경을 사용하는 것이다. &quot;화물 매핑은&quot;생방송 운동의 기록에서 화학적 고정 다음 미세 유체 장치에서 배양 축삭 이동 형광 표지 된화물의 이미징, 및 모터에 대한 항체와 동일한 축삭 지역의 후속 면역 (IF) 염색으로 구성되어 있습니다. 화물 및 연관된 모터 사이 colocalization을 서브 - 픽셀 위치를 할당함으로써 평가된다 회절에 리 피팅 가우스 함수에 의해, 모터 및화물 채널 좌표개별 형광 포인트 소스를 나타내는 mited 포인트 확산 기능. 고정화물 및 모터 이미지는 이후 자신의 추적 궤도로 &quot;맵&quot;,화물 이동의 플롯에 중첩된다. 데이터가 살아있는 세포에 기공을화물의 수송을 모두 기록하고이 동일한 소포에 연결된 모터를 결정하는 경우,이 프로토콜의 강도는 라이브의 조합입니다. 이 기술은 이러한 방법은 단일 이동화물에 조성물을 공개하지 않는 한, 정제 된 벌크 소포 이종 집단의 평균 모터 조성을 결정하는 생화학 적 방법을 사용하여 이전의 어려움을 극복한다. 더욱이,이 프로토콜은 단백질 조성물의 개별 세포 구조의 이동을 상관시키는 다른 세포 유형에서 다른 전송 및 / 또는 매매 경로의 분석을 위해 적응 될 수있다. 이 프로토콜의 한계로 인해 배양의 낮은 형질 전환 효율에 상대적으로 낮은 처리량이다차 뉴런 고해상도 영상화 가능한 뷰 제한된 필드. 미래의 애플리케이션은 형광 표지 된화물을 발현하는 신경 세포의 수를 증가시키는 방법을들 수있다.

도 1은 해마 신경 세포를 성장하는 데 미세 유동 장치의 개요를 도시한다 (도 1A, B). 뉴런의 채널 길이가 축삭 구획에 줄곧 건너로부터 수지상 돌기를 방지하면서 미세의 크기로 구획 축삭 세포 기관 (소마)의 확산을 방지 저장조 (1)에 도금된다. 문화 ~ 2~3일 후, 신경 세포는 축삭 구획 (그림 1B, C)에 마이크로 채널을 통해 자신의 축삭을 확장하기 시작. 황색 형광 단백질 (YFP PRP-C)로 표지 정상 프리온 단백질을 발현하는 형질 감염된 축삭 형광 현미경 (도 1C)에 의해 식별 될 수있다. 플라스미드 형질 전환을 이용하여 형광 표지 단백질의 발현으로 인해 변형 된 단백질의 입체로 실험 유물을 소개 할 수 과발현으로 적절한 세포 내 현지화 및 기능에 대해 확인해야합니다. 따라서, colocalizat이온 실험은 생화학 공침 연구와뿐만 아니라 내생 적으로 발현 된 단백질...

소포 또는 세포 소기관과 같은 화물의 세포 내 수송은 편광된 미세소관을 추적하는 분자 운동 단백질에 의해 수행됩니다. 이 프로토콜은 뉴런 내부로 이동하는 개별 화물 입자의 수송 방향성과 관련 운동 단백질의 상대적 양 및 유형의 상관관계를 설명합니다.

Understanding the mechanisms by which molecular motors coordinate their activities to transport vesicular cargoes within neurons requires the quantitative ...

화물 매핑의 전반적인 목표는 소포 화물과 연관되어 이동하는 분자 운동 단백질의 상대적인 양과 유형을 결정하고 이러한 모터 구성을 실제 화물 이동의 방향성과 연관시키는 것입니다. 이것은 먼저 미세유체 장치에서 1차 마우스 해마 뉴런을 성장시켜 축삭돌기가 상대적으로 곧게 성장하도록 하고 일시적으로 형질주입된 뉴런의 축삭에서 형광 표지된 화물 단백질의 실시간 세포 내 이동을 기록함으로써 달성됩니다. 두 번째 단계는 살아있는 화물 이미징 과정에서 뉴런을 고정한 다음 kinesin 및 dines와 같은 분자 운동 단백질에 대한 항체로 축삭을 염색한 다음 면역 형광 현미경 이미징을 수행하는 것입니다.다음으로, 고정된 화물 및 모터 이미지는 면역형광 염색에 의해 결정된 염색된 관련 모터와 살아있는 화물 이동을 상관시키기 위해 크래프트라고도 하는 시간 경과에 따른 화물 이동 플롯에 정렬됩니다. 마지막 단계는 모터 공동 국소화(motor colocalization)라고 하는 맞춤 개발된 MATLAB 소프트웨어 패키지를 사용하여 화물 및 운동 단백질의 하위 픽셀 위치를 결정하는 것입니다. 이 소프트웨어는 각 화물 및 모터 위치의 정확한 XY 좌표뿐만 아니라 화물 및 모터와 관련된 상대적인 형광 강도의 양을 제공합니다.궁극적으로, 서브 픽셀 해상도 수준에서 활선 및 고정 화물과 모터의 형광 현미경 검사의 상관 관계는 이동 방향성이 알려진 특정 화물과 관련된 모터 유형에 대한 정보를 제공합니다. 따라서 이 방법은 엑손 수송 메커니즘에 대한 통찰력을 제공합니다. 이는 생명 현미경 검사와 면역 형광 염색을 연관시키는 다른 연구, 예를 들어 미세난관 역학 중 미세소관에 대한 단백질의 연관성 또는 세포내이입 중 단백질 동원과 같은 연구에 적용할 수 있습니다.이 방법을 시각적으로 시연하면 이미징 고정 및 분석 단계를 수행하는 데 도움이 되며, 그렇지 않으면 특수 설정이 필요하기 때문에 배우기 어려울 수 있습니다. 이 절차를 위한 마우스 해마 1차 뉴런은 프로토콜 텍스트에 기인하는 대로 준비되고 신경 기저 난자 성장에 재현탁됩니다. 미세유체 장치에서 뉴런을 플레이트하는 매체.microfluidic reservoir 1 및 one prime에서 매체를 제거합니다. 20마이크로리터의 세포를 미세유체 저장소에 적용하고 통과하도록 합니다. 장치를 섭씨 37도 5CO2의 인큐베이터에 20분 동안 놓습니다.현미경 아래를 보고 세포가 덮인 유리에 부착되었

characterizing-composition-molecular-motors-on-moving-axonal-cargo

Research

연구

JoVE Journal

Neuroscience

신경과학

표면 준수 kinesin 모터 단백질이 nanoscale 교통 시스템으로 제공할 수에 글라이딩 기능화 microtubules로 구성된 분자 셔틀. 여기 전형적인 셔틀 시스템의 조립이 설명되어 있습니다.

Kinesin 전원 분자 셔틀로화물 로딩

여기에서, 프로토콜은 키네신 -1-화물을 식별하기 위해 제시된다. 키네신-1 중쇄 (KIF5B)의 모터리스 돌연변이는 세포질에 집계 및화물의 응집을 유도한다. 모두 집계는 형광 현미경에서 검출된다. 유사한 전략이 다른 모터 단백질화물을 식별하기 위해 사용될 수있다.

형광 현미경을 사용 키네신 -1-화물 식별

여기에서 우리는 세포기관의 세포내 수송 및 뮤린 성상 세포에 있는 혈장 막 단백질의 인신 매매를 구상하는 시험관 내 살아있는 화상 진찰 방법을 기술합니다. 이 프로토콜은 또한 화물 운송 일정 및 역학을 결정하는 이미지 분석 방법론을 제시합니다.

성상 세포에서 세포기관 및 기타 화물의 세포내 운송 시각화 및 분석

이 프로토콜의 목표는 DNA 종이 접기 나노 구조에 분자 모터의 앙상블을 형성하고 총 내부 반사 형광 현미경을 사용하여 앙상블 운동성을 관찰하는 것입니다.

단일 분자 관찰을 위한 DNA 종이 접기 나노 구조에 다인 및 키네신 모터 앙상블 생산

손상된 미토콘드리아 수송 및 형태는 각종 신경 퇴행성 질환에 관여합니다. 제시된 프로토콜은 유전 경직 성 하반신 마비에서 미토콘드리아 수송 및 형태를 평가하기 위해 유도 된 다능성 줄기 세포 유래 전뇌 뉴런을 사용합니다. 이 프로토콜은 축축을 따라 미토콘드리아 인신 매매의 특성화와 신경 퇴행성 질환의 연구를 용이하게하는 형태학의 분석을 허용합니다.

유전 경직 성 하반신 마비에서 인간 유도 만능 줄기 세포 유래 뉴런에서 미토콘드리아 수송 및 형태 분석

우리는 광액성 신경필라멘트 단백질을 표현하는 형광성 광섬유 단백질을 표현하는 형광성 광섬유 단백질을 표현하는 형질성 광섬유 마우스에서 말초 신경의 단일 골수축축에서 신경필라멘트의 축산수송을 분석하는 방법을 설명합니다.

절제된 마우스 티비알 신경에 있는 신경필라멘트 수송의 화상 진찰 그리고 분석

양방향 유사분열 키네신-5 Cin8은 운동성 동안 분열되고 병합되는 클러스터에 축적됩니다. 클러스터에 축적되면 Cin8의 속도와 방향성도 변경됩니다. 여기에서, 정제된 Cin8-GFP를 사용한 운동성 분석 및 Cin8의 단일 분자 및 클러스터의 모타일 특성의 분석을 위한 프로토콜이 기재되어 있다.

S. cerevisiae 세포로부터 정제된 양방향 Kinesin-5 Cin8의 단일 분자 및 클러스터의 이동성

트랜스제닉 형광 마우스를 사용하여, 살아있는 동물에서 무손상 좌골 신경의 운동 및 감각 축삭 내 엔도솜 및 미토콘드리아의 신호전달의 생체내 축삭 수송을 평가하기 위해 상세한 프로토콜이 기술된다.

축삭 수송의 생체 내 이미징을위한 툴킷 확장

이 연구는 Sf9-바쿨로바이러스 발현 시스템을 사용하여 키네신-3 계열의 구성원인 KIF1A(1-393LZ)의 정제에 대해 자세히 설명합니다. 이들 정제된 모터의 시험관내 단일분자 및 다중-모터 글라이딩 분석은 포유동물 세포 용해물로부터의 모터에 필적하는 강력한 운동성 특성을 나타냈다. 따라서, Sf9-바쿨로바이러스 시스템은 관심있는 운동 단백질을 발현하고 정제하는 것이 가능하다.

Sf9 정제 초공정 키네신-3 제품군 모터의 단일 분자 분석

이 논문은 살아있는 선충에서 단일 뉴런 해상도로 내인성 표지된 화물의 축삭 수송을 시각화하기 위한 형광 현미경 획득 매개변수의 최적화에 대해 설명합니다.

Optimizing Visualization of Axonal Transport of Endogenous Cargo(내인성 화물의 축삭 수송 시각화 최적화)는 Living Caenorhabditis elegans에서 형광 현미경을 이용합니다.

학습하세요 분자 모터 단백질이 화물 운반 방향성과 어떻게 연관되는지 밝히는 화물 매핑 분석법을. 마우스 해마 뉴런과 형광 현미경 기술을 활용하여 세포 내 수송 메커니즘을 정밀하게 규명합니다.

사용 축삭화물을 이동하는 분자 모터의 구성을 특성화 "화물 매핑"분석

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