Name: 마우스 신장 이식 : 동종 이식 거부의 모델 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-10-11T15:00:00.000+00:00
Duration: 16 min 15 s
Description: 배우세요 마우스 신장 이식 수술법을 통해 급성 및 만성 이식 거부 반응을 연구하는 방법을. 이 모델은 면역학적 메커니즘 규명과 임상 적용을 위한 중요한 도구입니다.

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신장 연구 UK에서 자금, 에딘버러 및 장기 이식의 유럽 사회의 외과 의사의 왕 대학은이 연구를 지원했다.

해당 국가 및 지역의 기관 윤리는 동물 실험을 수행하기 전에 장소에 있어야합니다. 받는 사람 외과 의사가 2.1 2.8로 수행하면서 특히 영국에서 다음과 같은 실험은 기증자의 의사가 수행해야이 microsurgeons가 동시에 작동 할 수있는 동물 (과학적인 절차) 법 1986에 따라 수행되었으며, 1.1-1.16 다음 3.1-3.5 단계 . 하나의 연산자를 들어 단계가 순서대로 수행 할 수 있습니다. 1 기부자 준비 참고 : 여기에 제시된 절차는 기증자 C57BL / 6 BM12 사람과받는 사람 20g보다 더 큰 체중과 8~16주 된 세 사이의 C57BL / 6 수컷 마우스입니다. 그러나이 과정은 재현성 마우스 균주의 다양한 수행 될 수있다. 대표적인 결과 섹션에 제시된 데이터는 C57BL / 6, C57BL / 6 BM12 및 BALB / c 마우스로부터 얻은 것입니다. <ol><li> 행동 절차 날기목적과 g 멸균 수술기구 및 소모품 (오토 클레이브)는, 가능한 한 무균 영역을 유지한다. 이 외과 의사를 사용할 수있는 경우받는 사람의 준비와 동시에 기증자 준비를 수행합니다. </li><li> medetomidine (0.5 ㎎ / ㎏)와 케타민 하이드로 클로라이드 (/ kg 200 mg)을의 복강 내 주사 (31G 바늘)와 마우스를 마취. 전체 절차를 위해 충분한 시간을 제공하여 4 시간 동안 유지 마취 평면에서이 결과를 실시한다. 보충 마취는 필요하지 않습니다. </li><li> 마우스가 (발가락 핀치에 대한 응답)를 마취되지 않는지 확인합니다. </li><li> 마우스의 복부를 면도하고 끈적 끈적한 테이프로 느슨한 머리를 제거합니다. </li><li> 무균 드레이프 온수 매트에 그 뒷면에 마우스를 놓고 느슨하게 멸균 마스킹 테이프로 팔다리를 고정시킨다. </li><li> 열 화상 절차를 통해 마우스를 모니터링합니다. 가능하면 비 전기 열원을 사용합니다. </li><li> 눈 윤활제 및 SA를 적용희석 된 요오드 용액을 복벽 nitize. </li><li> 복강를 입력 3cm 돋움 복부 견인기를 삽입 할 수있는 복부 정중선 절개를합니다. </li><li> 촉촉한 장 및 수술 영역을 유지하고 내장을 불필요하게 건조를 방지하기 따뜻하게 식염수를 적용합니다. </li><li> 무균 드레이프와 마우스를 덮고 대동맥, 대정맥과 왼쪽 신장을 노출 작업자의 왼쪽 (마우스의 오른쪽)에 장내를 이동합니다. </li><li> 위장 높였다 forcep을 적용하고 완전히 주요 혈관과 왼쪽 신장을 노출 빼어냅니다. 거리와 같은 간 엽 (叶), 정낭, 그리고 장과 수술 영역에서 조직을 철회 복부에 멸균 면봉 (2mm X 2mm)를 젖은 포장하십시오. </li><li> 주변 adventia, 지방과 퉁명스럽게 좋은 팁 집게를 사용하여 결합 조직을 해부하여 복강의 왼쪽 부신에서 왼쪽 신장을 분리합니다. 북동 지역 사이의 포셉의 폐쇄 팁을 놓고에드 분리 천천히 forcep 팁 공간을 해부 열 수합니다. </li><li> 결찰 한 후 9 / O 나일론 부신 정맥과 왼쪽 성선 정맥 왼쪽을 분할하여 왼쪽 신장 정맥을 분리합니다. 신장 정맥에 가까운 봉합사를 놓습니다. </li><li> 결찰 및 봉합을 떠나 방광에 가까운 7 / O 실크 봉합사와 요관을 분할 긴 끝납니다. 신장 수확 및 ureteric 문합에 필요한 경우 롱 봉합 끝이 사용됩니다. </li><li> 동원 완전히 신장 동맥에 우량하고 열등한 대동맥과 대정맥을 해부하고 퉁명스럽게 선박의 전면과 측면에서 림프 혈관과 지방을 해부 좋은 팁 집게를 사용하여 정맥. </li><li> 대동맥과 대정맥 천천히 확산 집게 사이의 조직면을 찾아보십시오. 천천히 최소한의 외상 조직을 확산하기 위해 뾰족한 집게의 끝을 엽니 다. </li><li> 각진 벌금을 전달하여 신장 동맥 우수하고 열등 대동맥 주위 느슨한 7 / O 실크 타이팁 포셉 용기의 뒷면 주위 통해 봉합 도면. 이러한 봉합 위스콘신 대학의 솔루션의 역 행성 관류를 허용하도록 신장 검색 이전에 체결됩니다. </li></ol> 2받는 사람 준비 기증자 준비 후속에 따라 1.8에 1.2 단계를 반복합니다. <ol><li> 대동맥, 대정맥을 노출 작업자의 오른쪽 (마우스의 왼쪽)에 장내를 이동합니다. 멸균 식염수에 적신 면봉으로 장을 커버. </li><li> 오른쪽 신장 동맥을 결찰하여 우측 신장 절제술을 수행하고 7/0 실크 봉합사와 함께 정맥 다음 나눕니다. </li><li> 7 / O 실크 봉합사와 분열과 오른쪽 요관을 결찰. </li><li> 동원 단계 1.14 및 1.15에 설명 된대로 완전히 신장 동맥과 정맥 열등 대동맥과 대정맥을 해부하다. 대동맥과 대정맥이 완벽하게 해부를 확인합니다. 대정맥과 aort에 전방을 실행하는 내부 고환 동맥을 유지하기 위해주의림프 번들과 함께. </li><li> 척추에 대정맥과 정맥의 복막에서 실행 요추 선박을 식별 연속성 9 / O 실크 결찰, 혈관을 분할 할 필요가 없습니다. </li><li> 혈관 문합을위한 사이의 공간 미세 혈관 클램프를 배치 할 수있는 충분한 공간을 확인합니다. </li><li> 지느러미 음경 정맥을 통해 정맥 내 헤파린 (5 단위)를 관리합니다. </li></ol> 3 기증자의 신장 검색 동맥 순환의 신장을 분리 열등한 우수한 대동맥 주위에 배치 된 7 / O 실크 넥타이를 조입니다. <ol><li> 대동맥에 바늘 (31G)와 위스콘신 대학의 용액을 0.5 ml의 - 역행 차가운 0.2 달이다. </li><li> 봉합 내 대동맥을 나누고 신장과 대동맥의 길이와 신장 동맥을 제거하기 위해 대정맥과의 교차점에 신장 정맥을 나눕니다. (있는 경우) w, 대동맥에서 발생하는 요추 선박을 나눈다ithout 결찰. </li><li> 배양 접시에 멸균 된 면봉에 차가운 식염수의 신장을 놓습니다. </li><li> 자궁 전위에 의해 기증자 마우스를 안락사. </li></ol> 4 신장 이식 - 신장 준비 <ol><li> 신장 동맥 맞은 편에 길이 방향으로 직접 대동맥 벽을 분할하여 대동맥 패치를 만듭니다. 동맥 문합을 수행 할 때 결찰 또는 방지 할 필요가있는 패치의 모든 혈관 루멘을 확인합니다. </li><li> 하방 우량 신장 정맥 루멘 초 별도의 봉합 외부에서 내부로 열 / O 봉합사를 놓습니다. 봉합사는 부신 정맥을 나누는 데 사용 및 성선 정맥 혈관을 배향 할 수있다. </li><li> 받는 사람 (그림 1.1)의 오른쪽 측면의 신장을 배치하고 봉합이 잘 혈관 문합은 면봉 또는 다른 악기에 묶여되는 것을 봉합없이 완료 될 수 있도록 배치됩니다 확인합니다. </li></ol> (5) 신장 Transplan테이션 - 혈관 문합 첫번째 하방 후 우량 대정맥과 대동맥을 포괄하는 미세 혈관 클램프를 적용합니다. <ol><li> 대정맥의 앞쪽 벽을 천공하여 바늘 (31G)와 ventomy을 확인합니다. 0.9 %의 NaCl 약 50 μl를 주입하여 대정맥에서 세척 혈액. </li><li> 길이가 도너 신장 정맥의 직경에 해당되도록 venotomy 내에 그들을 개방함으로써 미세한 팁 집게를 사용 venotomy 넓어. </li><li> venotomy (그림 1.2)의 정점에 첫번째 (신장 혈관의 내강에 이미) 10 / O 우수한 봉합을 배치하고 하부 정점에 도달 할 때까지 (그림을 실행 봉합의 문합의 뒷면 벽 가입 1.3). </li><li> 10 / O 열등 봉합을 배치 한 다음 다시 벽에서 실행 봉합사로 묶어 하나의 매듭 (그림 1.4)와 첫번째 넥타이. </li><li> 전면 월마트를 만들 열등한 봉합사를 사용하여문 합부 리터 실행 봉합 (그림 1.5)와 우수한 정점 (그림 1.6)에서 우수한 봉합 끝에 넥타이. </li><li> 집게로 대동맥 벽을 집어 들고 가위로 타원형 패치를 (약 aortotomy 대동맥의 둘레의 길이는 세 배 신장 동맥 내강의 5 분이어야 함) 절단에 의해 aortotomy을 만듭니다. </li><li> 외부에서 내부로 대동맥 패치의 우수한 점 (그림 1.7)에서 10 / O 봉합을 놓고 aortotomy의 우수한 정점에 선박 외부 묶는 대동맥을 통해 전달합니다. </li><li> 너무 꽉 봉합 (그림 1.9)를 묶는하여 문합을 수축하지 않도록주의, 실행 봉합 우량받는 사람 대동맥에 기증자 패치 anastomosing (그림 1.8)를 시작으로 동맥 문합을 만듭니다. </li><li> (신장 재관류 먼저 우수한 클램프를 열등한 혈관 클램프를 제거그림 1.10 및 1.11). 요관에 충분한 혈액 공급이 달성되면 요관의 가시 연동 아마 본. </li></ol> 6 신장 이식 - Ureteric 문합 <ol><li> 복벽에서 방광의 첨부 파일을 나눈다. </li><li> 모두 벽을 통해 방광의 오른쪽에 왼쪽에서 바늘 (21G)를 전달합니다. </li><li> 바늘 루멘 똑바로 forcep 팁을 놓고 통과를 모두 다시 집게 지금 방광의 왼쪽에서 오른쪽에서 왼쪽으로 전달되도록 방광을 통해. </li><li> 요관이 오른쪽에서 다음 왼쪽 방광 결함에 전달하도록 방광을 통해 기증자 요관에 봉합을 그립니다. </li><li> 둥근 바디 바늘 9 / O 나일론 봉합사로의 진입 점을 중심으로 세 번의 중단 봉합과 방광의 외막에 요관의 외막을 봉합. </li><li> 합자로 요관 근위부를 잘라 따라서 열 번째전자 요관은 소변의 흐름과 요관의 끝이 방광의 몸으로 철회 할 수 있도록 허용합니다. 소변의 가시 생산 근교 ureteric 혈관에서 출혈과 함께 관찰 할 수있다. </li><li> 하나의 중단 9 / O 실크 봉합사와 오른쪽 방광 결함을 닫습니다. </li></ol> 7 복구 및 수술 후 케어 원래 방향으로 복부에 위장 육부를 교체하고 6 / O 흡수성 봉합사 직근에 근접하여 복벽을 닫습니다. <ol><li> 금속 클립으로 피부를 피부에 근사. </li><li> 부분적으로 atipamazole 하이드로 클로라이드 (10 μL / g)의 피하 주사로 마취를 반전. </li><li> 피하 0.9 % NaCl을 1 ml의 피하 부 프레 노르 핀 염산염 (0.05 ㎎ / ㎏)에 의해 유체 지원 주입 진통을 관리 할 수​​ 있습니다. </li><li> 24-48 시간 동안 28 ° C로 예열 캐비닛에 마우스를 복구 할 수 있습니다. 에 질병까지에 마우스를 관찰실험의 완료. </li><li> 십일에 작동 게시 - 금속 피부 클립 (7)를 제거합니다. </li><li> 실험이 완료되면 경추 탈구하여 마우스를 안락사. </li><li> 제거하고 조직 학적 분석을위한 반대측 신장 이식을 수집합니다. </li></ol>

<ol><li>Guild, W. R., Harrison, J. H., Merrill, J. P., Murray, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Successful+homotransplantation+of+the+kidney+in+an+identical+twin%5BTitle%5D)+AND+%22Trans.+Am.+Clin.+Climatol+Assoc%22%5BJournal%5D)">Successful homotransplantation of the kidney in an identical twin.</a> Trans. Am. Clin. Climatol Assoc. 67, 167-173 (1955).</li>
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<li>Lin, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Deficiency+of+C4+from+Donor+or+Recipient+Mouse+Fails+to+Prevent+Renal+Allograft+Rejection%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Pathol%22%5BJournal%5D)">Deficiency of C4 from Donor or Recipient Mouse Fails to Prevent Renal Allograft Rejection.</a> Am. J. Pathol. 168, 1241-1248 (2006).</li>
</ol>

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동맥 문합을 수행하는 가장 잘 설명 된 방법은 수신자 대동맥으로 엔드 - 투 - 사이드 방식으로 이어져 신동맥와, 도너의 원위 대동맥을 사용하는 것이다. 우리는 더 편리한 것으로 우리가 믿는 인간 신장 이식으로 수행 &#39;Carrell 패치&#39;미러링 유사한 대동맥 패치의 사용을 설명한다. 기증자와받는 사람의 수술 시간의 문헌보고가 드문 드문 있지만 우리는받는 사람 대동맥에 엔드 - 투 - 사이드 기증자의 대동맥 대신받는 사람의 대동맥에 대동맥 패치를 사용하는 것이 바람직하다 생각합니다. 패치를 이용하면 모든 척추 도너 대동맥을 해부 분기 할 필요성을 부정하고, 또한 시간이 자연스럽게 제외 패치 anastomosing 같이, 개별적으로 결찰하는 데 걸리는. 이 모델을 달성하기 위해 중요한 단계는 동맥 패치 문합 내에서 신장 동맥 이외의 다른 동맥 내강이 없음을 확인하기 위해 돌보는 포함 그들은미세 혈관 클램프가 제거 될 때 누출됩니다. anastamoses를 구성 봉합...

이 길이와 수명이의 질 모두 향상을 제공하는 세계적으로 말기 신부전 환자를위한 혁신적인 치료되었다 이후 신부전의 치료에 성공적으로 신장 이식은 먼저 일란성 쌍생아 일 사이 1955에 기술되었다. 그러나 장기 이식 생존율은 만성 동종 이식 손상 3의 결과 병리학 적 과정의 무리에 의해 방해되었다. 인간에 ​​이식 된 신장의 거부는 immunosupporessive 요법에서 상당한 개선에도 불구하고 사망률의 주요 원인이 남아있다. 신장 이식 마우스 모델을 개발하는 목적은 밀접 인간 신장 이식 4에서 발견 과정과 병리를 복제하는 것이다. Skoskiewicz 외는. 제 1973 5 신장 이식 마우스 모델을 설명했다. 미세 첨단 기술이 요구되고 있지만, 그것은 유용한 t이며여러 가지 이유로 OOL : 마우스 게놈이 잘 특징 및 실험 방법 및 마우스 연구에 사용할 기술의 큰 다양성이있다. 신장 이식 마우스 모델을 이용하여 많은 그룹은 그러나 실험 4의 기간 동안 현장에 남아있는 다른 연구와 수신자 마우스의 기본 신장의 우리의 기술 방법 하나, 생명 유지 장기로 이식 된 신장을 사용했다. 이점은 마우스함으로써 마우스 이환율과 두번째 절차에서 사망의 위험을 감소시키는 하나의 마취 및 동작을 겪는다는 것이다. 또한 마우스가 점진적으로 신장 장애의 부작용으로 고생하지 않습니다. 동종 거부의 모델은 심장과 피부와 같은 다른 장기에 존재하지만, 이들은 항상 신 이식에 직접 관련이 없습니다. 이 모델은 다양한 모드와 DY을 유도한다는 증거가있다거부 namics, 예를 들어 심장 동종 이식 신장 이식 거부 반응에서의 타임 코스는 특정 스트레인 조합 6 크게 다르다. 우리는 비 형질 전환 FVB / NJ 마우스로 BALB / C 기증자에 급성 신장 이식 거부 반응 패턴을 기술 한이 모델은 T 세포와 대 식세포 (7)의 축적과 세포 매개 부상을 보였다. 이 마우스가 하나의 MHC 클래스 II 궤적 잘못을 특징으로 또는 우리는 또한 간질 섬유화와 세뇨관 위축을 나타내는 만성 동종 이식 손상의 모델을 기술 한이, C57BL / 6 수신자로 C57BL에서 / 6 BM12 기증자 신장 이식의 결과 -match 8. 이식의 여러 측면들은 급성 거부 반응, 세포 및 체액 제거율, 허혈 재관류 손상, 및 신규 한 치료제를 포함 trialing에 신장 이식 마우스 모델을 이용하여 연구되었다. 우리는 수술 t을 수정 한echnique는 작동 시간을 감소시키고 수술의 용이성을 향상시킬 수있다. 특히 우리는 동시 기증자와받는 사람의 준비와 연속 대동맥 패치 문합을 이용하여 단순화 된 혈관 문합 기술을 설명했다. 이 영상과 원고는이 기술의 확립에 도움이 핵심 포인트를 제공합니다.

<table><tbody><tr><td colspan="4">수술 도구</td></tr><tr><td>, 둔기, 해부 가위</td>, <td>정밀 과학 도구</td><td>&nbsp; 14072-10</td><td>피부 절단용</td></tr><tr><td>곡선형 Castoviejo 가위</td><td>Fine Science Tools</td><td>15017-10</td><td>조직 절단용</td></tr><tr><td>스프링 가위&ndash; 스트레이트</td><td>Fine Science Tools</td><td>15000-08</td><td>봉합사 절단용</td></tr><tr><td>톱니 집게 1x2 치아</td><td>Fine Science Tools</td><td>11021-12</td><td></td></tr><tr><td>2 x Fine Tip 집게(Dumont No.5)</td><td>Fine Science Tools</td><td>11251-20</td><td></td></tr><tr><td>각진 파인 팁 집게 (Dumont No. 5/45)</td><td>Fine Science Tools</td><td>11253-25</td><td>무딘 해부용</td></tr><tr><td>Curved Fine Tip 집게 (Dumont No.7)</td><td>Fine Science Tools</td><td>11273-22</td><td>혈관 주위를 통과하는 데 유용</td></tr><tr><td>Curved Crile Haemostat</td><td>Fine Science Tools</td><td>1300-04</td><td></td></tr><tr><td>잠금 장치가 있는 마이크로 클립 애플리케이터</td><td>Fine Science Tools</td><td>18056-14</td><td></td></tr><tr><td>2 x Micro serrefines 스프링 너비 2mm, 턱 길이 4mm</td><td>Fine Science Tools</td><td>18055-04</td><td>미세 혈관 클램프</td></tr><tr><td>2 x Colibri 3cm 와이어 견인기</td><td>Fine Science Tools</td><td>17000-03</td><td></td></tr><tr><td>잠금 장치가 있는 Castroviejo 바늘 홀더</td><td>Fine Science Tools</td><td>120660-01</td><td></td></tr><tr><td>상처 클립 애플리케이터</td><td>Fine Science Tools</td><td>12031-07</td><td></td></tr><tr><td>7mm 상처 클립</td><td>Fine Science 도구</td><td>12032-07</td><td>수술</td></tr><tr> 후 7-10일 제거<td colspan="4">장비</td></tr><tr><td>OPMI 피코 현미경</td><td>Carl Zeiss</td><td>S100</td><td></td></tr><tr><td>열 소작 장치 미세 팁</td><td>Geiger</td><td>150A</td><td></td></tr><tr><td>열 전자 패드</td><td>Cozee Cumfort</td><td>n/a</td><td></td></tr><tr><td>Euroklav 23-S</td><td>Melag</td><td>n/a</td><td>Autoclave</td></tr><tr><td colspan="4">일회용 장비</td></tr><tr><td>7/O 실크 브레이드 봉합</td><td>사 Pearsall</td><td>30514</td><td></td></tr><tr><td>10/O Dafilon (폴리아미드) 봉합사</td><td>B-Braun</td><td>&nbsp; </td><td></td>G1118099</tr><tr><td>6 / O Vicryl (plygalectin)</td> <td>Ethicon</td><td>W9537</td><td></td></tr><tr><td>일반 베벨 바늘, 1 인치, 21G</td><td>Bection, Dickinson and Company</td><td>305175</td><td>요관 아나스타마시스</td></tr><tr><td>용 일반 베벨 바늘, 5/8 인치, 25G</td><td>벡션, Dickinson and Company</td><td>305122</td><td></td></tr><tr><td>일반 베벨 바늘, 1/2 인치, 30G</td><td>벡션, Dickinson and Company</td><td>304000</td><td></td></tr><tr><td>인슐린 바늘 1ml, 29G</td><td>Bection, Dickinson and Company</td><td>324827</td><td></td></tr><tr><td>인슐린 바늘 0.3ml, 30G</td><td>Bection, Dickinson and Company</td><td>324826</td><td></td></tr><tr><td>1ml 주사기 슬립 팁</td><td>Bection, Dickinson and Company</td><td>300184</td><td></td></tr><tr><td>5ml 주사기 슬립 팁</td><td>Bection, Dickinson and Company</td><td>302187</td><td></td></tr><tr><td>Wypall 종이 면봉</td><td>Kimberley-Clark</td><td>L40</td><td>오토클레이브에 의한 살균</td></tr><tr><td>면모</td>봉 <td>Johnson and Johnson</td><td>해당 없음</td><td>오토클레이브에 의한 살균</td></tr><tr><td>플레인 드레이프</td><td>Guardian</td><td>CB03</td><td>오토클레이브에 의한 살균</td></tr><tr><td>세포 배양 접시 60mm x 15mm</td><td>Corning Incorporated</td><td>430166</td><td></td></tr><tr><td>디스펜싱 핀</td><td>B-Braun</td><td>DP3500L/413501</td><td>NaCl 0.9%Re-agents</td></tr> <tr><td>및 약물</td>과 함께 사용<td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>(Lacri-Lube) 백색 소프트 파라핀 57.3%, 미네랄 오일 42.5% 및 라놀린 알코올 0.2%</td><td>Allergan Ltd</td><td>21956GB10X</td><td></td></tr><tr><td>(Videne) 포비돈-요오드 10%</td><td>Ecolab Ltd</td><td>PL 04509/0041</td><td></td></tr><tr><td>(Vetalar V) Ketamine hydrochloride</td><td>Pfizer Animal Health</td><td>Vm 42058/4165</td><td>100mg/ml 용액 (용량 200mg/kg)(</td></tr><tr><td>Domitor) Medetomidine hydrochloride&nbsp;</td><td>Orion Pharma</td><td>Vm 06043/4003</td><td>1mg/ml (용량 0.5mg/kg)(</td></tr><tr><td>Vetergesic) Bupernorphine hydrochloride&nbsp;</td><td>Alsto Animal Health</td><td>Vm 00063/4002</td><td>0.3mg/ml (투여량 0.05mg/kg)(</td></tr><tr><td>안티세단) 아티파메졸 하이드로코라이드</td><td>Orion Pharma</td><td>Vm 06043/4004</td><td>5mg/ml (투여량 2mg/kg)</td></tr><tr><td>University of Wisconsin Solution</td><td>Belzer Bridge to Life</td><td>투</td><td>여량 약 500마이크로리터/마우스</td></tr><tr><td>NaCl 0.9%</td><td>Baxter</td><td>FKE1323</td><td></td></tr><tr><td>Heparin Sulphate</td><td>비독점</td><td>N/A</td><td>5000units/ml (투여량 5units/mouse)</td></tr></tbody></table>

마우스 신장 이식 : 동종 이식 거부의 모델

Mouse Kidney Transplantation: Models of Allograft Rejection

인간의 이식된 신장에 대한 거부 반응은 여전히 이환율과 사망률의 주요 원인입니다. 신장 이식의 마우스 모델은 인간 신장 이식에서 발생하는 기술적 및 병리학적 과정을 밀접하게 복제합니다. 신장 이외의 기관에서 동종 거부 반응에 대한 마우스 모델이 존재하고 기술적으로 더 실현 가능하지만, 예를 들어 심장 및 신장 동종 이식편에서 거부 반응의 시간 경과가 특정 균주 조합에서 크게 다르다는 것과 같이 서로 다른 기관이 서로 다른 거부 반응 모드와 역학을 유도한다는 증거가 있습니다. 이 모델은 기술적 어려움에도 불구하고 여러 가지 이유로 매력적인 도구입니다. 근친 마우스 균주 하플로타입이 잘 특성화되어 있기 때문에 기증자와 수혜자 조합을 선택하여 MHC 클래스 I 및 II 유전자좌에 이식하여 급성 동종이식 거부 반응을 모델링할 수 있습니다. 반대로, 유사한 일배체형을 가진 균주 사이에 이식함으로써, 동종이식, 신장에서 간질성 섬유증 및 세뇨관 위축이 발생하는 만성 과정을 유도할 수 있습니다. 수술 시간을 줄이고 수술 용이성을 개선하기 위해 수술 기법을 수정했지만, 모델을 충실하게 복제하기 위해서는 여전히 학습 곡선을 극복해야 합니다. 이 연구는 수술 절차의 요점을 제공하고 이 기술을 확립하는 과정을 돕습니다.

신장 이식 거부 반응은 이식 된 신장 (그림 2)의 methacarn 고정 파라핀 조직 절편의 조직 학적 분석에 의해 평가 될 수있다. 신장 허혈 재관류 손상에서 동계 쥐의 결과와 신장의 Isograft 이식 그러나 사주에 의해 세뇨관 복구 및 기본 신장 조직 학적으로 비교할 수있다. 급성 거부 반응은 신장 실질 조직 전반에 걸쳐 확산 단핵 세포 침윤이 간질, 사구체와 세뇨관을 포함,이 일주 내 BALB / c를받는 사람에 C57BL / 6 신장 이식에 의해 모델링 될 수있다. 만성 동종 이식 손상이 C57BL / 6받는 사람에 이식 C57BL / 6 BM12 신장에서 모델링 할 수 있습니다, 이것은 간질 섬유화 점진적인 세관 손실로 구성된 인간의 병리에서 볼 수있는 일반적인 기능을 발생합니다. 고성능 필드 (X200 배율) 당 총 세관의 수는 (Fi 접속 기능 네프론 질량의 정량화 할 수 있습니다gure 3), 세관의 손실이 거부로 인해 관상 부...

여기에서는 거부 반응의 면역학을 연구하기 위한 프로토콜을 제시합니다. 제시된 수술 모델은 짧은 수술 시간과 간결한 기술을 보여주었습니다. 기증자-수용자 균주 조합에 따라 이식된 신장은 간질성 섬유증 및 세뇨관 위축으로 정의되는 급성 세포 거부 반응 또는 만성 동종이식 손상이 발생할 수 있습니다.

Rejection of the transplanted kidney in humans is still a major cause of morbidity and mortality. The mouse model of renal transplantation closely ...

이 비디오는 신장 이식의 마우스 모델을 보여줍니다. 주요 조직 적합성 등급으로 알려진 여러 근친 균주를 활용함으로써 우리는 신장 동종이식의 거부 반응의 다양한 측면을 재현할 수 있습니다. 제시된 데이터는 이것이 어떻게 유용한 모델인지 보여줍니다 이러한 메커니즘에 대한 연구에서, 이 도식 만화는 이 모델의 주요 단계를 보여줍니다.기증자 마우스에 대해 좌측 신장 절제술을 시행하고 멸균 면봉에 기증자 신장을 준비합니다. 배양 접시에서 수혜자 마우스는 기증자 신장을 이식하기 전에 오른쪽 신장 절제술을 받습니다. 이 절차는 멸균 오토클레이브 기구와 멸균 수술 영역 내에 배치된 소모품을 사용하여 수행됩니다.여러 동물을 수술하는 경우 각 절차에 대해 새로운 멸균 기구 세트를 사용하거나 절차 사이에 기구를 멸균합니다. 비드 살균기를 사용하여 작업자는 멸균 가운, 마스크, 모자 및 장갑을 착용합니다. 한 명의 작업자가 신장 적출 시점까지 기증자를 준비시켜 이 절차를 수행할 수 있습니다.그런 다음 수혜자는 신장을 제거하기 위해 기증자에게 돌아가기 전에 이식 준비를 합니다. 이것은 감기 허혈 시간을 줄입니다. 또는 두 명의 작업자가 기증자와 수혜자를 동시에 준비할 수 있습니다.이를 통해 하루에 여러 동물을 수술할 수 있습니다. 여기 케타민과 염산염 및 마이네의 복강 내 주사로 마취된 8주 된 수컷 C 57 블랙 식스 마우스가 있습니다. 수술 부위는 묽은 요오드 용액을 사용하여 면도하고 소독했습니다.마우스는 사지가 패드에 부착된 상태로 멸균되고 드레이프된 가열된 수술 패드에 놓였습니다. 눈 연고가 도포되었습니다. 개복술은 정중선 피부 절개로 수행됩니다.그런 다음 조직 분리 가위를 사용하여 선형 Albert를 통해 복막강을 엽니다. 그런 다음 마우스를 드레이프하고 칼리브라 견인기를 절개 부위에 삽입합니다. 장은 수술 영역의 왼쪽이나 오른쪽으로 이동하여 왼쪽 신장과 요관을 노출시켜 기증자의 신장을 준비합니다.이식을 위해 요관을 결찰하고 가능한 한 방광에 가깝게 분리합니다. 하부 생식선 정맥과 상부 부신 정맥은 결찰되어 있으며 신장 정맥 가까이로 나뉩니다. 대동맥은 신장 동맥보다 상하위와 하위가 결찰되어 있으며 위스콘신 대학의 차가운 용액을 대동맥에 주입하여 신장을 관류시킵니다.요관은 후복막에서 쉽게 절개할 수 있으며 방광의 말단까지 추적할 수 있습니다. 7.0 봉합사로 방광에 최대한 가깝게 결찰한 다음 일반적으로 비우는 왼쪽 생식선을

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Research

연구

JoVE Journal

Medicine

의학

Allogeneic 피부 이식은 MHC - 서로 다른 기증자 항원을 분석 호스트 T 세포 응답에 대한 표준 모델입니다. 이 비디오 문서 BALB/c--&gt; C57BL / 6 피부 이식을 수행에 관련된 각 단계의 영상 자습서를 제공합니다.

Murine 피부 이식

Mice는 각막 이식을 포함한 다양한 형태의 이식을 연구하기 위한 모델로 사용되었습니다.  이 보고서에서는 급성 및 후기 각막 이식을 위한 쥐 모델을 설명합니다.

쥐의 각막 이식 : 고체 장기 이식의 가장 일반적인 형태를 연구하기위한 모델

우리는 마우스의 대동맥 삽입 이식을 위한 프로토콜을 설명합니다. 이 프로토콜의 목표는 동맥의 동종면역 반응 및 그에 따른 장기 이식 실패에 기여하는 동맥 변화와 관련된 병리학적 과정 및 치료 전략을 연구할 수 있는 모델을 제공하는 것입니다.

동종 유도 혈관 거부 및 이식 동맥 경화 마우스 모델

이 원고의 목표는 동맥 문합에 대한 세부 사항에 특히 주의를 기울여 마우스에서 신장 이식을 수행하는 데 필요한 단계를 설명하는 것입니다.

쥐 신장 이식 기술

이 원고와 프로토콜의 목적은 쥐에서 직교 신장 이식의 외과 수술을 상세히 설명 하 고 입증 하는 것입니다. 이 방법은 기증자 신장의 정확한 관류를 달성 하 고 정 맥 및 요 추 팔목 문 합 기술을 사용 하 여 재 관류 시간을 단축 하기 위해 단순화 된다.

직교 쥐 신장 이식: 새롭고 단순화 된 외과 접근

이 프로토콜은 변형 된 동맥 해부학 전략에 초점을 맞춘 마우스 신장 이식의 새로운 수술 기술을 제시합니다. 간단하고 안전한 요관-방광 해부학 방법을 포함하는 혈관 봉합 기술도 제시된다. 이러한 변형은 수술 시간을 단축시키고 마우스 신장 이식 절차의 성공률을 향상시킵니다.

마우스의 신장 이식을위한 수정 된 수술 기술

쥐 동위원소 신장 이식 모델은 신장 동종이식편 거부의 메카니즘을 조사하는 데 기여한다. 현재의 모델은 신장 이식의 종단 간 해부학과 요관 방광 문합술의 종단 간 "터널"방법을 사용하여 혈액 공급 및 정맥 역류에 간섭하지 않고 수혜자의 생존을 증가시킵니다.

신장 동종이식편 거부반응을 위한 쥐 동위원소 신장 이식 모델

여기에 설명된 쥐 이소성 보조 간 이식 프로토콜은 간 동종이식 거부 반응의 메커니즘을 탐색하기 위한 실용적인 조사 도구를 제공합니다. 이 모델은 쥐의 정형소 간 이식의 수술 장애물과 동물의 스트레스를 완화하는 데 도움이 됩니다.

동종이식 거부 반응 연구를 위한 간절개술을 활용하는 이주제 보조 전체 간 쥐 이식 모델

이 연구는 급성 세포 거부 반응과 급성 항체 매개 거부 반응을 특이적으로 복제하기 위한 두 가지 표준화된 쥐 이종이식 모델을 확립합니다. 이 모델들은 이종이식 면역 거부 기전 조사, 면역억제 전략 평가, 전임상 이종이식 연구의 진전을 위한 신뢰할 수 있는 플랫폼 역할을 합니다.

이종이식에서 급성 세포 및 항체 매개 거부반응을 연구하기 위한 3인 워크플로우를 가진 표준화된 마우스 모델

우리는 여기에서 비 침습적 18F-fluorodeoxyglucose와 양전자 방출 단층 촬영을 이용하여 급성 이식 거부 반응을 평가하기 위해 쥐의 신장 이식 모델을 제시한다.

쥐 신장 이식 후 급성 동종 이식 거부의 비 침습 이미징 사용<sup&gt; 18</sup&gt; F-FDG PET

배우세요 마우스 신장 이식 수술법을 통해 급성 및 만성 이식 거부 반응을 연구하는 방법을. 이 모델은 면역학적 메커니즘 규명과 임상 적용을 위한 중요한 도구입니다.

마우스 신장 이식 : 동종 이식 거부의 모델

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