Name: 실험 녹내장은 안구하는 미소 자석을 투여 한 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-02-02T14:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 35 s
Description: 학습하세요 쥐의 전방방에 자성 미소구체를 주입하여 녹내장 모델을 구축하는 방법을. 안압 상승과 망막 신경절 세포 사멸을 평가하여 안과 질환 연구에 활용할 수 있습니다.

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시신경 절편에 도움을 주신 Peter Munro 박사님께 감사드립니다. 이 연구는 의학 연구 위원회(G0901303)의 지원을 받았으며 부분적으로 Dorothy Hodgkin Postgraduate Award/Medical Research Council, Helen Hamlyn Trust, Fight for Sight 및 Moorfields special trustess의 지원을 받았습니다.

윤리 문 : 모든 동물 실험 기관 동물 관리 및 사용위원회 (IACUC)에 따라 수행되었으며, 영국 홈 오피스 가이드 라인에 동의 (승인했다 <a href="http://goo.gl/FLkirW" target="_blank">http://goo.gl/FLkirW는</a> 지난 10 일 6 월 액세스 2014) 및 안과 및 비전 연구 (에서 동물의 사용을위한 ARVO 문 <a href="http://goo.gl/4LFOjD" target="_blank">http://goo.gl/4LFOjD는</a> 지난 10 일 6 월 2014) 액세스. 1. 안구 고혈압 유도 <ol><li> Samsel 등의 방법에 따라, 갈색 노르웨이 쥐의 전방에 상자성 미소의 일방적 인 주입을 통해 안압 (IOP)를 올려서 실험 녹내장을 유도한다. 이러한 검증 할 필요가 있지만 3 기타 색소 쥐, 적합 할 수있다 사용자가 처음. </li><li> 하우스 250-300의 g 여성일정한 낮은 조명 환경 (40 ~ 60 룩스)에서 전 개종 갈색 노르웨이 쥐 물과식이에 액세스 할 수있는, IOP 7 일중 변동을 최소화합니다. </li><li> 쥐의 눈 (9)에 사용하기 위해 교정 리바운드 안압계를 이용하여, 이전에 마취 구슬 주입에 깨어 동물 8 기준 안압 측정을 수행. IOP는 다섯 개의 측정 값의 평균으로한다. </li><li> 복강 전달 37.5 ㎎ / kg 케타민, 0.25 ㎎ / ㎏ medetomidine 염산염 쥐를 마취시키다. 동물의 뒷발 반사를 테스트함으로써 마취 깊이를 확인, 요오드 애플리케이션 (단계 1.5 참조), 비드 포비돈을 주입하기 전에 (단계 1.8 참조). 진통제 0.5 % proparacaine 염산염을 관리합니다. 참고 : 모든 단계에서 동공을 팽창하지 마십시오. 이 구슬은 홍채 각막 각도로 잘 정착하는 데 도움이 렌즈에 결합하는 것을 방지 할 수 있습니다. 수술하지 않은 반대편 눈에 각막 건조를 방지하기 위해 눈 연고를 적용합니다. </li><li> W물에 주입하기 전에 10 5 분을 5 % 포비돈 요오드와 수술 눈 화산재. </li><li> 5 분 후, 멸균 거즈을 개시 포비돈 요오드 심지, 0.9 % 멸균 식염수로 눈을 씻는다. 멸균 식염수의 일반 응용 프로그램과 마취 동안 촉촉한 눈을 유지합니다. </li><li> 눈 주위에 도넛 자석을 배치합니다. </li><li> 33 G 바늘을 이용하여 경 사진 30 ㎎ / 전방에 행크의 균형 잡힌 염 용액 (HBSS)에 8 ㎛의 자성 마이크로 감마 멸균 ml의 조사를 함유하는 용액 25 ㎕를 주입한다. <ol><li> 구슬을 준비하려면, 다음 최종 30 ㎎ / ㎖ 솔루션을하기 전에, 1 ml의 HBSS 5 분 동안 10,000 XG에서 3 회 원심 분리, 다시 현탁하여 세척한다. 전체에서 무균 조건을 유지한다. </li><li> 주사를 들어, 홍채 외상의 위험을 최소화하기 위해, 홍채에 바늘을 삽입하지 않도록주의해야합니다. 이는 병렬로, 각막 표면에 접하는 바늘을 배향함으로써 방지 될 수있다가능한 홍채. 이것은 또한 주사 부위에서 비드의 손실을 최소화 할 것이다. 참고 : 안압 상승에 중요한 홍채 각막 각도, 주위에 고른 분포를 보장하기 위해 빠른 속도로 구슬을 주입한다. 또한, 점포 비즈, 자성 바늘과 링 별도로 구슬 주사기 및 주입에로드하도록 어렵게 클러스터를 형성하지 않도록, 그리고 바늘 자화가되지 않는다. </li></ol></li><li> 비즈 섬유주에서 수성 배수를 방해 홍채 각막 각도에 정착되도록 1 분 후 주입을위한 장소에 바늘을 둡니다. 약간 각도 비드 후 바늘 처음 IOP 일시적인 증가를 최소화하기 위해, 수용액 중 일부를 누설하도록 정착했다. 수술의 끝에서 제 인산 완충 생리 식염수 (PBS)로 바늘을 통해 세척 한 후, 증류수이어서 70 % 에탄올, 분리 과정에서 바늘의 계속적인 사용을 보장한다. 대안 적으로, 하나는 사용할 수올바른 게이지 주사기 조합을 사용할 수있는 경우 일회용 바늘. 선택적 : 바늘의 사용을 연장 beveller을 날카롭게하여 될 수있다. </li><li> 이 단계에서는 필요한 경우에, 자석을 제거하고 불완전한 범위의 영역으로 구슬을 그릴을 사용합니다. </li><li> 비즈 홍채 각막 각도에 잘 정착하기 위해 추가로 10 분 후 주입 눈 주위 장소에 자석을 남겨주세요. </li><li> 0.25 ㎎ / kg atipemezole 염산염을 사용하여 역방향 마취. </li><li> 감염을 방지하기 위해 국소 예를 들어, 겐타 마이신 또는 terramycin에 대한 클로람페니콜, 또는 다른 항생제 연고를, 관리 및 통증에 대한 0.5 % proparacaine 염산염. 그들은 운동을 되 찾을 때까지, 열 매트에 복구하는 동물을 남겨 복구가 완료 될 때까지 다음과 같은 보조 식품이나 적신 일반 다이어트로 추가 영양, 따뜻한 상자와 공급에 전송합니다. 전신 또는 로컬 통증은 수술 후 통증이 24 시간의 흔적을 표시하는 동물에게 주어져야한다. 살전 경우전자 증상이 치료에도 불구하고 지속, 동물을 인도적으로 도태되어야한다. </li><li> 작동이되지 않는 대조군으로 반대쪽 눈을 사용하십시오. </li><li> 비드 투여 후 2-3 일마다 안압 측정을 수행하고, 2-3 일마다 그 후 쥐의 눈 (9)에 사용하기 위해 교정 리바운드 안압계를 사용하여. </li><li> 1)는 IOP는 5mmHg 의해 반대측 제어 압력 이상 상승하는 경우, 2) 60 mmHg로를 초과하지 않는다 : 연구에서 눈을 포함하는 기준이 될 수있다. </li><li> (통상 1 주일 후 분사함으로써) 기준선 압력 복귀가 연구에 포함되지 않아야 감아, 그러나 원하는 경우 높은 IOP를 개발하는 데 실패 눈에 다시 주입 비드 할 수있다. </li><li> 실험의 끝에 CO 2 질식에 의해 동물을 안락사. </li><li> 눈 및 시신경을 해부하고, 밤새 더 조직학 분석을 위해 4 % 파라 포름 알데히드 (PFA)로 고정한다. </li></ol> 2. TUNEL S를 사용하여 망막 신경 세포 손상 평가함유 성 <ol><li> 제조업체의 지침에 따라, 단말기 데 옥시 뉴 클레오 타이 딜 트랜스퍼 중재 dUTP를 닉 라벨 (TUNEL) 분석 retinasuse 전체 마운트에서 사멸 세포를 정량화합니다. </li><li> 인산 0.3 % 트리톤 X-100에 3 × 5 분 완충 식염수 (T-PBS)를 세척, 아이 컵에서 망막을 해부하다. </li><li> 2 시간 동안 3 % T-PBS에서 조직을 Permeabilize 하시려면. </li><li> 37 ° C에서 1 시간 동안 TUNEL 반응 용액에서 배양하기 전에, 10 분 동안 평형 완충액 망막 전 평형. </li><li> 0.3 % T-PBS 5 μM DAPI를 포함하는 린스, 0.3 % T-PBS에서 3 × 5 분 동안 조직을 씻고 설치 미디어에서 평면 마운트합니다. </li><li> TUNEL 긍정적 인 핵는 20 배 배율에서 신경절 세포 계층을 통해 10 μm의 Z - 스택을 취할 공 초점 현미경을 사용하여 정량화합니다. 전체 MOUN 당 12 이미지의 총을주고, 망막의 먼 주변에 중반 주변에, 시신경에 가까운 장소에서, 4 꽃잎에 각각 3 이미지를 가지고,t는 약 7000 세포를 샘플링. 형태 학적 기준은 신경 세포에서 비 신경 세포 (내피 세포와 교세포) 세포를 차별. </li><li> 치료 그룹에 만 DAPI 채널, 마스크 조사관을 사용하여 이미지를 선택 영역. </li></ol> 3. 톨루이딘 블루 염색을 사용하여 시신경 손상 평가 <ol><li> 밤새 4 ° C에서 Karnovsky의 솔루션에 시신경을 수정합니다. </li><li> 1 % (w / v)의 산화 오스뮴에서 2 시간 동안 처리하고, 표본을 100 % 에탄올로 탈수. </li><li> 30 분 동안 프로필렌 옥사이드의 시신경을 품어, 프로필렌 산화물의 50:50 혼합 배치 : 아랄 다이 하룻밤. </li><li> 하룻밤 60 ℃에서 배양 한 다음 100 % 아랄 다이에이 솔루션을 변경할 수 있습니다. </li><li> 컷 semithin 섹션 (0.75 mm 두께)과 광학 현미경으로 검사하기 전에 50 % 에탄올 1 % 톨루이딘 블루 / 붕사 (TB)와 얼룩. </li></ol> 4. 통계 분석 <ol><li> 통계 아나을 수행적절한 통계 소프트웨어 패키지를 사용 lyses. 뉴만 - Keul의 사후 시험과 양방향 ANOVA는 IOP는 경시 변화에 대한 통계적 유의성을 계산하는데 사용될 수있다. </li><li> 0.05 미만의 P 값은 유의 한 것으로 간주 될 수있다. </li></ol>

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</ol>

David T. Shima는 스위스 Hofmann-La Roche의 직원입니다. 나머지 저자는 경쟁하는 재정적 이해관계가 없음을 선언합니다.

여기서 우리는 눈의 전방 챔버로 자성 미립자를 주입하여, 래트에서 IOP 상승을 유도하는 방법을 보여준다. 이 방법을 수행하는 간단하고, 작은 수술 전문 지식을 필요로하거나 연습과 정제의 시간. 더욱이, 절차는 유효하다; 좀처럼 압력 강하고 견고한 상승 (약 10 % 재 주입 율)을 유도하기 위해 비드 단일 주입 이상을 필요로하지 않는다. 이 안압을 상승 유지하기 위해 여러 절차를 필요로 할 수있다 (11) 모델, 또는 레이저 광응고술 프로토콜 (6), 경화증 등의 기술적 도전 episceral 정맥 같은 기존의 유도 방법을 통해 이점을 제공 할 수있다. 그러나 성공하는 방법에 대한 위해 수행되어야 할 몇 가지 작은 중요한 단계가 있습니다. 첫째는 홍채 각막 각도로 구슬을 그릴 도넛 모양의 자석을 사용하는 것이 유용하다. 이 단계는 오리지널 프로토콜 어디 있나의 변형 인전자 구슬은 전방에 주입 한 다음 눈 3 주위에 자유를 이동했다. 토 로이드 자석을 사용하면 마이크로 최소한의 수동 재배포을 필요로 각도 주위에 균등하게 해결해야 함을 의미한다. 너무 느리고 불완전 주로 비드에 따르면, 잠재적 압력 상승도 선도 각도의 일측에 축적한다 - 두 번째로, 분사 속도는 빨라야한다. 하지만 일반적으로 말하면, 상기 방법은 사용자가 쉽게 아마도 IOP 상승의 정도를 변경하려고 시도하는, 미세 입자의 크기 또는 용적을 변화와 같은 프로토콜의 수정을 만들 수있을만큼 간단하다. 그러나, 방법의 잠재적 인 단점 중 하나는 우리가 관찰 사례의 약 5 ~ 10 %에서 60 mmHg로 위에 올랐다 고혈압의 정도를 통해 작은 제어 할 수 있다는 것입니다. IOP의 과도한 상승은 망막 조직에 매우 파괴적 일 수 있고, 메커니즘 및 바이오 연구를 만들 수 있습니다세포 사멸의 말의 뜻은 도전. 그러나, 상기 방법은 약리학 적으로 조작 할 수있다 (12) 망막 및 시신경 모두에서 일관된 신경 병리를 생성한다. 이는 녹내장 치료를위한 새로운 치료제 개발을위한 모델이 매력적으로 만들 수 있습니다. 비즈 홍채 각막 각도에 지시하기 때문에 또한,이 망막 또는 시신경 유두의 라이브 영상 무료 시축을 떠난다. 우리는이 모델 적응 및 마우스를 포함하는 다른 종의 미래 응용에 사용될 것으로 예상된다.

차 녹내장은 생활 바꾸는 시력 손실과 실명이 발생할 수있는 세계 일에 걸쳐 약 60,500,000명에 영향을 미치는 치명적인 안과 질환이다. 질병 메커니즘에 대한 연구, 녹내장에 대한 새로운 치료제의 개발, 병리의 특징 몇 가지 요점을 되풀이 질병의 좋은 모델에 따라 달라집니다. 우리는 Samsel 등의 방법에 기초하여 여기 래트 녹내장 모델을 제시한다. (3)이 기술의 전반적인 목적은, 직접을 전방으로 자성 미립자를 주입하고, 자성 링을 이용하여 눈에 안압 (IOP)을 증가시키는 그들 홍채 각막 각도로. 이 신경 세포의 손상 및 세포 손실로 이어지는, 안압을 증가 수성 유출을 방해한다. 프로토콜은 녹내장 간단 유도 모델을 제공하려고 시도하기 위해 개발되었다. 이 프로토콜은 몇 가지 장점을 가질 수있다기존의 기술을 통해. 이러한 DBA / 2J 같은 유전 마우스 모델을 시작하는 절차를 필요로하지 않는, 사용할 수 있습니다; 그러나 이러한 질병의 진행 (4)의 예측할 수없는 증상이있을 수 있습니다. 반대로, 외과 설치류 IOP 승강에 의존 대부분의 유도 가능한 모델은, 개시 사용자에 의해 제어 될 수있는 이점이있다. 이러한 방법 중 일부는 포함 5 기술적 도전 인, 그러나 자신의 단점을 가질 수 있고, 높은 안압 (6)을 유지하기 위해 여러 절차를 요구할 수 있습니다. 반면에,이 원고에 설명 된 유도 방법은 재 주입을위한 최소한의 필요와 압력에 안정적이며 견고한 증가, 생산, 간단하고 효과적이며 재생 가능한 기술이다. 또한, 고가의 설비를 포함하지 않는, 오직 수행하는 기본적인 수술 기술이 필요하다. 이 프로토콜은 덜 기술적 요구 유도를 설정하기 위해 찾고있는 독자들에게 적합 할 수 있습니다자신의 실험실에서 녹내장 모델.

<table><tbody><tr><td>250 - 300g 암컷 브라운 노르웨이 전 사육자 쥐</td><td>Harlan UK</td><td>203</td><td></td></tr><tr><td>Tonolab 리바운드 안압계</td><td>티올라트</td><td>TV02</td><td></td></tr><tr><td>케타셋(케타민)</td><td>Fort Dodge 동물 건강</td><td>BN1000118</td><td>37.5 mg/kg</td></tr><tr><td>도미터(메데토미딘 염산염)</td><td>Orion Pharma</td><td>140-999</td><td>0.25 mg/kg</td></tr><tr><td>포비돈 요오드</td><td>Ecolab</td><td>BN4369LE10</td><td>H2O</td></tr><tr><td>Minim의 식염수 PL00033</td><td></td><td>/5017</td><td></td></tr><tr><td>토로이달 자석</td><td>Supermagnete</td><td>R-10-07-03-N</td><td></td></tr><tr><td>자기 마이크로스피어</td><td>Bangs Laboratories</td><td>UMC4N/9692</td><td></td></tr><tr><td>HBSS</td><td>Invitrogen</td><td>14025</td><td></td></tr><tr><td>33G 베벨 바늘</td><td>Hamilton</td><td>7747-01</td><td>사용자 정의 바늘</td></tr><tr><td>루어 팁 주사기</td><td>해밀턴</td><td>80601</td><td></td></tr><tr><td>안티세단(아티페메졸 염산염)</td> <td>오리온 제약</td><td>141-003</td><td>0.25mg/kg</td></tr><tr><td>클로람페니콜 연고</td><td>Medicom</td><td>18956-0005</td><td></td></tr><tr><td>TUNEL 염색 키트</td><td>Promega</td><td>G3250</td><td></td></tr><tr><td>Triton X-100</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T8787</td><td></td></tr><tr><td>DAPI</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D9542</td><td></td></tr><tr><td>Vectashield 마운팅 미디어</td><td>Vector Labs</td><td>H-1000</td><td></td></tr></tbody></table>

실험 녹내장은 안구하는 미소 자석을 투여 한

Experimental Glaucoma Induced by Ocular Injection of Magnetic Microspheres

병태생리학에 대한 이해의 진전과 녹내장에 대한 새로운 치료법을 제공하는 것은 질병의 좋은 동물 모델에 달려 있습니다. 우리는 여기에서 눈의 전방에 자기 미세구를 주입하여 쥐의 안압(IOP)을 높이는 프로토콜을 제시합니다. 자성 입자를 사용하면 사용자가 비드를 홍채각막 각도로 조작할 수 있으므로 섬유주 그물망에서 유체 유출을 매우 효과적으로 차단할 수 있습니다. 이는 장기적인 안압 상승으로 이어지며, 결국에는 신경절 세포층(GCL)의 신경세포 사멸과 이 질환을 앓고 있는 환자에서 볼 수 있는 시신경 병리학으로 이어집니다. 이 방법은 완벽을 기하기 위해 기계, 전문 수술 기술 또는 많은 시간의 연습이 필요하지 않기 때문에 수행이 간단합니다. 또한, 압력 상승은 매우 견고하며 플라스틱 비드를 사용하는 다른 모델과 달리 자기 미세구의 재주입이 일반적으로 필요하지 않습니다. 또한 이 방법은 쥐의 눈에 적응하는 데 적합하다고 생각합니다.

홍채 각막 각도에 자석 구슬의 주입은 지속적으로 처음 지점 3 일 후 분사에서 쉽게 관찰 할 수 있었다 압력 연장하고 강력한 상승 (그림 1), 유도. 또한, 압력의 증가는 실험 기간 내내 유지하였고, 우리 시간 코스에서 18 일 후 분사가 완료되지만, 나머지는 압력이 장기간 지속 3 것으로보고있다. 안압은 컨트롤 실험의 전체 길이에 걸쳐 평균 비 - 주입 된 비드는 비드 눈 주입 눈 40.5 ± 2.8 mmHg로 (P &lt;0.001)에 비해 19.7 ± 0.3 mmHg로 하였다. 또한, 피크 안압은 49.9 ± 2.3 mmHg로 22.8 ± 0.3 mmHg로 증가. 안압의 상승이 망막 신경절 세포의 죽음에 이르게 여부를 확인하기 위해, 우리는 (그림 2) 가로 시신경 섹션에 TUNEL 망막에 염색 및 조직학을 수행 하였다. 망막에서<html> 우리는 높은 안압 비드 주입 눈에 TUNEL 염색 (그림 2A)의 증가를 관찰했다. (; P &lt;0.05도 2B) 사멸 핵의 수는 고혈압 망막 24.5 ± 0.5 세포, 대측 대조군에서 1.6 ± 0.5에서 세포를 약 15 배 증가했다. 또한, 눈에있는 자석 구슬 주입되었지만 압력 (때문에 홍채 각막 각의 불완전 막힘 가능성) 증가하지 않았다, TUNEL 양성 세포의 수는 uninjected 제어 (P&gt; 0.05)과는 유의 한 차이가 없었다. 이는 세포사가 자성 미립자의 직접적인 독성에 기인하지 압력 증가와 관련되었음을 시사한다. 마지막으로, 우리는 녹내장 모델에서 시신경 병변을 조사하고, 이들 세포 과정 (그림 2C)의 변성을 나타내는, 축삭의 많은에 톨루이딘 블루의 축적을 보았다. 우레 1 &quot;SRC =&quot;/ 파일 / ftp_upload / 52400 / 52400fig1highres.jpg &quot;/&gt; 전방에 자기 마이크로 스피어 그림 1. 자기 마이크로 스피어를 사용하여 안압 상승. 주입 반대측 제어, 비 주입 눈에 비해 안압 (IOP)의 강력한 상당한 상승을 유도. Y 축 단위 = 밀리미터 (수은 밀리미터) 수은. 데이터는 = ± SEM을 의미한다. * = P &lt;0.001;. N = (12)이 수치는 폭스 톤 등, 암에서 수정되었습니다. J. Pathol 182 (4) :. 1379년에서 1390년까지. <img alt="그림 2" src="/files/ftp_upload/52400/52400fig2highres.jpg" /> 신경절 세포 층 (GCL)에서 신경 세포의 죽음을 유도 홍채 각막 각도로 자기 미세 주입에 의해 안압 2. 고도 그림. (A) 제어 (왼쪽)와 녹내장 TUNEL (녹색에 의해 세포 사멸 핵 스테인드 (오른쪽) 눈에서 망막의 대표 이미지;안압 상승으로 세포 사멸 핵의 수가 증가 나타내는 흰색 화살표) 및 DAPI (파란색). (B) GCL의 TUNEL 양성 세포의 정량, 높은 안압 (가운데)와 눈에 비해 훨씬 더 많은 사멸 세포를 갖는다는 것을 확인 제어 (왼쪽). 대조적으로, 주입 된 비드 눈 압력 TUNEL 염색에서 유의 한 증가가 관찰되지 않았다 (오른쪽) 상승하지 않았다한다. 데이터는 = ± SEM을 의미한다. * = P &lt;0.05; N = 7-8 (C) 대표 시신경 염색의 이미지, 녹내장 (오른쪽)에서 손상된 축삭의 톨루이딘 블루 축적의 증가 (검은 색 화살표)를 보여,하지만 제어하지 안 (왼쪽).. 스케일 바는 50 μm의 =. 이 수치는 폭스 톤 등 알에서 수정되었습니다., 오전. J. Pathol 182 (4) :. 1379년에서 1390년까지.

우리는 녹내장을 모델링하기 위해 쥐의 눈에 자기 미세구를 주입하여 안압(IOP) 상승을 유도하는 방법을 제시합니다. 이것은 강한 압력 상승과 광범위한 신경 세포 사멸로 이어집니다. 이 프로토콜은 수행하기 쉽고, 반복 주입이 필요하지 않으며, 안정적이고 오래 지속되는 안압 상승을 생성합니다.

Progress in understanding the pathophysiology, and providing novel treatments for glaucoma is dependent on good animal models of the disease. We present ...

본 절차의 목적은 안구 전방에 상자성 마이크로스피어를 주입하여 쥐의 안압을 상승시키는 것입니다. 먼저 마취된 동물의 눈 주변에 자석 링을 배치하고, 자성 마이크로스피어를 세척한 후 용액에 재현탁하여 주사기에 충전합니다. 그다음, 자성 마이크로스피어를 안구 전방에 주입합니다.회수 과정 중에 마그네틱 링을 제거하십시오. 터널 염색(tunnel staining) 또는 시신경 염색과 같은 조직학적 분석을 통해 얻은 프로세스 데이터로 안압 상승으로 인한 망막 신경절 세포의 사멸을 측정할 수 있습니다. 멸균된 8 µm 마그네틱 마이크로스피어 비드를 1 mL의 Hank's balanced salt solution으로 세 번 세척하며, 이때 재현탁 후 10,000 ×g에서 5분 동안 원심분리하십시오.그런 다음 30 mg/mL 농도의 용액이 되도록 0.5 mL의 HBSS에 다시 현탁합니다. 이제 쥐의 눈에 사용할 수 있도록 교정된 리바운드 안압계(rebound tonometer)를 사용하여, 깨어 있는 동물에서 5회의 기저 IOP를 측정합니다. 마취 후에는 쥐의 반대편 눈에 안연고를 도포하여 촉촉하게 유지합니다.마취 과정 중 수술 부위 안구에 국소 마취제인 0.5%propane hydrochloride를 도포합니다. 다음으로, 이 안구를 5%povidone iodine 수용액으로 세척합니다. 5분 후 povidone iodine를 닦아내고 0.9%sterile saline solution으로 안구를 세척합니다.마취 중에 멸균 식염수를 정기적으로 도포하여 안구를 습윤하게 유지하십시오. 이제 홍채 손상 위험과 비드의 손실을 최소화하기 위해 안구 주변에 스테로이드 자석을 배치하십시오. 바늘을 각막 표면에 접선 방향으로, 홍채와 최대한 평행하게 정렬하십시오.30 mg/mL 농도의 감마선 조사된 자성 미세구체를 25 µL 분량으로 전방에 주입합니다. 비드가 IOC 각막각에 안착하여 섬유주망으로부터의 방수 배출을 방해할 수 있도록 주입 후 1분 동안 바늘을 그대로 둡니다. 비드가 처음 안착한 몇 초 후에 바늘의 각도를 약간 조절하여 방수가 일부 누출되게 함으로써 일시적인 안압 상승을 최소화합니다.다른 실험 절차에서 바늘을 계속해서 사용할 수 있도록, 바늘을 PBS로 세척하십시오. 그다음 70% ethanol로 세척하고, 이어서 증류수로 세척합니다. 필요한 경우, 자석을 제거하고 이를 사용하여 비드가 완전히 덮이지 않은 영역으로 비드를 끌어당기십시오.주사 후 20분 동안 자석을 안구 주변에 그대로 둡니다. 이는 비드가 홍채각에 잘 안착되도록 하기 위함입니다. kg당 0.25 mg의 ESOL hydrochloride를 사용하여 마취를 해제합니다.통증 완화를 위해 0.5 propane hydrochloride를 투여하고, 감염 예방을 위해 chloramphenicol 연고를 국소 도포합니다. 동물들이 움직임을 회복할 때까지 가열 패드 위에서 회복하도록 둡니다. 그 후 따뜻한 상자로 옮깁니다.반대측 눈을 평가하지 않는 대조군으로 사용하십시오. 비드 투여 후 2~3일마다, 그리고 그 이후로 2~3일마다 IOP 측정을 반복하십시오. IOP가 반대측 대조군 압력보다 5 mmHg 이상 상승하고 IOP가 60 mmHg를 초과하지 않는 경우를 연구 포함 기준으로 정의하며, 주사 후 1주일 이내에 압력이 기저치로 돌아온 눈은 연구에서 제외해야 합니다. 다만, 필요한 경우 고 IOP가 형성되지 않은 눈에 비드를 재투여할 수 있습니다.적출한 눈과 시신경을 4% paraldehyde에 고정하고, tunnel 염색으로 망막 뉴런 손상을, toine blue 염색으로 시신경 손상을 평가합니다. 본 실험에서 홍채각에 자성 비드를 주입한 결과, 압력이 지속적이고 강력하게 상승했습니다. 또한, 이러한 압력 상승은 실험 기간 내내 유지되었습니다.비드(bead)를 주입하지 않은 대조군 안구의 실험 전체 기간 동안의 평균 IOP는 19.7 ± 0.3 mmHg였으며, 비드를 주입한 안구의 평균 IOP는 40.5 ± 2.8 mmHg였습니다. 또한, IOP의 상승이 망막 신경절 세포의 사멸로 이어지는지 확인하기 위해, 피크 IOP가 22.8 ± 0.3 mmHg에서 49.9 ± 2.3 mmHg로 증가하였습니다. 망막에 대해 Tunnel 염색을 수행하였으며, 망막 내 시신경 횡단면 섹션에 대해 조직학적 분석을 수행하였습니다.IOP가 상승한 비드 주입 안구에서 터널 염색의 증가가 관찰되었습니다. 세포사멸 핵의 수는 대조군인 반대측 고혈압 망막에 비해 약 15배 증가하였습니다. 압력 없이 자성 비드만 주입한 안구의 경우, 기대했던 바와 같이 터널 양성 세포의 수가 비주입 대조군과 유의미한 차이를 보이지 않았습니다. 녹내장 모델의 시신경 병리를 추가로 조사한 결과, 많은 축삭에서 요오드 블루(iodine blue)의 축적이 나타났으며, 이는 이러한 세포 돌기의 퇴행을 나타냅니다.

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Research

연구

JoVE Journal

Medicine

의학

이 비디오는 마취된 쥐에서 상공막 정맥에 고긴장성 식염수를 주입하여 녹내장 유도를 보여줍니다. 식염수는 슐렘관을 통해 섬유주 그물망으로 들어가 조직 흉터를 유발하여 수액 유출을 차단하고 안압을 높입니다. 높은 압력은 망막 신경절 세포를 손상시켜 녹내장을 유발합니다.

쥐에서 녹내장을 유도하기 위한 고긴장성 식염수 주입 기술

이 비디오에서 마취된 쥐는 홍채각막각을 차단하기 위해 자기장 아래 전방에 자기 구슬을 주입하는 안구 시술을 받습니다. 이 막힘은 섬유주 그물망을 방해하여 수액 배출을 막고 안압을 증가시켜 망막 신경절 세포와 시신경을 손상시킵니다. 이것은 녹내장과 같은 상태로 발전합니다.

Experimental Glaucoma Induction via Iridocorneal Angle Obstruction In a Mouse Model

출처: Bosco, A., et al. In vivo Dynamics of Retinal Microglial Activation During Neurodegeneration: Confocal Ophthalmoscopic Imaging and Cell Morphometry in Mouse Glaucoma(신경 퇴행 중 망막 미세아교세포 활성화의 생체 내 역학: 마우스 녹내장의 컨포칼 안과 영상 및 세포 형태 측정).   J. Vis. 특급 (2015년) 이 비디오는 녹내장의 마우스 모델에서 망막 미세아교세포의 생체 내 이미징을 보여줍니다. 형광 단백질 발현 망막 미세아교세포를 가진 형질전환 마우스가 검안경 아래에 위치합니다. 적외선 조명은 시신경두(ONH)를 찾는 데 사용되며, 초점면은 망막 혈관을 랜드마크로 사용하여 설정됩니다. 그런 다음 형광 미세아교세포를 시각화하기 위해 형광 이미징을 사용합니다. 세포체가 커지고 분지 복잡성이 감소하는 것을 특징으로 하는 활성화된 미세아교세포를...

In Vivo Imaging of Retinal Microglia in a Mouse Model of Glaucoma

만성 안구 고혈압 쥐의 눈 섬유주 레이저 광응고술을 사용하여 유도된다. 안압 (IOP)는 레이저 치료 후 몇 개월 동안 상승합니다. 시력 실험 동물의 대비 감도의 감소는 optomotor 테스트를 사용하여 모니터링 할 수 있습니다.

비주얼 결함의 특성을 만성 안구 고혈압의 레이저 유도 마우스 모델

이 동영상은 순진 마우스 시각 투사의 조영 증강 자기 공명 영상과 급성 시신경 압박 손상 및 만성 시신경 변성과 관련된 시신경 변성의 반복 및 종 생체 내 연구에, 임상 3 T 스캐너를 사용하는 방법을 보여줍니다 녹아웃 마우스 (P50 KO).

마우스의 조영 증강 MRI에 의한 시신경 섬유 무결성의 생체 내 이미징

여기서는 관찰 녹내장, 망막 신경절 세포의 손실을 초래 쥐 눈 안압을 유도 프로토콜을 제시한다. 자기 마이크로 비드는 전방에 주입과 방수의 유출을 차단하는 자석을 이용하여 홍채 각막 각도에 매료된다.

자기 마이크로 비드 폐색 모델 마우스의 녹내장 안구 고혈압 종속 유도합니다

녹내장은 망막 신경절 세포의 손상이 특징입니다. 동물 모델에서 녹내장을 유도하면 이 질병에 대한 연구에 대한 통찰력을 제공할 수 있습니다. 여기에서는 생체 내 쥐 모델에서 망막 신경절 세포의 소실을 유도하고 분석을 위한 전체 마운트 망막의 준비를 보여주는 절차를 간략하게 설명합니다.

녹내장 유도 절차<em&gt; 생체</em&gt; 쥐 모델 및 전체 마운트 망막 준비

만성 안구 고혈압 쥐와 쥐, 일치 녹 내장 망막 신경 절 세포의 기능 및 구조 저하로 이어지는 circumlimbal 봉합을 적용 하 여 유도 된다.

쥐와 쥐에 Circumlimbal 봉합에 의해 유도 된 녹 내장의 모델

여기서, 우리는 실리콘 오일의 내카메라 주입에 의해 마우스 눈에 안구 고혈압 과 녹내장 신경 변성을 유도하는 프로토콜을 제시하고 전방 챔버에서 실리콘 오일 제거를위한 절차는 높은 안구 압력을 반환 정상적인.

마우스의 가역성 실리콘 오일 유도 안구 고혈압 모델

이 프로토콜은 마우스에서 프라이밍 된 마이코 박테리아 포도막염 (PMU)을 유도하는 단계를 설명합니다. 이 방법은 마우스 모델 시스템에서 신뢰할 수 있고 강력한 안구 염증을 생성하는 데 도움이 되는 단계를 간략하게 설명합니다. 이 프로토콜을 사용하여 면역학, 전사 및 단백질체학 분석을 통한 추가 평가를 위해 단일 동물에서 포도막 눈과 염증이 없는 동료 눈을 생성했습니다.

감염 후 포도막염의 모델로서의 프라이밍 된 마이코 박테리아 포도막염 (PMU)

이 프로토콜의 목표는 아급성 안구 고혈압을 유발하는 변연 혈관 신경총의 360° 열 소작을 기반으로 하는 녹내장 신경 퇴행의 새로운 모델을 특성화하는 것입니다.

설치류의 외과적으로 유도된 녹내장에 대한 Limbal Vascular Plexus의 전체 원형 소작

학습하세요 쥐의 전방방에 자성 미소구체를 주입하여 녹내장 모델을 구축하는 방법을. 안압 상승과 망막 신경절 세포 사멸을 평가하여 안과 질환 연구에 활용할 수 있습니다.

실험 녹내장은 안구하는 미소 자석을 투여 한

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