Name: 비켜에서 병아리 융모 막 (CAM) 분석 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-10-09T14:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 17 s
Description: 학습하세요 병아리 융모 막(CAM)을 이용한 간세포암종(HCC) 종양 모델 구축 방법을. 3차원 혈관화 종양 성장과 93%의 배아 생존율을 달성하는 이 기법은 종양 혈관신생 연구에 유용합니다.

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A.S.는 미국 국립보건원(NIH), 미국 국립치과 및 두개안면 연구소(5R03DE021741-02) 및 미국 국립 암 연구소(1K08CA154963-01A1)의 보조금으로 부분적으로 지원되었습니다. 
Howard Hughes Medical Institute는 HHMI Medical Research Fellows Program을 통해 M.L.을 위한 자금을 제공했습니다.

1. 계란 부화 <ol><li> 팔일 된 무균 유정란을 얻습니다. </li><li> 계란 트레이, 위쪽으로 향하게 스탬프 끝을 회전에 알을 놓고 계란 인큐베이터 내부의 회전 트레이를 배치합니다. 36 ° C에서 48 시간 50 %의 습도 알을 품어. </li></ol> 2. CAM을 삭제하고 계란 열기 <ol><li> 인큐베이터에서 계란을 수집합니다. 달걀 랙에 넣어 달걀, 최대 측면을 각인하고, 층류 후드에 가져다. </li><li> 룸과 후드 등을 끕니다. </li><li> CAM의 혈관뿐만 아니라 공기 주머니를 노출 계란 캔 들러 가볍게 계란의 스탬프 끝을 잡고. 참고 : 계란 캔 들러가 개발 배아 및 관련 공기 주머니와 혈관을 시각화하는 데 사용되는 광원이다. </li><li> 두 개의 주요 혈관 사이에 연필 표시를합니다. </li><li> 불을 켜고 PE에서 공기 주머니 (스탬프 끝) 위의 계란의 팁과 하나의 구멍에 하나의 구멍을 만들기 위해 멸균 고정 핀을 사용ncil 마크. 푸시 핀을 통해 모든 방법을 밀어하지 마십시오 3mm 주위에 구멍이 깊은 일반적으로 충분합니다. </li><li> 불을 끄십시오. 공기 주머니 위의 구멍에 꽉 열린 끝을 눌러 안전 전구를 짠다. CAM은 연필 마크에서 멀리 쉘에서 드롭하는 원인, 연필 마크의 구멍으로 공기를 끌어 흡입을 적용합니다. </li><li> 공기 주머니가 캔 들러를 사용하여 연필로 표시된 구멍에 계란의 스탬프 끝에서 이동 한 것을 확인합니다. 그렇지 않은 경우, 안전 전구를 사용하여 흡인을 다시 적용한 후 두 구멍 약간 깊게 만들어하는 푸시 핀을 사용한다. </li><li> 불을 켜다. 부착 된 15/16 인치 컷 - 오프 휠 드레 멜 로터리 툴을 켜고 쉘을 통해 잘라 그냥 깊은만큼 두 가로 삭감을하지만 충분히 깊은하지가 우울에 이르기까지 모든 방법을 잘라, 한 손에 계란을 잡고 CAM. 서로 떨어져 길이 2cm과 1cm 주위의 상처를 확인합니다. 직경 1cm 실리콘 링을 통과 할 수 있도록 충분히 넓은 상처를 확인표준 스카치 테이프의 폭보다하지만 얇은. </li><li> 다음, 가볍게 쉘 컷 - 오프 휠을 만져 사이에 두 가로 인하의 끝에서 1 종 컷을합니다. </li><li> 쉘 쉘 조각 및 병렬에서 멸균 집게를 밀어 넣습니다. 집게로 껍질 조각을 잡고 깨끗하게 전체 조각을 제거합니다. </li><li> 제거의 용이성을 위해 자체에 한쪽 끝을 통해 접어 확인하고, 새로 열린 창을 통해 스카치 테이프를 놓습니다. </li><li> 다시 인큐베이터 (NOT 회전 달걀 랙에서) 계란 트레이에 접종 때까지 장소 달걀. </li></ol> 3. 예방 접종 <ol><li> 이러한 매트 리겔과 같이, 지하 세포막 단백질 혼합물을 얼음에 보관 후드 (중합 반응을 방지하기 위해) 및 장소. </li><li> 5 분 동안 조직 문화 인큐베이터에서 - (T75 플라스크 당 5 ㎖의 4) 장소 플라스크 세포를 분리하는 2 mM의 EDTA를 사용합니다. </li><li> 미디어에서 분리 된 세포를 재현 탁하고 혈구와 트리 판 블루를 사용하여 계산합니다. 500,000t 사이에 사용캠에 접목 세포주에 따라 2,000,000 세포 오. 예비 실험에서 적절한 수를 최적화 할 수 있습니다. </li><li> 5 분 동안 500 XG에 적​​절한 휴대폰 번호와 원심 분리기에 필요한 측정 볼륨. </li><li> 뜨는을 취소하고 다음 PBS의 40 μ L ++ 및 기저막 혼합물의 20 μ L에서 세포 펠렛을 재현 탁. 참고 : 셀 / 기저막 혼합물 현탁액에 재현 탁하여 실험에 필요에 따라이 시점에서, 세포는 약물 또는 다른 테스트 제로 처리 될 수있다. 또한, 에이전트는 이식 후 세포 / 지하 막 혼합물 서스펜션에 분주 할 수 있습니다. </li><li> 층류 후드의 보육과 장소에서 계란 계란 랙을 검색합니다. </li><li> 껍질 테이프 창 떨어져, 멸균 집게를 사용하여 극저온 유리 병의 뚜껑에서 1mm 실리콘 링을 검색하고, 창을 통해 반지를 놓습니다. </li><li> 피펫 PBS의 60 μ L 셀 솔루션 ++ 및 기저막 mixtur직접 CAM에 휴식 실리콘 링의 중심으로 전자. </li><li> 다시 테이프 창을하는 인큐베이터에 다시 계란 랙을 이동합니다. 쉽게 치환 될 수있는 링과 세포 현탁액으로 계란을 이동할 때이 시점에서주의하십시오. </li><li> 종양이 5-7일에 대한 성장하도록 허용합니다. </li></ol> 4. 수확 종양 <ol><li> 후드 아래에 패드를 놓습니다. 조직학에 필요한 35 X 10mm 판과 파라 포름 알데히드 용기를 준비합니다. 각 35 X 10mm 판에 1 ml의 PBS ++를 넣습니다. </li><li> 후드에서 생물 학적 가방을 놓습니다. 멸균 해부 가위를 가지고 스탬프 끝 부분 구멍에 계란에 뾰족한 끝을 삽입합니다. </li><li> 길이 방향 전체 계란 주위에 잘라. 참고 : 링과 캠과 종양이 창 쉘의 상단 절반에 충실해야한다. </li><li> 해부 가위와 집게를 사용하여, 멀리 CAM에서 종양을 해부하고, 35 X 10mm 판에서 종양을 배치합니다. 측정하고 종양의 무게. paraformaldehy에 고정 종양드 후 조직 학적 및 면역 조직 화학 실험에 사용할 수 있도록 파라핀-포함. </li></ol> 5. (선택 사항) : 종양 세포 해리 <ol><li> 35 X 10mm 판에서 종양을 말하다 해부 가위를 사용합니다. 15 ㎖의 원심 분리기 튜브에 다진 종양을 붓고 피펫을 통해 가능한 ++ 많은 PBS를 제거합니다. </li><li> (PBS에 1 ㎎ / ㎖ ++) 콜라게나 제 2 mL를 넣어 여러 번에 걸쳐 튜브를 켜고 (몇 시간까지) 적어도 30 분 동안 37 ° C에서 튜브를 품어. </li><li> 각각의 튜브에 5 ml의 미디어를 추가하고 아래로 (20)로 pipetting에 의해 철저하게 재현 탁 - 40 배를. 철저한 피펫은 완전한 세포 분리 중요하다. </li><li> 침전물이 정착 할 수 있도록 허용하고, 새로운 튜브에 뜨는을 전송합니다. 5 분 500 XG에 원심 분리기. 해리 세포 펠렛을 남겨두고, 상층 액을 제거합니다. 주 :이 시점에서, 세포 펠릿을 각종 실험에 사용될 수있다 (유동 세포 계측법, 웨스턴 블 롯팅, RNA 분리 등의 용도 용해). 전체 종양 세포 수는 혈구 및 트립 판 블루 염색을 이용하여 얻어 질 수있다. 작은 타원형 셀 닭 세포이며 CAM으로부터 종양 세포로 간주되어서는 안된다는 참고. 종양이 조심스럽게 CAM에서 멀리 해부 경우 비 종양 (CAM) 세포를 오염 최소한이 있어야한다. </li></ol>

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</ol>

A.S. 연구자가 시작한 임상 시험을 지원하기 위해 Advaxis Pharmaceutical 회사로부터 자금을 지원합니다.

이 프로토콜의 몇 가지 주요 단계는 대부분 개선 된 배아의 생존뿐만​​ 아니라 종양 성장의 신뢰성 증가를 차지하고있다. 공기 주머니에 흡입을 적용하여 멀리 쉘에서 CAM을 삭제하면 (계란, 무딘 절개 등으로부터 알부민을 제거하기 위해 바늘을 사용) 기존의 방법보다 덜 침습적입니다. 이 방법에 필요한 두 개의 작은 구멍을 만들기 위해 멸균 푸시 핀을 사용하는 프로토콜의 가장 어려운 부분이다. 너무 많은 힘을 사용하면 푸시 핀 오버 침투를 통해 CAM과 혈관에 손상을 줄 수 있습니다 또는 균열 또는 계란을 파괴 될 수 있습니다. 체험 연습 푸시 핀을 사용하여 캠을 떨어 뜨리고에서 첫 번째 시도 중에 실수를 최소화 할 수 있습니다 비 수정 된, 식료품-구입 계란에 작은 구멍을 확인합니다. 또, 에탄올 또는 셸을 청소하는 다른 살균제 용액의 사용은 배아 생존율을 감소하고, 피해야한다. 마지막으로, 멸균 실리콘 링을 사용하면 ℃로# 8220; &quot;가축 종양의 높은 비율로 종양의 성장에 도움을 파종하고 기여 후 하나의 특정 위치에...

간세포 암종 (HCC)은 세계에서 1 암 사망률 제 3 주요 원인이다. 현재 간암 환자의 30 %가 잠재적으로 치료 수술 치료 (2)을받을 수 있으며, 전신 항암 화학 요법은 3 효과가 없습니다. 따라서, 새로운 간암 치료 용 임상 가압 충족해야하고, 새로운 에이전트의 효율적인 시험에 적합한 모델 시스템의 개발이있다. 병아리 융모 막 (CAM) 시험은 생체 내에서 잠재적 인 항암 약물을 시험의 재현성, 비용 효율적이고 빠른 중간 처리 방법을 제공한다. CAM 혈관 형성 검정은 4를 연구하기 위해 광범위하게 사용되고있다. 또한 성공적 5 아교 모세포종, 췌장암 6 흑색 7-9, 10-11 및 골육종을 포함한 암의 종양 이종 이식 모델로 개발되었다. 모두 비켜 (12)과 전 비켜에서13 기술은 프로토콜과 프로토콜에 다양한 세부 사항, 문헌에 이용되어왔다. 50 % 11 ~ 14 - 캠 이종 이식 모델에 하나의 주요 과제는 25에 이르기까지 출판 된 병아리 배아 사망률, 계란의 조작 후 배아 사망의 상대적으로 높은 발병률이다. 이 글에서, 우리는 확실하게 조직 학적 분화 간세포 암과 유사한 입체, 혈관 종양의 성장을 생산 간세포 암의 이종 이식 모델 비켜에서의 개발을 설명합니다. 우리는 먼저 Ossowski 등. (14)에 의해 기술 된 프로토콜을 적용하고 매우 높은 종양 생착으로 최대 93 %의 병아리 배아 생존율을 달성했다.

<table><tbody><tr><td>프리미엄 배양 계란</td><td>Charles River</td><td>N/A</td><td>http://www.criver.com/files/pdfs/avian/av_c_spf_egg_price_list.aspx</td></tr><tr><td>계란 인큐베이터</td><td>GQF</td><td>Hova-Bator 2362N</td><td></td></tr><tr><td>회전식 계란 트레이</td><td>GQF</td><td>1611 자동 계란 터너</td><td></td></tr><tr><td>계란 캔들러</td><td>Lyon</td><td>Hi-Power 950-070</td><td></td></tr><tr><td>Dremel 100 회전 공구(15/16 절단 휠 포함</td>)<td>Dremel</td><td>100-N/7</td><td></td></tr><tr><td>멸균 집게, 푸시핀, 해부 가위, 스카치 테이프</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Matrigel</td><td>BD Biosciences</td><td>356234</td><td></td></tr><tr><td>극저온 바이알, 실리콘 와셔가 있는 외부 스레드</td><td>Corning</td><td>430659</td><td></td></tr><tr><td>Clostridium histolyticum</td><td>Sigma</td><td>C9891</td><td></td>의 콜라겐 분해</tr></tbody></table> 효소

<em&gt; 비켜에서</em간세포 암의 효율적인 이종 이식 모델로&gt; 병아리 융모 막 (cam) 분석

The In Ovo Chick Chorioallantoic Membrane (CAM) Assay as an Efficient Xenograft Model of Hepatocellular Carcinoma

병아리 융모 막 (CAM)는 CAM이 종양 이식을위한 이상적인 시스템을 만들고, 자연 면역 결핍 높은 혈관입니다 수정 후 7 일째에 의해 개발을 시작하여 하루 (12)에 의해 성숙. 또한, CAM은 그것을 종양 침윤과 전이를 연구하는 매력적인 모델을 만드는 등 피브로넥틴, 라미닌, 콜라겐, 인테그린 알파 (V) 베타 3, 및 MMP-2와 같은 세포 외 기질 단백질을 포함하고 있습니다. 과학자들은 긴 혈관 신생의 모델로서 사용하여 CAM의 생리 학적 장점을 가지고있다. 최근 CAM 검정 기본 체외 일 더 복잡한 동물 암 모델을 절충 각종 암 이종 이식 생체 내 모델 시스템으로 동작하도록 변형되었다. CAM 분석은 비용과 시간이 효과적이다 중요한 생물학적 시스템에서 종양 성장, 항 종양 치료 및 종양 친 분자 경로의 연구 허용한다. 여기서, 우리는 CAM의 젠의 개발을 기술최대 93 %의 배아 생존율하고 신뢰할 수있는 종양과 간세포 암 (HCC)의 ograft 모델은 세 가지 차원, 혈관 종양의 성장을 선도 걸릴.

프로토콜의 주요 단계의 대표 사진이 여기에 표시됩니다. 그림 1A는 배아, 공기 주머니와 CAM의 혈관을 시각화하기 위해 캔 들러의 사용을 보여줍니다. 그림 1B-1c는 만들어 CAM을 삭제하는 과정을 보여 두 개의 구멍 후 안전 전구를 사용하여 부압을인가하고,도 1d는 성공적 연필 마크 구멍 하에서 큰 기포로 CAM 떨어 나타낸다.도 1E 및도 1F는 필요한 있도록 드레 멜 회전 공구의 사용을 보여 공기 거품과 내에서 노출 된 혈관 캠 셸에서 열린 창 위의 껍질에 상처. 입체, 종양 혈관 성공적 인간 간암 세포주 HUH7 (도 2A-2B)과 PLC / PRF / 5 (도 2C-2D)를 사용하여 배양 하였다. HUH7와 PLC / PRF / 5 세포에서 성장 종양 안녕하세요stologically ...

병아리 융모대질막(CAM)은 면역결핍이며 혈관화가 심하여 종양 성장 및 혈관 신생의 자연스러운 생체 내 모델입니다. 이 프로토콜에서는 CAM 분석을 사용하여 3차원, 혈관화된 간세포 암종(HCC) 종양을 성장시키는 신뢰할 수 있는 방법을 설명합니다.

<em&gt; 비켜에서</em간세포 암의 효율적인 이종 이식 모델로&gt; 병아리 융모 막 (CAM) 분석

The chick chorioallantoic membrane (CAM) begins to develop by day 7 after fertilization and matures by day 12. The CAM is naturally immunodeficient and ...

본 실험의 전반적인 목표는 간세포암의 신뢰할 수 있는 CAM 이종이식 모델을 개발하는 것입니다. 이를 위해 먼저 계란을 배양하여 접종 준비를 합니다. 두 번째 단계로, 계란의 장액성 및 외막 또는 CAM을 떨어뜨리고 계란 껍질에 창을 냅니다.다음으로, 종양 성장을 유도하기 위해 난각 창을 통해 인간 간세포암 세포를 계란에 접종합니다. 결과에 따르면 인간 간세포암 세포주를 사용하여 3차원 혈관화 종양을 성공적으로 성장시켰습니다. 이 프로토콜을 통해 최대 93%의 배아 생존율을 달성했습니다.마우스 종양 모델과 같은 다른 생체 내 기술과 비교했을 때 CAM 분석법의 주요 장점은 짧은 실험 분석 시간, 낮은 전체 실험 비용 및 용이한 재현성입니다. CAM 분석법은 혈관 신생, 종양 세포 침습 및 전이를 연구하는 데 사용할 수 있습니다. 또한 저분자 화합물과 약물이 종양의 성장 및 발달에 미치는 영향을 결정하는 데에도 사용할 수 있습니다.검란, 혈관 확인, 배출 없이 기낭 근처와 알 상단에 작은 구멍 뚫기 등 계란 준비에 들어가는 다양한 단계들이 포함되어 있으므로 이 절차에 대한 시각적 시연이 중요합니다. 계란 껍질을 깨지 않고 창을 절개하고, 모든 과정 동안 배아가 온전하게 유지되는지 확인하는 작업은 초보 사용자에게 어려울 수 있습니다. 시작하려면 배치하십시오.스탬프 표시된 끝부분이 위를 향하도록 회전식 알 트레이에 8일 된 특정 병원균 부재(SPF) 토종닭 수정란을 놓습니다. 회전 트레이를 36 °C, 습도 50%로 설정된 알 인큐베이터 안에 넣고 48시간 동안 부화시킵니다. 부화 후, 스탬프 표시된 끝부분이 위로 오도록 수정란을 알 랙에 배치하고 이를 층류 후드(laminar flow hood) 안에 넣습니다.실내 조명과 후드 조명을 끄고, 계란의 스탬프가 찍힌 끝부분을 계란 검란기에 가볍게 밀착시켜 CAM(chorioallantoic membrane)이라 알려진 병아리의 장요막 혈관 구조와 기낭을 노출시킵니다. 두 개의 주요 혈관 사이에 연필로 표시를 합니다. 그다음, 스탬프가 찍힌 끝부분의 기낭 위쪽 끝에 첫 번째 구멍을 뚫고, 연필로 표시한 지점에 두 번째 구멍을 뚫습니다.멸균된 푸시핀을 사용하여 구멍의 깊이가 약 3 mm가 되도록 뚫습니다. 세이프티 벌브(safety bulb)의 공기를 짠 후, 벌브의 열린 끝부분을 공기 주머니 상단의 구멍에 밀착시킵니다. 벌브를 천천히 놓아 흡입력을 가하면 연필 표시가 된 구멍으로 공기가 빨려 들어가며 캠(cam)이 껍질에서 떨어지게 됩니다.검란기를 사용하여 기낭이 달걀의 스탬프 찍힌 끝부분에서 연필로 표시한 구멍 쪽으로 이동했는지 확인하십시오. 이동하지 않았다면, 두 구멍을 약간 더 깊게 뚫고 세이프티 벌브로 다시 흡입하십시오. 다음으로, 1/16인치 절단 휠 부착물이 장착된 로터리 툴을 사용하여 한 손으로 달걀을 잡으십시오.캠에 닿지 않도록 껍질을 가로질러 횡단 절개 두 곳을 만듭니다. 절개 길이는 2 cm, 간격은 1 cm가 되어야 합니다. 그런 다음, 커팅 휠을 껍질에 살짝 접촉시켜 두 횡단 절개의 끝부분에 종단 절개를 만듭니다.껍질을 제거하려면 멸균 집게를 껍질 조각 아래에 평행하게 밀어 넣으십시오. 집게로 조각을 잡아 깔끔하게 제거합니다. 테이프 한쪽 끝을 접어 고정시킨 다음, 알의 개구부 위에 테이프를 붙입니다.알을 계란 트레이에 담고 접종 전 2~3시간 이내로 회전시키지 않은 상태에서 인큐베이터에 보관합니다. 접종 준비를 위해 Matrigel과 같은 기저막 단백질 혼합물을 얼음 위에 두어 중합 반응을 방지합니다. 다음으로, 플라스크당 2 mM EDTA 용액 4~5 mL를 사용하여 종양 세포를 탈착시키고, 플라스크를 조직 배양 인큐베이터에 5분 동안 둡니다.분리된 세포를 배지에 현탁하고 세포 수를 측정합니다. 세포주에 따라 500,000개에서 2,000,000개 사이의 세포를 사용하여 CAM에 이식합니다. 그다음, 적절한 세포 수를 얻는 데 필요한 부피를 새 튜브로 옮기고 5분 동안 원심분리합니다.500 ×g에서 원심분리한 후 상층액을 제거하고 세포 펠릿을 재부유합니다. 이때 calcium과 magnesium이 포함된 PBS(PBS++) 40 µL와 basement membrane 혼합물 20 µL를 사용합니다. 이 단계에서 세포 현탁액에 약물 또는 기타 테스트 시약을 첨가할 수 있습니다.다음으로, 달걀 트레이를 층류 후드(laminar flow hood) 안에 넣습니다. 달걀의 테이프를 떼어내고, 저온 보관용 바이알(cryogenic vial)에 들어 있는 멸균된 1 mm 실리콘 링을 개구부를 통해 캠 파이프(cam pipe) 위로 떨어뜨립니다. 세포, PBS++, 기저막 혼합물로 구성된 60 µL 용액을 실리콘 링 중앙에 넣고, 창의 테이프를 다시 붙인 후 달걀 트레이를 조심스럽게 배양기로 옮깁니다.종양이 5~7일 동안 성장하도록 둡니다. 종양을 채취하기 위해, 후드 안에 언더패드와 생물학적 위험물 폐기 봉투를 배치합니다.조직학 분석에 필요한 만큼 1 mL의 PBS++가 담긴 35 mm x 10 mm 플레이트와 파라포름알데히드 용기를 준비합니다. 멸균된 해부 가위의 뾰족한 끝을 도장이 찍힌 쪽 끝 근처의 알 구멍에 넣고, 알의 전체 길이를 따라 절개합니다. 그러면 링과 함께 종양 및 캠(cam)이 개구부가 있는 껍질의 윗부분에 붙어 있게 됩니다.해부 도구, 가위 및 핀셋을 사용하여 햄스터(cam)로부터 종양을 추출한 후, 35 mm x 10 mm 플레이트에 놓습니다. 종양의 크기를 측정하고 무게를 잽니다. 조직학 및 면역조직화학 실험에 사용할 수 있도록 종양을 파라포름알데히드(paraformaldehyde)로 고정하고 파라핀에 매립합니다.종양을 적출한 후, 해부 가위로 플레이트 위에서 종양을 잘게 다집니다. 그다음 다진 종양을 15 mL 원심분리 튜브에 붓고 피펫팅을 통해 PBS++를 제거합니다. PBS++에 녹인 1 mg/mL 농도의 collagenase 용액 2 mL를 첨가하고 튜브를 여러 번 뒤집어 섞어줍니다.튜브를 37 °C에서 최소 30분에서 최대 수 시간 동안 배양합니다. 다음으로, 튜브에 배지 5 mL를 첨가하고 피펫팅을 20~40회 수행하여 충분히 섞어줍니다. 이는 세포를 완전히 분리하는 데 매우 중요합니다.침전물이 가라앉은 후, snat을 새 튜브로 옮기고 500 ×g에서 5분 동안 원심분리한 다음, 상층액을 제거하여 분리된 세포 펠릿만 남깁니다. HUH seven 종양 세포를 CAM에 안착시켰을 때, 링 내부에서 혈관이 형성된 종양이 관찰되었습니다. 5일간의 성장 후, CAM 분석을 통한 HUH seven 종양의 조직학적 검사 결과, 종양 세포가 미분화 간세포암 세포와 유사함을 보여주었습니다.이 방법을 사용할 때는 세포 종류나 약물에 따라 특정 최적화 과정이 필요할 수 있다는 점을 유의하는 것이 중요합니다. 예를 들어, 일부 세포주는 3차원 종양을 형성하기 위해 더 높거나 낮은 밀도가 필요할 수 있습니다.

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