Name: 분리 및 다른 세 쥐 흉선 이식의 이식. (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-05-13T14:00:00.000+00:00
Duration: 5 min 47 s
Description: 배우세요 다양한 연령의 기증자 쥐에서 흉선을 분리하여 면역결핍 수용체 쥐의 신장 밑에 이식하는 방법을 통해 T세포 발달과 음성선택을 생체 내에서 분석하는 기술입니다. 이 방법은 면역학 연구에 활용됩니다.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

이 작업은 미국 국립보건원(National Institutes of Health, 1R01AI083269)에서 받은 자금으로 지원되었습니다.

쥐의 연구는 노스 캐롤라이나 채플 힐 대학의 기관 동물 관리 및 사용위원회 (IACUC)에 의해 승인 된 모든 동물 보호는 IACUC 지침에 따라이었다. 신생아 및 성인 Thymi 1. 준비 <ol><li> 이전 기증자 쥐를 안락사에 대한 모든 시약 및 장비를 준비합니다. </li><li> 고압 증기 멸균 또는 기타 적절한 방법으로 수술 도구를 소독. 모든 수술은 멸균 조건을 유지하고, 오염을 방지하기 위해 층류 후드에서 수행되어야한다. 기증자 마우스에서 thymi의 추출을 위해 필요한 도구를 조립합니다. </li><li> 멸균 1X PBS (PH 7.4)와 60mm 요리를 입력하고 후드 내부의 얼음에 배치합니다. 이 전에 이식 기증자 마우스에서 절제 간단히 저장 thymi하는 데 사용됩니다. </li><li> 윤리 지침에 따라, 공동으로 자궁 경부 전위 다음 2 질식을 참수 성인 기증자 마우스로 신생아 기증자 쥐를 안락사. </li><li> R의 경우흉선의 emoval은 : 멸균 흡수 종이 타월에 지느러미 누운 위치에 마우스를 놓고 절개를하기 전에 70 % 에탄올로 스프레이. </li><li> 피부를 통해 중간 선 절개를하여 복부와 흉강을 노출. 흉강을 나타 내기 위해 가슴과 앞발을 통해 피부를 접​​습니다. </li><li> 우수한 종격동 노출과 흉강을 전방에 격막과 흉곽을 통해 두 가지 측면 절개를합니다. 흉선은 바로 위의 두 개의 흰색 로브로 볼 수 있고 마음에 인접한다. </li><li> 캡슐을 방해하지 않도록 특정하고, 미세 집게로 흉선 주위의 결합 조직을 떨어져 애타게. 집게와 흉곽을 다시 누른 상태에서 장기 아래 곡선 집게의 위치를​​ 수직으로 잡아 당겨 흉선의 두 로브를 추출 포셉의 두 번째 쌍을 사용합니다. 이는 신생아 마우스로부터 추출 thymi 해부 범위를 사용하여 수행 될 수있다. </li><li> 60mm 디에 흉선 배치SH 결합 지협을 통해 절단에 의해 얼음과 별도의 흉선 로브에 멸균 1X PBS (PH 7.4)를 포함. 캡슐이 손상되지 않도록 특정 만드는 흉선 로브에서 모든 파편을 제거하고 이식 섹션의 해당 번호로 흉선를 잘라. </li><li> 신생아 쥐에서 얻은 thymi를 조작하지 마십시오. 참고 :이받는 사람 마우스 (받는 사람 당 1 엽)의 최대 사용합니다. </li><li> 4-6받는 마우스의 최대로 성인 마우스로부터 수득 thymi 이식. 그림 1과 같이 신중하게, 성인 흉선 엽을 파악, 포셉 한 쌍을 사용하여, 수술 가위를 사용하여 세 개의 동일한 부분으로 흉선을 잘라. </li><li> 반복 각 기증자 마우스 1.3-1.4 단계를 반복합니다. thymi 노출 시간을 제한하기 위해, 한 번에 한 도너 흉선을 준비한다. </li></ol> 신장 캡슐에서 2 흉선 이식 <ol><li> 표 1에 예비 살균 장치를 조립한다. 적절한 무균기술은 오염 된 도구 나 시약에 이식받는 사람에게 노출되지 않도록하는 절차의 과정에서 활용되어야한다. </li><li> 이전 이식에, 무게 및 각받는 사람 마우스를 태그. </li><li> 층류 후드의 해부 현미경 및 마취 회로를 설정합니다. </li><li> 전기 면도기를 사용하여 수신자 마우스의 좌측 면도와 털이 절개하는데 사용 지역 주위에 남아 있도록. </li><li> 이소 플루오 란 기화기의 전원을 켜고 1 ~ 2 % 사이의 복용량을 사용하여 마우스를 마취. 이전 발가락 핀치 다음 반사의 부재를 확인하여 수술 절차를 시작하기에 적절한 마취를 확인. </li><li> 마우스가 제대로 마취 후, 건조를 방지하고, 다음과 같이 이식 마우스를 준비하고, 마우스 눈 연고 수의학 적용 </li><li> 면도면이 위를 향하도록 오른쪽 측면 누운 위치에 해부 현미경으로 마우스를 놓습니다. StartiNG 외과 영역의 중심에서, 포비돈 요오드 (betadine) 뒤에 전송 일회용 피펫 70 % 에탄올을 사용하여 원을 그리 분배. 절개를 만들기 위해 3 시간 전에 에탄올 / betadine 처리를 반복합니다. </li><li> 사용 해부 가위 직접 신장보다 1-2cm의 측면 절개를합니다. </li><li> 신장에 인접하여 결합 조직을 파악하고 근육 위에 놓 이도록 부드럽게 신장을 들어 올려 매체 집게를 사용. 근육을 통해 노출 된 신장과 장소에 유지하려면, 신장 장골을 방해하지 않도록 특별한주의를 기울이고, 신장 아래 매체 집게의 한 팔을 삽입합니다. </li><li> 조직의 탈수를 방지하기 위해, 신장과 신장 캡슐의 조작이 완료 될 때까지 각 단계 동안 멸균 1X PBS (PH 7.4)으로 신장 관개. </li><li> 미세 집게가 끼지과 신장에서 분리하는 부신에 가장 말단 신장의 가장자리 근처에 캡슐을 들어 올려 사용. </li><li> 18 게이지를 사용하여바늘은 기증자의 흉선 (그림 2A)의 준비 조각을 삽입하기에 충분히 큰 절개를합니다. 시간이 지남에 따라 그래프트의 전위를 방지하기 위해 가능한 한 작은 낭 절개를 유지 특정 확인. </li><li> 캡슐을 유지하는 것은 신장에서 멀리 당겨 동안, 캡슐 아래 이식을 삽입 가능 (그림 2B)로 피막 절개에서까지 앞으로 흉선을 밀어 미세 집게의 두 번째 쌍을 사용합니다. </li><li> 신장 아래에서 집게를 제거하고 부드럽게 절개를 통해 장소에 다시 신장을 반환합니다. </li><li> 복막 벽을 봉합 한 번 폐쇄 betadine을 적용하여 근육을 닫습니다. 봉합이 완료되면, 진피를 닫고 주변부 betadine을 적용 창상 클립을 적용한다. </li><li> 열 램프를 사용하여 예열 된 케이지에 마우스를 돌려줍니다. </li><li> 이 전체 의식과 이동성을 회복 할 때까지 각각의 수술 후 마우스를 모니터와 마우스 그쪽을 배치하지 마십시오(T)는 다른 동물과 케이지에 마취를 다음 회복하지 않았습니다. </li><li> 필요에 따라 수술 후 통증 관리의 약물과 쥐를 치료​​. 예컨대 1.6 mg / ml의 농도로 식수 아세트 아미노펜 등의 수술후 진통제와 마우스를 제공한다. </li><li> 반복 각받는 사람 마우스 2.3-2.9 단계를 반복합니다. </li><li> 1 시간 수술 후 내에서 정상적인 활동에 그 마우스 수익을 확인합니다. 이식 절차의 결과로서 발생하는 합병증을 결정 수술후 중량, 운동 능력뿐만 아니라, 각 마우스의 음주와 급전 활동을 모니터. 주 : 수술 전 중량뿐만 아니라, 이동도 변경 또는 먹는 음료 또는 합병증을 나타낼 수 실패에 비해 수술 후 체중 감소. </li><li> 꼬리 닉 제조업체의 사양에 따라 Lympholyte 세포 분리 미디어를 사용하여 림프구를 분리 한 다음을 통해 마우스를 출혈에 의해 말초 혈액에서 T 세포 재구성을 모니터링합니다. T 세포 characteriza 달성이러한 형광 활성화 숙신 이미 딜 에스테르 (8)과 같은 T 세포 마커 CD3, CD4, CD8 및뿐만 아니라 라이브 죽은 판별에 대한 특정 형광 복합 항체와 림프구를 염색하여 기. 도 3에 도시 된 바와 같이 분석 단봉, 생균 및 CD3 양성 세포상의 게이팅을 통해 달성 될 수있다. </li></ol>

<ol><li>Kappler, J. W., Roehm, N., Marrack, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((T+cell+tolerance+by+clonal+elimination+in+the+thymus%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">T cell tolerance by clonal elimination in the thymus.</a> Cell. 49 (2), 273-280 (1987).</li>
<li>Takahama, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Journey+through+the+thymus%3A+stromal+guides+for+T-cell+development+and+selection%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Rev.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Journey through the thymus: stromal guides for T-cell development and selection.</a> Nat. Rev. Immunol. 6, 127-135 (2006).</li>
<li>Klein, L., Kyewski, B., Allen, P. M., Hogquist, K. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Positive+and+negative+selection+of+the+T+cell+repertoire%3A+what+thymocytes+see+%28and+don%E2%80%99t+see%29%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Rev.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Positive and negative selection of the T cell repertoire: what thymocytes see (and don’t see).</a> Nat. Rev. Immunol. 14 (6), 377-391 (2014).</li>
<li>Schwartz, R. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Acquisition+of+immunologic+self-tolerance%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Acquisition of immunologic self-tolerance.</a> Cell. 57 (7), 1073-1081 (1989).</li>
<li>Kishimoto, H., Sprent, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+defect+in+central+tolerance+in+NOD+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Immunol%22%5BJournal%5D)">A defect in central tolerance in NOD mice.</a> Nat. Immunol. 2 (11), 1025-1031 (2001).</li>
<li>Anderson, G., Jenkinson, E. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Investigating+central+tolerance+with+reaggregate+thymus+organ+cultures%5BTitle%5D)+AND+%22Methods.+Mol.+Biol%22%5BJournal%5D)">Investigating central tolerance with reaggregate thymus organ cultures.</a> Methods. Mol. Biol. 380, 185-196 (2007).</li>
<li>He, Q., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Thymic+development+of+autoreactive+T+cells+in+NOD+mice+is+regulated+in+an+age-dependent+manner%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Thymic development of autoreactive T cells in NOD mice is regulated in an age-dependent manner.</a> J. Immunol. 191 (12), 5858-5866 (2013).</li>
<li>Stewart, C. C., Stewart, S. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chapter+6.+Immunophenotyping%5BTitle%5D)+AND+%22Current+Protocols+in+Cytometry%22%5BJournal%5D)">Chapter 6. Immunophenotyping.</a> Current Protocols in Cytometry. , John Wiley & Sons, Inc. (2001).</li>
<li>Rice, H. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Thymic+transplantation+for+complete+DiGeorge+syndrome%3A+medical+and+surgical+considerations%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Pediatr.+Surg%22%5BJournal%5D)">Thymic transplantation for complete DiGeorge syndrome: medical and surgical considerations.</a> J. Pediatr. Surg. 39 (11), 1607-1615 (2004).</li>
<li>Markert, M. L., et al. Transplantation of thymus tissue in complete DiGeorge Syndrome. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aMarkert%2C+ML+%22N.+Engl.+J.+Med%22">N. Engl. J. Med</a>. 341, 1180-1189 (1999).</li>
<li>Market, M. L., Devlin, B. H., McCarthy, E. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Thymus+transplantation%5BTitle%5D)+AND+%22Clin.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Thymus transplantation.</a> Clin. Immunol. 135 (2), 236-246 (2010).</li>
<li>Wells, A. D., Li, X., Strom, T. B., Turka, L. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+role+of+peripheral+T-cell+depletion+in+transplantation+tolerance%5BTitle%5D)+AND+%22Philos.+Trans.+R.+Soc.+Lond.+B.+Biol.+Sci%22%5BJournal%5D)">The role of peripheral T-cell depletion in transplantation tolerance.</a> Philos. Trans. R. Soc. Lond. B. Biol. Sci. 356 (1409), 617-623 (2001).</li>
<li>Albuquerque, A. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Human+FOXN1-Deficiency+is+associated+with+ab+double-negative+and+FoxP3%2B+T-cell+expansions+that+are+distinctly+modulated+upon+thymic+transplantation%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Human FOXN1-Deficiency is associated with ab double-negative and FoxP3+ T-cell expansions that are distinctly modulated upon thymic transplantation.</a> PLoS One. 7 (5), e37042(2012).</li>
<li>Chinn, I. K., Milner, J. D., Scheinberg, P., Douek, D. C., Markert, M. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Thymus+transplantation+restores+the+repertoires+of+forkhead+box+protein+3+%28FoxP3%29%2B+and+FoxP3-+T+cells+in+complete+DiGeorge+anomaly%5BTitle%5D)+AND+%22Clin+Exp+Immunol%22%5BJournal%5D)">Thymus transplantation restores the repertoires of forkhead box protein 3 (FoxP3)+ and FoxP3- T cells in complete DiGeorge anomaly.</a> Clin Exp Immunol. 173 (1), 140-149 (2013).</li>
<li>Savino, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+thymus+is+a+common+target+organ+in+infectious+diseases%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+Pathog%22%5BJournal%5D)">The thymus is a common target organ in infectious diseases.</a> PLoS Pathog. 2 (6), e62(2006).</li>
</ol>

저자는 공개할 경쟁적인 금전적 이해관계가 없습니다.

흉선 선택을 조절하는 사건은 잘 알려져 있지 않습니다. 최근 연구에서는 선택 효율성의 개체발생적 변화를 입증했습니다. 이 접근법을 다른 형질전환 흉선 기증자 및 수혜자 마우스와 결합하면 흉선 선택을 조절하는 사건 및 매개변수를 식별하기 위한 연구가 더욱 촉진될 것입니다. 특히, 흉선 이식은 예를 들어 기능적 T 세포가 결여된 무척선 영아와 흉선 형성 부전 또는 흉선 무형성증을 특징으로 하는 DiGeorge 증후군 환자에서 나타나는 T 세포 및 흉선 장애의 치료 및 관리에 사용됩니다9-10. 흉선 이식은 대부분의 장기 이식과 마찬가지로 대부분 이식 내성 관련 합병증12 및 자가면역 병리의 발달로 인한 합병증이 없는 것은 아닙니다11. 흉선세포 내성 유도와 관련된 메커니즘을 더 잘 이해하고 특성화해야 할 필요성과 함께 이러한 문제는 이 방법의 개발로 이어졌습니다. 본원에 기술된 프로토콜은 흉선 이식을 실험적으로 모델링하고, 수용자에서 효율적인 T 세포 재구성이 얻어진다는 것...

T는 흉선 세포 발달에 중요한 이벤트가 1을 발생하는 기관이다. 상주 흉선 세포는 T 세포 수용체 (TCR) α 및 β 유전자의 재 배열시, 흉선 (2)의 피질 및 수질 지역 lymphostromal와 항원 제시 세포 (APC)와 일련의 상호 작용을 겪는다. 흉선 양성 선별은 호스트 주요 조직 적합성 복합체 (MHC) 클래스 I 및 II 분자 2-3의 컨텍스트에서 항원 성 펩타이드를 인식 흉선 세포를 생산하기 위해 피질 흉선 상피 세포 (TEC)에 의해 매개된다. 이후 흉선 음의 선택은 수질 TEC 또는 수지상 세포 (DC) MHC 클래스 I 및 II 분자 (3)에 의해 결합 된 자기 단백질로부터 유래 된 것을 본 펩타이드와의 상호 작용에 의해 구동 자기 반응성 흉선 세포의 정화를 수반한다. 이 프로세스의 최종 결과는 광범위한 스펙트럼 응답 할 수 성숙한 CD4 + 및 CD8 + T 세포의 풀의 설립이다외국 항원의 자기 단백질 4 최소한의 반응성을 전시한다. 흉선 선택 이벤트 효율 성숙 흉선, 골수 및 피질 TEC, 흉선 DC의 서브셋 조성물의 주파수 및 흉선 전구체 (3)의 소스를 포함 요인의 호스트에 의해 영향을 받는다. 특히, 비정상적인 흉선 선택은 각각 장애인 부정적 또는 긍정적 인 선택에서 발생하는자가 면역 5 또는 면역 결핍 병리,이 발생할 수 있습니다. 흉선 선택을 조절하는 분자 이벤트는, 그러나, 제대로 이해된다. 체외은 재 응집 흉선 기관 배양 (RTOC) 6으로 접근, 흉선 선택과 관련된 기본 이벤트를 분석하는 데 유용 할 수 있지만 완전히 진행의 역학을 요점을 되풀이하지 입증했다 생체 이벤트에서. 따라서이 흉선 이식 기반 접근법은 생체 (7)에 더 연구 흉선 세포 선택 이벤트에 설립되었다 </s&gt;까지. 이 프로토콜은 면역 결핍 SCID받는 마우스로 신생아와 성인 기증자 마우스에서 thymi 이식에 대해 설명합니다. 이 기술은 양극과 음극 흉선 선택뿐만 아니라, 개체 발생 동안 다양한 T 세포 서브 세트의 흉선 출력을 조절 메커니즘의 연구를 허용한다. 최근에,이 접근법은 흉선 선택의 효율성은 초기 자기 반응성 T 세포의 증가 된 발달 선도 마우스에서 생후 제한된다는 것을 입증하기 위해 사용하고, 외부 항원 7 감소 T 세포 레퍼토리 특정되었다.

<table><tbody><tr><td>에탄올&nbsp;</td><td>Decon Laboratories</td><td>2705HC</td><td></td></tr><tr><td>PBS</td><td>GIBCO</td><td>14190-144</td><td>pH 7.4</td></tr><tr><td>베타딘 솔루션</td><td>Purdue Products</td><td>67618-150-17</td><td></td></tr><tr><td>18 게이지 바늘</td><td>BD</td><td>305195</td><td></td></tr><tr><td>봉합사 (1.0 메트릭)</td><td>Ethicon</td><td>J493G</td><td>18" (45cm)</td></tr><tr><td>AUTOCLIP Wound Clips (9mm)</td><td>Clay Adams&reg; 브랜드</td><td>427631</td><td></td></tr><tr><td>트랜스퍼 피펫</td><td>Fisher Scientific</td><td>13-711-20</td><td>멸균, 일회용</td></tr><tr><td>마우스 anti-CD3 Ab</td><td>eBioscience</td><td>11-0031-85</td><td>클론: 1452C11</td></tr><tr><td>마우스 anti-CD4 Ab</td><td>eBioscience</td><td>48-0042-82</td><td>클론: RM4-5</td></tr><tr><td>마우스 anti-CD8 Ab</td><td>eBioscience</td><td>25-0081-82</td><td>클론: 53-6.7</td></tr><tr><td>Lancet</td><td>Medipoint</td><td>Goldenrod 4mm</td><td></td></tr><tr><td>퍼시픽 오렌지 숙시니미딜 에스테르, 트리에틸암모늄 염</td><td>Invitrogen</td><td>P30253</td><td></td></tr><tr><td>96웰 원형 버튼 폴리프로필렌 플레이트</td><td>Corning</td><td>3365</td><td></td></tr><tr><td>1.2ml 폴리프로필렌 클러스터 튜브</td><td>Corning</td><td>4401</td><td></td></tr><tr><td>5ml 폴리프로필렌 라운드 바닥 튜브</td><td>BD</td><td>352002</td><td></td></tr><tr><td>40uM 나일론 셀 스트레이너</td><td>Falcon</td><td>352340</td><td></td></tr><tr><td>16% 파라포름알데히드 용액, EM 등급</td><td>전자 현미경 서비스</td><td>15710</td><td>유해</td></tr><tr><td>Puralube 광학 연고</td><td>Fisher Scientific</td><td>NC0138063</td><td></td></tr><tr><td>림프폴라이트</td><td>Cedarlane</td><td>CL5030</td><td></td></tr><tr><td>60mm 세포 배양 접시</td><td>Corning</td><td>430196</td><td>60mm x 15mm, 멸균</td></tr></tbody></table>

분리 및 다른 세 쥐 흉선 이식의 이식.

Isolation and Transplantation of Different Aged Murine Thymic Grafts.

흉선 선택의 효과를 조절하는 메커니즘은 잘못 정의 된 남아 있습니다. 생체가 자신과 외부 항원에 특이적인 T 세포의 발달 및 선택 분석 여기에 제시된 방법이 있습니다. 방법은 면역 결핍 SCID받는 사람에 다양한 세 생쥐에서 파생 된 흉선 이식의 이식을 수반한다. 비교적 짧은 시간 동안받는 완전히 주입 흉선 이식편 유래의 T 세포로 재구성된다. 흉선 세포 만 분리시 흉선 시드가 선택을 거쳐 성숙한 T 세포로 발달. 이와 같이, 연령 의존적 흉선 이벤트 함수로서 접목 T 세포의 특성 및 특이성의 변화가 평가 될 수있다. 전문 기술이 성공적 흉선 이식 필요하지만,이 방법은 생체 내 비정상적 흉선 기능 및 / 또는 homeostas의 결과로 인한 또는 병리 광범위한 연구하는 독특한 전략을 제공한다이다.

이 절차의 성공은 최소의 외상 수술뿐만 아니라, 신장 캡슐 밑에 그래프트의 정확한 위치에 의존한다. 도 1에 도시 된 바와 같이 흉선 그래프트 적절히 확보 후속 이식 흉선 섹션 크기로 절단되어야한다.도 1의 개략도에 따라, 신생아 나 성체 생쥐 thymi 일관되고 재현 T 세포의 생착 결과 성공적인 피막 하 이식에 사용될 수있다. 언급 한 바와 같이, 신장 캡슐 밑에 그래프트의 적절한 위치 설정은 이식 장기 생존, 기능 및 혈관 형성을 유지하는데 중요하다. 그림 2에서 보는 바와 같이, 흉선 이식은 신장, 캡슐 절개의 반대쪽에, 부신 (신장의 앞쪽)에 가장 가까운 (신장의 후방) 꼭대기에 배치해야합니다. 성공적인 흉선 이식 적절한 조혈 환경과 결합 할 때, 수, R30주 7 초과 생산이 메인. 이식 후, 생착 말초 혈액으로부터 얻어진 T 세포 분석 유동 세포 측정에 ...

이 보고서는 면역 결핍 마우스 수혜자의 신장 캡슐 아래에 다른 노화 기증자 마우스의 쥐 흉선을 이식하는 방법에 대한 자세한 설명을 제공합니다. 이 접근법의 목표는 생체 내에서 T 세포 발달 및 흉선 선택 이벤트를 모델링하는 것입니다.

The mechanisms that regulate the efficacy of thymic selection remain ill-defined. The method presented here allows in vivo analyses of the development and ...

이 절차의 전반적인 목표는 T세포 발달 과정의 특정 시점에서 T세포의 음성 선택(negative selection)을 생체 내(in vivo)에서 분석하는 것입니다. 이를 위해 먼저 관심 있는 특정 연령의 공여 마우스로부터 흉선을 채취합니다. 두 번째 단계에서는 수용체인 skid 마우스의 신장을 노출시킨 후, 공여 흉선을 신장 캡슐 아래에 외과적으로 이식합니다.마지막 단계에서 수혜체를 폐쇄합니다. 최종적으로, 말초 T-세포 구획의 성공적인 재구성은 유세포 분석법(flow cytometry)을 통해 평가할 수 있습니다. 이 방법은 흉선 선택과 T-세포 생성의 시간적 연구를 가능하게 하여, 기본적으로 T-세포 항원 반응 중 관심 있는 특정 시점의 T-세포 생성 상태에 대한 스냅샷을 제공합니다. 성체 또는 신생 생쥐에서 흉선을 제거하려면, 먼저 동물을 멸균 흡수성 종이 타월 위에 등 쪽이 위로 향하도록 눕히고 털에 70% ethanol을 분사하는 것으로 시작하십시오.그 다음 피부를 통해 정중선 절개를 하여 복강과 흉강을 노출시키고, 피부를 가슴과 앞다리 쪽으로 젖혀 흉강이 완전히 드러나게 합니다. 이어서 횡격막과 늑골을 통해 양측 절개를 두 군데 실시합니다. 상종격동과 전흉강을 노출시키면, 심장 바로 위와 인접한 곳에 두 개의 흰색 엽 형태인 흉선이 보일 것입니다.미세 핀셋을 사용하여 흉선 주변의 결합 조직을 조심스럽게 떼어내되, 캡슐이 손상되지 않도록 주의하십시오. 그런 다음 핀셋으로 흉곽을 벌려 고정한 상태에서, 만곡 핀셋을 흉선 아래에 위치시키고 수직으로 당겨 장기를 적출합니다. 흉선을 얼음 위에 놓인 멸균 PBS가 담긴 60 millimeter 디시에 넣고, 결합 조직을 절단하여 엽을 분리하십시오.이제 캡슐이 손상되지 않도록 주의하며 잔해물을 제거하고, 이식 전 흉선을 이식에 적합한 수의 절편으로 자릅니다. 각 수용 마우스의 무게를 측정하고 태그를 부착합니다. 그런 다음 각 수용 마우스의 왼쪽 측면을 전기 면도기로 제모하여 절개 부위 주변에 털이 남지 않도록 합니다.마우스에게 적절히 마취를 시행한 후, 안구에 동물용 연고를 바르고 털을 제거한 쪽이 위로 향하도록 하여 동물을 오른쪽 가측와위 상태로 해부 현미경 아래에 배치합니다. 그런 다음 수술 부위의 중심부터 시작하여 일회용 전송 피펫을 이용해 70% ethanol을 원형으로 도포하고, 이어서 면봉을 사용하여 포비돈 요오드를 추가합니다. 세 번의 멸균 처리를

isolation-and-transplantation-of-different-aged-murine-thymic-grafts

Research

연구

JoVE Journal

Immunology and Infection

면역학 및 감염학

본 연구진은 흉선의 생체 내 영상 획득을 위한 새로운 실험실 도구 및 프로토콜을 개발하였습니다. 이러한 기술은 T 세포 발달이 일어나는 흉선 내의 "니치(niches)"를 식별하는 데 도움이 될 것입니다.

2 - 광자 현미경을 사용하여 마우스 Thymus의 Intravital 영상

이 비디오는 동종 조혈모세포와 GvHD 유도 비장 동종성 T 림프구를 사용하여 치사량에 방사선 조사를 받은 마우스에서 장 이식편대숙주병(GvHD)의 유도를 보여줍니다. 이 프로토콜은 중증 급성 장 GvHD 모델을 확립하여 질병의 메커니즘을 이해하고 혁신적인 치료 옵션을 개발하는 데 도움이 됩니다.

동종 골수 및 비장 세포 이식을 통한 마우스 모델에서 이식편 대 숙주 질환 유도

꼬리 피부 이식은 생쥐의 동종 면역 반응 중 T 세포 의존적 거부 및 내성 유도를 연구하기 위한 강력한 모델입니다. 이 프로토콜의 장점은 경미한 침습적 수술과 수용 마우스를 희생할 필요 없이 모니터링이 용이하다는 것입니다.

마우스에 동종 CD4 T 세포 반응을 연구하기 위해 테일 피부 이식

여기에서 우리는 분리, 식별 및 마우스 흉선 상피 세포 (TEC는) 정화용 효율적인 방법을 설명합니다. 프로토콜은 정상 T 세포의 발달, 흉선 기능 장애, 및 T 세포 재구성을위한 흉선 기능의 연구에 활용 될 수있다.

격리, 식별 및 쥐과 흉선 상피 세포의 정화

이 기사는 T 세포 자손의 생성, 표현형 및 수의 동역학을 분석하여 흉선 침전 전구 세포를 특성화하는 생체 내 및 시험관 내 방법론에 대해 설명합니다.

흉선의 특성 사용하여 마우스 배아에서 전구 세포를 정착<em&gt; 생체</em&gt;와<em&gt; 체외</em&gt; 분석 실험

고형 장기 및 혈관 복합 동종 이식을 결합하기 위해 경추 비봉합 커프 기술을 사용하여 마우스에서 새로운 이종성 흉벽, 흉선 및 심장 이식 모델을 설명합니다.

마우스의 소설 미세 수술 이소성 모델, 욕실 공산권 가슴 벽, 흉선, 및 심장 이식

쥐의 전체 두께 피부 이식은 동종 설정에 거부 반응을 연구하는 잘 확립 된 모델이다. &gt; C57BL / 6 전층 피부 이식 - 여기, 우리는 BALB / C를 수행에 관련된 각 단계의 튜토리얼을 제공합니다.

쥐의 전체 두께 피부 이식

프로토콜의 목표는 레이저 스캐닝 현미경 마우스 눈의 앞쪽 챔버에 thymic 임 플 란 트에 의해 thymocytes의 경도 intravital 실시간 추적을 보여주는 것입니다. 각 막의 투명도는 이식의 vascularization 지속적으로 녹음 시 조 셀 모집 및 성숙한 T 세포 출구 수 있습니다.

레이저 스캐닝 현미경 검사 법에 의해 눈의 앞쪽 챔버에 Thymocytes의 비보에 추적 실시간

우리는 2'-데옥시구아노신 처리 된 E18.5 흉선을 누드 마우스의 신장 캡슐로 이식하는 간단하고 효율적인 방법을 제공합니다. 이 방법은 흉선 상피 세포 기능과 T 세포 성숙 의 연구에서 보좌관해야한다.

누드 마우스에서 2'-Deoxyguanosine 처리 된 뮤린 배아 흉골의 신장 탈모 이식

여기에서는 쥐 뼈, 골수, 흉선 및 단일 세포 다생물체학(single-cell multiomics)과 호환되는 인간 흉선 조직에서 기질 세포를 분리할 수 있는 프로토콜을 제시합니다.

조혈 장기에서 기질 세포 분리(Stromal Cell Isolation from Hematopoietic Organs)

이 프로토콜은 마우스 자궁경부 심장 이식을 위한 단순화된 끝 투 측면 봉합 문합 기법을 제시하여, 이식 면역학 연구를 위한 견고하고 재현 가능한 모델을 제공합니다.

종단 간 문합 기법을 이용한 경추 이종성 마우스 심장 이식 이식 면역학 연구

배우세요 다양한 연령의 기증자 쥐에서 흉선을 분리하여 면역결핍 수용체 쥐의 신장 밑에 이식하는 방법을 통해 T세포 발달과 음성선택을 생체 내에서 분석하는 기술입니다. 이 방법은 면역학 연구에 활용됩니다.

분리 및 다른 세 쥐 흉선 이식의 이식.

더 많은 동영상 탐색