Name: 차별화 운명의 공간 조직을 프로빙에 대한 인간 다 능성 줄기 세포의 스텐실 미세화 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-06-17T14:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 7 s
Description: 배우세요 인간 다능성 줄기세포의 스텐실 미세화 기법으로 공간적 환경 구배를 생성하여 분화 패턴을 제어하는 방법을. 이 기술은 조직 패턴 형성 연구에 활용됩니다.

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이 작품은 그랜트를 시작 NUS에 의해 (R-397-000-192-133) 및 ETPL 간격 기금 (R-397-000-198-592)를 지원합니다. GS는 NUS 연구 학자이다. 저자는 셀의 미세화에 그녀의 기술 지원을위한 박사 Jiangwa 싱에게 감사의 말씀을 전합니다.

참고 :이 프로토콜은 PDMS 스텐실을 사용하여 hESC의 라인의 레이저 절단 및 미세 가공, H9 1,000 μm의 패턴 PDMS 스텐실의 제조에 대해 설명합니다. 1. 디자인 및 미세화를위한 PDMS 스텐실의 제작 <ol><li> 원하는 형상과 크기 (예를 들면 1000 ㎛의 원) 및 컴퓨터 지원 설계 소프트웨어 (10)를 이용하여 공판 가스켓의 ​​관통 구멍 스텐실 시트 디자인. </li><li> 120-150 μm의 두께 폴리 디메틸 실록산 (PDMS) 시트는 각각 CO 2 레이저 커터 (10)를 사용하여 2mm의 스텐실 시트 및 가스켓을 레이저 컷. </li><li> 미세화 용 PDMS 스텐실을 얻었다 3-4 시간 동안 60 ° C에서 액체 비경 PDMS와 베이크하여 PDMS 스텐실 시트와 함께 PDMS 개스킷 접착. </li><li> 사용 전에 오븐에서 30 분간 건조하고, 120 ℃에서 오토 클레이 빙하여 PDMS 스텐실 소독. </li></ol> 2. hESCs는 홈페이지보수 <ol><li> 문화 hESC의의 37 ° C에서 1 × hESC의 자격을 갖춘 지하 막 매트릭스 코팅 된 세포 배양 접시에 피더 - 무료 유지 보수 매체에 선 및 5 % CO 2. </li><li> 항로가 약 70 %의 디스 파제 치료 37 ° C에서 3 분 배양하여 합류 기계적으로 100 ~ 200 μm의 덩어리로 hESC의 식민지를 해리있는 hESCs는. 6 분할 비율 : 1에서 기저막 매트릭스 코팅 조직 문화 폴리스티렌에 성장 지역의 9.6 cm 2 당 30 ~ 50 덩어리의 밀도에 hESCs는 대단히 짧은 플레이트. </li></ol> 인간 배아 줄기 세포 (3) 스텐실 미세화 <ol><li> 패턴 셀하기 전에 준비 <ol><li> 페트리 접시에 초순수 700 ㎕의 70 % 분석 등급의 에탄올을 분배하고 상단에 스텐실을 배치하여 60mm 페트리 접시 상에 PDMS 스텐실을 밀봉합니다. </li><li> t 밤새도록 바이오 안전성 캐비닛 내부의 페트리 접시를 놓습니다그는 건조 에탄올. </li><li> 더 거품이 스텐실은 페트리 접시와 좋은 물개를 형성하도록 스텐실 아래에 존재하지 않는 확인하십시오. 이는 ECM 코팅 용액의 누출을 방지한다. 이 세포 파종을위한 준비가 될 때까지 무균 조건 하에서 배양 접시 및 저장 인감. </li><li> 분석의 인증서에 따라 hESC의 자격을 갖춘 기저막 행렬의 분취 량을 준비합니다. 영양 혼합물 F-12 (DMEM / F12) 제조 업체의 제품 시트에 따라 각각 나누어지는 수익률 1 둘 베코의 변형 이글 중간의 25 ㎖에 희석 × hESC의 자격을 갖춘 지하 막 매트릭스 솔루션이 있는지 확인하십시오. </li><li> 1.5 × hESC의 정규화 기저막 매트릭스 용액을 만들기 위해 DMEM / F12 16.7 ㎖ 중에 hESC의 정규화 기저막 매트릭스의 한 분취 량을 첨가하여 ECM 코팅 용액을 제조 하였다. 겔화를 방지하기 위해 얼음 모든 ECM 코팅액 유지. </li><li> 10 μM의 ROCK 저해제 (Y27632)와 hESC의 유지 보수 매체를 보충합니다. </li></ol></li><li><strong&gt;는 스텐실 기판 상에 ECM 코팅 <ol><li> 90 초 동안 100 플라즈마 2 호와 페트리 접시를 취급합니다. 불임을 보장하기 위해, 단지 이전에 플라즈마 처리에 플라즈마 챔버 내부의 페트리 접시 덮개를 열고 신속하게 처리 완료 후 페트리 접시를 다시 커버. 이 표면 습윤을 촉진하고 ECM 코팅 용액의 첨가시에 관통 구멍 미세 패턴에서 기포 형성을 방지한다. </li><li> 전체 스텐실 다루 1.5 × hESC의 자격을 갖춘 지하 막 매트릭스 솔루션의 450 μl를 추가합니다. 이러한 파라 필름 등 자기 융착 필름으로 페트리 접시를 밀봉 마르지 용액을 방지하기 위해, 사용하기 전에 37 ℃에서 5 시간 동안 배양한다. </li></ol></li><li> 스텐실 기판 상에 시드 hESCs는 <ol><li> 둥근 단단히 packe의 전형적인 hESC의 형태의 손실을 보여주는 차별화 된 셀 영역을 식별하는 6 웰 플레이트에 hESC의 식민지를 검사합니다 (예를 들어, 손실D 상피 형태, 눈에 띄는 핵소체 높은 핵 / 세포질 비율). 진공 흡입기를 사용하여 차별화 된 영역을 제거합니다. </li><li> 물론 당 2 ml의 DMEM / F12로 두 번 씻으십시오. </li><li> 6 웰 플레이트의 웰 당, 같은 Accutase 등의 소화 효소, 1 ㎖를 추가하고 8 분 동안 37 ° C에서 품어. 기판에서 모든 식민지를 분리 부드럽게 판을 누릅니다. </li><li> 소화 효소 1 ㎖ 당 DMEM / F12의 최소 4 ㎖로 잘 각각 씻어 15 ML 원뿔 튜브에 세포 현탁액을 수집합니다. </li><li> 실온에서 3 분 동안 200 × g에서 세포 현탁액을 원심 분리기. </li><li> 대기음은 상층 액을 제거하고 세포를 다시 일시 중단 ROCK 저해제 (ROCKi)로 보충 hESC의 유지 보수 매체의 400 μl를 추가합니다. 세포 현탁액을 위로 피펫 부드럽게 아래로 3 회는 하나의 세포로 덩어리를 중단 할 수 있습니다. </li><li> 단일 세포 현탁액을 잘 혼합하고 DMEM / F12 (1시 20분 희석) 190 μL로 세포 샘플의 10 μl를 희석. hemocytome를 사용하여운이 스톡 세포 현탁액의 세포 밀도를 결정한다. </li><li> 주어진 스텐실에 필요한 세포 파종 밀도를 계산합니다. 참고 : 예를 들어, 실험적 단셀 합류 단층 약 / mm이 4,444 세포 구하는 세포 접종 밀도를 결정했다. 따라서, 450mm (2)의 영역과 400 μL의 시딩 부피 스텐실는 2 백만 세포 / 400 μL의 밀도가되도록 세포 현탁액을 요구할 것이다. </li><li> ROCKi 보충 hESC의 배양 배지에 필요한 파종 밀도 (단계 3.3.8 참고 참조) 주식 세포 현탁액을 희석. </li><li> 각 공판으로 셀의 필요한 수를 포함하는 세포 현탁액의 지정된 양을 첨가하고 세포를 정착 할 수 있도록 실온에서 5 분 동안 후드 흐트러 페트리 접시를 떠난다. </li><li> 인큐베이터로 배양 접시를 전송하고 세포 부착을 허용하기 위해 1 시간 동안 품어. 동안 배양 접시 수준을 유지하기 위해주의세포가 스텐실에서 단일 층으로 남아 있도록 프로세스를 전송합니다. </li></ol></li><li> 스텐실 제거 및 패터닝되지 않은 기판의 보호 <ol><li> 세포가 제대로 하부 기판에 부착되어 있는지 확인하기 위해 현미경 페트리 접시를 검사합니다. </li><li> 스텐실에서 세포 현탁액을 멀리 대기음. </li><li> 스텐실을 둘러싸는 영역에 DMEM / F12에서 0.5 % 세포 배양 호환 비이 온성 계면 활성제를 2 ㎖ / 접시를 추가한다. </li><li> 부드럽게 스텐실을 벗​​겨 멸균 포셉 한 쌍을 사용합니다. 스텐실이 마르지 세포 않도록 박리 같은 비이 온성 계면 활성제 용액을 주위에 소용돌이. 시각 페트리 접시에 미세 패턴 세포를 관찰합니다. </li><li> 37 ° C에서 10 분 동안 0.5 % 비이 온성 계면 활성제 DMEM / F12 용액 중의 미세 패턴 세포를 인큐베이션. </li><li> 멀리 대기음 비 이온 계면 활성제-DMEM / F12 솔루션입니다. 2 ㎖ / DMEM / F12의 접시로 3 회 반복한다. </li><li> hESC의 2 ㎖ / 요리 추가유지 매체 ROCKi 보충하고 밤새 37 ° C에서 배양한다. </li><li> 하룻밤 동안 배양 후, ROCKi 보충 흡 hESC의 유지 배지, DMEM / F12로 한번 씻어 2 ㎖ / 100 NG / ㎖ 티빈 25 NG / ㎖ BMP4 10 NG / ㎖ FGF2 보충 분화 배지 접시를 추가 mesoendoderm 분화를 유도 . </li><li> 위상차 이미지를 이용하여 미세 패턴을 평가하기 이전에 8 바와 같이 각 패턴에 대한 평균 Brachyury (T) 강도 프로파일을 계산한다. </li></ol></li></ol>

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미세 패턴 스텐실의 제작 스텐실 미세화 틈새 매개 분화 패턴을 조사하기위한 hPSC의 미세 패턴을 생성 할 수있는 이상적인 방법을 제공한다. 이러한 마이크로 콘택트 인쇄, 포토 패터닝과 같은 다른 미세 가공 기술 위에 스텐실 패턴의 주요 장점은 표면 개질을 필요로하지 않고, 종래의 FPC 기판의 기판 상에 구현 될 수 있다는 것이다. 따라서, 다른 hPSC 라인을위한 최적화 된 배지와 ECM 코팅 용이 미세화 스텐실로 전송 될 수있다. 좋은 미세 패턴의 생성에 기여하는 셀 공판의 제조시 주요 단계들이있다. hPSC의 미세 패턴의 설계 형상 재생의 충실도가 스텐실 시트의 품질과 관통 구멍 가공의 일관성에 의존한다. 다세포 micropat 관련된 연구&gt; 1000 ㎛, 제비, 관통 구멍에 직접 프리 캐스트 PDMS 시트에 레이저 가공에 의해 제조 될 수있다. 레이저 가공의 해상도...

배아 줄기 세포 (hESCs는)와 유도 만능 줄기 세포 (hiPSCs)를 포함하여 인간 만능 줄기 세포 (hPSCs)는, 널리 모든 세포 계통으로 인해 분화 가능성의 정상 및 병에 걸린 기관 형성의 실험 모델링뿐만 아니라 재생 의학에 이용된다 삼 배엽 1, 2. hPSCs의 분화 운명은 물리적 단서 3-5에 의해 매개 분비 또는 1 신호 분비뿐만 아니라 mechanotransduction 과정을 조절할 수 지역의 환경 요인에 매우 민감하다. 셀 미세화 공간적 예컨대 세포 - 세포 상호 작용 (6) 및 세포 - 매트릭스 상호 작용 (3)로서, 로컬 셀룰러 미세 환경을 제어하는 수단으로 세포 집단의 형상과 위치를 조직하기 위해 개발 된 기술의 집합을 포함한다. hPSCs의 맥락에서, 셀의 미세화가 틈새 - 의존 방식으로 유의 한 통찰력을 얻기 위해 사용되어왔다엔트 분비 신호는 초기 배아 분화 패턴 (6)에 hESC의 다 능성 분화 결정 (7)과 조직을 변조한다. 2D 및 3D 미세 패턴 hPSCs 차례로 세 개의 배엽으로 분화 8,9 결정 영향 다세포 패턴의 콜로니의 크기를 제어하기 위해 사용되어왔다. 우리는 인테그린-E-cadherin의 누화 세포 운명 얼룩이 열을 일으킬 수 있는지 조사하는 hPSC 콜로니에서 세포 - 세포 및 세포 - 기질 상호 작용의 정도를 조절하는 다세포 hPSC의 미세 패턴을 채용 하였다. 조직 또는 장기 개발 과정에서 성장 인자와 호르몬의 효과를 연구하기 위해 개발 질병 (11)에 대한 약물 독성 검사를위한 실험 모델로 hPSCs의 다세포 미세 패턴의 적용으로 위의 보고서 열려있는 새로운 길에서 데모, 그리고의 형성을 해명하기 조직 패턴. 세포 micropatter의 수많은Falconnet 등의 검토로 닝 기술이 개발되어왔다. 등. (12) 그러나 마이크로 접촉이 7,8,13 인쇄 등 소수에 불과는 마이크로 웰 문화 14, 15, 포토 패터닝은 6 microstencils (16)이 성공적으로 hPSCs로 구현되었다. 미세화의 hPSCs와 도전은 자신의 취약점과 세포 부착과 생존을위한 특정 세포 외 기질 (ECM) 및 성장 조건의 엄격한 요구 사항에 자리 잡고 있습니다. 2D hPSC 패턴의 경우, 마이크로 컨택트 프린팅 조직 배양 및 유리 기판 (13)에 hPSC에 미세 패턴을 생성하기위한 가장 일반적인 방법 중의 하나이다. 상기 방법은 마트 리겔 라미닌 및 기저막 매트릭스를 포함 hPSC 배양에서 사용 패턴 ECM 공통으로 사용될 수있다. 그러나, 일반적으로 폴리 D 라이신의 도움 두 단계의 코팅 공정이 필요하며,이 hPSCs 6,13-에 부착 안정 ECM의 미세 패턴을 특정 불활성 대기 습도 조건을 필요. 각각의 미세 가공 방법의 가장 중요한 고려 사항은 주변에 비특이적 세포 부착을 최소화하면서 표면 개질 체제 원하는 기하학적 해상도 hPSC 접착 ECM 패턴을 생성 할 수 있는지 여부이다. 여기서는 hPSCs가 부착하기위한 종래 접착제 ECM 패턴의 발생을 추가로 표면 개질 단계없이 hPSC에 미세 패턴을 생성하기위한 간단한 방법으로서 공판 미세화의 사용을보고한다. 셀 스텐실 관통 구멍 물리적 ECM 코팅이어서 hPSCs 시드를 포함하는 세포 배양 용 기재 상에 밀봉 크기 밀리미터 미크론으로, 얇은 막, 예를 들면, 폴리 디메틸 실록산 (PDMS) 시트를 포함한다. 스텐실 패턴은 물리적으로 hPSC가 기본 ECM 코팅 된 기판에 직접 액세스하여 첨부 할 수 있습니다 위치를 억제하여 작동,이 방법은 hPSC 문화를 지원할 수있는 다양한 기판과 호환됩니다. 유일한 requirement는 스텐실 재료의 선택은 기판과 가역적 시일을 형성 할 수 있다는 것이다. 이 기판은 기존의 조직 문화 폴리스티렌 (FPC 기판) (17), 리간드 결합 된 기판 (18)뿐만 아니라 가변 강성과 탄성 기판을 포함한다 (예., PDMS) 19. 이 방법은 또한, 적절한 부착 및 hPSCs 분화를 허용하는 그러한 비트로 넥틴 (VTN 또는 단백질), 라미닌 및 기저막 매트릭스 (예, 마트 리겔과 Geltrax)로 상이한 ECM의 코팅을 허용한다. 특정 hPSC 라인 그러므로 우리는 최적화 전송할 수 있습니다 ECM-기판 구성은 최적의 세포 - 매트릭스 접착, 생존 및 분화에 대한 미세 가공 스텐실합니다. 최근, 유사한 방법이 또한 폴리 (메틸 메타 크릴 레이트)를 사용하여 미세화 hESCs는 (PMMA) 공판 마이크로 어레이 간 (16)에 의해 분화를 유도하는 것으로보고되고있다. 셀 스텐실은 다른 재료로 제조 될 수 충족 포함루게릭 병 (20, 21), 폴리 (p- 자일 릴렌) 폴리머 22, 23, PMMA (16)과 가장 일반적으로, PDMS 24-28. 실리콘 및 폴리 (P-크실렌) 폴리머 스텐실은 생물학적 사용자에게 자신의 접근성을 제한하는 특수 장비 20-23로 관통 구멍의 직접 에칭이 필요합니다. PDMS 스텐실은 통상적으로 3 μm 인 2,000 ㎛의 범위 11,26-29 필요한 피처 크기에 따라 다른 방법에 의해 제조 될 수있다. 작은 특성이 요구되는 경우, 얇은 스텐실 시트는 미세 패턴 (28)의 릴리프를 포함하는 미세 가공 된 실리콘 템플릿에서 프레스 성형 PDMS 예비 중합체가 생성 될 수있다. 기능&gt; 1000 μm의 들면, CO 2 레이저 커터 직접 스텐실 제조 동안에 프리 캐스트 PDMS 시트의 패턴을 절단하는 쉽고 저렴한 방법을 제공한다. PDMS 스텐실의 재활용도 충분한 일관성 일련의 실험을 수행하도록 경제적한다. (10) 결과 방법을 조사하기 위해 E-cadherin의 응집력 hESC의 식민지 내의 유착을 중재.

<table><tbody><tr><td>&nbsp; 2mm 두께의 PDMS 시트</td><td>Specialty Silicone Products Inc., USA</td><td>SSPM823-.005</td> 스텐실 120-150 &mu<td>에 대한 저장소를 형성하는 데 사용됩니다</td></tr><tr><td>. m 두께의 PDMS 시트</td><td>Specialty Silicone Products Inc., USA</td><td>SSPM823-.040</td><td>스텐실을 형성하는 데 사용됨&nbsp;</td></tr><tr><td>60mm 페트리 접시</td><td>Nunc Nunclon Delta</td><td>150326</td><td>Substrate</td></tr><tr><td>Accutase</td><td>, Merck Millipore, Singapore</td><td>SCR005</td><td>H9 세포를 단일 세포로 분해하는 효소</td></tr><tr><td>Activin&nbsp; &nbsp;</td><td>R& D Systems, Singapore</td><td>338-AC-010</td><td>H9 분화를 위한 성장 인자</td></tr><tr><td>BMP4&nbsp;</td><td>R& D Systems, Singapore</td><td>338-BP-010</td><td>H9 분화</td></tr><tr><td>플라즈마 시스템을 위한 성장 인자&nbsp;</td><td>Femto Science, 한국</td><td>CUTE-MP</td><td>스텐실</td></tr><tr><td>Dispase</td><td>StemCell의 혈장 산화용; Technologies, Singapore</td><td>7923</td><td>DMEM</td></tr><tr><td>/F12</td><td>GIBCO, 미국</td><td>11330032</td><td>H9 세포용 기저 배지</td></tr><tr><td>FGF2</td><td>R& D Systems, 싱가포르</td><td>233&ndash; FB&ndash; 025</td><td>H9 분화를 위한 성장 인자</td></tr><tr><td>H9 세포주</td><td>WiCell Research Institute, Inc., 미국</td><td>WA09</td><td>인간 배아 줄기세포</td></tr><tr><td>hESC 인증 기저막 매트릭스</td><td>Matrigel, BD Biosciences, Singapore</td><td>354277</td><td>H9 세포의 성장을 지원하기 위한 세포외 매트릭스 코팅</td></tr><tr><td>도립 현미경</td><td>Leica Microsystems, Singapore</td><td>DMi1</td><td>명시야 캡처용 이미지</td></tr><tr><td>레이저 커터</td><td>Epilog Helix 24 레이저 시스템</td><td></td><td>PDMS 시트에 관통 구멍을 생성하는 데 사용됩니다</td></tr>. <tr><td>mTeSR&trade; 1 중간&nbsp;</td><td>스템셀&트레이드; Technologies, Singapore</td><td>5850</td><td>H9 세포용 유지 배지</td></tr><tr><td>PDMS&nbsp;</td><td>SYLGARD&reg; 184, Dow Corning Co., USA</td><td>3097358-1004</td><td>PDMS 스텐실 및 리저브를 붙이는 데 사용됩니다</td></tr><tr><td>. ROCKi Y27632</td><td>Calbiochem, Merck Millipore, Singapore</td><td>688000</td><td>H9 세포를 단일 세포로 유지합니다&nbsp;</td></tr><tr><td>STEMdiff&trade; APEL&trade; 중간&nbsp;</td><td>스템셀&트레이드; Technologies, Singapore</td><td>5210</td><td>H9 세포용 차별화 매체</td></tr><tr><td>폴리에틸렌 테레프탈레이트 필름</td><td>SureMark Singapore</td><td>SQ-6633</td><td>스텐실을 형성하는 데 사용됨&nbsp;</td></tr><tr><td>세포 배양 호환 비이온 계면활성제</td><td>Pluronic acid F-127, Sigma, Singapore</td><td>P2443</td><td>비마이크로패턴 기질에서 세포 부착을 격퇴하기 위한 부동태화 시약</td></tr></tbody></table>

차별화 운명의 공간 조직을 프로빙에 대한 인간 다 능성 줄기 세포의 스텐실 미세화

Stencil Micropatterning of Human Pluripotent Stem Cells for Probing Spatial Organization of Differentiation Fates

배아 줄기 세포와 유도 만능 줄기 세포를 포함한 인간 만능 줄기 세포(hPSC)는 세 가지 생식층 모두로 분화할 수 있는 고유한 능력을 가지고 있습니다. 따라서 재생 의학과 정상 및 질병 기관 형성의 실험적 모델링을 위한 매력적인 세포 공급원입니다. 그러나 in vitro에서 hPSC의 분화는 이질적이고 공간적으로 무질서합니다. 세포 마이크로패터닝 기술은 잠재적으로 줄기세포 미세환경을 공간적으로 제어하고 그에 따른 분화 운명을 조직할 수 있는 수단을 제공할 수 있습니다. 마이크로패터닝: hPSC는 hPSC의 생존 및 유지를 위한 엄격한 요구 사항을 고려해야 합니다. 여기에서는 스텐실 마이크로패터닝을 hPSC와 호환성이 높은 방법으로 설명합니다. hPSC 미세패턴은 세포 스텐실 스루홀의 기하학적 구조에 의해 지정되며, 이는 hPSC가 기저에 접근하여 기저에 부착할 수 있는 위치를 물리적으로 제한합니다. 이러한 작동 모드로 인해 다른 세포 마이크로패터닝 방법에 비해 hPSC를 적절하게 지원할 수 있는 기질을 사용할 수 있는 유연성이 더 커집니다. 또한 hPSC 미세패턴의 성공적인 생성을 위한 중요한 단계를 강조합니다. 예를 들어, hPSC의 스텐실 마이크로패터닝을 사용하여 세포-세포 및 세포-매트릭스 접착의 공간 편광을 조절할 수 있으며, 이는 다시 중내배엽 분화 패턴을 결정합니다. hPSC를 마이크로패턴화하는 이 간단하고 강력한 방법은 초기 배아 발달 동안 조직 조직과 패터닝을 조사하기 위한 실험 모델을 수립할 가능성을 넓힙니다.

이 논문은 1000 ㎛의 특징을 생성하는 레이저 커터를 사용하여 셀 공판의 제조를 설명한다. 스텐실은 두 부분으로 구성되었다 : 얇은 스텐실 시트의 관통 구멍을 포함하는 미세 패턴 (두께 약 100 ~ 200 μm의) 및 ECM 코팅 용액 또는 세포 현탁액을 포함하는 PDMS 개스킷. 여기서, 127 μm의 두께 2mm 시판 PDMS 시트 각각 스텐실 시트 개스킷을 사용 하였다. 예컨대 스핀 코팅과 같은 제어 가능한 두께의 PDMS 시트를 제조하는 다른 방법은 또한 부품을 제조하는데 사용될 수있다. 두 성분은 접착제로 결합 플라즈마 액체 비경 PDMS 예비 - 가교제의 혼합물을 사용하여 접합하고, 3-4 시간 동안 60 ° C (도. 1)에서 소성 하였다. 스텐실 시트의 재질은 세포 배양 물 (S)의 선택에 기초하여 선택 하였다u...

인간 만능 줄기 세포 (hPSCs)는 차별화 별개의 조직 패턴으로 자기 조직하는 고유 능력을 가지고; 이 공간 환경 그라데이션의 표현을 필요로하지만. 우리 hPSC 분화 패턴을 제어하기위한 생화학 적 및 기계적 그라디언트를 생성하는 간단하고 강력한 방법으로서 공판 미세 패턴을 제시한다.

Human pluripotent stem cells (hPSCs), including embryonic stem cells and induced pluripotent stem cells, have the intrinsic ability to differentiate into ...

인간 다능성 줄기세포를 위한 이 스텐실 기반 마이크로패터닝 방법의 전반적인 목표는 줄기세포 분화 패턴을 조절하는 공간적 환경 구배를 생성하는 단순하고 견고한 수단을 제공하는 것입니다. 이 방법은 세포-세포 및 세포-기질 접착력의 공간적 구배가 줄기세포 분화 운명의 조직화에 어떻게 기여하는지와 같이, 인간 줄기세포 모델을 이용한 조직 패터닝의 핵심 질문에 답하는 데 도움을 줄 수 있습니다. 이 방법의 장점은 세포가 부착될 수 있는 세포 접착성 ECM 패턴을 생성하기 위해 추가적인 표면 개질이 필요하지 않다는 점입니다.이는 해당 방법이 각 세포주에 특화된 다양한 ECM 및 기질 구성과 호환됨을 의미합니다. 마이크로패턴 형성 단계는 학습하기 어렵기 때문에, 이 방법에 대한 시각적 시연이 매우 중요합니다. 이는 스텐실과 세포를 정밀하고 세심하게 다루어야 하기 때문입니다.본 절차를 위해 PTMS 스텐실이 이미 설계 및 제작되어 있어야 합니다. 마찬가지로, 절차 후반부에 세포 파종이 가능하도록 기저막 매트릭스(basement membrane matrix)에서 인간 EFC 세포를 배양하십시오. 우선, 디쉬에 초순수로 희석한 70% 분석 등급 에탄올 700 microliters를 채웁니다.그 다음, PDMS 스텐실을 용액 위에 놓고 디쉬를 생물안전작업대(bio-safety cabinet)에 넣어 하룻밤 동안 건조시킵니다. 다음 날, 스텐실 아래에 기포가 형성되지 않았는지 확인하십시오. 그런 다음, 세포를 스텐실 위에 파종할 수 있을 때까지 디쉬를 보관하십시오.DMF12 16.7 milliliters를 첨가하여 1.5x 농도의 인간 ESC-품질 기저막 매트릭스 분주액을 준비하고 얼음 위에 보관하십시오. 기판을 100 watts의 산소 플라스마로 90초 동안 처리하십시오. 디쉬는 플라스마 챔버 내부에 있을 때까지 열지 말고, 처리 후에는 빠르게 덮으십시오.이 처리는 기질을 용액에 담글 때 기포가 형성되는 것을 방지합니다. 이제 준비된 1.5x basement membrane matrix 용액 450 µL를 스텐실 위에 덮습니다. 그런 다음, 파라필름으로 디쉬를 밀봉하고 5시간 동안 배양합니다.진행하기 전에, 준비된 HESC 콜로니가 담긴 6-웰 플레이트를 확인하십시오. 전형적인 HESC 형태를 잃고 분화된 세포 콜로니를 식별하여 흡입 제거하십시오. 모든 콜로니는 둥근 모양이어야 하며, 조밀하게 밀집된 상피 형태와 뚜렷한 인을 가진 높은 핵-세포질 비율을 보여야 합니다.그런 다음, 플레이트에 도말된 세포의 각 웰을 2 mL의 DMF12로 2회 세척합니다. 두 번째 세척 후, accutase와 같은 소화 효소 1 mL를 각 웰에 첨가하고 플레이트를 37 °C에서 8분 동안 배양합니다. 배양 후, 플레이트를 가볍게 두드려 기질에서 모든 콜로니를 분리합니다.다음으로, 각 웰에 가해진 소화 효소 1 mL당 최소 4 mL의 배지를 사용하여 각 웰을 헹구고, 세포 현탁액을 하나의 15 mL 원추형 튜브에 수집합니다. 실온에서 200 g로 3분간 원심분리하여 세포 펠렛을 형성합니다. 그런 다음 상층액을 흡입하여 제거하고, 10 µM의 ROCK 억제제가 첨가된 400 µL의 HESC 유지 배지에 세포를 재현탁합니다.세포 덩어리를 분산시키기 위해 세포를 부드럽게 3회 트리튜레이션합니다. 그다음, 현탁액의 밀도를 조정합니다. 잘 혼합한 후, 배지에서 200 microliter의 1:20 희석액을 만듭니다.헤모사이토미터를 사용하여 희석액의 세포 수를 측정하십시오. 그 다음, rock 억제제가 포함된 배지를 사용하여 주 현탁액을 필요에 따라 희석하십시오. 계속 진행하려면, 준비된 각 스텐실에 필요한 수의 세포를 분주하십시오.세포가 단층으로만 증착되어야 하므로, 세포를 고르게 펼쳐줍니다. 세포가 가라앉을 수 있도록 스텐실을 5분 동안 그대로 둡니다. 그런 다음, 이동하는 동안 디쉬의 수평을 유지하며 적재된 스텐실을 인큐베이터로 조심스럽게 옮깁니다.1시간 동안 배양하여 세포가 스텐실에 부착되도록 합니다. 세포 부착이 완료되면, 현미경으로 관찰하여 세포가 적절하게 부착되었는지 확인합니다. 스텐실을 다시 후드로 옮기고, 부착되지 않은 세포를 스텐실에서 흡입하여 제거합니다.다음으로, 스텐실 주변 영역에 DMF12에 희석된 0.5% 호환성 비이온성 계면활성제 2 mL를 첨가합니다. 용액을 흔들어 스텐실 전체를 덮습니다. 그런 다음, 멸균된 핀셋을 사용하여 접시에서 스텐실을 조심스럽게 떼어냅니다.스텐실을 제거한 후, 현미경으로 마이크로패턴화된 세포를 관찰하십시오. 비이온성 계면활성제는 이러한 세포들이 건조되는 것을 방지합니다. 계면활성제가 첨가된 배지 용액에서 마이크로패턴화된 세포를 37 °C에서 10분 동안 배양하십시오.10분 후, 용액을 흡입하여 제거하고, 2 mL의 일반 DMF12 배지로 플레이트를 3회 세척합니다. 세척 후, 록 억제제(rock inhibitor)가 포함된 HESC 유지 배지 2 mL를 첨가합니다. 다시 한번 세포를 관찰하여 마이크로패턴이 적절하게 형성되었는지 확인합니다.그 다음, 세포를 37°C에서 하룻밤 동안 배양합니다. 다음 날, 배지를 흡입하여 제거하고 DMF12로 세포를 한 번 세척한 후, 세포의 중내배엽 분화를 유도하기 위해 보충제가 첨가된 분화 배지 2 mL를 첨가합니다. 이후 결과를 분석합니다.레이저 커터를 이용한 세포 스텐실 제작을 통해 1000 µm 크기의 특징물을 구현하였습니다. 해당 스텐실은 미세 패턴의 관통 구멍이 있는 얇은 스텐실 시트와 세포를 가두기 위해 사용되는 PDMS 가스켓으로 구성되었습니다. 이 도구를 사용하여 중배엽-내배엽 분화 과정 중의 미세 패턴화된 HESCs를 연구하였습니다.H9-HESC 콜로니 주변부는 콜로니 내부의 세포보다 인테그린 접착이 더 높게 나타납니다. 따라서 이 세포들에 activin, BMP4 및 FGF2를 처리하여 유도하면 brachiary T-양성 중내배엽 세포로 분화합니다. 이러한 세포들을 서로 다른 기하학적 구조의 단층으로 패턴화했을 때, 기하학적 및 등방성 직각과 볼록한 곡률 부위에서 인테그린 매개 견인력의 국소적 집중이 일어났으며, 이는 중내배엽 분화의 증가로 이어졌습니다.단일 콜로니 내의 서로 다른 위치에서 T 발현 강도를 확인한 결과, meso endoderm 유도의 정도가 정사각형 및 직사각형 콜로니의 날카로운 모서리와 반원형 호의 볼록한 곡률 부위에서 실제로 더 높게 나타났습니다. 이는 세포 접착으로 매개되는 기계적 힘이 설명된 방법을 통해 조절될 수 있음을 보여줍니다. 본 절차를 수행하기 전에, 사용하는 특정 인간 만능 줄기 세포주에 맞게 매트릭스 코팅 시간, 세포 소화 및 부착 시간을 최적화하는 것이 중요합니다.

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Research

연구

JoVE Journal

Developmental Biology

발생생물학

특정 세포로 hESCs의 감독 차별은 재생 의학에 많은 관심을 생성했다. 우리는 결정을위한 간결하고 단계별 절차를...

기형 종의 형성에 의해 인간 배아 줄기 세포의 운명 매핑

단일 세포 유전자 발현 분석은 줄기 세포 이질성을 이해하는데 필요하다.

정량적 RT-PCR에 의해 개별 인간 배아 줄기 세포를 프로파일 링

분화된 인간 신경 줄기세포(hNSCs)에서 miRNA의 변화를 특성화하기 위한 목적으로 3차원 시스템에서의 hNSC 분화, miRNA PCR 어레이에 의한 microRNA 발현 변화 평가, miRNA 표적 예측을 위한 컴퓨터 분석 및 이중 루시페라제 분석에 의한 검증에 대해 설명합니다.

3 차원 문화, 마이크로 RNA의 분석 및 추정 적 표적 유전자에 인간의 신경 줄기 세포 라인의 차별화

여기, 우리는 인간의 만능 줄기 세포 (hPSC) 문화 프로토콜, hPSCs CD34로 차별화 하는 데 사용 현재+ 조 혈 창시자. 이 방법은 단계 특정 조작 정식 WNT 신호 독점적으로 프로그램 중 하나는 확실 한 또는 원시 조 혈 세포를 지정 하려면 사용 합니다.

기본 및 확실 한 조 혈 창시자 인간 만능 줄기 세포에서의 감독

선물이 epigenomically 안정 순 preimplantation epiblast 같은 만능 상태로, 대량, 효율적이 고 신속한 화학 귀선 기존의 혈통 액 인간 만능 줄기 세포 (hPSC)의 대 한 프로토콜. 이 방법은 기존의 hPSC 라인의 광범위 한 레 퍼 토리에 걸쳐 감소 혈통 액 유전자 발현과 감독된 multilineage 차별화에 표시 되어 있는 개선에 발생합니다.

향상 된 Multilineage 차별화 힘으로 순진한 같은 상태로 기존의 인간의 Pluripotent 줄기 세포의 화학 귀선

여기에 제시된 방법은 포유류 문화 내에서 공간 조직을 드러내기 위하여 양적 화상 진찰과 함께 마이크로 패터닝을 이용합니다. 이 기술은 표준 세포 생물학 실험실에서 확립하기 쉽고 시험관 내에서 패터닝을 연구할 수있는 견인 시스템을 제공합니다.

마이크로패턴과 정량적 이미징을 사용하여 포유류 세포의 응급 공간 조직 매핑

세포외 매트릭스 리간드는 폴리아크릴아미드 하이드로겔에 패턴화되어 밀폐된 콜로니에서 인간 배아 줄기 세포의 배양을 준수기판에 사용할 수 있습니다. 이 방법은 견인력 현미경 검사법 및 생화학 적 분석을 결합하여 조직 기하학, 세포 생성 힘 및 운명 사양 간의 상호 작용을 검사 할 수 있습니다.

조직 수준 역학을 제어하기 위해 준수 기판에 인간 배아 줄기 세포 식민지의 기하학적 패터닝

세포 재프로그래밍은 다능성 세포 상태를 조절하고 유지하는 주요 유전자의 도입을 요구합니다. 기술된 프로토콜은 바이러스/통합 방법 없이 인간 진피 섬유아세포로부터 유도된 만능 줄기 세포(iPSCs) 콜로니의 형성을 가능하게 하지만, 세포 방어 메커니즘을 감소시키는 면역 회피 인자와 결합된 비변형 RNA(NM-RNAs)를 사용한다.

비통합 방법을 사용하여 복부 피부에서 성인 인간 진피 섬유 아세포의 분리 및 유도 만능 줄기 세포의 생성

이 프로토콜은 생물 공학 적 배경이 제한된 사람들이 간단하고 접근 할 수있는 리소 그래피프리 마이크로 패터닝 방법을 소개합니다. 이 방법은 세포 형태를 변조하기 위한 관심있는 모양의 마이크로 패턴 세포 외 매트릭스 단백질에 맞춤형 레이저 컷 스텐실을 활용합니다. 미세 패터킹에 대한 절차는 유도 만능 줄기 세포 유래 심근 세포를 사용하여 입증된다.

레이저 컷 스텐실을 사용한 간단한 리소그래피 없는 단일 셀 마이크로패터닝

당사는 2D 및 3D 인간 유도 다능성 줄기세포(hIPSC)의 생성 및 특성화에 대한 상세한 프로토콜뿐만 아니라 1차 실슘(PC) 생체 발생 및 기능의 질적 및 정량적 분석을 가능하게 하는 보완적 방법론을 제시합니다.

2D 및 3D 인간 유도 만능 줄기 세포 기반 모델은 신코르티컬 개발 중 1 차용성 개입을 해부합니다.

사용 가능한 만능줄기세포(PSC)-기능성 세포 분화 시스템은 현재 심각한 line-to-line 및 batch-to-batch 변동성 문제로 인해 어려움을 겪고 있습니다. 여기에서는 심장 분화를 주요 예로 사용하여 이미지 기반 기계 학습을 기반으로 PSC 분화 과정을 지능적으로 모니터링하고 조절하는 프로토콜을 제시합니다.

만능줄기세포 분화를 모니터링하기 위한 살아있는 세포 이미지 기반 기계 학습 전략

배우세요 인간 다능성 줄기세포의 스텐실 미세화 기법으로 공간적 환경 구배를 생성하여 분화 패턴을 제어하는 방법을. 이 기술은 조직 패턴 형성 연구에 활용됩니다.

차별화 운명의 공간 조직을 프로빙에 대한 인간 다 능성 줄기 세포의 스텐실 미세화

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