Name: 체외 임피던스 분광학을 사용하여 혈액 - 뇌 장벽 모델 : T 세포 - 내피 세포 상호 작용에 초점 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-12-08T12:30:00.000+00:00
Duration: 10 min 17 s
Description: 배우세요 체외 임피던스 분광학을 활용한 혈액-뇌 장벽 모델에서 T 세포와 내피 세포 상호작용이 장벽 기능에 미치는 영향을 실시간으로 평가하는 방법을. 이 기법은 자가면역 중추신경계 질환 치료 연구에 활용됩니다.

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우리는 봉사자 측정에 관한 도움이 토론 아니카 Engbers과 우수한 기술 지원을위한 프랭크 커스 박사 마르쿠스 SCHAFER (nanoAnalytics GmbH의)에 감사하고 있습니다. 이 작품은, HW 및 LK, CRC TR128에 SFB1009 프로젝트 A03는 A08 돌출 독일 연구 협회 (DFG)에 의해 지원되었다; Z1 및 B01는 LK 및 LK에 HW 및 (뮌스터의 의료 학부) 임상 연구를위한 학제 ​​간 센터 허가 번호 KL2 / 14분의 2,015합니다.

동물 보호를위한 독일 가이드 라인에 따라 모든 실험에서, 쥐 사육하고 뮌스터 대학의 중앙 동물 시설에서 특정 병원균이없는 조건에서 유지했다. 모든 실험은 동물 실험 윤리위원회의 지침에 따라 수행 노르 트라 인베스트 팔렌, 독일 (LANUV, AZ 84-02.05.20.12.217)의 지방 당국에 의해 승인되었다. 1. MBMEC 분리 및 문화 참고 : 이전에 다음과 같이 수정하여 상세 (14)에 설명 된대로 MBMECs을 분리 : <ol><li> CO 2 흡입 (6-8 주 이전) (20) 성인 C57BL / 6 마우스를 희생 심장 및 호흡 정지를 확인하는 그들의 죽음을 확인합니다. </li><li> 70 % 에탄올로 마우스를 씻어 가위를 사용하여 목을 벨; 집게와 가위를 사용하여 두피를 제거합니다. 난원 매그넘부터 두개골의 좌우에 절개를 만든다. 그것의 꼬리 측과 탁에서 두개골을 들어 올려집게로 뇌를 전자. </li><li> 층류 후드 만 피질 유지 페트리 접시에 뇌를 배치하고, 뇌간, 소뇌 및 시상을 제거 무균 핀셋을 사용한다. 참고 : 현미경의 사용이 단계의 필요하지 않습니다. </li><li> 멸균 웨스턴 블로 팅 종이 위에 피질을 놓고 수막 더 이상 볼 수 있습니다 때까지 핀셋으로 가볍게 롤하지 않습니다. </li><li> (프로토콜 14 아래) 기계적 및 효소 분해 후 긴 멸균 바늘과 5 ml의 플런저를 사용하여 밀도 구배에서 내피 세포를 수집한다. 내피 세포는 적혈구와 레드 링 위의 어두운 층으로 나타납니다. 새로운 50 ㎖ 원심 분리 튜브에이 계층의 양도 20 ~ 25 ml의; DMEM과 튜브를 맨. </li><li> 세탁기 (14)의 두 라운드 후, 퓨로 마이신을 함유 MBMEC 매체 (4 μg의 / ㎖)의 용액에 6 세포를 재현 탁하고, 24 웰 플레이트의 웰에 코팅 여섯을 시드; 조직에서 그들을 떠나37 ° C, 5 % CO 2 인큐베이터에서 배양을 사흘 동안 (여기서부터 &quot;인큐베이터 &#39;이라 함). 참고 : MBMEC 코팅 용액의 자세한 내용은 자료 표를 참조하십시오. </li><li> 퓨로 마이신없이 신선한 MBMEC 매체의 각 웰에 1 ml에 첨가하여 배지를 변경; 두 개 더 일 다시 37 ° C와 5 % CO 2의 접시를 넣어. </li></ol> 2. 수확 MBMECs <ol><li> MBMEC 분리 후 5 일째에, MBMEC 코팅액으로 미리 도포 투과성 인서트 : 인서트 당 용액 80 μl를 첨가하고 3 시간 동안 CO 2, 37 ℃ 그대로두고 5 %. </li><li> 조심스럽게 코팅 용액을 피펫 30 분 동안 삽입 자연 건조를 할 수 있습니다. 매체 씻어 MBMECs을 사용하여 웰 플레이트의 각 실온 2 ㎖ (RT) PBS 추가; 이 단계를 반복합니다. 0.05 % 트립신 - EDTA (물론 당 300 μl를) 추가하고 5 ~ 10 분 동안 인큐베이터에서 접시를 둡니다. </li><li> 중지 각 웰에 MBMEC 매체의 2 ML을 추가트립신. 15 ㎖의 원심 분리 튜브에 수집 된 세포를 전송하고 4 ℃에서 8 분 동안 700 XG에 그들을 원심 분리기. 뜨는을 취소하고 퓨로 마이신없이 MBMEC 매체의 1 ml의 세포를 재현 탁. </li><li> 세포를 계산; 0.04 % 트리 판 블루 90 μL (세포의 10 배 희석)와 세포 현탁액의 10 μl를 섞는다. 피펫 유리 커버 셀 카운팅 챔버 (혈구) 사이 혼합물 10 μL. 챔버 (N)의 네 사분면에 트리 판 블루 무료 세포를 카운트하고 카운트 세포 (N &#39;)의 평균 수를 결정 다음과 같이 N&#39;= N / 4. </li><li> 다음 식을 사용하여 (106 세포 / ㎖로) 세포 농도를 계산 : C = N &#39;× 104는 혈구의 크기에 의해 지정된 10 단계 2.4에서 희석 계수이다 × 10 × 104. </li><li> 시드 인서트 당 260 μL의 부피에 2 × 104 세포. 물론 각각의 하부 구획에 MBMEC 매체의 810 μl를 추가. 섹션 4를 진행 준비가 될 때까지 인큐베이터에 삽입와 함께 접시를 놓습니다. 참고 : 상부 및 하부 구획의 볼륨을 삽입 특정하고 모든 24 웰 형식에 대해 작동하지 않습니다. </li></ol> 3. CD4 + T 세포의 분리 및 자극 <ol><li> CD4 + T 세포 분리 <ol><li> CO 2 흡입에 의해 (6-8 주 이전) 성인 마우스를 희생 심장 및 호흡 정지를 확인하는하여 죽음을 확인합니다. </li><li> 깨끗한 절개 보드의 뒷면에 마우스를 놓고 70 % 에탄올로 씻어; 비장과 림프절 (사타구니, 겨드랑이, 상완과 자궁 경부를) 복막을 열고 제거 멸균 가위와 집게를 사용; 마지막으로, 얼음 PBS 5 ㎖를 함유하는 15 mL의 원심 분리 튜브에 조직을 옮긴다. </li><li> 층류 후드에서 상부에 70 μm의 셀 스트레이너와 50 ㎖ 원심 분리 튜브로 조직을 PBS로 경사 분리하여 조직을 전송; 균질화스트레이너를 통해 1 ML의 플런저를 눌러 조직. </li><li> 4 ℃에서 5 분 동안 500 XG에 FACS 버퍼와 원심 분리기를 30 ML을 추가합니다. 상청액을 폐기하고 FACS 완충액 10ml에 세포를 재현 탁. 튜브에 FACS 버퍼의 또 다른 20 ㎖를 추가, 40 μm의 셀 스트레이너를 통해 정지를 필터링합니다. </li><li> 4 ℃에서 5 분 동안 500 XG에 그것을 원심 분리기. 뜨는을 취소하고 FACS 버퍼 500 μL의 세포를 재현 탁. </li><li> 마우스 CD4 자기 마이크로 비즈의 20 μl를 추가 잘 혼합하여 4 ℃에서 15 분 동안 품어. 4 ℃에서 5 분 동안 500 XG에 FACS 버퍼와 원심 분리기를 25 ML을 추가합니다. </li><li> 한편, 자석 내로 LS 분리 컬럼을 배치하고 FACS 완충액 3 ㎖로 씻어. 뜨는을 취소하고 FACS 버퍼의 3 ml의 세포를 재현 탁. </li><li> 컬럼에 셀을 추가합니다. 세 번 버퍼 FACS 3 ㎖에 열을 씻으십시오. 자석에서 열을 제거하고 새 15 ML의 센트리에 배치fugation 튜브. , FACS 버퍼의 5 ML을 추가 5 분 4 °에 C 500 XG에 열 플런저와 원심 분리기를 가진 레이블 세포를 세척합니다. </li><li> 상층 액을 제거하고 T 세포의 배지 3 ㎖에 세포를 재현 탁. 웰당 배지 100 ㎕에 2.4 종자에 1 × 105 세포를 바와 같이 세포를 카운트. </li></ol></li><li> CD4 + T 세포 자극 <ol><li> 클론 성 CD4 + T 세포 자극 <ol><li> 사전 코트 원하는 최종 농도에서 정제 된 항 - 마우스 CD3 항체 PBS에서 (복제 145-2C11)와 둥근 바닥 96 웰 플레이트. 예를 들어, 1 μg의 / ㎖에서 α-CD3와 전체 판 코트를 미리하는 PBS, 소용돌이의 5 ml의 항체의 10 μL (주 농도 = 0.5 ㎎ / ㎖)을 혼합하여 혼합의 50 μl를 추가 잘 멀티 채널 피펫 각. </li><li> 3 시간 동안 인큐베이터에있는 접시를 남겨주세요. T 세포를 분리 한 후, PBS로 두 번 프리 코팅 된 플레이트를 세척한다. (복제 정제 된 항 CD28 항체 추가원하는 최종 농도 절연 T 세포 (행 37.51) 예를 들면, 1 μg의 / ㎖)에서; 잘 섞다. T 세포를 시드 및 2-3 일 동안 인큐베이터에서 그들을 떠난다. </li></ol></li><li> 수지상 세포와 항원 특이 적 CD4 + T 세포 자극 참고 : DC가 항원 제시 세포 (장갑차)로 사용하는 경우, 이러한 예외를 제외하고, T 세포 분리를위한 프로토콜을 따르십시오 <ol><li> 비장을 균질화하기 전에, 0.5 ㎎ / ㎖로 PBS에 콜라게나 형 IA 1 ㎖로 주입하고, 15 mL의 원심 분리 튜브로 옮긴다. </li><li> 15 분간 37 ℃ 수조에서 인큐베이션. PBS로 세척 한 후, FACS 버퍼에 펠렛을 재현 탁하고 20 마우스의 CD11c 자성 마이크로 비즈의 μL 대신 CD4 마이크로 비드를 추가합니다. </li><li> 석사 분리 컬럼 및 적절한 볼륨을 사용하여 FACS 버퍼 1 ㎖에 열을 씻어; FACS 완충액 1 ㎖에 재현 탁하고 세포를 FACS 완충액 3 회 1 ㎖로 칼럼을 세척 하였다. </li><li> 광고수지상 세포 (예를 들면, 수초 희소 돌기 아교 세포 당 단백질 (MOG) AA 35-55 20 μg의 / ㎖)에 대한 선택의 D 항원이 잘 혼합 종자 5 × 104 세포 T 세포 배양액 100 ㎕에 당 96 라운드 - 바텀 잘. </li><li> 프로토콜 T에 대한 세포 분리에 기재된 바와 같이, 끝 부분 96 둥근 바닥 웰 당 T 세포 배양액 100 ㎕에 1 × 105 T 세포를 추가한다. </li></ol></li><li> B 세포 항원 특이 적 CD4 + T 세포 자극 참고 : B 세포 장갑차로 사용하는 경우, 이러한 예외를 제외하고, T 세포 분리를위한 프로토콜을 따르십시오 <ol><li> 누구의 B 세포 (B 세포 특히 MOG 35-55을 인식 예를 들어, IGH MOG (목) 마우스,) 항원 - 특정 형질 전환 마우스에서 비장을 사용합니다. </li><li> (TCR MOG (2D2) 생쥐에서 예) 항원 특이 적 T 세포를 사용한다. 마우스 CD19 자기 마이크로 비드 대신 CD4 마이크로 비드의 20 μl를 추가합니다. </li><li> 는 B CEL에 선택의 항원을 추가LS (예, 20 μg의 / ㎖에서 MOG 35-55)은 96 둥근 바닥 웰 당 B 세포 배양액 100 ㎕를 5 × 104 세포를 잘 혼합 종자. </li><li> 당 T 세포 배양액 100 ㎕에 1 × 105 T 세포를 추가 96 둥근 바닥 웰, T 세포의 분리를위한 프로토콜에 기술 된 바와 같이. </li></ol></li></ol></li></ol> 4. 설치 및 봉사자 측정을 수행 <ol><li> 층류 후드 아래 봉사자 상품의 24 웰 모듈을 놓습니다. 집게를 사용하여 기기에 MBMECs으로 뚜껑과 장소 삽입물을 제거합니다. </li><li> 모듈 우물의 하부 구획에 새로운 매체의 810 μl를 피펫 : 삽입 잘 모듈의 벽 사이에 조심스럽게 추가합니다. </li><li> 뚜껑을 닫고 인큐베이터에서 악기를 배치합니다. 그 컴퓨터에 기기를 연결; 악기 컨트롤러를 켜고 소프트웨어를 엽니 다. </li><li> 팝업 창에서 &#39;새로운 측정&#39;을 선택합니다. 체CK &#39;쇼 봉사자&#39;와 &#39;쇼 CCL&#39;상자; 다음 Enter 키를 눌러 &#39;시작&#39;. 첫 번째 측정을 완료 한 후, 모든 봉사자 및 CCL 값을 볼 수있는 &#39;결과&#39;탭에서 &#39;모든 우물을 검사&#39;를 선택합니다. </li><li> &#39;파일 이름&#39;&gt; 다른 이름으로 저장&gt; 파일 : 파일을 저장합니다. 주 : 티이 및 CCL 연속적 자동화 된 방식으로 측정 된 바와 같이, 3 내지 5 일의 기간에 걸쳐 이들 값을 감시한다. 세포 생존 능력이 최적이 아닌 봉사자의 증가의 부족에 의해 시각으로 매체를 변경하면, 필요하지 않습니다. </li><li> CCL은 안정 미만 1 μF / cm 2이고, 티이가 최대 레벨에 도달 할 때 T 세포 MBMECs 공동 배양하기위한 시점을 선택한다. </li><li> 조심스럽게 절대 봉사자 및 CCL 값을 검사하고 MBMECs는 우물을 취소하여 합류 충분히 단일 층을 개발하지 않은있는 우물을 제외 할 수 있습니다. </li><li> 그룹 우물의 나머지 : 잘 마우스 오른쪽 버튼으로 클릭하고 &#39;새 평균 아니라 잘 추가&#39;를 선택합니다. 남팝업 창에 전자; 모든 개별 웰 그룹화하는 동일한 기능을 수행. </li><li> 그들 모두가 공동 문화 이전과 같은 초기 조건이 있는지 확인하기 위해 평균 우물을 확인합니다. 어떤 유의 한 차이의 절대 값 티이 있거나 티이 경사면, 또는 표준 오차가 너무 큰 경우, 그룹핑을 다시. 참고 : 우물의 최적의 그룹 내에서 실험 그룹 사이에 모두 봉사자 값에 최소한의 변화를 제공합니다. </li><li> &#39;실험&#39;탭을 눌러 &#39;일시 정지&#39;, 악기를 분리하고 인큐베이터 밖으로 가져 가라. 층류 후드 아래에 뚜껑을 제거합니다. </li><li> 준비 미리 활성화 원하는, 또는 특정 사이토 카인, 항체 또는 다른 물질없이 그리고 / 또는 나이브 T 세포 : 제조 T 그래피 믹스 NA / LE 래트 항 마우스 IFN-γ 항체 (클론 XGM1.2) 예를 들어 세포의 봉사자 악기의 웰 당 20 μg의 / ㎖에서. 참고 사항 : 그랜 자임 B 억제제 같은 물질을 사용하는 경우, 그들은되는T 세포 자극의 처음에 T 세포 배양 dded : 예, 그랜 자임 B 억제제 II (Calbiochem 사)를 DMSO 10 μM의 최종 농도 절연 T 세포와 혼합된다. 자세한 내용은 재료 및 장비를 참조하십시오. </li><li> 삽입의 매체 (상부 잘 함)의 일부를 제거 (가 MBMEC 단일 층을 방해 할 수있는 모든 매체가 피해야한다 제거) 예를 들어, 조심스럽게 150 μL를 피펫. </li><li> 조심스럽게 2 × 10 5 세포 / 삽입을 포함하는 배지 150 μl를 피펫 팅에 의해 MBMECs에 T 세포를 추가합니다. 주 : 사전 활성화 된 T 세포를 수확하는 경우에만, 트리 판 블루 세포 무 발파를 계산. </li><li> 뚜껑을 닫고 다시 인큐베이터에 악기를 배치합니다. 악기를 눌러 &#39;이력서 측정&#39;을 다시 연결합니다. 하고 &#39;실험&#39;탭에서 24 시간을 눌러 &#39;정지&#39;후 파일 (파일&gt; 저장)를 저장합니다. </li></ol> 5. 데이터 내보내기 및 통계 분석 <ol><li>[파일]&gt; [내보내기]를 선택하여 결과를 내 보냅니다. </li><li> 팝업 윈도우의 &quot;설정&quot;탭에서 &quot;필드 구분 기호&quot;옵션에서 &quot;소수 구분&quot;옵션 &quot;을 .dot&quot;와 &quot;도표 작성&quot;을 선택합니다. </li><li> &quot;내보내기 결과&quot;탭에서, 파일 이름을 모든 우물을 내보낼 확인하고 &quot;데이터 선택&quot;옵션에서 &quot;봉사자&quot;및 &quot;CCL&quot;확인란을 선택합니다. </li><li> 보도는 &quot;수출 데이터는&quot;내 보낸 파일을 열고, 스프레드 시트에 데이터를 복사합니다. </li><li> 공동 문화 전에 마지막 시점의 설정 봉사자 및 CCL 값을 100 %로 다른 모든 위해 따라 값을 변경 : (각 실행 (측정 주어진 봉사자 및 CCL 값으로, 각 복제으로 분류)) 내 보낸 데이터를 정상화 &#39;100 %&#39;실행에 대해 실행됩니다. </li><li> 개별 웰을 이용하여 각 처리 군에 대한 평균의 표준 오차를 표시하는 그래프를 생성하기 원하는 소프트웨어 정규화 된 데이터를 복사한다. </li><li> 피선택의 통계 소프트웨어를 사용하여 다중 비교에 대한 페로 니 보정과 양방향 ANOVA 통계 테스트를 erform. </li></ol>

I. Kuzmanov, A. M. Herrmann, S.G. Meuth, H. Wiendl 및 L. Klotz는 공개할 것이 없습니다. H.-J. Galla는 자동 세포 모니터 제조업체인 nanoAnalytics GmbH의 과학 고문입니다.

기술 된 프로토콜의 여러 단계를 성공적으로 실험에 필수적이다. 초기 MBMEC 분리 및 배양 동안, 작업 진균 포자 또는 세균 세포 배양의 오염을 방지하기 위해, 가능한 멸균 조건 하에서 수행하는 것이 중요하다. 내장 컴퓨터의 순수 배양을 얻기 위해서는이되는 EC 생존 가능 제 사흘 퓨로 마이신을 함유하는 배지가 아닌 다른 세포 유형 (특히 혈관 주위 세포) (41, 42)을 사용하도록 권장한다. 특별한주의 가치 다른 중요한 단계는 사전 - 활성화 된 T 세포를 추가하는 정확한 시점을 식별한다. 봉사자 측정 MBMECs의 첫 48 시간 동안 투과 삽입에 증식과 서로 간의 간격을 닫습니다. 안정된 낮은 수준 (약 0.6 μF / cm 2)에 도달 할 때까지 따라서, CCL은 감소한다. 이 합류 EC 단층의 첫 징후이지만, 아직 단단한 장벽의 상징이 아니다. 후에 만CCL을은 봉사자가 증가하기 시작 않는 안정적인 수준에 도달했습니다. TJ 착체가 완전히 형성되고 EC 배리어가 완전히 밀폐되면...

3 - 혈액 - 뇌 장벽은 중추 신경계 (CNS) 1 전신 순환을 분리한다. 그것은 세포의 자유 운동과 수용성 분자의 확산을 억제하고 병원체 및 잠재적 유해 물질로부터 뇌를 보호하는 물리적 장벽을 제공한다. 그 장벽 기능에 더하여, BBB는 신경 조직의 적절한 작동을 보장 뇌 실질 조직에 산소와 영양분의 전달을 가능하게한다. BBB를의 기능적 특성은 높은 고도로 전문화되는 EC는 주요 구조 부재 인 상태의 세포 및 무 세포 구성 요소에 의해 조절된다. BBB를되는 EC의 꽉 접합 (TJ) 착체, fenestrations의 부족 pinocytic 매우 낮은 활성 및 완전히 활성 전송 메커니즘의 존재를 특징으로한다. 내피 세포, 성상 세포 엔드 피트 = 관련된 파를 포함 기타 BBB의 구성 요소 EC 기저막, 혈관 주위 세포enchymal 기저막 또한 BBB 2,4의 개발, 유지 보수 및 기능에 기여 - (6)과 함께 뉴런과 마이크로 글 리아와 상기 CNS (7)의 적절한 기능을 가능하게하는 뇌 혈관 부 (NVU) 형성 - 9. 이러한 신경 변성, 염증 또는 감염 질환과 같은 신경 질환의 다양한에서 BBB의 기능을 손상 2,5,10. TJ 복합체 분자 반송기구의 이상 조절은 BBB 침투성 백혈구 혈관 외 유출, 염증 및 신경 손상을 증가하도록 이끈다. 이러한 병태 생리 학적 조건에서 BBB 특성을 연구하기 위해, 다양한 시험 관내 BBB 9,11,12 모델을 확립 하였다. 이들은 장벽 무결성, 투과성뿐만 아니라 전송 메커니즘의 변화에 ​​귀중한 통찰력을 제공하고 있습니다. 이 모델은 인간, 마우스, 쥐, 돼지 또는 b의 내피 세포를 사용양의 기원 13-18; 25 - 기본 내피 세포 또는 세포주 생체 (19)보다 밀접 BBB를 모방하기 위해 혈관 주위 세포 및 / 또는 성상 세포와 단종으로 또는 함께 두 배양한다. 최근 몇 년 동안, transendothelial 전기 저항 (봉사자)의 측정은 내피 차단 성 (26, 27)을 평가하기 위해 널리 허용 도구가되었습니다. 티이은 세포 단층을 가로 질러 이온 플럭스 임피던스를 반영하고 그 감소 손상된 내피 장벽 완전성 따라서 증가 된 투과성 민감한 척도를 제공한다. 30 - 다양한 티이 측정 시스템은 상피 Voltohmmeter (EVOM), 전지 셀 기판 임피던스 감지 (ECIS), 실시간 세포 분석 15,28 등이 개발되었다. 티이 인접되는 EC의 이온 플럭스 (paracellular 행)에 대한 내성을 반사하고 정비례장벽의 무결성. 임피던스 분광 27,31에서는 복잡한 총 임피던스 (Z)가 CCL을 측정함으로써 배리어의 무결성에 대한 추가 정보를 제공하는 측정된다. CCL은 세포막 (세포 횡단 경로)를 통해 용량 성 전류에 관한 것으로, 셀 층은 막의 양쪽에 전하를 분리하는 등가 전기 회로에 캐패시터와 같은 역할을하고 역 장벽 완전성에 비례한다. 투과성 인서트 상에 성장하면되는 EC가 부착 증식 미다 공막에 걸쳐. 이것은 (자체 커패시터처럼 동작)과 그것의 최소 레벨에 도달 할 때까지, 용량의 감소로 연결 삽입물의 배경 전류 용량 저항. 이것은 TJ의 설립 뒤에 것은 인접되는 EC 사이의 공간 떨어져 그 인감 복합체. 이 paracellular 경로를 통해 이온 플럭스를 제한하고, 그것의 고원에 도달 할 때까지 봉사자는 증가한다. 염증성 조건 하에서, 그러나, endotheli알 배리어가 손상되어 TJ가 방해받을 착물 삽입물의 용량 성 성분이 다시 상승을 CCL 증가로 티이 감소한다. 우리 티이 측정은 자동 세포 모니터링 시스템 (32)을 사용하여 그 임피던스 분광법의 원리를 따르고 이전 어플리케이션을 확장한다. 여기, 우리는 면역 세포와 뇌 내피 세포의 상호 작용을 포함하는 차단 성 연구를 가능하게하는 생체 외 BBB 모델을 설명; 특히 활성화 된 T 세포이다. 37 - 이러한 병태 생리 학적 조건은 다중 경화증 및 동물 모델 실험자가 면역 뇌척수염 (33)와 CNS의자가 면역 질환에서 관찰된다. 여기서, 중요한 단계는 전역 BBB encephalitogenic, 미엘린 특정 T 세포의 윤회이다. 이것은 뇌 실질에 혈관 주위 공간과 항목에서의 재 활성화 뒤에, 그들은 다른 면역 세포를 모집하고 저 곳diate 염증 및 후속 탈수 초화 1,35,38. 그러나, 이러한 T 세포와 내피 세포 간의 상호 작용의 분자 메커니즘은 BBB의 주성분은 잘 이해되지 않는다. 우리의 프로토콜은이 격차를 작성하고 활성화 된 T 세포와의 직접 접촉하고 복잡한 상호 작용에 따라 내피 세포 (즉, 장벽 무결성 및 투자율)의 결과에 대한 새로운 통찰력을 제공하는 것을 목표로하고있다. 여기에 설명 된 프로토콜은 미세 다공성 멤브레인 투과성 인서트에 단층으로 성장 기본 마우스 뇌 미세 혈관 내피 세포를 사용한다. 내피 세포를 공 배양된다 polyclonally 또는 항원 특이 적 방식으로 어느 사전 - 활성화 될 수있는 CD4 + T 세포와. 활성화 미리 아니지만 나이브 T 세포 MBMECs 공동 배양 티이 감소하고 MBMEC 부전 및 장벽 파괴의 정량적 측정 값을 제공 CCL의 증가를 유도한다. 기술비 침습적이다 : 그것은 내장 대신 EC 단층의 주요 교란을 방지 젓가락 전극의 사용; 세포 마커의 사용없이 장벽 기능을 모니터링하기 위해 사용될 수있다. 이 자동화 된 방식으로 연속적인 계측을 동시에 시간에 따른 두 개의 장벽 파라미터 (티이 및 CCL)의 독립적 인 평가를 가능하게한다. 상기 방법은 또한 다른 T 세포 활성화의 수준 및 EC를 그러한 T 세포의 효과를 구별 할 정도로 민감하다. 그것은 기능 분석의 넓은 범위에서 사용할 수있다 : 염증 과정에 연루 다른 사이토 카인 및 / 또는 케모카인은 MBMECs 및 T 세포의 공동 배양에 첨가 될 수있다; EC의 또는 T 세포 양측에 세포 부착 분자에 대한 차단 항체를 사용할 수있다; 및 T 세포 활성화 마커 또는 세포 용해 특성의 억제제는 T 세포 프라이밍 또는 내장 컴퓨터와의 공동 - 배양 동안 첨가 될 수있다. 분석은 T 세포 윤회에 유용분석법은 T 세포를 첨가하기 전에 MBMEC 단층 무결성 품질 관리 역할을 할 수있다. 이 모든 것은이 방법을 EC 단층 무결성 활성화 T 세포의 효과에 초점을 시험 관내에서 BBB를 연구하는 다용도 공구를 신뢰할 수있다. 이것은 자기 반응성 encephalitogenic T 세포는 BBB를 통과 염증 및 신경 손상을 일으킬 MS 및 동물 모델 EAE 같은자가 면역 질환의 발병 기전에서 BBB 중단의 메커니즘을 이해하는데 특히 중요하다.

<table><tbody><tr><td>cellZscope</td><td>nanoAnalytics GmbH</td><td>www.nanoanalytics.com</td><td>포함: 24웰 셀 모듈, 컨트롤러, cellZscope 소프트웨어 v2.2.2가 설치된 PC&nbsp;</td></tr><tr><td>초원심분리기</td><td>Thermo Scientific</td><td>www.thermoscientific.com</td><td>SORVALL RC 6+; 로터 F21S-8x50y; MBMEC 분리</td></tr><tr><td>유세포 분석기</td>용 <td>Beckman Coulter</td><td>www.beckmancoulter.com</td><td>T 세포 전이 분석을 위한</td></tr><tr><td>FlowJoJo7.6.5 소프트웨어</td><td>Tree Star</td><td>www.flowjo.com</td><td>T 세포 형질전환 분석을 위한</td></tr><tr><td>Oak Ridge 원심분리기 튜브, PC</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>3118-0050</td><td>50 ml; MBMEC 절연용</td></tr><tr><td>Transwell 멤브레인 인서트 - 기공 크기 0.4 &마이크로; m</td><td>Corning</td><td>3470</td><td>TEER 측정을 위한 주요 판독 Transwell</td></tr><tr><td>멤브레인 인서트 - 기공 크기 3 &마이크로; M</td><td>Corning</td><td>3472</td><td>는 T 세포 전이 분석 전 품질 관리로 TEER 측정을 수행하며,</td></tr><tr><td>24웰 세포 배양 플레이트</td><td>Greiner</td><td>650 180</td><td>flat-bottom; MBMEC 배양</td></tr><tr><td>96웰 세포 배양 플레이트</td><td>Costar</td><td>3526</td><td>round-bottom; 면역 세포 배양용</td></tr><tr><td>QuadroMACS Separator</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-090-976</td><td>T 세포 및 B 세포 분리용; 지지대 MACS LS 컬럼</td></tr><tr><td>OctoMACS Separator</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-042-109</td><td>수지상 세포 분리;세포 계수를 위한 MACS MS 컬럼</td></tr><tr><td>Neubauer 계수 챔버</td><td>Marienfeld</td><td>MF-0640010</td><td></td></tr> 지원 <tr><td>세포 스트레이너, 70 &micro; m</td><td>면역 세포 분리를 위한</td><td>Corning</td><td>352350</td></tr><tr><td>세포 스트레이너, 40 &마이크로; 면역</td><td>세포 분리를 위한</td><td>m Corning</td><td>352340</td></tr><tr><td>MACS MultiStand</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-042-303</td><td>면역 세포 격리를 위한</td></tr><tr><td>MACS LS 분리 컬럼</td> T <td>세포 및 B 세포 분리를 위한</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-042-401</td></tr><tr><td>MACS MS 분리 컬럼</td> 수지상 <td>세포 분리를 위한</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-042-201</td></tr><tr><td>마우스 CD4 MicroBeads</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-049-201</td><td>CD4+ T 세포 격리</td></tr><tr><td>마우스 CD19 MicroBeads</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-052-201</td><td>B 세포 분리</td></tr><tr><td>마우스 CD11c MicroBeads</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-052-001</td><td>수지상 세포 분리</td></tr><tr><td>인간 태반의 콜라겐 IV</td> 유형 <td>Sigma</td><td>C5533</td><td>MBMEC 코팅 용액</td></tr><tr><td>Fibronectin 소 플라즈마</td><td>Sigma</td><td>F1141-5MG</td><td>MBMEC 코팅 용액</td></tr><tr><td>Collagenase 2 (CSL2)</td><td>Worthington</td><td>LS004176</td><td>MBMEC 격리</td></tr><tr><td>Collagenase/Dispase (C/D)</td><td>Roche</td><td>11097113001</td><td>MBMEC 절연</td></tr><tr><td>DNase I</td><td>Sigma</td><td>DN25</td><td>MBMEC 절연</td></tr><tr><td>Fetal bovine Serum (FBS)</td><td>Sigma</td><td>F7524</td><td>MBMEC 절연</td></tr><tr><td>소 혈청 알부민 (BSA)</td><td>Amresco</td><td>0332-100G</td><td>MBMEC 분리용</td></tr><tr><td>Percoll</td><td>Sigma</td><td>P1644-1L</td><td>MBMEC 분리용</td></tr><tr><td>DMEM (+ GlutaMAX)</td><td>MBMEC 분리 및 MBMEC 배양 배지용</td> <td>Gibco</td><td>31966-021</td></tr><tr><td>페니실린/스트렙토마이신</td><td>시그마</td><td>P4333</td><td>MBMEC 분리 및 MBMEC 배양 배지</td></tr><tr><td>인산염 완충 </td><td>MBMEC 및 면역 세포 분리를 위한</td>식염수(PBS)<td>Sigma</td><td>D8537</td></tr><tr><td>MBMEC 배양 배지를 위한</td><td>Heparin</td><td></td><td>Sigma H3393</td></tr><tr><td>Human Basic Fibroblast Growth Factor (bFGF)</td><td>MBMEC 배양 배지를 위한</td> <td>PeproTech</td><td>100-18B</td> MBMEC 배</tr><tr>양 배지를 위한<td>Puromycin</td><td>Sigma</td><td>P8833</td><td>; 처음 3일 동안만</td></tr><tr><td>0.05% Trypsin-EDTA</td><td>Gibco</td><td>25300-054</td><td>MBMEC 수확용</td></tr><tr><td>콜라겐분해효소 IA형</td><td>시그마</td><td>C9891</td><td>수지상 세포 분리용</td></tr><tr><td>Trypan Blue 용액, 세포 계수용 0.4%</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>15250061</td><td></td></tr><tr><td>면역 세포 분리를 위한</td><td>EDTA</td><td>Sigma</td><td>E5134</td></tr><tr>IMDM + <td>T 세포 배양 배지 X-VIVO용</td><td>1% L-글루타민</td><td>Gibco</td><td>21980-032</td></tr><tr><td> 15</td><td>Lonza</td><td>BE04-418Q</td>는 <td>빛으로부터 보호합니다; B 세포 배양 매체</td></tr><tr><td>&베타;-메르캅토에탄올</td><td>Gibco</td><td>31350-010</td><td>B 세포 배양 매체</td></tr><tr><td>L-글루타민 (100x Glutamax)</td><td>Gibco</td><td>35050-061</td><td>B 세포 배양 배지</td></tr><tr><td>마우스 MOG35&mdash; 55 </서브>펩타이드</td><td>Biotrend</td><td>BP0328</td><td>항원 특이적 T 세포 활성화를 위한</td></tr><tr><td>정제된 안티 마우스 CD3 Ab</td><td>BioLegend</td><td>100302</td><td>클론 145-2C11; 다클론 T 세포 활성화를 위해</td></tr><tr><td>정제된 NA/LE 안티 마우스 CD28 Ab</td><td>BD Pharmingen</td><td>553294</td><td>클론 37.51; 다클론 T 세포 활성화를 위해</td></tr><tr><td>재조합 쥐 IFN-&gamma;</td><td>T-세포 전이분석 재</td>조합 쥐 TNF-&알파를 위한 <td>PeproTech</td><td>315-05</td></tr><tr><td>;</td><td>T-세포 전이분석</td>NA/LE 정제 안티-마우스 IFN-&감마를 위한 <td>PeproTech</td><td>315-01A</td></tr><tr><td>; 항체</td><td>BD Biosciences</td><td>554408</td><td>클론 XMG1.2; 권장 최종 농도: 20 &마이크로; g/ml</td></tr><tr><td>Granzyme B 억제제 II</td><td>Calbiochem</td><td>368055</td><td>권장 최종 농도: 10 &마이크로; M</td></tr><tr><td>PE 안티 마우스 CD4 항체</td><td>Biolegend</td><td>116005</td><td>클론 RM4-4; T 세포 형질전환 분석용</td></tr></tbody></table>

<em&gt; 체외</em&gt; 임피던스 분광학을 사용하여 혈액 - 뇌 장벽 모델 : t 세포 - 내피 세포 상호 작용에 초점

An In Vitro Model of the Blood-brain Barrier Using Impedance Spectroscopy: A Focus on T Cell-endothelial Cell Interaction

혈뇌장벽(BBB)의 파괴는 다발성 경화증(MS)과 같은 자가면역 질환 및 동물 모델 실험적 자가면역 뇌척수염(EAE)의 발병에 중요한 단계입니다. 이 과정은 BBB의 주요 구성 요소인 뇌 내피 세포(EC)를 가로질러 활성화된 T 세포의 전이가 특징이다. 그러나 이러한 T 세포와의 상호 작용에 대한 뇌 EC 기능에 미치는 영향은 대체로 알려져 있지 않습니다. 여기에서는 시간 경과에 따른 T 세포와의 상호 작용 중 일차 마우스 뇌 미세혈관 EC(MBMEC) 기능 및 장벽 무결성을 평가할 수 있는 분석에 대해 설명합니다. 이 분석은 경내피 전기 저항(TEER) 및 세포층 커패시턴스(Ccl)의 변화를 측정하여 EC 단층 무결성 및 투과성을 연구하기 위한 강력한 도구인 임피던스 세포 분광법을 사용합니다. EC와 직접 접촉하면 자극을 받았지만 미숙하지 않은 T 세포는 TEER의 감소와 Ccl의 증가로 시각화된 바와 같이 EC 단층 기능 장애를 유발할 수 있습니다. 이 분석은 지속적이고 자동화된 방식으로 EC 단층 무결성의 변화를 기록합니다. 이 단백질은 다양한 자극의 강도와 T 세포 활성화 수준을 구별할 수 있을 만큼 민감하며, 항체, 약리학적 시약 및 사이토카인과 같은 광범위한 물질을 사용하여 T 세포-EC 상호 작용의 표적 조절의 결과를 조사할 수 있습니다. 이 기술은 또한 in vitro T 세포 transmigration 분석에서 EC 무결성에 대한 품질 관리로 사용할 수 있습니다. 이러한 응용 프로그램은 생리학적 및 병태생리학적 조건에서 BBB 특성을 연구하기 위한 다목적 도구입니다.

도 1은 T 세포와 내피 세포 간의 상호 작용을 연구하는데 사용되는 시험 관내 BBB 모델의 일반적인 개요를 제공한다. 실험은 세 가지 주요 단계로 구성됩니다. 첫 번째 단계는 뇌 피질에서 기본 MBMECs 단리하고, 5 일 동안 문화이다. 이들이 세포 배양 접시에서 컨 플루 언스에 도달하면 MBMECs는 트립신 처리하고 티이 구에 배치 투과성 인서트로 시드된다. 봉사자와 MBMECs의 CCL은 연속적으로 측정하고 3 ~ 5 일의 기간 동안 모니터링됩니다. 한편, T 세포는 고립 자극 (2 단계), 그리고 2 ~ 5 일, 종류와 자극의 강도 배양. 단계 3에서, T 세포에 첨가하고, CCL 안정된 로우 레벨이고 티이이 최대 레벨 일 때 MBMECs 함께 공동 - 배양 하였다. 봉사자가 고원에서 아직 공동 문화에 대해이 시점을 선택하는 것은 성공을 위해 매우 중요하다전체 측정. 그 T 세포는 ECS에 그들의 첨가시 활성화하여...

여기에서는 임피던스 세포 분광법을 사용하는 혈액-뇌 장벽의 체외 쥐 모델을 설명하며, 활성화된 T 세포와의 상호 작용 시 내피 세포 무결성 및 투과성에 미치는 영향에 중점을 둡니다.

<em&gt; 체외</em&gt; 임피던스 분광학을 사용하여 혈액 - 뇌 장벽 모델 : T 세포 - 내피 세포 상호 작용에 초점

Breakdown of the blood-brain barrier (BBB) is a critical step in the development of autoimmune diseases such as multiple sclerosis (MS) and its animal ...

본 실험의 전반적인 목적은 활성화된 T 세포와의 상호작용이 혈관 내피 세포의 무결성과 투과성에 미치는 영향을 연구하는 것입니다. 이 방법은 T 세포와 내피 세포 사이의 직접적인 상호작용이 혈뇌장벽(blood-brain barrier)의 무결성과 투과성에 어떻게 영향을 미치는지와 같은 신경면역학 분야의 핵심 질문에 답하는 데 도움이 됩니다. 이 기술의 주요 장점은 T 세포와 내피 세포 상호작용의 표적 조절에 따른 장벽 기능의 자동화된 실시간 평가가 가능하다는 점입니다.이 기술의 영향은 자가면역 중추신경계(CNS) 질환의 치료로 확장될 수 있는데, 이는 이러한 질병의 병인에서 결정적인 단계인 T 세포 매개 혈뇌장벽 붕괴에 대한 통찰을 제공하기 때문입니다. 이 방법은 EAE 기간 동안의 마우스 혈뇌장벽 특성에 초점을 맞추고 있습니다. 하지만 이는 쥐나 인간의 혈뇌장벽 모델뿐만 아니라 다른 자가면역 중추신경계 질환 연구에도 적용될 수 있습니다.일반적으로 이 방법을 처음 접하는 연구자들은 일차 내피 세포 배양과 T 세포 활성화의 최적 시점을 맞추는 데 어려움을 겪을 수 있습니다. 저희는 다발성 경화증의 동물 모델인 EAE 기간 동안 서로 다른 T 세포 활성 수준이 혈뇌장벽 특성에 미치는 영향을 조사하기 위해 이 방법을 처음으로 개발했습니다. 웰 간의 초기 T 세포 차이가 결과의 왜곡으로 이어질 수 있으므로, T 세포와 내피 세포의 공동 배양을 설정하는 법을 익히는 데 있어 이 방법의 시각적 시연은 매우 중요합니다.이 절차를 시작하려면 MBMEC 분리 후 5일째 되는 날, 투과성 인서트당 80 µL의 MBMEC 코팅 용액으로 인서트를 사전 코팅합니다. 이를 37 °C, 5% CO2 조건에서 3시간 동안 배양합니다. 인서트에서 MBMEC 코팅 용액을 제거한 후, 각 웰에 상온의 PBS 2 mL를 넣어 MBMEC를 세척하고 1분 후에 흡입하여 제거하며, 이 과정을 한 번 더 반복합니다.다음으로, 웰당 300 µL의 0.05% Trypsin EDTA를 첨가하고 5~10분 동안 배양합니다. 이어서 각 웰에 2 mL의 MBMEC 배지를 첨가하여 트립신화를 중단시킵니다. 그런 다음 수집한 세포를 15 mL 원심분리 튜브로 옮기고 4°C에서 700 ×g로 8분 동안 원심분리합니다.8분 후, 상층액을 제거하고 puromycin이 없는 MBMEC 배지 1 mL에 세포를 재현탁합니다. 세포 수를 측정하기 위해 0.04% trypan blue 90 µL를 혼합합니다. 세포 현탁액 10 µL를 사용하여, 혼합물 10 µL를 커버 글라스와 혈구계(hemocytometer) 사이에 피펫팅하여 넣습니다.다음으로, 인서트당 2 × 10⁴개의 세포를 분주합니다. 각 웰의 하단 챔버에 810 µL의 MBMEC 배지를 추가하고, 인서트가 포함된 플레이트를 TEER 측정을 진행할 때까지 인큐베이터에 보관합니다. CD4 양성 T 세포를 자극하기 위해, 라운드 바텀 96 웰 플레이트를 원하는 최종 농도의 정제된 anti-mouse CD3 항체로 37 °C에서 3시간 동안 사전 코팅합니다.T 세포를 분리한 후, 사전 코팅된 플레이트를 PBS로 두 번 세척하십시오. 다음으로, 원하는 최종 농도의 정제된 anti-CD28 항체를 분리된 T 세포에 첨가하고 잘 혼합하십시오. 그 후, T 세포를 분주하고 37 °C에서 2~3일 동안 배양하십시오.TEER 측정을 준비하려면, TEER 장비의 24웰 모듈을 층류 후드 내에 배치합니다. 덮개를 제거하고 핀셋을 사용하여 MBMEC가 포함된 인서트를 장비에 넣습니다. 다음으로, 인서트와 모듈 웰 벽 사이로 조심스럽게 810 µL의 신선한 배지를 모듈 웰의 하단 구획에 피펫으로 분주합니다.그 후, 덮개를 닫고 장비를 인큐베이터에 넣습니다. 장비를 컴퓨터에 연결하십시오. 그런 다음, 장비 컨트롤러의 전원을 켜고 소프트웨어를 실행합니다.팝업 창에서 "New Measurement", "Check show TER" 및 "show Ccl" 상자를 선택하십시오. 그런 다음 start를 누르십시오. 첫 번째 측정을 완료한 후, Results 탭에서 "check all wells"를 선택하여 모든 TEER 및 Ccl 값을 확인하십시오.그런 다음 파일을 저장합니다. 다음으로 Ccl이 안정적이고 1 µF/cm² 미만이며 TEER이 최대 수준에 도달했을 때, MBMEC와 T 세포를 공동 배양할 시점을 선택합니다. 절대 TEER 및 Ccl 값을 주의 깊게 검토하고, MBMEC가 충분히 밀집된 단층을 형성하지 못한 웰은 체크를 해제하여 제외합니다.나머지 웰들을 마우스 오른쪽 버튼으로 클릭하고 '새 평균 웰에 웰 추가'를 선택하여 그룹화하십시오. 팝업 창에서 이름을 지정하고, 그룹화할 모든 개별 웰에 대해 동일하게 수행하십시오. 그런 다음 모든 평균 웰을 확인하여 공동 배양 전의 모든 초기 조건이 동일한지 확인하십시오. 실험 탭에서 일시 정지를 누르십시오.기기를 연결 해제하고 인큐베이터에서 꺼냅니다. 그런 다음, 층류 후드(laminar flow hood) 내에서 덮개를 제거합니다. 이어서, 상단 웰 구획의 인서트에서 배지를 일부 제거합니다.배지를 150 µL 조심스럽게 피펫팅하여 MBMEC에 T 세포를 추가합니다. 그런 다음, 장비를 다시 연결하고 측정 재개(resume measurement)를 누릅니다. 24시간 후, 실험 탭에서 중지(stop)를 누르고 파일을 저장합니다.MBMEC 분리 5일 후 PECAM-1과 Cldn-5의 면역형광 염색에서 나타난 방추형 형태가 여기에 제시되어 있습니다. T 세포를 추가하기 전, 개별 웰의 그룹화 전후 TEER 및 Ccl 값이 여기에 나타나 있습니다. 이 웰의 MBMEC는 다른 웰만큼 높은 TEER가 발달하지 않았으므로 파란색 곡선은 실험에 사용되지 않았습니다.본 실험에서는 35~55개의 특정 CD4 양성 T 세포를 항원 특이적 방식으로 5일 동안 자극하였습니다. 나이브 T 세포와 전염증성 사이토카인인 인터페론 감마 및 TNF-알파가 각각 음성 및 양성 대조군으로 사용되었습니다. 여기서 T 세포는 동일한 양의 anti-CD3 및 anti-CD28 항체로 자극되었으며, 3일 동안 배양한 T 세포는 2일 동안만 배양한 T 세포에 비해 장벽 파괴 경향이 더 높게 나타났습니다.여기서 얻은 결과는 T 세포를 자극했을 때, T 세포 자체가 아닌 그 상층액은 MBMEC에 상당한 손상을 주지 않았음을 보여주며, 이는 T 세포와 MBMEC 사이의 직접적인 접촉이 장벽 붕괴에 결정적임을 나타냅니다. 반면, T 세포 배양액에 granzyme b 억제제 2를 첨가하면 MBMEC의 무결성이 더 크게 회복되었으며, 이는 해당 세포 용해 분자가 MBMEC 손상 및 그에 따른 TEER 감소를 일으키는 중요한 요인임을 시사합니다. 이 실험법을 숙달하면 적절히 수행했을 때 12일 만에 완료할 수 있습니다. 이 절차를 시도할 때, T 세포와 혈관 내피 세포의 공동 배양을 설정하기 위한 정확한 시점을 선택하는 것이 중요함을 기억하십시오.이 절차 이후에 면역형광 현미경 검사, 유세포 분석 및 확률 분석과 같은 다른 분석법을 사용할 수 있습니다. 이는 이러한 상호작용이 밀착 연접 분자의 발현 투과성과 T 세포의 투과 범위에 어떻게 영향을 미치는가와 같은 추가적인 질문을 해결하기 위함입니다. 개발 이후, 이 기술은 신경면역학 분야의 연구자들이 마우스의 중추신경계(CNS) 자가면역 질환을 탐구할 수 있는 길을 열어주었습니다.이 영상을 시청한 후에는 혈뇌장벽의 무결성과 투과성에 관하여 활성화된 T 세포와 혈관 내피 세포 사이의 직접적인 영향을 평가하는 방법에 대해 충분히 이해하게 될 것입니다.

an-vitro-model-blood-brain-barrier-using-impedance-spectroscopy-focus

Research

연구

JoVE Journal

Immunology and Infection

면역학 및 감염학

이 비디오는 in vitro에서 마우스 뇌 미세혈관 내피 세포에서 경내피 전기 저항(TEER)을 평가하는 방법을 보여줍니다. TEER 값이 높으면 내피 세포 접합이 손상되지 않았음을 나타내고, 활성화된 T 세포가 추가되면 TEER 값이 낮아져 접합 장벽의 파괴를 반영합니다.

In Vitro Blood-Brain barrier 모델에서 경내피 전기 저항 평가

이 비디오는 혈액뇌장벽(BBB)을 통과하는 병원체를 연구하기 위한 체외 모델을 보여줍니다. 밀접한 연접을 발현하는 미세혈관 내피 세포는 상부 챔버에서 내피층을 형성하고, 뉴런, 성상세포, 미세아교세포는 다공성 막으로 분리된 하부 챔버의 뇌 실질을 나타냅니다. BBB 모델의 바이러스 감염은 혈액에서 뇌로 전달되는 병원체를 모방합니다. 신경친화성 바이러스를 도입하면 트랜스사이토시스(transcytosis)를 통해 BBB를 교차하여 신경 세포를 감염시키고 바이러스 자손을 복제 및 방출하여 성공적인 신경 침입을 보여줍니다.

혈액-뇌 장벽과 뇌 세포 감염의 병원체 교차를 연구하기 위한 체외 모델

혈액 - 뇌 장벽 (BBB)​​의 인체 모델의 확립 BBB 장애와 관련된 뇌 상태에 대한 연구를 혜택을 누릴 수 있습니다. 우리는 여기서, 다공질 막의 양측에 인간 성상 세포와 뇌 내피 세포의 공동 배양을 허용 접촉 BBB 모델의 제조를위한 개선 된 기술을 설명한다.

방법 혈액 - 뇌 장벽의 인간 세포 기반의 연락 모델의 준비를 위해 개선

본 연구의 목적은 쥐의 동계 내피 세포와 성상 세포의 공동 문화를 포함하는 생체 BBB 모델의 재현성을 확인하는 것이 었습니다. 내피 세포 단일 층은 높은 봉사자 낮은 LY 투과성을 발표했다. 특정 TJ 단백질의 발현은 염증과 운송 및 수용체의 기능에 기능적인 응답은 평가했다.

설정 - 업<em&gt; 체외</em쥐 뇌 혈관 벽의&gt; 모델 (BBB)​​ : BBB 불 침투성 및 수용체 매개 운송에 초점

여기에서는 체외에서 중추신경계로의 림프구 전이를 조사할 수 있는 인간 혈액-뇌 장벽 모델에 대해 설명합니다.

를 사용하여 림프구 혈관 외로 유출 분석<em&gt; 체외</em&gt; 인간의 혈액 - 뇌 장벽의 모델

프로토콜의 목표는 생체 외에서 혈액-뇌 장벽 (BBB) 기반 모델 기본 돼지 뇌 내 피 세포 (pBECs)의 설립에 대 한 최적화 절차를 제시 하는입니다. 모델 쇼 높은 재현성, 높은 견고, 전송 및 세포내 매매 신약의 연구에 적합.

생체 외에서 혈액-뇌 장벽 돼지 뇌 내 피 세포를 기반으로 하는 모델의 설립에 대 한 방법 개선

이 프로토콜은 인간 혈액-뇌 장벽(BBB) 시험관내 모델을 확립하는 방법을 설명합니다. 내피 세포와 혈관주위세포는 삽입 필터의 양쪽(혈액 구획)에 파종되고 성상세포는 하단 웰(뇌 구획)에 파종됩니다. 상기 모델 특성화는 나노입자 수송 실험에 사용되었다.

인간 혈액-뇌 장벽을 모델링하는 삼중 배양 세포 시스템

이 보고서는 혈액-뇌 장벽 모델 구축을 위한 μSiM 플랫폼의 조립, 세포 배양 및 분석을 위한 프로토콜을 제공합니다.

혈액-뇌 장벽 모델링을 위한 MicroSiM(μSiM) 장벽 조직 플랫폼 사용

혈액뇌장벽(BBB)은 안정적이고 건강한 뇌 환경을 유지하는 데 중요한 역할을 합니다. BBB 기능 장애는 많은 신경 질환과 관련이 있습니다. 우리는 뇌혈관 병리, BBB 무결성, BBB가 유전학 및 질병에 의해 어떻게 변형되는지 조사하기 위해 BBB의 3D 줄기세포 유래 모델을 개발했습니다.

신경 질환을 모델링하고 치료적으로 표적화하기 위한 체외 혈액-뇌 장벽 재건

이 프로토콜은 뇌 혈액 장벽의 신뢰할 수 있고 효율적인 시험관 내 모델을 설명합니다. 이 방법은 마우스 대뇌 혈관 내피 세포 bEnd.3를 사용하고 막관통 전기 저항을 측정합니다.

경내피 전기 저항 검출을 통한 bEnd.3 혈관 내피 세포의 장벽 기능 무결성 기록

여기에서는 뇌 내피 장벽 강도를 측정하기 위해 임피던스 기반 바이오센서인 ECIS 및 cellZscope를 사용하는 기술을 보여줍니다. 우리는 뇌 내피의 체외 모델에 다양한 자극을 추가하는 준비 및 기술에 대해 자세히 설명합니다. 우리는 결과를 측정, 기록 및 대표 분석을 제공합니다.

암세포와 사이토카인에 대응하는 두 개의 임피던스 기반 바이오센서를 사용한 뇌내피 장벽 무결성 측정

배우세요 체외 임피던스 분광학을 활용한 혈액-뇌 장벽 모델에서 T 세포와 내피 세포 상호작용이 장벽 기능에 미치는 영향을 실시간으로 평가하는 방법을. 이 기법은 자가면역 중추신경계 질환 치료 연구에 활용됩니다.

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