Name: 멀티 플루오르 담즙 산 및 사용 생체 자기 공명 영상은 측정하는 담즙 산 전송 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-11-27T14:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 42 s
Description: 학습하세요 생체 자기 공명 영상을 이용하여 다중 플루오르 담즙산을 측정하는 방법을 배우세요. 이 기술은 방사선 노출 없이 만성 설사 환자의 담즙산 흡수 장애를 진단하는 임상 연구에 활용됩니다.

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이 작품은 건강의 국립 연구소, 당뇨병과 소화기의 국립 연구소 및 신장 질환 (허가 번호 JP.R.에 R21 DK093406 및 T32 DK067872) 및 (JP.R.에 허가 번호 1BX002129)는 VA 훈장 수상에 의해 지원되었다.

다음 프로토콜 (2015년 6월 18일 승인 IACUC 프로토콜 # 0415011) 의학 메릴랜드 학교의 대학 기관 동물 관리 및 사용위원회 (IACUC)의 승인 가이드 라인을 준수합니다. 19 F-레이블 담즙 산 1. Gavaging 마우스 <ol><li> 150 ㎎ / ㎏ 체중 19 F 표지 담즙산과 위관 마우스. 19 F 표지 담즙산 원액 [콜산 트리 플루오로 아세틸 리신과 필요한 부피 1 mL를 주사기를 채우기 (CA-LYS-TFA, 1 : 1의 폴리에틸렌 글리콜 400 : 둘 베코 인산염 완충 식염수) 또는 cholylsarcosine- 트리 플루오로 -N- 메틸 아세트 아미드 (CA-SAR-TFMA]. 60 % 폴리에틸렌 글리콜 400, 40 % 둘 베코 인산염 완충 식염수] 및 20 게이지 1.5 인치 곡선 전구 스쳐 위 위관 니들을 부착 확인 위관 영양법 바늘을 만들기에 바늘의 허브까지 식도 내에 삽입 할 때 마우스의 연골 xyphoid의 수준에 도달 할 정도로 길다 </li><li> 단단히 g엄지와 검지 손가락 사이의 목 뒤쪽에 느슨한 피부로 동물을 초조하고, 허리와 꼬리에 피부를 파악하는 나머지 손가락을 사용합니다. </li><li> 수직으로 마우스를 잡고 측면을 따라 위관 바늘과 식도로 위장으로 내려 입의 지붕을 전달합니다. 저항에 밀어하지 않습니다 - 저항 인두에 발생하면 동물이 그것을 &#39;제비&#39;까지, 바늘의 위치를 ​​변경. </li><li> 마취가 위관 영양을 위해 필요한 경우, 5 ml의 이소 플루 란과 가까운을 포함하는 벨 항아리에 마우스를 놓습니다. 마우스가 옆으로 떨어지면, 7 초를 기다려야 마우스를 제거하고 위관을 수행합니다. 마취 증기로부터 작업자를 보호하려면 한 흄 후드에서 벨 항아리를 사용합니다. </li><li> 동물이 몇 분의 이소 플루 란을 복구 관찰한다. 이소 플루 란이 간에서 대사되기 때문에, 그대로 약물 또는 그 대사 산물로부터 나오는 불소 신호가 시스템에 담즙 분비 및 담낭 FLUO 혼란 수 참고에피네프린은 19 F 표지 담즙산 (15)로부터 신호를 보낸다. 대안은 케타민 플러스 자일 라진을 (용량 섹션 3.1 참조)를 사용하는 것입니다. </li></ol> 2. 수확 담낭, 액체 크로마토 그래피 / 질량 분석을 사용하여 담즙 산성 측정을위한 간 및 혈액 <ol><li> 장기를 수확하기 전에 적어도 6 시간 동안 최대 담낭 작성, 빠른 쥐를 달성했다. 인산염 완충 식염수에 케타민과 자일 라진을 준비합니다 (100 ㎕를 케타민, 62.5 μL 자일 라진, 840 ㎕의 PBS). </li><li> 1 ㎖의 멸균 주사기를 사용하여, 케타민 / 자일 라진 용액 (150 mg을 케타민 체중 kg 당 18 mg을 자일 라진) 15 μL / g 체중으로 종래 장기 수확 마우스의 피하에 1 시간 주입. </li><li> 케타민 / 자일 라진을 투여 한 후 한 시간은 발가락 핀치에 의한 적절한 마취를 확인하고 마취 마우스 부정사를 놓습니다. </li><li> xyphoid 및 Fi에 치골에서 중간 선 복부 피부 절개를 만들기 위해 5 또는 6 인치 가위를 사용하여북동 가위 (4 인치) 복막 안감을 잘라 복부 장기를 노출하기 - 다이아 프램을 관통하지 않습니다. </li><li> 5 인치 클램프와 xyphoid 과정을 잡고 위쪽 복강을 노출하는 가슴을 가로 질러 다시 올립니다. 담낭 노출 해부 따로 간을 이동하는 집게와 둔기를 사용합니다. 참고 : 간을 가르기 또는 이전으로 담낭을 만지지 마십시오 심각한 출혈의 원인이되고 후자는 담낭의 수축과 비우는을 자극 할 수있다. </li><li> 담관 걸쳐 4 인치 클램프 배치 (도 3의 화살표 점선). 다이어프램에 담낭의 우수한 극을 부착 인대를 잘라 부드럽게 복부의 오른쪽으로 담낭 이동합니다. </li></ol><img alt="그림 3" src="/files/ftp_upload/54597/54597fig3.jpg" /> 그림 3 : 마우스 담낭의 해부 및 양성자 자기 공명 영상보기. 왼쪽 패널은 노출 MOUS를 보여줍니다복부 절개 후 정중선의 왼쪽에있는 전자 담낭. 클램프는 xyphoid 프로세스를 파악했다. 담즙 가득 공복 담낭은 점선 화살표로 큰 화살표와 고정 담관으로 표시됩니다. [인세 : 절제는 담관에 그대로 담낭은 고정. 눈금자는 밀리미터 (mm)로 표시됩니다.] 오른쪽 패널은 금식 쥐의 담낭 (화살표)의 고해상도 양성자 밀도 가중 MRI 이미지를 보여줍니다. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/54597/54597fig3large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> <ol start="7"><li> 담낭은 심장 천자, 수확 혈액을 수행하고 안락사를 확인하기 위해 동물에게서 피를 뽑다 절개하기 전에. 참고 : 심장 혈관 붕괴와 적절한 혈액 샘플을 얻기 위해 실패 (≥ 200 μl를) 원인 간을 가르기 수 있습니다 먼저 담낭을 수확. </li><li> 왼쪽 다이어프램의 아래쪽을 노출하고심장의 박동 표면을 식별합니다. 최대 심장 맥동의 시점에서 1 ml의 주사기에 부착 된 23 게이지 바늘을 격막과 심장 천공. <ol><li> 흡입하면서 천천히 주사기를 철회. 혈액이 주사기를 채우기 위해 시작되면 인출을 중지하고 0.2 수집 흡입을 유지 - 0.6 ml의 혈액을. 조심스럽게 바늘을 회전하거나 중단하는 경우 흐름을 다시 설정할 수 있습니다 약간 철수. </li><li> 15 분 동안 2,000 XG에서 1.5 ml의 헤파린 튜브와 원심 분리기에 피를 전송합니다. 10 분 동안 12,000 × g으로 4 개의 파트 아세토 원심 분리로 혈장을 침전. 액체 크로마토 그래피 / 질량 분석 (LC / MS / MS) 11-1312-1412-1412-1412-14하여 상층 액을 분석합니다. 필요한 경우, 분석하기 전에 C O를 -80에서 플라즈마를 저장합니다. </li></ol></li><li> 무딘 절개를 사용하여 간에서 담낭 무료. 클램프 아래 담관을 가로로 쪼개다 제거하고 담낭 무게, 및 1.5 ml의 microcen에 배치trifuge 튜브. 간을 수확. </li><li> 약 100 간 mg의 크기-21 유리 조직 균질 얼음에 전체 담낭을 균질화. 10 분 동안 12,000 XG에 75 % 아세토 니트릴, 25 %의 물 (간 800 μL, 담낭 300 μL) 원심 분리기로 추출한다. 필요 추출물을 희석하고, LC / MS / MS를 사용하여 11-13 담즙산 함량을 정량. </li></ol> 3. 살아있는 애완 동물 양성자 (1 H)와 불소 (19 F) 자기 공명 영상 <ol><li> 이미징 전에 적어도 6 시간 동안 최대 담낭 작성, 빠른 쥐를 달성했다. 자일 라진 및 케타민을 사용 MRI 스캐너의 움직임을 방지하기 위해 쥐를 마취. 인산염 완충 생리 식염수 (130 ㎕를 케타민, 42.5 μL의 자일 라진, 827 ㎕의 PBS)에 케타민 플러스 자일 라진의 재고 솔루션을 준비합니다. MRI 전에 하나의 시간이 용액 5 μL / g 체중 (65 mg을 케타민 및 4.25 mg을 xylaz로 마우스에 피하 주사하는 1 ㎖의 멸균 주사기를 사용체중 kg 당 오프라인). 마취하에 건조가 동물의 눈에 수의학 연고를 적용하지 않도록합니다. </li><li> 상기와 케타민 / 자일 라진으로 유도 한 후, # 40 또는 미세한 전기 클리퍼 블레이드를 사용하여 복부 마우스의 왼쪽 아래쪽에 1.5 cm 2 영역을 클립. 모피 제거 후, 8 지역 수험 - 12 % 희석 요오드 수술 스크럽 솔루션을 70 % 알코올로 씻어 - 두 단계를 반복합니다. 복강에 0.75 인치 바늘 / 카테터 피하 터널로 24 게이지를 삽입합니다. 확인 카테터는 플런저를 다시 잡아 당겨 맹장 또는 다른 복부 장기가 아닌지 확인 - 카테터에는 혈액이나 대변 물질이 없어야합니다. </li><li> 바늘을 제거하고 복강 카테터를 둡니다. 자기 공명 영상 스캐너 동물 실의 온도 제어 열 패드에 마우스를 놓습니다. </li><li> 인산염 완충 식염수에 케타민과 자일 라진을 포함하는 1 ml의 멸균 주사기 (1,000 μL 케타민, 300 ㎕의 자일 라진 준비, 6,700 μL PBS)와 72 인치 멸균 튜브의 원하는 길이를 입력합니다. 프리 필드 멸균 튜브에 복강 카테터를 연결하고 멀리 MRI 스캐너에서 그것을 확장 할 수 있습니다. 마우스의 활력 징후가 안정된 경우 마취는이 솔루션의 모든 20 분 50 μl를 주입 유지합니다. 참고 : 이미징 전에 어떤 금속은 MRI 스캐너 근처에없는 특정합니다. </li><li> 1 시간 동안 300.283 MHz 및 19 F 핵위한 282.524 MHz의 무선 주파수 신호를 송신 및 수신하기 위해 19 F / 1 H 이중 선형 조정 볼륨 MRI 코일을 사용한다. <ol><li> 빠른 로우 앵글 촬영 순서 (FLASH)를 사용하여 세 개의 슬라이스 (축, 중간 시상 및 관상) 스카우트 이미지 시스템 교정 (11), (13)과 동물의 현지화를 수행합니다. 실험을 시작하려면, 소프트웨어 콘솔의 검색 컨트롤 창에서 &#39;신호등&#39;버튼을 클릭합니다. </li><li> 휴식과 빠른 획득이 향상 사용하여 멀티 나선형 1 H MR 영상 획득샘플 또는 반복 횟수 2,200 밀리과 동물의 몸, 에코 시간 8.9 밀리의 십자가 관점에서, 표준 (RARE) 시퀀스, RARE 요소 8,보기 4 × 4cm 2의 필드, 두께 1.0 mm, 매트릭스 크기 266 슬라이스 X 266, 평면 해상도 150 × 150 μm의 2, 실험을 시작하려면 평균 6 수, 소프트웨어 콘솔의 검색 컨트롤 창에서 &#39;신호등&#39;버튼을 클릭합니다. </li><li> 반복 시간 1 H MRI의 동일한 영역에 FLASH 시퀀스를 사용하여 19 F 이미지를 획득 (220) 단말기, 플립 각 = 30 °, 에코 시간 3.078 밀리 매트릭스 크기 32 X 32 면내 해상도 1.25 X 1.25 mm (2) &#39;GOP&#39;소프트웨어 콘솔의 분광계 제어 도구 창에서 (G O-O N- P ipeline) 버튼을 클릭, 두께 4.0 mm 슬라이스, 평균 768의 수는 실험을 시작하려면. </li></ol></li><li> MRI 후, 복강 내 injecti와 마우스를 안락사/ g의 15 μL에 체중 케타민 / 방혈위한 심장 천자 하였다 자일 라진 용액 (체중 kg 당 150 mg을 케타민 / 자일 라진 18 밀리그램). </li><li> 마취에서 마우스를 복구하려면 복강 카테터를 제거하지만 흉골 드러 누움을 유지하기에 충분한 의식을 회복 할 때까지 무인 동물을 두지 마십시오. </li><li> 전술 한 바와 같이 장기 수확 19 F 표지 담즙산 농도를 측정하기 위해 11-13, 케타민 플러스 자일 라진으로 마취를 유지한다. </li></ol>

<ol><li>Thomas, C., Pellicciari, R., Pruzanski, M., Auwerx, J., Schoonjans, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Targeting+bile-acid+signalling+for+metabolic+diseases%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Drug+Discov%22%5BJournal%5D)">Targeting bile-acid signalling for metabolic diseases.</a> Nat Rev Drug Discov. 7, 678-693 (2008).</li>
<li>Vallim, T. Q., Edwards, P. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bile+acids+have+the+gall+to+function+as+hormones%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Metab%22%5BJournal%5D)">Bile acids have the gall to function as hormones.</a> Cell Metab. 10, 162-164 (2009).</li>
<li>Dawson, P. A., Karpen, S. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Thematic+Review+Series%3A+Intestinal+Lipid+Metabolism%3A+New+Developments+and+Current+Insights+Intestinal+transport+and+metabolism+of+bile+acids%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Lipid+Research%22%5BJournal%5D)">Thematic Review Series: Intestinal Lipid Metabolism: New Developments and Current Insights Intestinal transport and metabolism of bile acids.</a> Journal of Lipid Research. 56, 1085-1099 (2015).</li>
<li>Dawson, P. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Targeted+deletion+of+the+ileal+bile+acid+transporter+eliminates+enterohepatic+cycling+of+bile+acids+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biol+Chem%22%5BJournal%5D)">Targeted deletion of the ileal bile acid transporter eliminates enterohepatic cycling of bile acids in mice.</a> J Biol Chem. 278, 33920-33927 (2003).</li>
<li>Pattni, S., Walters, J. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Recent+advances+in+the+understanding+of+bile+acid+malabsorption%5BTitle%5D)+AND+%22Br+Med+Bull%22%5BJournal%5D)">Recent advances in the understanding of bile acid malabsorption.</a> Br Med Bull. 92, 79-93 (2009).</li>
<li>Walters, J. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+new+mechanism+for+bile+acid+diarrhea%3A+defective+feedback+inhibition+of+bile+acid+biosynthesis%5BTitle%5D)+AND+%22Clin+Gastroenterol+Hepatol%22%5BJournal%5D)">A new mechanism for bile acid diarrhea: defective feedback inhibition of bile acid biosynthesis.</a> Clin Gastroenterol Hepatol. 7, 1189-1194 (2009).</li>
<li>Hofmann, A. F., Mangelsdorf, D. J., Kliewer, S. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chronic+diarrhea+due+to+excessive+bile+acid+synthesis+and+not+defective+ileal+transport%3A+a+new+syndrome+of+defective+fibroblast+growth+factor+19+release%5BTitle%5D)+AND+%22Clin+Gastroenterol+Hepatol%22%5BJournal%5D)">Chronic diarrhea due to excessive bile acid synthesis and not defective ileal transport: a new syndrome of defective fibroblast growth factor 19 release.</a> Clin Gastroenterol Hepatol. 7, 1151-1154 (2009).</li>
<li>Flynn, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Deoxycholic+acid+promotes+the+growth+of+colonic+aberrant+crypt+foci%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Carcinog%22%5BJournal%5D)">Deoxycholic acid promotes the growth of colonic aberrant crypt foci.</a> Mol Carcinog. 46, 60-70 (2007).</li>
<li>Glinghammar, B., Rafter, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Carcinogenesis+in+the+colon%3A+interaction+between+luminal+factors+and+genetic+factors%5BTitle%5D)+AND+%22Eur+J+Cancer+Prev%22%5BJournal%5D)">Carcinogenesis in the colon: interaction between luminal factors and genetic factors.</a> Eur J Cancer Prev. 8, S87-S94 (1999).</li>
<li>Bernstein, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Carcinogenicity+of+deoxycholate%2C+a+secondary+bile+acid%5BTitle%5D)+AND+%22Arch+Toxicol%22%5BJournal%5D)">Carcinogenicity of deoxycholate, a secondary bile acid.</a> Arch Toxicol. 85, 863-871 (2011).</li>
<li>Zheng, X., Ekins, S., Raufman, J. P., Polli, J. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Computational+models+for+drug+inhibition+of+the+human+apical+sodium-dependent+bile+acid+transporter%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Pharm%22%5BJournal%5D)">Computational models for drug inhibition of the human apical sodium-dependent bile acid transporter.</a> Mol Pharm. 6, 1591-1603 (2009).</li>
<li>Vivian, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Design+and+characterization+of+a+novel+fluorinated+magnetic+resonance+imaging+agent+for+functional+analysis+of+bile+Acid+transporter+activity%5BTitle%5D)+AND+%22Pharm+Res%22%5BJournal%5D)">Design and characterization of a novel fluorinated magnetic resonance imaging agent for functional analysis of bile Acid transporter activity.</a> Pharm Res. 30, 1240-1251 (2013).</li>
<li>Vivian, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Design+and+evaluation+of+a+novel+trifluorinated+imaging+agent+for+assessment+of+bile+acid+transport+using+fluorine+magnetic+resonance+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22J+Pharm+Sci%22%5BJournal%5D)">Design and evaluation of a novel trifluorinated imaging agent for assessment of bile acid transport using fluorine magnetic resonance imaging.</a> J Pharm Sci. 103, 3782-3792 (2014).</li>
<li>Vivian, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+performance+of+a+novel+fluorinated+magnetic+resonance+imaging+agent+for+functional+analysis+of+bile+acid+transport%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Pharm%22%5BJournal%5D)">In vivo performance of a novel fluorinated magnetic resonance imaging agent for functional analysis of bile acid transport.</a> Mol Pharm. 11, 1575-1582 (2014).</li>
<li>Raufman, J. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+Vivo+Magnetic+Resonance+Imaging+to+Detect+Biliary+Excretion+of+19F-Labeled+Drug+in+Mice%5BTitle%5D)+AND+%22Drug+Metab+Dispos%22%5BJournal%5D)">In Vivo Magnetic Resonance Imaging to Detect Biliary Excretion of 19F-Labeled Drug in Mice.</a> Drug Metab Dispos. 39, 736-739 (2011).</li>
<li>Ridlon, J. M., Kang, D. J., Hylemon, P. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bile+salt+biotransformations+by+human+intestinal+bacteria%5BTitle%5D)+AND+%22J+Lipid+Res%22%5BJournal%5D)">Bile salt biotransformations by human intestinal bacteria.</a> J Lipid Res. 47, 241-259 (2006).</li>
<li>Frisch, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((N-methyl-11C%5Dcholylsarcosine%2C+a+novel+bile+acid+tracer+for+PET%2FCT+of+hepatic+excretory+function%3A+radiosynthesis+and+proof-of-concept+studies+in+pigs%5BTitle%5D)+AND+%22J+Nucl+Med%22%5BJournal%5D)">N-methyl-11C]cholylsarcosine, a novel bile acid tracer for PET/CT of hepatic excretory function: radiosynthesis and proof-of-concept studies in pigs.</a> J Nucl Med. 53, 772-778 (2012).</li>
</ol>

저자는 공개 아무것도 없어.

CA-LYS-TFA 및 CA-SAR-TFMA 및 나트륨 / 타우로 콜산 공동 수송 폴리펩티드를 발현 ASBT 인간 배아 신장 세포를 발현하는 안정하게 형질 Madin-다비 개과의 신장 세포를 사용하여 수송 관내 분석의 합성 (NTCP) 다른 곳 (13, 14)에 자세히 설명되어 있습니다. 여기서 초점은 살아있는 동물 MRI에 의해 담낭에 MFBA 이미징, 특히, MFBA 내용의 분석을위한 쓸개, 간, 혈액 수확 한 다음 동물을 살고 위관에 의해 MFBA의 경구 투여에 있고. 중요한 단계는 19 F 신호 경쟁 만들 수 불소계 마취제 회피 담낭 수축 될 수 담관 클램핑 및 장기를 적출하기 전에 비워 전에 담낭 조작을 방지하고, MRI 스캐너 근처 금속의 배치를 회피 포함한다. 여기에 다른 곳에서 13,14 설명 된대로, MFBA-MRI는 큰 잠재력 t이O 성공적 정상 및 비정상 생리 학적 조건하에 ...

장내에서 지방 흡수를 촉진 세제 그들의 고전적인 역할과 함께, 담즙산은 장간 순환 1, 2와 관련된 것 외에도 여러 장기에 영향을 미치는 강력한 신호 분자로 등장했다. 자신의 대사를 조절하는 것 외에도, 담즙산 위장 생리학 (예, 장 이동성 및 인크 레틴 호르몬 생산 대장 생리학 암 감수성)의 여러 부분을 조절하고, 혈관 톤, 글루코스 및 지질 대사 및 에너지 활용에 전신 효과를 갖는다. 이들 효과의 일부는 장내 매개 동안 비만 환자 또는 위암 바이 패스 수술 후 바와 같이, 다른 전신 담즙산 식후 수준의 변화에 ​​기인한다. 위장관 메타 다른 해부학 구획 담즙산 농도의 동시 모니터링을 허용하는 새로운 기술이 요구되는 담즙산의 복잡한 대사 활동을 해명쌍곡선 조직 (간, 췌장, 골격근 및 지방). 이러한 시간과 공간 정보를 얻기 혁신적인 기술을 필요 - 생체 내 이미징에 여기에 설명 된 이러한 새로운 접근 방식으로 새로운 담즙산 추적기를 사용. 해부학 구획에서 담즙산 조성과 분포는 자신의 간 합성 및식이 요법, 수술, 항생제 사용 및 장내 식물의 변화를 포함 회장 흡수를 조절 인자에 의해 조절된다. 그 장간 순환 3 (도 1)에 대한 창자 담즙산 흡수 키 레귤레이터는 회장 혀끝 나트륨 - 의존성 담즙산 수송기 (; SLC10A2 ASBT)이다. 수동 흡수 장내 걸쳐 발생하지만, ASBT가되도록 일반적으로 대변 담즙산 제한된 유출가 창자 담즙산의 95 % 흡수를 매개한다. Asbt 결핍 (SLC10A2 - / -) 쥐 배설물 담즙산과 감소 된 담즙 ACI를 증가D 풀 4. <img alt="그림 1" src="/files/ftp_upload/54597/54597fig1.jpg" /> 그림 1 : 담즙 산의 장간 순환. 담낭에 저장된 담즙 나무로 배뇨 담즙 산은 간에서 합성되어있다 장간 순환의 그림, 식사와 함께 근위 소장에 출시, 적극적으로 원위부 회장에 ASBT를 통해 흡수. 담즙산 소량이 소화관 전체에 수동적으로 흡수되는 반면, 창자 담즙산의 약 95 %는 새로운 담즙산 합성 유사한 양에 의해 보상된다 대변 최소한 (약 5 %)의 손실을 초래 ASBT 의해 적극적으로 반송되고 간장하여 정상 상태 담즙산 풀을 유지. 우측의 화살표는 위산, 췌장 및 소장 점막 효소, 그리고 가장 importantl 포함한 천연 불소 표지 된 담즙산의 안정성에 영향을 미칠 수있는 요인을 파악원위부 소장과 대장에 정착 클로스 트리 디움 종 발표 한 Y, 가수 분해 효소. (허가 16 수정) <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/54597/54597fig1large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> 담즙산 흡수 장애함으로써 간헐적 또는 만성 설사를 일으키는 분변 히드 담즙산 증가 각각의 세 가지 유형으로 분류 될 수있다. 총 회장 병리학 (예를 들면, 절제, 크론 병) 5 1 결과를 입력합니다. 담낭 절제술, vagotomy, 체강 질병, 세균 증식 및 췌장 부전에서 3 개의 결과를 입력합니다. 그들은 같은 선행 조건이 부족하고 회장에서 병리학의 증거가 없기 때문에 대조적으로, &#39;주&#39;(유형 2) 담즙산 흡수 장애를 가진 사람들은 강력한 진단 도전을 제기. 따라서, 차 담즙산 흡수 장애는 일반적으로 설사-P으로 오진된다redominant 과민성 대장 증후군 (IBS-D), 소화기 관련 외래 환자 방문을 아마도 가장 일반적인 이유. IBS-D 환자의 3 차 담즙산 흡수 장애를 가질 것으로 예상되었다; 미국에서,이 수백만 명 5를 나타낼 수있다. 최근 통찰력 차 BAM하지 감소 식 또는 ASBT의 함수에서, 장 섬유 아세포 성장 인자-19 (FGF19)에 의한 간 담즙산 합성의 장애 피드백 억제에서 파생 나타냅니다. ASBT 포함 창자 담즙산의 생성 증가 포화 담즙산 수송을하고, 배설물에 담즙산 증강 유출 설사 6 발생 - 기본 담즙산 흡수 장애에서, FGF19 낮은 혈장 농도는 간 담즙산 합성을 차단하지 (그림 2). Fgf15 (쥐 FGF19) 결핍 마우스는이 담즙산 풀을 확장하고 대변 담즙산 (7) 증가했다. 그림 2 : 장내 담즙산 흡수 불량의 메커니즘. 패널 (A)에 도시 된 바와 같이, 일반적으로, 창자 담즙산의 약 95 %가 ASBT 통해 원위 회장에 능동 수송에 의해 흡수된다. ASBT 발현 또는 활성 (패널 B), 대장으로 담즙산의 유출에 장애가 창자 담즙산 흡수 결과 감소되는 경우. 장애인 FGF19 신호 (패널 C)으로, 콜론으로 담즙산의 유출과 ASBT 전송 용량을 압도 장내 담즙산의 농도 증가에 간 담즙산 합성 결과의 피드백 억제의 부족. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/54597/54597fig2large.jpg" target="_blank">의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오 이 그림.</a> 장기, 배설물 담즙 ACI 만성 상승DS는 대장 종양을 촉진 할 수있다. 결장 종양 유전자의 체세포 돌연변이 있지만 가속이 프로세스를 보강 할 수있다 분변 담즙산 증가 환경 요소와 연관된 프로그레시브 점막 이형성증에서 발생한다. 설치류에서 하나 외인성 관리 또는 Asbt 결핍의 결과로 대장 이형성증과 종양 형성 8-10을 촉진 대변 담즙산 증가했다. 특히 도발적인 결과는 식품 의약품 안전청 (FDA)의 승인을 일반적으로 사용되는 약물은 강력하게 체외 11 ASBT하여 담즙산 수송을 억제하는 것을 나타낸다. 이들 약물은 생체 내에서 작은 창자 담즙산 수송을 감소시키고 배설물 담즙산 농도를 증가하면 대장 병리에 미치는 잠재적 영향에 관한 것이다. 결장 병변 심지어 작은 증가는 중요한 건강 영향을 줄 수있는 이러한 약물의 사용에 기인. 체외 결과와 역학 산부인과에서 이들의 타당성을 평가할 수있는 툴킷servations는 시판 후 안전성 시험 등의 추가 연구를 박차를 가할 것입니다. 필요성에도 불구하고, 실제적인 분석은 담즙산 흡수 장애를 가진 사람들이 부족 식별합니다. 배설물 담즙산의 직접 측정은 복잡 비현실적, 5 신뢰할 수없는로 년 전에 거부되었습니다. 대안 적 방법은 방사성 셀레늄 표지 콜산 유도체 (75 SeHCAT) 및 7α 하이드 록시 -4- cholesten -3- 온 (C4) 또는 담즙산 결합제의 치료 시험의 혈장 수준의 유지를 측정하는 것을 포함한다. 75 SeHCAT 테스트를 갖는다 진단 테스트에서 또한 미국에서 사용하기에 제한적인 유럽의 가용성 및 FDA 승인되지 않았거나 사용할 수 있습니다, 심지어 겸손 방사선 노출 (0.26 mSv를 / 75 SeHCAT 시험) 문제를 제기하고, 세균 증식 및 고급 간 질환은 75 SeHCAT 결과를 혼동 할 수 있습니다. C4 테스트는 플라즈마가 요구되기 때문에 잠재적 매력적이지만 낮은 포지티브 예측 브로있다UE 및 테스트 널리 사용할 수 없습니다. FGF19의 혈중 농도를 측정하는 것은 유사한 제한 사항이 있습니다. 자주 임상 담즙산의 치료 시험에 의존하지만,이 방법은 담즙산 흡수 장애 (5)의 확실한 진단을 제공 할 수 없다. 이러한 이유로, 신규 MRI 방식 혁신적인 다중 불소화 담즙산 (MFBA-MRI)를 사용하여 생체 내 담즙산 수송 및 분포를 측정하도록 고안되었다. 불소 (19 F) 100 % 자연 존재비의 안정된 동위 원소의 세 개의 원자를 함유 MFBA는 네이티브 담즙산 (12)와 마찬가지로 반송되고, 양자 (1 H) 및 불소 (의 조합 담즙산 수송을 시각화하는데 사용될 수있다 19 F) MRI, 방사선 노출 (13, 14)를 이온화없이 민감한, 안전한 방법.

<table><tbody><tr><td>Duall size-21 모든 유리 티슈 그라인더</td><td>Kimble Chase Life Science, Vineland, NJ</td><td>885351-0022</td><td></td></tr><tr><td>Bruker BioSpec 70/30USR Avance III 7T 수평 보어 MR 스캐너</td><td>Bruker Biospin MRI GmbH, Germany</td><td></td><td>with companion Paravision Version 5.1 software (see step 3.5)Bruker</td></tr> <tr><td>40 mm 19F/1H dual-tuned linerar volume coil</td><td>Bruker Biospin MRI GmbH, 독일</td><td></td><td>Paravision 버전 5.1 소프트웨어와 함께 사용(3.5단계 참조)</td></tr><tr><td>사중극자 검출기가 있는 Waters Acquity UPLC 시스템</td><td>Waters Corporation, Milford, MA</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Waters Acquity UPLC 에틸렌 브리지드 하이브리드 C8 1.7 &mu; m 2.1 x 50mm 열</td><td>Waters Corporation, Milford, MA</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Gavage Needle</td><td>Braintree Scientific, INC.</td><td>N-010</td><td>20 G-1.5" 곡선 2.25 mm 볼</td></tr><tr><td>2 스테인레스 스틸 헤모스탯&nbsp;</td><td>VWR</td><td>10755-018</td><td>4 및 5 인치, 스트레이트</td></tr><tr><td>케타민</td><td>MWI 수의학 공급</td><td>501090</td><td>케타민 제타민 100 mg / ml</td></tr><tr><td>Xylazine</td><td>Akorn, Inc.</td><td></td><td>20 mg/ml</td></tr><tr><td>복강내 카테터</td><td>Abbott</td><td>AbbocathTM-T.I.V. G720-A01 4535-42</td><td>24-G x 0.75 인치</td></tr></tbody></table>

멀티 플루오르 담즙 산 및 사용<em&gt; 생체</em&gt; 자기 공명 영상은 측정하는 담즙 산 전송

Using Multi-fluorinated Bile Acids and In Vivo Magnetic Resonance Imaging to Measure Bile Acid Transport

지방 흡수를 촉진 세제 등의 전통적인 역할과 함께, 문학 신흥 것은 담즙산이 여러 장기에 영향을 미치는 강력한 신호 분자가 있음을 나타냅니다; 이들은 장 이동성 및 호르몬 생산을 조절하고, 혈관 톤, 포도당 대사, 지질 대사 및 에너지 사용량을 변경. 배설물 담즙산의 변화는 장내 마이크로 바이 옴을 변경하고 cholerrheic 설사와 대장 암을 포함한 대장 병리를 촉진 할 수있다. 배설물 담즙산 조성의 주요 규제는 소장 혀끝 나트륨에 의존하는 담즙 산 수송기 (ASBT)와 섬유 아세포 성장 인자 19 (FGF19)에 있습니다. ASBT의 감소 표현과 기능은 장내의 담즙산가 테이크 감소한다. 또한, 시험 관내 데이터는 일부 FDA 승인 약물 ASBT 기능을 억제하는 것이 좋습니다. 결핍 FGF19 자료는 간에서 담즙산의 합성을 증가시키고 ASBT을 압도 수준으로 장내에 놓습니다. 어느 ASBT 장애 또는 FGF19 결핍은 F 증가ECAL 담즙산과 만성 설사의 원인이 대장 종양을 촉진 할 수있다. 안타깝게도 도구 담즙산 흡수 장애와 생체 내 담즙산 수송에 대한 약물의 작용을 측정하는 것은 제한적이다. 담즙산의 복잡한 작업을 이해하기 위해 기술은 소화관 및 대사 조직에서의 담즙산의 동시 모니터링을 허용하는 것이 요구된다. 이 양자 (1 H) 및 불소 (F 19), 자기 공명 영상 (MRI)의 조합을 사용하여 살아있는 동물에서 담즙산 수송을 측정하는 혁신적인 방법을 생각할하라고했다. 불소 (F (19))에 대한 신규 한 트레이서 시험 관내 및 생체 내 모두에서 살아있는 동물 MRI 만들고 기반 시험 하였다. 이 방법의 장점은 임상 연구와 실천에 대한 조사 및 번역 가능성을 이온화에 노출의 부족을들 수있다.

실시간으로 생체 내 MRI에 대한 MFBA의 사용은 &#39;볼&#39;수 담즙산 교통 연구와 임상 모두를위한 큰 잠재력을 가지고있다. 또한, 담낭 절제술 및 액체 크로마토 그래피 및 질량 분석법을 이용하여 내용의 생화학 적 분석을 위해 여기에 기술 된 방법은 이미징 결과를 확인하는 수단을 제공한다. 그러나, 이러한 방법의 유효성은 정확한 투여, 분석의 타이밍, 및 이미징 또는 수술 적 제거를위한 담낭의 현지화가 필요합니다. 후자의 경우, 마우스의 복부의 장기를 최대한 적게 교란하는 것이 매우 중요하다; 담낭의도 부드러운 조작이 수축 비우는을 자극 할 수 있습니다. 따라서, 그 전체 내용을 포착하기 위해서는, 가능한 한 빨리 담관 걸쳐 클램프를 배치하는 것이 중요하다. , 수술 방법은 여기에 제안 된 담낭을 사용하여쉽게 복부의 오른쪽 윗부분에 ...

공구 한정 담즙산 흡수 장애를 진단 및 생체 내 담즙산 수송을 측정한다. 살아있는 동물에서 혁신적인 접근 결합 양성자 (1H) - 플러스 불소 (F 19), 자기 공명 영상을 이용하는 것이 기재되어있다; 이 새로운 방법은 임상에서 담즙산 흡수 불량을 선별하는 병진 가능성이있다.

Along with their traditional role as detergents that facilitate fat absorption, emerging literature indicates that bile acids are potent signaling ...

이 절차의 전반적인 목표는 자연적으로 발생하는 비방사성 불소로 담즙산을 라벨링하여 MRI로 담낭 내 담즙산 농도를 측정하여 살아있는 동물의 담즙산 수송에 접근하는 것입니다. 이 접근법은 담즙산 흡수 장애를 치료해야 하는 만성 설사를 앓고 있는 개인을 식별할 수 있는 잠재력이 있습니다. 이 접근 방식의 주요 장점은 전리 방사선에 노출될 필요가 없고 임상 연구와 실습 모두에 대한 큰 번역 잠재력이 있다는 것입니다.이 방법에 대한 아이디어는 미국에는 장내 담즙산 수송 장애를 감지하기 위한 실용적인 임상 검사가 없다는 것을 알게 되었을 때 처음 떠올랐습니다. 먼저 1밀리리터 주사기에 적절한 양의 불소 표지된 담즙산 원액을 채우고 20게이지, 1.5인치, 곡선형 전구 끝이 있는 위 위 침을 부착합니다. 그런 다음 엄지와 검지를 사용하여 목 뒤쪽의 느슨한 피부로 마우스를 단단히 잡고 나머지 손가락으로 허리와 꼬리의 피부를 잡습니다.동물을 똑바로 세우고 입의 측면과 천장을 따라 위 바늘을 식도로 통과시키고 위로 내려갑니다. 적절한 실험 종점에서 치골에서 xipoid까지 복부 정중선 절개를 한 다음 복막 내벽을 통해 해당 절개를 하여 횡격막을 뚫지 않고 복부 장기를 노출시킵니다. 다음으로, 5인치 클램프를 사용하여 xiphoid process를 들어 올려 상복부를 노출시킵니다.겸자와 뭉툭한 도구를 사용하여 간을 절개하고 옆으로 움직여 담낭을 드러냅니다. 그런 다음 총담관을 가로질러 4인치 클램프를 놓고 인대를 절단하여 담낭의 상극을 횡격막에 연결하여 담낭이 복부의 오른쪽으로 이동할 수 있도록 합니다. 간이 열상되거나 부주의로 담낭이 비워지는 것을 방지하기 위해 개복술 후 가능한 한 빨리 총담관을 조심하고 고정하십시오.출혈 후 적출된 혈액을 1.5ml 헤파린 튜브에 옮겨 원심분리합니다. 아세토니트릴의 4개 부분으로 혈장을 침전시키고 혈액 샘플을 다시 원심분리합니다. 그런 다음 액체 크로마토그래피와 질량 분광법으로 상층액을 분석합니다.담낭을 빼내려면 주변 조직을 둔기로 절개한 다음 클램프 아래의 총담관을 절제합니다. 적출된 담낭의 무게를 잰 다음 조직을 1.5ml 미세 원심분리기 튜브에 넣고 간을 제거합니다. 조직을 추출하려면 75%의 아세토니트릴과 25%의 물을 첨가하고 얼음 위의 개별 크기의 21개의 유리 조직 균질화기에서 약 100mg의 간과 전체 담낭을 균질화합니다.시료를 1.5ml Eppendorf 튜브와 원심분리기로 옮깁니다. 그런 다음 추출물을 적절하게 희석하고 액체 크로마토그래피와 질량 분광법을 사용하여 담즙산 함량을 정량화합니다. 적절한 실험 종료점에서, 마취된 마우스의 왼쪽 안쪽 허벅지 안쪽을 세척하고 24게이지 x 0.75인치 바늘 카테터를 허벅지를 통해 복강으로 피하하 삽입합니다.바늘을 제거하고 복강 내 카테터를 제자리에 둡니다. 마우스를 MRI 스캐너 동물 침대로 옮기고 온도 조절 열 패드를 부착합니다. 카테터를 72인치 멸균 튜브에 연결하고 튜브를 멸균 1ml 주사기에 연결하여 절차 내내 마취를 유지합니다.스캐너 근처에 금속이 없는지 확인한 후 불소 양성자 이중 조정 선형 볼륨 MRI 코일을 사용하여 무선 주파수 신호를 송수신합니다. 그런 다음 빠른 로우 앵글 샷 시퀀스를 사용하여 시스템을 보정하고 동물의 위치를 확인하기 위한 세 슬라이스 두피 이미지를 얻습니다. 실험을 시작하려면 신호등 버튼을 클릭하여 샘플의 크로스뷰에서 이완 및 향상 시퀀스를 통한 신속한 획득을 사용하여 다중 슬라이스 양성자 자기 공명 이미지를 획득합니다.마지막으로, 분광계 제어 도구 창에서 GOP 버튼을 클릭하여 동일한 영역에서 두 번째 빠른 로우 앵글 샷 시퀀스를 사용하여 불소 이미지를 획득합니다. 이 방법을 사용하면 담즙산의 생리학적 수준과 일치하지 않는 간 또는 혈장에서 관찰되는 수준보다 1,000배 더 높은 다중 불소화 담즙산(MFBA)의 고도로 선택적인 농도를 담낭에서 측정할 수 있습니다. 담즙산 장 간 순환의 생리적 연결성에 대해 예상한 바와 같이, MFBA의 최대 담낭 농도는 경구 투여 후 4-7시간 후에 뚜렷하게 나타납니다.실제로, MFBA 구강 위절 후 2시간 반에서 4시간 후에 총담관으로 보이는 곳에서 나오는 불소 신호와 담낭에서 나오는 더 강력한 신호가 관찰됩니다. 7-8시간 30분이 지나면 총담관 신호가 더 이상 감지되지 않고 담낭 불소 신호가 인접한 MFBA 팬텀에서 나오는 신호와 동일한 강도로 증가합니다. 담즙산의 장 흡수가 감소된 정점 나트륨 의존성 담즙산 수송체 결핍 마우스에서는 통제된 야생형 동물에 비해 MFBA 농도가 약 22배 감소합니다.실제로, 야생형 마우스의 담낭에서는 강력한 불소 신호가 감지되는 반면, 정점 나트륨 의존성 담즙산 수송체가 결핍된 동물에서는 해당 불소 신호가 없으며, 이는 MFBA가 생리적 담즙산과 유사하게 처리된다는 것과 MFBA MRI를 사용하여 담즙산의 장 흡수 장애를 감지할 수 있음을 확인합니다. 숙달되고 적절하게 수행되면 개복술, 채혈, 담낭 및 간 절개를 20분 이내에 완료할 수 있습니다. MRI 중 신호 획득은 1시간 30분에서 2시간 정도 소요됩니다.개발 및 상용화 이후, 이 기술은 작은 동물과 인간 모두의 생리학 및 질병에서 장 담즙산 수송의 역할을 탐구할 수 있는 길을 열 수 있는 잠재력을 가지고 있습니다. 이 비디오를 시청한 후에는 외국으로 표시된 담즙산을 작은 동물에게 투여하는 방법과 MRI 또는 장기 절개를 통해 간과 담낭의 담즙산 흡수를 측정하는 방법을 잘 이해하게 될 것입니다.

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Research

연구

JoVE Journal

Medicine

의학

우리는 생체 표지 세포와 마우스 모델에서 MRI를 사용하여 생체 내 세포 추적을위한 일반적인 프로토콜을 설명합니다. 셀 라벨, 이미지 수집 처리 및 정량화를위한​​ 일반적인 프로토콜이 포함되어 있습니다.

세포 추적을위한 생체 19 F MRI에서

여기에서는 쥐의 장간막 림프관을 캐뉼로화하는 기술을 설명하며, 이를 통해 장 전달 후 림프계를 통한 지질 및 약물 수송을 정량화할 수 있습니다. 이 기술은 장간막 림프 농도 및/또는 유체, 면역 세포, 펩타이드, 단백질 및 친유성 분자의 수송을 평가하는 데 적용할 수 있습니다.

장간막 림프 덕트 유관 쥐 모델 : 창자 림프 약물 운송의 평가에 응용

유전적으로 암호화된 BAS FRET 센서를 사용하여 살아있는 세포의 담즙산 역학을 연구하기 위한 자세한 프로토콜을 제공합니다. 이 담즙산 센서는 다양한 세포 유형에서 담즙산 수송 및 FXR 활성화를 연구(조절)하는 고유한 도구를 나타냅니다.

유전자 인코딩 FRET 기반 담즙 산성 센서를 사용하여 세포 내 담즙 산성 역학의 실시간 모니터링

특정 대상 프로브 질병 (예를 들어, 염증, 감염, 및 tumorigenesis)의 다양 한 종류의 단백질 표정 등의 분자 메커니즘을 분석 하기 위한 혁신적인 도구를 나타냅니다. 이 연구에서 우리는 murine 모델 f 4/80 전용 형광 중재 단층 촬영을 사용 하 여 대 장 염의 장 대 식 세포 침투의 양적 차원 단층 평가 설명 합니다.

검색 및 대 식 세포 관련 Murine 창 자 염증의 정량화에 대 한 단층 형광 중재

영양소, microbiota 대사와 순환에 의약품의 액세스 창 자-혈액 장벽 (GBB)에 의해 제어 됩니다. 우리는 GBB 침투성에서 vivo에서, 일반적으로 사용 되는 간접 방법, 달리는 거의 영향을 받지 않습니다 간 및 신장 기능을 측정 하기 위한 직접적인 방법을 설명 합니다.

창 자-혈액 장벽 및 간 대사 Microbiota 제품의 평가 위한 Vivo에서 방법

이 프로토콜은 다발성 경화증의 동물 모델에서 양성막 방출 단층 촬영 (PET) 이미징에 의해 생체 내 골수 (탈량 및 재마일레네이션)에서 모니터링하는 것을 목표로합니다.

다발성 경화증의 리솔레시틴 쥐 모델에서 골린 함량의 생체 내 측정을 위한 양전자 방출 단층 촬영

식이 유발 비알코올성 지방간 질환(NAFLD) 마우스 모델을 사용하여 NAFLD의 진행 단계를 평가하기 위한 비침습적 방법으로 새로운 생체 내 미세 컴퓨터 단층 촬영 이미징 기술의 사용을 설명하며, NAFLD 관련 간 조절 장애에 크게 관여하기 때문에 주로 간 혈관 네트워크에 초점을 맞춥니다.

비알코올성 지방간 질환의 진행을 평가하기 위한 새로운 생체 내 미세 컴퓨터 단층 촬영 이미징 기술

여기에서는 엔도솜 유래 나노소포체의 대규모 생산을 위한 자기 분리 보조 고속 균질화 방법을 생물학적 기원과 천연 세포외 소포체(EV)의 생물학적 기원과 유사한 구조, 형태 및 단백질 조성을 공유하는 새로운 유형의 엑소좀 모방체(EM)로 설명합니다.

엔도솜 유래 소포의 대규모 생산을 위한 자기 분리 보조 고속 균질화 방법

이 프로토콜은 최대 4마리의 동물에 대해 다중 챔버 침대를 사용하여 유전자 조작 마우스 모델에서 췌장 선암종 종양을 검출하기 위해 최대 4대의 동물에 대해 병렬 자기공명영상(MRI)을 촬영합니다. 이 다동물 MRI 프로토콜은 종양을 빠르고 비용 효율적으로 탐지하고 측정하여 전임상 연구를 위한 동물 선발과 종양 성장의 종단 모니터링을 용이하게 합니다.

췌장암 마우스 모델에서 종양 측정을 위한 다동물 자기공명영상

심근 조직의 변형과 같은 매개 변수를 측정하는 정확하고 실용적인 방법은 그것이 게재되어 있기 때문에, 그 변형이 자주 사용하는 매개 변수 EF보다 수축성 장애에 대한보다 민감한 이전 마커이며, 훌륭한 임상 가치입니다.

기능 추적을 사용하여 자기 공명이 유래 심근 스트레인 평가

학습하세요 생체 자기 공명 영상을 이용하여 다중 플루오르 담즙산을 측정하는 방법을 배우세요. 이 기술은 방사선 노출 없이 만성 설사 환자의 담즙산 흡수 장애를 진단하는 임상 연구에 활용됩니다.

멀티 플루오르 담즙 산 및 사용

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