Name: 경색 지역의 중간 동맥 폐색 기술 및 시각화를 사용하여 마우스의 허혈성 뇌졸중 및 허혈 - 재관류 유도 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-02-02T12:30:00.000+00:00
Duration: 9 min 8 s
Description: 학습하세요 마우스 중대뇌동맥 폐색술을 통해 허혈성 뇌졸중을 유도하고 외측대뇌동맥을 보존하여 직접적인 치료제 투여가 가능한 동물 모델을 구축하는 방법을. 이 기법은 뇌졸중 메커니즘 연구와 신약 개발에 활용됩니다.

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우리 실험실에서 이 모델을 처음 확립한 Dr. Lei Chen(뉴욕 마운트 시나이의 Icahn School of Medicine)에게 감사드립니다. HL126559, DA039576, MH098891, MH63022, MH072567, DA027569 및 NSC 2015/17/B/NZ7/02985에서 부분적으로 지원됩니다. Luc Bertrand 박사는 미국심장협회(American Heart Association)의 박사후 연구원(16POST31170002)의 일부 지원을 받고 있습니다.

모든 절차는 건강 (NIH) 지침의 국립 연구소에 따라 마이애미 기관 동물 관리 및 사용위원회 (IACUC)의 대학에 의해 승인되었다. 멸균 장비 및 무균 기술의 사용이 필요합니다. 1. 폐색 봉합 준비 <ol><li> 25g과 25 사이의 마우스에 대한 0.23 mm - - 체중 35g (20) 사이의 마우스에 대해 0.21 mm 직경의 봉합사를 사용합니다. MCAO 절차에 대한 봉합사의 종류의 선택은 동물의 체중에 따라 다르다. </li><li> 실버 펜을 사용하여 실리콘 코팅 된 선단부터 9mm의 봉합사를 표시한다. 이 삽입 길이에 대한 지침을 제공합니다. </li></ol> 수술 2. 준비 <ol><li> 실험실 마취 시스템을 이용하여, 산소와 혼합하여 이소 플루 란 마취 마우스. 상업 시스템에 2에서 5와 산소의 흐름을 설정에서 이소 플루 란을 사용 (재료 표 참조). surger에 동물 이동Y면과 코 콘을 사용하여 마취를 유지 (1.5 설정을 사용 이소 플루 란 - 2 2.5과 산소의 흐름을). <ol><li> 초당 2 호흡을 헐떡없이 - 마우스 호흡 속도가 약 1이 있는지 확인합니다. 또한, 동물 수염 자극 반응과 페달 반사 (발가락 핀치)를 발생하지 않는 것을 확인합니다. , 수술 동안 적어도 매 5 분 호흡 속도와 노력을 모니터링합니다. </li></ol></li><li> 절차 동안 건조되는 것을 방지하기 위해 멸균 면봉을 사용하여 각각의 눈에 대한 안과 용 윤활제 방울을 넣어. 또한, 멸균 제약 튜브에서 눈에 안과 연고를 적용합니다. </li><li> 그 뒷면에있는 동물 플립과 절개의 영역을 면도. 그 후, 충분히 70 % 클로르헥시딘 다음 에탄올, 70 % 에탄올로 최종 면봉을 사용하여 수술 영역 소독. 실체 현미경 아래에서 따뜻한 수술 표면에 동물을 배치합니다. </li></ol> 3. 경동맥의 해부 및 내부 / External 분기 <ol><li> (- 4cm 약 3) 수술 가위와 집게를 사용하여 턱 아래에 가슴 뼈 위에서, 목에 얕은 중간 선 절개를 수행합니다. 외과 용 드레이프 비 멸균 표면과 접촉하는 수단을 방지하기 위해 수술 주변에 배치한다. 수술 드레이프가 촬영을 돕기 위해 현재 비디오 생략되었다. </li><li> 집게 신중 별도 지방 및 결합 조직을 사용하여 기관을 노출시킨다. 조직 쉽고 자연스럽게 양쪽으로 분리해야합니다. </li><li> 상기 수술 영역을 노출 네크를 확장 쥐의 목 뒤쪽에 베개 (원형 물체 직경 약 0.5 cm)을 놓는다. </li><li> 조직 트랙터 또는 후크를 사용하여 절개를 엽니 다. </li><li> 기관의 동물의 왼쪽에서 조심스럽게 왼쪽 경동맥 (CCA)를 노출하는 결합 조직을 분리 tweeze. CCA를 함께 번들로 신경 및 주요 혈관 손상되지 않도록주의하십시오. </li><li> 기본 조직에서 분리주의하면서 CCA 노출 계속 내부 대뇌 동맥 (ICA) 및 외부 대뇌 동맥 (ECA)의 분기 최고 &quot;Y&quot;를 노출합니다. CCA에서 분리 돕기 위해, 결합 조직을 관통하는 CCA에서 곡선 집게를 삽입하고 천천히 열 수 있습니다. </li></ol> MCAO 봉합 삽입을위한 CCA 4. 준비 <ol><li> CCA를 아래 길이가 약 4cm의 나일론 봉합사의 3 세그먼트를 삽입합니다. 이 크게 봉합의 삽입을 복잡하게하는 것처럼 CCA는 트위스트하지 있는지 확인하십시오. </li><li> 가장 낮은 지점 수에서 영구 매듭을 사용하여 바닥 봉합을 닫습니다. </li><li> 단지 ICA 아래 상단 봉합을 묶어 / ECA는 이동식 슬립 매듭을 사용하여 분기. </li><li> 이동식 슬립 매듭을 사용하여 중간 봉합을 묶어하지만 활짝 열려 보관하십시오. 봉합 삽입을 방해하지으로는 충분한 공간을두고하는 것이 중요하다. </li><li> 미세 절제 봄 공상을 사용하여ssors, 하단 및 중앙 봉합 사이 CCA에 절개를 수행합니다. 하단 봉합에 가까운 0.2 mm 절개를 수행합니다. </li></ol> 5. 중간 대뇌 동맥 폐색 <ol><li> 집게를 사용하여 정상에 그것을 안내는 CCA 절개로 MCAO 봉합사를 삽입합니다. CCA를 개방 응고 및 폐쇄를 방지하기 위해 4.5 단계 후 신속하게이 단계를 수행합니다. 봉합 삽입이 차단되는 경우에, 절개을 다시 포셉의 팁을 사용합니다. </li><li> 조심스럽게 주위에 혈액의 흐름을 제한하는 슬립 매듭을 사용하여 MCAO 봉합 실리콘 부분에 중간 봉합을 묶어하지만 자유롭게 이동할 수 있도록 충분히 느슨한. </li><li> 조심스럽게 MCAO 봉합 밖으로 빠져 있지 않은지 확인하고, 상단 봉합을 취소. </li><li> 몇 mm하여 ICA의 MCAO 봉합사를 삽입하고, 단계 5.2에 기재된 바와 같이 후 동일한 방법으로, 가기 봉합사를 리 클로즈. </li><li> 폐색 영역으로 MCAO 봉합을 안내합니다. 성공적으로 삽입의 표시이다실버 9mm의 마크 CCA 절개의 혈액 역류의 낮은만큼 그 증거는 CCA 절개와 ICA / ECA의 분기 사이에 위치해 있습니다. 성공적인 폐색 추가 확인은 레이저 도플러 혈류 모니터링 시스템 (15, 16)로 모니터링 방법을 사용하여 얻을 수있다. 주 : 폐색 영역 측의 중간 뇌 영역으로 혈액 흐름의 90 %의 저하가 성공적으로 폐색을 나타낸다. </li><li> 성공적인 폐쇄 후 단단히 중간과 상단 봉합을 묶어. 가짜 삽입을 수행하는 경우, 봉합 리 클로즈 대신 즉시 7.3 단계로 이동하지 않습니다. </li></ol> 6. 절개 결산 및 수술 후 케어 <ol><li> 절개 영역으로 봉합에 정력. </li><li> 트랙터 또는 조직 후크와 베개를 제거합니다. </li><li> 멸균 생리 식염수와 면봉을 사용하여 청소 봉합 영역입니다. </li><li> 나일론 봉합사 / 바늘과 집게를 사용하여 절개를 닫습니다. </li> &lt;리&gt; 관리] 항 염증 (예를 들어, 카프로 펜 (10) ㎎ / ㎏, 사우스 캐롤라이나) 및 진통제 (예, 부 프레 놀핀 0.1 ㎎ / ㎏ 사우스 캐롤라이나, 하루에 두 번) 약물은 수술 후 불편 함을 완화한다. 저체온증을 방지하고 물과 연화 식품 광고 labium 액세스 권한을 부여하기 위해 가열 패드에 배치 새장에 마우스를 놓습니다. </li><li> (- 10 분 5)과 뇌졸중의 징후 동물의 복구를 모니터링합니다. 그들은 가벼운 측면 마비에서 다양하고 반대쪽 측면 및 압연의 심한 수축에 돌고 있습니다. 여러 평가 점은 토론에 나열되어 있습니다. 호흡 곤란이나 심한 발작의 징후를 표시하는 동물은 안락사되어야한다. </li><li> 허혈 재관류 프로토콜에 따라, 120 분 이상 30 분에서 장소에 MCAO 봉합을 둡니다. 폐쇄 시간을 줄이면 사망을 방지 할 수 있습니다. </li><li> 영구적으로 폐색하지만 심각한 사망률 예상 할 수 24 시간 동안 제자리에 MCAO 봉합사를 떠난다. 이 시간 경과 후, 인트 진행페이지 7. <ol><li> 영구 폐쇄 모델을 사용하는 경우, 종점까지 새장에 마우스를 유지. 이 때, (7.8-7.1 단계) 봉합사를 제거합니다. 이 절차는 안락사 후에 수행 될 수있다. </li></ol></li></ol> 7. 재관류 <ol><li> (2.1 지침에 따라) 다시 동물을 마취하고 상처 폐쇄 봉합을 제거합니다. </li><li> 집게 및 조직 분리, 절개를 다시 열고 CCA 노출을 사용. </li><li> 조심스럽게 상단 봉합사를 제거하고 실리콘 코팅 된 부분이 중간 매듭에 위치 할 때까지 부드럽게 MCAO 봉합을 잡고 분리합니다. </li><li> (이것은 슬립 매듭 일 필요는 없다) 봉합사를 통과 흐르는 혈액을 방지하기 위해 봉합 매듭의 최상위 재실행. </li><li> 조심스럽게 중간 매듭을 취소하고 정상 매듭 과거 봉합사를 당겨하지만 CCA 내부에 보관하십시오. </li><li> 단단히 동맥 혈류를 차단 가기 매듭을 닫는다. </li><li> 완전히 MCAO 봉합을 당겨 단단히 중간 매듭을 닫습니다. </li><li> MCAO 봉합이 될 수 있습니다여러 번 재사용. 사용 후, 멸균 거즈를 사용하여 오염 물질 (예를 들면, 혈액 또는 조직)를 제거하기 위해 70 % 에탄올에 조심스럽게 세척 봉합사. 그 후, 멸균기 파우치에 봉합을 배치하고 소독. </li><li> 6.4 동물 복구를 모니터링 - 반복 6.1 단계를 반복합니다. </li></ol> 8. 조직 분석 <ol><li> 뇌졸중 볼륨을 모니터링 뇌를 해부합니다. <ol><li> 두 단계 공정을 사용하여 마우스를 안락사. 첫째, 정지 호흡 할 때까지 이소 플루 란의 과다 복용으로 동물을 노출. TTC 염색의 경우, 즉시 마우스를 목을 벨 뇌 추출로 진행합니다. 절편 뇌 (면역 염색 분석 등을 위해)의 경우, 잘린 이전에 심장 천자를 통해 관류를 수행합니다. </li><li> 두개골의 기지에서 머리를-잘라과 눈 사이까지 두개골의 상단에 목 구멍에서 두피를 잘라. 두개골을 노출하면, 두개골베이스 개도부터 양측을 따라 뼈 절단눈 소켓까지. 두개골의 넓은 부분을 따라이 상처를 확인합니다. 뇌의 손상을 방지하기 위해 가위로 너무 깊이에 도달하지 않도록주의하십시오. </li><li> 그 후, 두 눈 소켓 사이의 뼈를 잘라. </li></ol></li><li> 집게를 사용하여 뇌를 노출 두개골 상부를 들어 올려. 단지 작은 저항이 있어야합니다. 쉽게 들지 않는 경우, 두개골 절개가 불완전 할 수 있습니다. 부드럽게 무딘 곡선 집게를 사용하여 뇌를 올립니다. 뇌는 여전히 여러 가지 신경에 의해 부착 될 수 있습니다. 길을 따라 첨부 파일을 제거, 천천히 진행합니다. </li><li> , 1mm의 뇌 매트릭스에 신선한 뇌를 놓고 PBS 방울의 몇 가지를 추가하고, 면도날 또는 저온 유지 장치 블레이드를 사용하여 행렬을 따라 슬라이스. </li><li> 100mm의 접시에 옮기고 뇌 접시의 저면을 덮도록 염색 용액 (2 % 2,3,5- 트리 페닐 테트라 졸륨 클로라이드 (TTC)] PBS에 용해)을 추가한다. 두 개의 집게를 사용하여 별도의 모든 뇌 조각은 (앞면이 아래로 향하게)과 접시의 바닥에 순서대로 배치합니다. 참고 : 염색이 아닌 살아있는 조직은 흰색, 나머지 빨간색 살아있는 조직을 켜집니다. 37 ° C에 대한 해결책을 따뜻하게하는 것은 염색을 가속화 할 것이다. 행정 영역 (흰색)의 징후는 90 분 후 스트로크 빨리 볼과 7 일 이상 계속 표시 할 수 있습니다. 영상은 뇌졸중 볼륨의 계산을 할 수 있도록 통치자와 함께 수행해야합니다. </li><li> 단면 처리를위한 프로세스 해부 두뇌, 면역 염색, 단백질 분리, 또는 다른 절차 (17)의 다양한, 18, 19. </li></ol>

<ol><li>Cuomo, O., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Antithrombin+reduces+ischemic+volume%2C+ameliorates+neurologic+deficits%2C+and+prolongs+animal+survival+in+both+transient+and+permanent+focal+ischemia%5BTitle%5D)+AND+%22Stroke%22%5BJournal%5D)">Antithrombin reduces ischemic volume, ameliorates neurologic deficits, and prolongs animal survival in both transient and permanent focal ischemia.</a> Stroke. 38 (12), 3272-3279 (2007).</li>
<li>Wauquier, A., Melis, W., Janssen, P. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Long-term+neurological+assessment+of+the+post-resuscitative+effects+of+flunarizine%2C+verapamil+and+nimodipine+in+a+new+model+of+global+complete+ischaemia%5BTitle%5D)+AND+%22Neuropharmacology%22%5BJournal%5D)">Long-term neurological assessment of the post-resuscitative effects of flunarizine, verapamil and nimodipine in a new model of global complete ischaemia.</a> Neuropharmacology. 28 (8), 837-846 (1989).</li>
<li>Liu, F., McCullough, L. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Middle+cerebral+artery+occlusion+model+in+rodents%3A+methods+and+potential+pitfalls%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biomed+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Middle cerebral artery occlusion model in rodents: methods and potential pitfalls.</a> J Biomed Biotechnol. 2011, 464701(2011).</li>
<li>Chiu, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intravenous+tissue+plasminogen+activator+for+acute+ischemic+stroke%3A+feasibility%2C+safety%2C+and+efficacy+in+the+first+year+of+clinical+practice%5BTitle%5D)+AND+%22Stroke%22%5BJournal%5D)">Intravenous tissue plasminogen activator for acute ischemic stroke: feasibility, safety, and efficacy in the first year of clinical practice.</a> Stroke. 29 (1), 18-22 (1998).</li>
<li>Longa, E. Z., Weinstein, P. R., Carlson, S., Cummins, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reversible+middle+cerebral+artery+occlusion+without+craniectomy+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Stroke%22%5BJournal%5D)">Reversible middle cerebral artery occlusion without craniectomy in rats.</a> Stroke. 20 (1), 84-91 (1989).</li>
<li>Koizumi, J., Yoshida, Y., Nakazawa, T., Ooneda, G. <a target="_blank" href="https://www.jstage.jst.go.jp/article/jstroke1979/8/1/8_1_1/_article">Experimental studies of ischemic brain edema, I: a new experimental model of cerebral embolism in rats in which recirculation can be introduced in the ischemic area.</a> Jpn J Stroke. 8, 1-8 (1986).</li>
<li>Liu, F., Schafer, D. P., McCullough, L. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((TTC%2C+fluoro-Jade+B+and+NeuN+staining+confirm+evolving+phases+of+infarction+induced+by+middle+cerebral+artery+occlusion%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci+Methods%22%5BJournal%5D)">TTC, fluoro-Jade B and NeuN staining confirm evolving phases of infarction induced by middle cerebral artery occlusion.</a> J Neurosci Methods. 179 (1), 1-8 (2009).</li>
<li>Liu, F., Yuan, R., Benashski, S. E., McCullough, L. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Changes+in+experimental+stroke+outcome+across+the+life+span%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cereb+Blood+Flow+Metab%22%5BJournal%5D)">Changes in experimental stroke outcome across the life span.</a> J Cereb Blood Flow Metab. 29 (4), 792-802 (2009).</li>
<li>Wang, R. Y., Wang, P. S., Yang, Y. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effect+of+age+in+rats+following+middle+cerebral+artery+occlusion%5BTitle%5D)+AND+%22Gerontology%22%5BJournal%5D)">Effect of age in rats following middle cerebral artery occlusion.</a> Gerontology. 49 (1), 27-32 (2003).</li>
<li>Baskerville, T. A., Macrae, I. M., Holmes, W. M., McCabe, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+influence+of+gender+on+%27tissue+at+risk%27+in+acute+stroke%3A+A+diffusion-weighted+magnetic+resonance+imaging+study+in+a+rat+model+of+focal+cerebral+ischaemia%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cereb+Blood+Flow+Metab%22%5BJournal%5D)">The influence of gender on 'tissue at risk' in acute stroke: A diffusion-weighted magnetic resonance imaging study in a rat model of focal cerebral ischaemia.</a> J Cereb Blood Flow Metab. 36 (2), 381-386 (2016).</li>
<li>Cai, Q., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Co-transplantation+of+hippocampal+neural+stem+cells+and+astrocytes+and+microvascular+endothelial+cells+improve+the+memory+in+ischemic+stroke+rat%5BTitle%5D)+AND+%22Int+J+Clin+Exp+Med%22%5BJournal%5D)">Co-transplantation of hippocampal neural stem cells and astrocytes and microvascular endothelial cells improve the memory in ischemic stroke rat.</a> Int J Clin Exp Med. 8 (8), 13109-13117 (2015).</li>
<li>Cheng, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intravenously+delivered+neural+stem+cells+migrate+into+ischemic+brain%2C+differentiate+and+improve+functional+recovery+after+transient+ischemic+stroke+in+adult+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Int+J+Clin+Exp+Pathol%22%5BJournal%5D)">Intravenously delivered neural stem cells migrate into ischemic brain, differentiate and improve functional recovery after transient ischemic stroke in adult rats.</a> Int J Clin Exp Pathol. 8 (3), 2928-2936 (2015).</li>
<li>Nagai, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intravenous+Administration+of+Cilostazol+Nanoparticles+Ameliorates+Acute+Ischemic+Stroke+in+a+Cerebral+Ischemia%2FReperfusion-Induced+Injury+Model%5BTitle%5D)+AND+%22Int+J+Mol+Sci%22%5BJournal%5D)">Intravenous Administration of Cilostazol Nanoparticles Ameliorates Acute Ischemic Stroke in a Cerebral Ischemia/Reperfusion-Induced Injury Model.</a> Int J Mol Sci. 16 (12), 29329-29344 (2015).</li>
<li>Liu, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intravenous+PEP-1-GDNF+is+protective+after+focal+cerebral+ischemia+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Neurosci+Lett%22%5BJournal%5D)">Intravenous PEP-1-GDNF is protective after focal cerebral ischemia in rats.</a> Neurosci Lett. 617, 150-155 (2016).</li>
<li>Hedna, V. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Validity+of+Laser+Doppler+Flowmetry+in+Predicting+Outcome+in+Murine+Intraluminal+Middle+Cerebral+Artery+Occlusion+Stroke%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vasc+Interv+Neurol%22%5BJournal%5D)">Validity of Laser Doppler Flowmetry in Predicting Outcome in Murine Intraluminal Middle Cerebral Artery Occlusion Stroke.</a> J Vasc Interv Neurol. 8 (3), 74-82 (2015).</li>
<li>Tajima, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reproducibility+of+measuring+cerebral+blood+flow+by+laser-Doppler+flowmetry+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Front+Biosci+%28Elite+Ed%29%22%5BJournal%5D)">Reproducibility of measuring cerebral blood flow by laser-Doppler flowmetry in mice.</a> Front Biosci (Elite Ed). 6, 62-68 (2014).</li>
<li>Fang, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Scutellarin+regulates+microglia-mediated+TNC1+astrocytic+reaction+and+astrogliosis+in+cerebral+ischemia+in+the+adult+rats%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Scutellarin regulates microglia-mediated TNC1 astrocytic reaction and astrogliosis in cerebral ischemia in the adult rats.</a> BMC Neurosci. 16, 84(2015).</li>
<li>Evilsizor, M. N., Ray-Jones, H. F., Lifshitz, J., Ziebell, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Primer+for+immunohistochemistry+on+cryosectioned+rat+brain+tissue%3A+example+staining+for+microglia+and+neurons%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Primer for immunohistochemistry on cryosectioned rat brain tissue: example staining for microglia and neurons.</a> J Vis Exp. (99), e52293(2015).</li>
<li>Kramer, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((TTC+staining+of+damaged+brain+areas+after+MCA+occlusion+in+the+rat+does+not+constrict+quantitative+gene+and+protein+analyses%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci+Methods%22%5BJournal%5D)">TTC staining of damaged brain areas after MCA occlusion in the rat does not constrict quantitative gene and protein analyses.</a> J Neurosci Methods. 187 (1), 84-89 (2010).</li>
<li>Wu, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Keep+warm+and+get+success%3A+the+role+of+postischemic+temperature+in+the+mouse+middle+cerebral+artery+occlusion+model%5BTitle%5D)+AND+%22Brain+Res+Bull%22%5BJournal%5D)">Keep warm and get success: the role of postischemic temperature in the mouse middle cerebral artery occlusion model.</a> Brain Res Bull. 101, 12-17 (2014).</li>
<li>Liu, S., Zhen, G., Meloni, B. P., Campbell, K., Winn, H. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rodent+Stroke+Model+Guidelines+for+Preclinical+Stroke+Trials+%281st+Edition%29%5BTitle%5D)+AND+%22J+Exp+Stroke+Transl+Med%22%5BJournal%5D)">Rodent Stroke Model Guidelines for Preclinical Stroke Trials (1st Edition).</a> J Exp Stroke Transl Med. 2 (2), 2-27 (2009).</li>
<li>Tsuchiya, D., Hong, S., Kayama, T., Panter, S. S., Weinstein, P. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effect+of+suture+size+and+carotid+clip+application+upon+blood+flow+and+infarct+volume+after+permanent+and+temporary+middle+cerebral+artery+occlusion+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Brain+Res%22%5BJournal%5D)">Effect of suture size and carotid clip application upon blood flow and infarct volume after permanent and temporary middle cerebral artery occlusion in mice.</a> Brain Res. 970 (1-2), 131-139 (2003).</li>
<li>Wolff, G., Davidson, S. J., Wrobel, J. K., Toborek, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Exercise+maintains+blood-brain+barrier+integrity+during+early+stages+of+brain+metastasis+formation%5BTitle%5D)+AND+%22Biochem+Biophys+Res+Commun%22%5BJournal%5D)">Exercise maintains blood-brain barrier integrity during early stages of brain metastasis formation.</a> Biochem Biophys Res Commun. 463 (4), 811-817 (2015).</li>
<li>Wrobel, J. K., Wolff, G., Xiao, R., Power, R. F., Toborek, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dietary+Selenium+Supplementation+Modulates+Growth+of+Brain+Metastatic+Tumors+and+Changes+the+Expression+of+Adhesion+Molecules+in+Brain+Microvessels%5BTitle%5D)+AND+%22Biol+Trace+Elem+Res%22%5BJournal%5D)">Dietary Selenium Supplementation Modulates Growth of Brain Metastatic Tumors and Changes the Expression of Adhesion Molecules in Brain Microvessels.</a> Biol Trace Elem Res. , (2015).</li>
<li>Chen, L., Swartz, K. R., Toborek, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Vessel+microport+technique+for+applications+in+cerebrovascular+research%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci+Res%22%5BJournal%5D)">Vessel microport technique for applications in cerebrovascular research.</a> J Neurosci Res. 87 (7), 1718-1727 (2009).</li>
</ol>

저자에게는 경쟁이나 이해 상충이 없습니다.

상술 MCAO 방식의 성공적인 이용은 뇌 혈류 해부학의 이해에 크게 의존한다. 봉합의 정확한 위치 인한 직접적인 시각적 단서의 부족으로 분별하기 어려운 때문에 반복 연습 조사 연구에 사용하기 전에 절차를 습득하는 것이 중요하다. 스트로크 볼륨은 일관된 결과를 보장하기 위해 분석되어야한다. 레이저 도플러 시스템의 첨가는 혈류의 성공적인 폐색을 결정하는 데 도움이되고 절차가 정확하게 수행되도록 주기적으로 사용되어야한다. 폐색 영역으로 봉합 MCAO 라우팅하는 동맥을 조작함으로써 용이하게 될 수있다. 는 ECA / ICA가 / 아래 왼쪽에있는 봉합사를 안내하고 않도록 약간 집게와 분기 (2-3 ㎜) 위에있는 ICA에 대한 눌러 분기 통과 만되면, MCA에 봉합 안내에 도움 pterygopalatine 동맥으로가는. 또한, 베개 이동 단계 3.3 PU 배치lling 아래 위로 매듭 및 삽입을 쉽게하기 위해 동맥을 배향에 도움이 될 수 있습니다 오른쪽. 프로토콜의 나머지 단계는 실체 현미경 하에서 미세을 포함하고 매우 간단합니다. 90...

심혈관 질환의 연구, 뇌졸중과 같은 생체 내 모델의 사용에 의존한다. 허혈, 약물의 독성 및 / 또는 치료 가능한 의미를 이해하기 위해, 처리 군 사이의 비교 연구를 가능하게하는 질환의 적합한 표준화 된 신뢰성 및 재현성이 모델을 사용할 필요가있다. 이 논문에서는, 트랜스 제닉 마우스 표준화 평가 모델의 다수의 가용성 주어진 쥐를 사용한다. 실험 허혈성 뇌졸중과 같은 복구 다음 모터와 행동 적자를 평가하는 점수를 긁어하면, 2 1 개발되었다. 여러 허혈성 뇌졸중 모델은 전체 글로벌 대뇌 허혈, 불완전 글로벌 허혈, 다 초점 대뇌 허혈 및 국소 뇌허혈로 사용할 수 있습니다. 후자의 그룹은 또한 환자의 가장 일반적인 뇌졸중의 범주입니다. 이브의 대부분국세청은 또는 중간 대뇌 동맥 (MCA) 가까이에서 색전이나 혈전 성 폐색의 형성에 의해 시작됩니다. 이러한 매개 변수를 감안할 때, 밀접하게 제시된 모델은 인간의 뇌졸중 질환의 원인을 모방하고 관련성이 높은 3 얻어진 결과를 만든다. 그럼에도 불구하고, 인간의 질병 치료에 동물 모델에서 발견의 번역은 어려운 것으로 입증되었습니다. 지금까지 혈전 조직 플라스 미노 겐 활성제의 사용은 급성 허혈성 뇌졸중 (4)의 치료를 위해 승인되었다. 쥐에서 국소 뇌허혈 후방 대뇌 순환 뇌졸중 모델 및 대뇌 정맥 혈전증 모델의 모델마다 적용 가능성을 감소 및 분석을 수행 할 수의 범위를 제한하는 매우 침습적이다. 그러나, 예 색전증 모델 photothrombosis 모델 엔도 텔린 -1 유발 뇌졸중 모델 및 관내 봉합 중간 대뇌 동맥 폐쇄 (M 다른 기법CAO) 모델은 이러한 제한없이 사용할 수 있습니다. MCAO 모델이 프로토콜에 기재된 기술이다. 이것은 재관류 용이하고 높은 처리량 방법으로 수행 될 수있다 국소 뇌허혈을 유발하는 신뢰할 수있는 방법을 제공한다. 이 모델, 즉, ZEA - 롱가와 고이즈미 방법에 두 가지가 있습니다. 그들은 폐쇄 봉합이 혈관에 삽입하는 방식에 약간의 차이가 있습니다. ZEA-롱가 기술에서, 봉합 외부 경동맥 (5)을 통하여 삽입된다. 여기에 제시된 기술은 흡장 봉합사가 경동맥 (6)를 통해 삽입되는 고이즈미 방법에서 수정된다. MCAO 모델이 성공적으로 허혈성 뇌졸중 동안 발생하는 다양한 이벤트를 평가하기 위해 적용되었다. 재관류 후, 뇌 부종은 혈액 - 뇌 장벽의 고장에 따라 관찰 될 수있다. 피크 신경 사망은 보통 24 시간에서 관찰되고; 그러나, 다시칠일 7 후 기준선 수준으로 변합니다. 인간에서, 성별과 연령이 스트로크의 결과를 결정할 때, 이것은 또한 마우스 및 래트도 8,도 9,도 10에서 관찰되는 중요한 변수이다. 몇몇 간행물은 처리 효율 11, 12, 13, 14을 설명하기 MCAO 모델을 사용했다.

<table><tbody><tr><td>MCAO 봉합사 0.23 mm</td><td>Doccol</td><td>702345PK5Re</td><td></td></tr><tr><td>MCAO 봉합사 0.21 mm</td><td>Doccol</td><td>702145PK5Re</td><td></td></tr><tr><td>실버 펜</td><td>스테이플</td><td>503205</td><td></td></tr><tr><td>마취 기계</td><td>Vetequip</td><td>901806</td><td></td></tr><tr><td>외과 용 가위</td><td>정밀 과학 도구</td><td>14558-09</td><td></td></tr><tr><td>외과 겸자 스트레이트 팁</td><td>파인 과학 도구</td><td>00108-11</td><td></td></tr><tr><td>수술 겸자 각진 팁</td><td>미세 과학 도구</td><td>00109-11</td><td></td></tr><tr><td>스프링 가위</td><td>미세 과학 도구</td><td>15000-08</td><td></td></tr><tr><td>나일론 봉합</td>사 <td>Braintree scintific</td><td>SUT-S 104</td><td></td></tr><tr><td>폐쇄 봉합사</td><td>VWR</td><td>95057-036</td><td></td></tr><tr><td>Isoflurane</td><td>Piramal</td><td></td><td></td></tr><tr><td>2,3,5- 트리 페닐 테트라 솔륨 클로라이드</td><td>FisherSci</td><td>50-121-8005</td><td></td></tr><tr><td>브레인 블록</td><td>Braintree scintific</td><td>BS-A 5000C</td><td></td></tr><tr><td>저온 유지 장치</td><td>블레이드 VWR</td><td>89202-606</td><td></td></tr><tr><td>옵션 :</td><td></td><td></td><td></td></tr> <tr><td>Periflux 레이저 도플러 시스템</td><td>Perimed</td><td>Periflux 5000</td><td></td></tr><tr><td>모니터링 장치</td><td>Perimed</td><td>PF 5010 - LDPM</td><td></td></tr></tbody></table>

경색 지역의 중간 동맥 폐색 기술 및 시각화를 사용하여 마우스의 허혈성 뇌졸중 및 허혈 - 재관류 유도

Induction of Ischemic Stroke and Ischemia-reperfusion in Mice Using the Middle Artery Occlusion Technique and Visualization of Infarct Area

뇌혈관 질환은 전 세계적으로 널리 퍼져 있으며 뇌졸중을 포함한 여러 유형의 질환을 포함합니다. 조직 손상에 대한 뇌졸중의 영향을 연구하고 치료 개입의 효과를 평가하기 위해 다양한 종에 대한 여러 실험 모델이 개발되었습니다. 여기에는 완전 전역 뇌허혈, 불완전 전체 허혈, 국소 뇌 허혈 및 다초점 대뇌 허혈이 포함됩니다. 이 프로토콜에 설명된 모델은 중대뇌동맥 폐색(MCAO)을 기반으로 하며 국소 허혈 범주와 관련이 있습니다. 이 기술은 엄격하게 정의된 반구 영역에서 일관된 국소 허혈을 일으키며 다른 방법보다 덜 침습적입니다. 설명된 절차는 여러 유전적 변이의 가용성과 행동 및 신경 결핍 평가를 돕기 위해 마우스에 대해 표준화된 많은 수의 테스트를 고려하여 마우스에서 수행됩니다.

폐색 봉합의 삽입 경로는 그림 1에서 설명된다. MCAO 봉합사는 ICA 용 분기로, 폐색 영역으로 라우팅 될 것이다. MCA의 성공적인 폐쇄는 TTC 염색으로 표시 조직 손상으로 이어질 것입니다. 그림 2 (90 분 또는 24 시간 이후 폐쇄,도 2b에 염색) 가짜 치료 동물 (그림 2A) 및 60 분 MCAO 허혈 재관류 동물에서의 염색의 이미지를 제공합니다. 스트로크 량을 결정하기 위해, 먼저 반대측의 전체 영역에서 동측의 비 - 경색 영역을 감산함으로써, 눈금자 촬상 방법에 포함하여 각 섹션의 선 영역을 구한다. 이 계산은 상용 소프트웨어 또는 개방 소스 소프트웨어를 사용하여 수행 될 수있다. 그 후, 슬라이드 1 mm 두께의 것을 각각의 조각은 고려에 대한 행정 볼륨을 계산하고 fo를 스트로크 볼륨을 요약모든 조각을 r에. 이 과정은 다른 ...

우리는 실리콘으로 코팅된 봉합사를 사용하여 중대뇌동맥의 폐색에 의해 유도된 뇌졸중의 마우스 모델을 설명합니다. 이 프로토콜은 영구적인 폐색 또는 일시적인 허혈을 유도한 후 재관류를 유도하는 데 적용할 수 있습니다.

Cerebrovascular disease is highly prevalent in the global population and encompasses several types of conditions, including stroke. To study the impact of ...

이 수술 절차의 전반적인 목표는 외부 대뇌동맥을 그대로 유지하면서 허혈성 뇌졸중을 공식적이고 안정적으로 유도하는 것입니다. 이 방법은 뇌졸중 중증도에 대한 치료의 영향과 같은 뇌졸중 연구 분야의 주요 질문에 답하는 데 도움이 될 수 있습니다. 이 기술의 가장 큰 장점은 뇌졸중 유도 후 외부 대뇌동맥이 영향을 받은 반구에 직접 치료를 주입할 수 있다는 것입니다.이소플루란으로 마취된 마우스를 준비된 수술 표면에 놓고 콧방울을 끼워 산소와 혼합된 이소플루란을 투여합니다. 헐떡임 없이 호흡수가 초당 약 1-2회 호흡이 되도록 합니다. 또한 동물이 수염 자극이나 페달 반사에 반응을 보이지 않는지 확인하십시오.시술 중 안과가 건조해지는 것을 방지하기 위해 멸균 면봉을 사용하여 각 눈에 안과 윤활제를 한 방울 떨어뜨립니다. 절개 부위를 면도한 후 70% 에탄올과 클로르헥시딘 기반 용액을 사용하여 수술 부위를 철저히 소독합니다. 실체 현미경 아래 동물을 따뜻한 수술 표면에 두십시오.그런 다음 수술용 가위와 집게를 사용하여 가슴뼈 위에서 턱 아래까지 목의 얕은 정중선 절개를 수행합니다. 겸자를 사용하여 지방 조직과 결합 조직을 조심스럽게 분리하여 기관을 노출시킵니다. 조직은 쉽고 자연스럽게 양쪽으로 분리되어야 합니다.그런 다음 베개나 직경 약 0.5cm의 둥근 물체를 목 뒤쪽 아래에 놓아 목을 펴고 수술 부위를 더 노출시킵니다. 조직 견인기 또는 고리를 사용하여 절개 부위를 엽니다. 그런 다음 기관의 왼쪽에서 결합 조직을 조심스럽게 핀셋으로 분리하여 주변 신경과 주요 정맥을 손상시키지 않고 왼쪽 총경동맥을 노출시킵니다.다음으로, CCA 아래에 구부러진 집게를 삽입하여 결합 조직을 뚫은 다음 천천히 열어 CCA를 해제합니다. 기저 조직에서 CCA를 분리하고 내부 대뇌 동맥과 외부 대뇌 동맥의 상단 y 분지를 노출시킵니다. CCA가 노출되면 CCA 아래에 나일론 봉합사 3개 세그먼트를 삽입합니다.CCA가 꼬이지 않도록 하면 봉합사 삽입이 크게 복잡해질 수 있습니다. 그런 다음 가능한 가장 낮은 지점에서 영구 매듭을 사용하여 하단 봉합사를 닫습니다. 탈착식 슬립노트를 사용하여 ICA와 ECA의 분기 바로 아래에 있는 상단 봉합사를 묶습니다.다음으로, 탈착식 슬립노트를 사용하여 중간 봉합사를 묶되 활짝 열어 두십시오. 그런 다음 미세 박리 스프링 가위를 사용하여 하단 봉합사에 더 가까운 하단과 중간 봉합사 사이의 CCA에 0.2mm를

induction-ischemic-stroke-ischemia-reperfusion-mice-using-middle

Research

연구

JoVE Journal

Medicine

의학

쥐에서 허혈성 뇌 손상 외과 유도는 뇌졸중 연구 널리 사용되는 모델입니다. 여기서 우리는 중간 대뇌 동맥의 폐색에 의해 초점 대뇌 국소 빈혈의 유도를 보여줍니다. histological 얼룩 및 자기 공명 영상에 의해 발생하는 경색의 시각화도 표시됩니다.

쥐 중간 대뇌 동맥의 폐색의 Endovascular 봉합사에 의해 초점 대뇌 국소 빈혈 모델

중간 대뇌 동맥의 폐색 Filamentous은 생쥐에서 허혈성 뇌졸중 공부를위한 일반적인 모델입니다.

마우스의 모델링 스트로크 - 필라멘트 모델 중간 대뇌 동맥 폐색

우리는 비디오 intraluminal monofilament를 사용하여 성인 마우스의 중간 대뇌 동맥 폐색을 생산하는 방법을 보여줍니다. 또한 2,3,5 - triphenyltetrazolium 염화물 (TTC) 염색법에 의해 대뇌 경색의 범위를 평가하는 방법을 보여줍니다.

중간 대뇌 동맥 폐색의 마우스 모델

intraluminal 중간 대뇌 동맥 폐색 (MCAO) 모델은 실험 허혈성 뇌졸중 모델 중 가장 자주 사용되는 모델입니다. 여기서 우리는 전체 레이저 도플러 flowmetry의 가이드와 함께 상세하게 모델 및 대표 결과를 보여줄 것입니다.

마우스의 레이저 도플러 Flowmetry 안내와 허혈성 뇌졸중에 대한 중간 대뇌 동맥 Intraluminal 폐색 (MCAO) 모델

쥐 intraluminal 중간 뇌성 가림 모델은 여기서 제공됩니다. 대뇌 경색의 범위는 neurologic 점수와 cresyl 보라색의 착색, TTC의 대안 얼룩, 병렬 많은 관심 마커에서 테스트 큰 이점을 제공함으로써 평가됩니다.

Intraluminal MCAO의 마우스 모델 : Cresyl 보라 착색에 의한 뇌 경색 평가

뇌졸중의 병태 생리를 이해하기 위해, 신뢰할 수있는 모델을 사용하는 것이 중요하다. 마우스에서 가장 자주 사용되는 뇌졸중 모델 중 하나를 설명한다 본 논문의 중간대 뇌동맥 폐색 (MCAO) 모델이라 재관류 (또한 관내 또는 필라멘트 봉합사 모델 지칭).

마우스의 중간 대뇌 동맥 폐색 및 재관류 유도 스트로크에 대한 수술 적 접근

중간 대뇌 동맥의 Intraluminal 필 라 멘 트 폐색 설치류 실험 뇌졸중의 가장 자주 사용 된 vivo에서 모델입니다. 일반적인 경 동맥 복구를 허용 하는 다른 수술 접근 여기, 일반적인 경 동맥의 reperfusion 및 중간 대뇌 동맥 영역 전체 reperfusion 수 있습니다 수행 됩니다.

쥐에 있는 일반적인 경 동맥 수리 통해 Reperfusion를 허용 하는 중간 대뇌 동맥 폐색

대뇌 국 소 빈 혈 reperfusion의 마우스 모델 선의 이상 조사를 설립 하다. 우리는 distally 오른쪽 중간 대뇌 동맥과 바로 일반적인 경 동맥 선 하 고 국 소 빈 혈의 10 또는 40 분 후 혈액 흐름을 복원.

대뇌 국 소 빈 혈 reperfusion의 2 배 폐색 마우스 모델

여기서는 미세 조작을 통해 좌측 전방 하행 관상동맥의 정밀 결찰에 의해 마우스에서 심근경색 또는 심근 허혈 재관류 손상을 유도할 수 있는 간단하고 재현 가능한 방법을 설명합니다.

마우스의 심근경색 및 심근 허혈-재관류 손상 유도

이 프로토콜은 중뇌동맥의 내강 내 폐색을 통한 마우스의 일시적인 국소 대뇌 허혈 모델을 설명합니다. 또한 자기 공명 영상 및 행동 테스트를 사용하여 결과 평가의 예를 보여줍니다.

뇌졸중의 일시적인 중뇌동맥 폐색 모델

여기에서는 C57BL/6J 마우스에서 경두개 전기응고를 통해 원위 중뇌동맥 폐색(dMCAO) 모델을 확립하고 후속 신경학적 행동 및 조직병리학적 특징을 평가하기 위한 프로토콜을 제시합니다.

원위 중동맥 폐색 기법을 사용한 마우스의 급성 허혈성 뇌졸중 유도

학습하세요 마우스 중대뇌동맥 폐색술을 통해 허혈성 뇌졸중을 유도하고 외측대뇌동맥을 보존하여 직접적인 치료제 투여가 가능한 동물 모델을 구축하는 방법을. 이 기법은 뇌졸중 메커니즘 연구와 신약 개발에 활용됩니다.

경색 지역의 중간 동맥 폐색 기술 및 시각화를 사용하여 마우스의 허혈성 뇌졸중 및 허혈 - 재관류 유도

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