Name: 에피 솜 벡터를 이용하여 인간 말초 혈액 단핵 세포로부터의 통합없이 유도 다 능성 줄기 세포의 생성 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-01-01T15:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 45 s
Description: 학습하세요 비통합 에피솜 벡터를 이용하여 인간 말초 혈액 단핵 세포로부터 통합 없는 유도 다능성 줄기 세포를 생성하는 방법을. 이 효율적인 재프로그래밍 기술은 질병 모델링과 약물 스크리닝 연구에 활용됩니다.

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이 연구는 중국 과학기술부(2015CB964902, 2013CB966902 및 2012CB966601), 중국 국가자연과학재단(81500148, 81570164 및 81421002), 로마린다 의과대학 GCAT 보조금(2015), 원격 의료 및 첨단 기술 연구 센터(W81XWH-08-1-0697)의 지원을 받았습니다.

인간의 PB 샘플의 모든 지역 연구 윤리위원회의 승인을 천진 혈액 센터에서 사용할 수없는 식별 정보와 익명 성인 기증자로부터 얻었다. 1. 엔도가없는 플라스미드 준비 <ol><li> 제조 업체의 프로토콜에 따라 대장균에서 에피 솜 벡터를 추출하는 상업 플라스미드 정제 맥시 키트를 사용합니다. 최종 단계에서, 독소가없는 멸균 수로 대체 TE 버퍼는 DNA 펠렛을 용해. </li><li> 시판 UV / 비스 분광 광도계를 이용하여 DNA 농도를 측정한다. 농도는 일반적으로 A260 / A280은 각각 1.8 및 2.0 초과, A260 / A230의 비율이 1보다 큰 μg의 / μL이다. </li></ol> 2. 문화 미디어 <ol><li> 적혈구 매체 준비 : 조혈 줄기 세포 확장 매체 100 NG / ㎖의 인간 줄기 세포 인자 (SCF), 10 ng의 / ㎖ 인터루킨 -3 (IL3), 2 U / ㎖로 보충 된 에리트로 포이 에틴 (예를 들어PO), 20 NG / ML의 인슐린 성장 인자 1 (IGF1), 1 μM 덱사메타손 0.2 mM의 1 티오 글리세롤. 0.22 μm의 주사기 필터로 멸균 필터. 적혈구 매체는 1 개월까지 4 ℃에서 저장 될 수있다. </li><li> IPSC 매체를 준비 : DMEM / F12 배지 1 배의 L 글루타민, 1X 페니실린 / 스트렙토 마이신, 1X 비 필수 아미노산 용액, 50 NG / mL의 섬유 아세포 성장 인자 2 (FGF2와 보충 (둘 베코의 변형 이글 중간 / 영양 혼합물 F-12) ) 1X 인슐린 - 트랜스페린 - 셀렌 보충 (ITS), 50 ㎎ / ㎖의 아스코르브 산. 0.22 μm의 주사기 필터로 멸균 필터. IPSC 매체는 1 개월까지 4 ℃에서 저장 될 수있다. </li><li> , 1X 페니실린 / 스트렙토 마이신 및 10 % 소 태아 혈청 (FBS)으로 보충 된 둘 베코 변형 이글 중간 (고 글루코스 DMEM) MEF 매체를 준비한다. 0.22 μm의 주사기 필터로 멸균 필터. MEF 매체까지 한 달 동안 4 ℃에서 보관하거나 사용 전에 1X 갓 L 글루타민을 추가 할 수있다. </li><li> 피repare IPSC의 냉동 보존 매체 (배) : 37 ° C의 물을 욕조에 멸균 물 30 mL에 D-트레 할로 오스의 5g을 녹여. 4 ° C로 온도를 지참하고 FBS 10 mL의 디메틸 설폭 시드 10 mL의 (DMSO)를 추가합니다. 0.22 μm의 주사기 필터로 멸균 필터. 최대 3 달 (24)에 대해 4 ° C에서 보관하십시오. </li></ol> 말초 혈액 단핵 세포의 3. 분리 (PB 다국적 기업) <ol><li> 50 mL의 튜브에 10 mL의 신선한 PB 샘플 10 mL의 PBS 버퍼를 결합하고 잘 섞는다. RT에 PBS를 가져 오기 또는 37 ° C 사용하기 전에. 주 : 약 1 - 2 × 106 다국적 (신선하거나 동결 보존)은 PB 1 ㎖로부터 얻을 수있다. 문화 동안 성숙 된 세포의 죽음으로 인해 1 × 총 6 셀 - 문화의 6 D 후, 0.5이 예상된다. 약 1 × 10 7 세포를 신선한 PB 10 mL를 얻을 수있다. </li><li> 긴 바늘이 부착 된 10 ㎖ 주사기를 사용하여 튜브의 바닥에 10 ㎖의 피콜 추가. 이 프로운이 피콜 층이 PB 혼합하지 않도록 천천히 수행한다. </li><li> 낮은 가속 및 감속 속도로 30 분 동안 400 XG에 원심 분리기. 원심 분리 후, PB의 다국적 기업은 PB 플라즈마 및 피콜 사이에있는 흰색 층 (버피 코트)에 있습니다. </li><li> 천천히 흡인 ~ 버피 코트 층을 방해하지 않고 10 mL의 PB 플라즈마. 조심스럽게 새로운 50 ㎖ 튜브에 1 ㎖의 피펫 팁을 사용하여 백색 층을 수확. 용액 6 - 백색 층으로부터 수집 된 세포의 총 부피는 (3) 사이 일 것이다. </li><li> 30 ㎖에 총 볼륨을 가져오고 10 mL를 피펫으로 잘 혼합 PBS를 추가합니다. 10 분 동안 400 XG에 원심 분리기. </li><li> 20 mL의 배양 배지 (즉, Iscove의 수정 된 둘 베코의 중간, IMDM)의 상층 액과에 resuspend 세포 펠렛을 제거하고 잘 섞는다. 10 분 동안 400 XG에 원심 분리기는 혈소판의 대부분을 제거합니다. </li><li> 상층 액을 제거하고 1 세포 펠렛을 재현 탁 - 2 ML의 IMDM. 셀에서 F 사용될 수있다또는 즉시 문화, 또는 나중에 사용하기 위해 냉동 다운. 냉동 보존를 들어, 냉동 보존 매체의 동일한 금액을 추가합니다. 바로 ° C의 냉동고에 -80 - (유리 병 당 1 mL를 0.5) 및 전송 크리오 바이알 (cryovial) 크리오 바이알 (cryovial)에서 나누어지는 세포. PB의 다국적 몇 주 동안 -80 ° C에 냉동 저장 또는 장기간 저장을 위해 액체 질소 탱크로 이송 될 수있다. 주 : 냉동 세포를 해동 할 때 우리의 동결 배지는 세포 생존을 유지할 수 있지만, 셀 수가 해동 과정에서 세포 사멸로 인해 감소 할 수있다. 10 × 10 7 세포 각각의 유리 병에 고정됩니다 - (1)하는 것이 좋습니다. </li></ol> 적혈구 중간에 PB의 다국적 기업 4. 확장 <ol><li> 15 ML의 튜브에 5 ㎖ IMDM 매체를 준비합니다. 빠르게 37 ° C의 물을 욕조에 고정 된 PB의 다국적 기업을 해동 한 다음 IMDM 매체 튜브로 전송. 주 : 수조에서 시간의 길이는 냉동 보존 세포의 부피와 cryovial U에 따라SED. 일반적으로 냉동 셀은 1 분 이내에 해동한다. </li><li> 10 분 - 5 400 XG에 원심 분리기. 상층 액을 제거하고 적혈구 배지에서 세포 펠렛을 resuspend. 10 μL 세포 현탁액 10 μL 트리 판 블루 용액을 넣고 잘 섞는다. 3 분 - 트리 판 블루 1에서 죽은 세포를 얼룩. 혈구를 사용하여 현미경으로 세포를 카운트. </li><li> 비 - 조직 배양에서 배양 PB의 다국적 (비 TC)은의 셀 밀도, 웰당 2ml의 배지로 6- 웰 플레이트를 처리 ~ 5 × 106 세포 / ㎖, 37 ℃에서 5 % CO 2에서 가습 인큐베이터. </li><li> D 3, 5의 매체를 변경하지 않고 각 웰에 직접 1 mL의 신선한 적혈구 매체를 추가합니다. </li><li> D 6에서, nucleofection에 대한 PB의 다국적 기업을 수확. </li></ol> 5. PB MNC Nucleofection 및 재 프로그래밍 <ol><li> nucleofection 전에 어느 날 프리 코트를 20 분 동안 37 ℃에서 0.1 % 젤라틴 6 웰 TC 플레이트를 처리. 해동 불 활성화 된 쥐 배아 석면고로 (MEF) 피더 37 ° C 수조 세포는 즉시 MEF 배지 5 ㎖를 함유하는 15 ㎖의 튜브에 옮긴다. </li><li> 5 분 400 XG에 원심 분리기와 뜨는을 제거합니다. , 6- 웰 플레이트에서 제거 MEF 젤라틴 배지에서 세포 펠렛을 재현 탁하고, 젤라틴 전처리 6 웰 플레이트로 옮긴다. 각 웰, 시드 2 - 4 × 10 5 불 활성화 MEF 세포는 2 ㎖의 MEF 매체에 현탁. </li><li> 배양을 5 % CO 2 가습 인큐베이터에서 37 ° C에서 MEF 피더 세포. </li><li> nucleofection의 날, MEF 매체를 대기음 1 ML의 적혈구 매체로 교체합니다. 5 % CO 2 가습 배양기에서 37 ° C에서 30 분 - 10 배양 플레이트를 미리 평형화. </li><li> 2 μg의 PEV-OCT4-2A-SOX2를 추가, 1 μg의 PEV-MYC, 1 μg의 PEV-KLF4, 및 1.5 mL의 멸균 에펜 도르프 튜브에 0.5 μg의 PEV-BCL-XL. 5 분의 오염을 방지하고, RT로 냉각하여 50 ° C에서 튜브를 가열한다. 더하다57 μL은 버퍼 13 μL 보충 nucleofection. </li><li> 수확 7 분 동안 200 XG에 원심 분리하여 5 ㎖ 튜브에 2 × 10 6 배양 PB의 다국적 기업. 상층 액을 제거하고 세포 펠렛에 플라스미드 및 nucleofection 버퍼 믹스를 추가합니다. 손가락으로 튜브를 쓸어 넘겨 잘 섞는다. 주 : 2 × 105 세포만큼 낮은 nucleofection 위해 사용될 수 있지만, 낮은 프로그래밍 효율도 예상한다. </li><li> 키트에 제공된 큐벳에 DNA 및 세포 현탁액을 전송하고 큐벳 캡. nucleofection 장치의 프로그램 U-008을 선택합니다. 홀더에 큐벳을 삽입하고 U-008 프로그램을 적용하려면 확인을 누릅니다. </li><li> 바로 전 평형 MEF 판에 1 ML의 미리 예열 적혈구 각각의 큐벳에 매체 및 전송 세포 - 홀더 중 큐벳을 가지고, 0.5를 추가합니다. 인해까지 세포의 수가 다른 시드 높은 프로그래밍 효율 도너 변동에 1-10 × 105 세포로부터 P어 잘 매우 권장합니다. </li><li> 저산소증 챔버 플레이트 이동 및 1, 92 % N 2, 5 % CO 2 및 3 % O 2의 혼합 가스로 상기 챔버를 플러시 - 20 L / min의 속도로 2 분. 37 ° C로 챔버, 배양 세포를 밀봉 후. </li><li> D 2 사후 nucleofection에서, 각 웰에 직접 2 mL의 IPSC 매체를 추가 할 수 있습니다. </li><li> D 사 후 nucleofection에서, 매체의 3 용액을 제거하고 2 mL의에게 신선한 IPSC 매체를 추가 할 수 있습니다. D-4 포스트 nucleofection에서, 생균의 대부분은 세포층에 부착 한 것이다. </li><li> 18 - D 6 후 nucleofection 후 μL 매체 소비 (500)를 떠나 D (14)까지 0.25 mM의 나트륨 낙산 보충 2 mL의 신선한 E8 매체를 추가하여 매체마다 2 일을 변경합니다. 주 : 추가 피더 세포를 피더 세포가 분리되었음을 관찰마다 배양 웰에 첨가 할 수있다. MEFs에가 (5.1 및 5.2 참조) 해동 후, (E8 매체의 소량의 세포 펠렛을 재현 탁 즉 0 ~.다음 한 6 웰 플레이트의 웰)과 2 mL의 문화 우물에 MEFs에 추가합니다. 약 2 % FBS 세포 부착을 증가시키기 위해 첨가 될 수있다. 대안 적으로, MEF 컨디셔닝 배지를 사용할 수 있지만 더 힘든하다 할 수있다. </li></ol> iPSCs 6. 확장 참고 : - 10 게시물 nucleofection 대부분의 경우, IPSC 식민지의 많은 수는 D 8에 나타납니다. D (14) 후, 큰 IPSC 식민지는 보통 따기위한 준비가되어 있습니다. <ol><li> 식민지를 따기 전에 급 지대 또는 마트 리겔 코팅 된 24 웰 플레이트 잘 하나에, ROCK 억제제, Y27632 (10 μM)로 보충 500 μL E8 매체를 추가 할 수 있습니다. 스크래치와 현미경으로 식민지를 선택하는 10 또는 20 μL 피펫을 사용합니다. 배지를 포함하는 웰에 각각의 콜로니의 피스를 옮긴다. 참고 : 마트 리겔의 농도는 하나의 배치에서 다른 다릅니다. 마트 리겔의 100 희석 : 일반적으로, 우리는 1을 사용합니다. <ol><li> 교차 오염을 방지하기 위해, 픽업크고 잘 다른 사람들로부터 분리되어 식민지. 5 % CO 2 가습 인큐베이터에서 37 ° C에서 문화 iPSCs. 주 : 6 웰 플레이트의 각 웰에 수십 식민지의 수백이 때 IPSC 인구 인해 세포 이동에 폴리 클로 날 수 있으므로주의해야한다. </li></ol></li><li> 처음 2 일 동안 매체를 변경하지 마십시오. ROCK 저해제는 작은 식민지 (25)의 생존을 홍보 할 수 있습니다. </li><li> 이후 D 2에서 보냈다 매체를 제거하고 각 웰에 500 μL 신선한 E8 매체를 추가하여 매일 매체를 변경합니다. </li><li> 콜로니가 충분히 큰 경우에 약 1 주일 후, 배지를 제거하고 1, 37 ° C에서 300 μL 세포 분리 용액 (PBS 0.5 mM의 EDTA)로 세포를 처리 - 3 분. 세포 분리 솔루션을 제거하고 iPSCs를 일시 중단 ROCK 저해제 (10 μM)를 포함 E8 매체를 추가 할 수 있습니다. 과도한 세포 죽음으로 이어질 수 하나의 세포에 식민지를 분해하지 마십시오. 50 셀 - 5 세포 덩어리들 IPSC 통로에 적합하다. </li><li> 급전선 또는 마트 리겔로 예비 코팅 된 12- 또는 6- 웰 플레이트의 각 웰에 세포 현탁액을 100 % - 전사 50. </li><li> 마트 리겔 코팅 된 플레이트에서 장기 문화 (6.1 참고 참조), 매일 매체를 변경합니다. 세포 생장이 40에 도달 할 때 - 60 %, 2 ~ 3 분간, 37 ℃에서 1 mL의 세포 분리 용액 (PBS 0.5 mM의 EDTA)로 세포를 처리한다. 식민지가 곱슬 곱슬하기 시작하면, 세포 분리 솔루션을 제거하고 iPSCs를 일시 중단 E8 매체 포함 ROCK 저해제 (10 μM)를 추가합니다. 유로 (4)의 분할 인자 세포 - 8의 생존을 증가시키는 세포를 계대시 ROCK 억제제가 첨가되어야하고 분화를 방지하는 하나 D 나중에 제거. </li><li> 제조 업체의 프로토콜에 따라 5 분 - 동결 다운하기 iPSCs를, 3, 37 ° C에서 세포 분리 솔루션 세포를 치료. IPSC 식민지가 곱슬 곱슬하기 시작하면, 버퍼를 대기음 0.5 추가 - 1 mL를 E8 매체를. </li> &lt;리&gt;는 세포 현탁액에 냉동 보존 매체의 동일한 볼륨을 넣고 잘 섞는다. 냉동 iPSCs 몇 주 또는 장기 보관 용 액체 질소에서 -80 ° C에 냉동 저장 될 수있다. </li></ol> 잔류 에피 솜 플라스미드없이 iPSCs 7. 선택 <ol><li> 유로 5, 수확 iPSCs 후와 게놈 DNA를 추출합니다. 참고 : 일반적으로 문화의 5 구절 후, 잔류 에피 솜 플라스미드는 발견 할 수 있습니다. 따라서, 거의 모든 5 (즉, 통로 10) 위의 구절에서 IPSC 식민지의 잔류 에피 솜 플라스미드를 부족하다. </li><li> 음성 대조군으로 형질 감염되지 않은 PB의 다국적 기업에서 게놈 DNA를 사용합니다. 셀 당 PEV 플라스미드의 사본과 함께 세포를 모방하기 위해 1 μg의 음성 대조군 DNA로 1.6 페이지 PEV-OCT4-2A-SOX2 플라스미드를 추가합니다. </li><li> (앞으로의 10 μm의 각 프라이머 역) 100 ng의 게놈 DNA 1 μL 특정 프라이머를 포함하여 9 μL PCR 등급 물을 추가 10 μL 하이 피델리티 PCR 마스터 믹스로. 에 AM을 정상화GAPDH에 의한 DNA의 ount. EBNA1-F TTTAATACGATTGAGGGCGTCT, EBNA1-R GGTTTTGAAGGATGCGATTAAG, WPRE-F GGTTTAAACGCGTCGACAAT, WPRE-R GTTGCGTCAGCAAACACAGT, GAPDH-F GAGTCCACTGGCGTCTTC, GAPDH-R GACTGTGGTCATGAGTCCTTC : PCR에 대해 다음 프라이머를 사용합니다. </li><li> 60 초 동안 98 ° C에서 반응 혼합물이 인큐베이션; 10 초, 30 초, 60 ° C, 30 초 동안 72 ° C 98 ° C로 하였다. 30 사이클 후, 5 분 동안 72 ℃에서 반응을 연장한다. </li><li> 부하 1 % 아가로 스겔의 각 웰에 5 μL PCR 제품. V. 더 문화 및 다운 스트림 분석을위한 EBNA1 및 WPRE에 대한 탐지 밴드와 IPSC 클론을 선택 (100)에서 30 분 - 20 젤을 실행합니다. </li></ol> 8. 유동 세포 계측법 <ol><li> 단일 세포 현탁액을 수득 5 분 - 3 37 ℃에서 Accutase로 처리하여 수확 iPSCs. 추가 1 μL PE - 복합 항 TRA-1-60 또는 항 SSEA4 또는 이소 타입 항체 세포 현탁액 100 μL (1 eFluor 570 - 복합 - 5 × 10 5 세포) 5 ㎖ 튜브한다. 20 분 동안 실온에서 어두운 장소에서 튜브를 부화. </li><li> 실온에서 20 분 동안 염색 한 후, 5 분 동안 400 XG에 mL의 PBS와 원심 분리기 (2)를 추가합니다. 세포 분석기 세포 계측법 흐름을 사용하여 형광 활성화 셀 정렬 (FACS) 분석을 위해 300 μL PBS에 재현 탁 세포. 23,26 </li></ol> 9. 공 촛점 이미징 <ol><li> 마트 리겔 코팅 챔버 슬라이드에서 종자 iPSCs. </li><li> (3) 후 - 배양 4 D, 성장 배지를 제거하고 실온에서 30 분 동안 4 % 파라 포름 알데히드 (PFA)로 고정한다. PBS로 두 번 세포를 씻으십시오. 참고 : PFA는 독성 및 유해이다. </li><li> 실온에서 30 분 동안 PBS에서 0.1 % 트리톤 X-100 (PBS-T)로 세포를 처리한다. PBS로 두 번 세포를 씻으십시오. </li><li> 1 시간 동안 실온에서 : 블로킹 완충액 (V PBS 중 5 % 염소 혈청, V)와 함께 세포를 차단. </li><li> 차단 단계에서, 버퍼를 차단에 차 항체 (100 배)를 희석. 참고 : 항체 정보가 재료의 표에 나열되어 / 장비. </li><li> 4 ° CO / N에 희석 항체와 세포를 품어. </li><li> 15 분 동안 PBS로 두 번,이어서 15 분 동안 PBS-T로 두 번 세척 하였다. </li><li> 2 시간 동안 실온에서 희석 된 형광 접합 된 이차 항체와 세포를 품어. </li><li> 15 분 동안 PBS로 두 번,이어서 15 분 동안 PBS-T로 두 번 세포를 씻어. </li><li> 실온에서 10 분 동안 PBS에서 DAPI (1 μg의 / mL)로 핵 염색. </li><li> 15 분 동안 PBS로 두 번 세포를 씻으십시오. </li><li> 공 초점 현미경으로 이미지를 캡처합니다. (23,27) </li></ol> (10) 기형 종 분석 희석 200 μL DMEM / F12의 세포 분리 솔루션 (PBS 0.5 mM의 EDTA)과에 resuspend 세포와 수확 1 × 10 6 iPSCs (1 : 1) 마트 리겔. <ol><li> 피하 NOD / SCID를 면역 결핍 생쥐의 후방 엉덩이로 세포를 주입. </li><li> 8시 - IPSC 분사가 12 주 해부 및 10 % 포르말린에 기형을 수정합니다. (28) </li><li> microsectioning 후와헤 마톡 실린 및 에오신 (H &amp; E) 염색, 샘플을 분석 할 수 있습니다. (29) </li></ol>

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<li>Chou, B. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+facile+method+to+establish+human+induced+pluripotent+stem+cells+from+adult+blood+cells+under+feeder-free+and+xeno-free+culture+conditions%3A+a+clinically+compliant+approach%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cells+Transl+Med%22%5BJournal%5D)">A facile method to establish human induced pluripotent stem cells from adult blood cells under feeder-free and xeno-free culture conditions: a clinically compliant approach.</a> Stem Cells Transl Med. 4, 320-332 (2015).</li>
<li>Nakagawa, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+efficient+feeder-free+culture+system+for+the+derivation+of+human+induced+pluripotent+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Sci+Rep%22%5BJournal%5D)">A novel efficient feeder-free culture system for the derivation of human induced pluripotent stem cells.</a> Sci Rep. 4, 3594(2014).</li>
<li>Howden, S. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Simultaneous+Reprogramming+and+Gene+Correction+of+Patient+Fibroblasts%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cell+Reports%22%5BJournal%5D)">Simultaneous Reprogramming and Gene Correction of Patient Fibroblasts.</a> Stem Cell Reports. 5, 1109-1118 (2015).</li>
<li>Meng, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rapid+and+efficient+reprogramming+of+human+fetal+and+adult+blood+CD34%2B+cells+into+mesenchymal+stem+cells+with+a+single+factor%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+research%22%5BJournal%5D)">Rapid and efficient reprogramming of human fetal and adult blood CD34+ cells into mesenchymal stem cells with a single factor.</a> Cell research. 23, 658-672 (2013).</li>
<li>Liao, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Direct+Conversion+of+Cord+Blood+CD34%2B+Cells+Into+Neural+Stem+Cells+by+OCT4%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+cells+translational+medicine%22%5BJournal%5D)">Direct Conversion of Cord Blood CD34+ Cells Into Neural Stem Cells by OCT4.</a> Stem cells translational medicine. 4, 755-763 (2015).</li>
</ol>

저자는 공개할 경쟁 또는 상충되는 이해관계가 없습니다.

건강한 기증자 또는 환자의 혈액 샘플을 취득하면 기초 연구 및 임상 세포 치료를위한 매력적인 셀 소스 만들기, 편리하고 비 침습적이다. 여기에서 우리는 말초 혈액 샘플에서 통합 무료 iPSCs의 효율적인 생성을위한 프로토콜을 설명했다. 이 재현하고 저렴한 방법은 IPSC 필드를 수혜가 예상된다. 우리는 고도로 효율적인 PB의 리 프로그래밍 (30)에 대한 책임이 중요한 요소가 있음을보고했다. 하나는 2A 링커 (31)를 사용하여 몰 OCT4의 표현과 SOX2입니다. 이를 달성하기 위해, PEV-OCT4-2A-SOX2이 프로토콜에서 사용된다. 다른 하나는 우리가 이전에 (30)를 사용한 것을 대신 PEV-MYC-2A-KLF4의 MYC 및 KLF4을 표현하는 두 개의 플라스미드 PEV-MYC 및 PEV-KLF4의 사용이다. 겉으로는 간단한 변화는 MYC에서 점진적으로 더 큰 증가에 주로 기인한다 PB의 재 프로그래밍 효율...

여러 전사 인자의 발현 후 강제 (즉, OCT4, SOX2, MYC 및 KLF4)는, 체세포는 재생 의학 및 세포 대체 요법 1-3에서 응용 프로그램에 대한 큰 약속을 보유 유도 다 능성 줄기 세포 (iPSCs)로 재 프로그램 할 수있다. 지금까지 다양한 방법이 4-7 재 프로그래밍의 성공율을 높이기 위해 개발되었다. 바이러스 통합 재 프로그래밍 요소에 대한 높은 수준의 안정적인 발현을 유도하기 때문에 바이러스 벡터 - 유도 리 프로그래밍 널리 iPSCs의 효율적인 생성을 위해 사용된다. 그러나, 세포 게놈 내로 벡터 DNA 영구 통합 삽입 성 돌연변이 5를 유도 할 수있다. 또한, 프로그래밍 요소의 부족 불 활성화는 iPSCs 차별화 8을 방해 할 수있다. 이와 같이, 프로그래밍 요소의 통합없이 iPSCs의 사용은 특히 세포 치료 응용에 사용하기 위해 필수적이다. (9)로부터 두 개의 요소, 바이러스 복제 (oriP) 및 EB 핵 항원 1 (EBNA1)의 기원을 함유하는 플라스미드이다. EBNA1 요소가 숙주 세포의 분열 동안 에피 솜의 분할 가능 염색체 DNA에 함유 oriP 플라스미드 DNA를 테더 동안 oriP 요소는 포유 동물 세포에서 플라스미드의 복제를 촉진한다. 센다이 바이러스 (SV) 및 RNA 형질 감염을 포함하는 다른 통합 프리 방식에 비교하여, 전기 자동차에는 여러 장점 5,6,10-을 갖는다. 이들을 매우 저렴하게 플라스미드 DNA로서, 전기차가 용이하게 제조 될 수 있고 변형 된 집. 또한, EV으로 재 프로그래밍하는 여러 RNA 형질 감염을 성공적 프로그래밍에 필요한 반면 전기차 단일 형질, IPSC 생성 충분하므로 덜 노동 집약적 인 공정이다. 디ermal 섬유 아세포는 많은 프로그래밍 연구에서 사용되어왔다. 그러나, 피부 생검 침입 통증 프로세스뿐만 아니라, 프로그래밍을위한 충분한 양의 세포를 확대 배양 시간 소모적 일뿐만 아니라. 큰 우려 성인 공여자의 피부 세포는 종종 따라서 피부 섬유 아세포 (11, 12)로부터 유도 iPSCs 대한 응용을 제한 종양과 관련된 돌연변이를 초래할 수있다 장기간 UV 광 방사선에 노출되어있다. 최근에는 정상적인 인간의 피부 세포가 체세포 돌연변이 및 피부 편평 세포 암종의 주요 드라이버의 대부분을 포함한 여러 암 유전자를 축적하는 것이보고되어있다, 강한 긍정적 인 선택 (13)을 받고있다. 1) 혈액 세포 쉽게 최소 침습 과정을 통해 얻어 질 수 있기 때문에, 피부 섬유 아세포는 대조적으로, 말초 혈액 (PB) 세포 리 프로그래밍에 대한 세포의 바람직한 원천 2) 말초 혈액 세포는 조혈 줄기 세포의 자손이다골수에 존재하는, 따라서 유해한 방사선으로부터 보호. 말초 혈액 단핵 세포 (PB 다국적)는 피콜-Hypaque (1.077 g / ㎖)를 사용하여 간단한 구배 원심 다음 버피 코트 층에서 시간에 수집 될 수있다. 얻어진 PB의 다국적 기업은 림프구, 단핵구 몇 조혈 전구 세포 (HPC의) (14)로 구성된다. 인간 T 림프구가 PB의 주요 세포 종류 중 하나는 성숙이지만 T 세포는 T 세포 수용체 (TCR) 유전자의 재 배열을 포함하며, 따라서 어플리케이션 (15, 16)에 대한 잠재적 인 제한 온전한 게놈 부족하다. 그러나, IPSC 생성을 통해 T 세포의 회춘은 키메라 항원 수용체 (CAR) T 세포 치료 17-19에서 응용 가능성을 가질 수있다. 비교에서의 HPC는 그대로 게놈을 용이하게 재 프로그래밍한다. 비록 단지 0.01 - 말초 순환에 0.1 %의 HPC 세포는 이들 세포가 확대 될 수있는 생체 적혈구 매체 erythr 증식 호의 해당OID 전구 세포 (14). 이전 연구에서는 PB의 재 프로그래밍의 효율성 고체 (20)의 10 배 증가 귀착 야마나카 인자 (OCT4, SOX2, MYC 및 KLF4)에 더하여 요인 BCL-XL을 사용했다. 또한 BCL2L1라고도 BCL-XL은 카스파 제 (21, 22)의 활성화를 억제함으로써 세포 사멸의 강력한 억제제이다. 그러나, BCL-XL은 능성 (21, 22)을 유지하는 데 중요한 역할을 할 수있다. 최근에, 우리는 또한 개별적으로 프로그래밍 효율 (23)의 약 100 배 증가로 연결 두 벡터와 MYC 및 KLF4를 표현함으로써 우리의 EV의 재 프로그래밍 시스템을 최적화했다. 건강한 공여자로부터 0.5 % -이 방법을 사용하여, 형질 감염에서 세포 수를 시작으로 나눈 콜로니 번호에 의해 정의 된 리 프로그래밍 효율은 0.2이다. 다음으로, 우리는 PB에서 통합 무료 iPSCs를 생성에 대한 자세한 실험 절차를 설명합니다.

<table><tbody><tr><td>조혈 줄기 세포 확장 매체</td><td>시그마</td><td>S0192</td><td>4 &deg에 저장; C</td></tr><tr><td>인간 줄기 세포 인자 (SCF)</td><td>Peprotech</td><td>300-07</td><td>-20 또는 -80 &deg에 저장; C</td></tr><tr><td>Interleukin-3 (IL-3)</td><td>Peprotech</td><td>AF-200-03</td><td>-20 또는 -80 &deg에 보관하십시오. C</td></tr><tr><td>에리트로포이에틴(EPO)</td><td>Peprotech</td><td>100-64</td><td>-20 또는 -80 &deg에 저장; C</td></tr><tr><td>인슐린 성장 인자 -1 (IGF-1)</td> <td>Peprotech</td><td>100-11</td><td>-20 또는 -80 &deg에 저장; C</td></tr><tr><td>Dexamethasone</td><td>Sigma</td><td>D4902</td><td>-20 또는 -80 &deg에서 보관하십시오. C</td></tr><tr><td>1-thioglycerol (MTG)</td><td>Sigma</td><td>M6145</td><td>-20 또는 -80 &deg에서 보관하십시오. C</td></tr><tr><td>DMEM/F12 매체</td><td>Gibco</td><td>112660-012</td><td>4°C에 보관; C</td></tr><tr><td>L-글루타민 (100x)</td><td>Gibco</td><td>25030-081</td><td>-20 &deg에 저장; C</td></tr><tr><td>페니실린/스트렙토마이신 (100x)</td><td>Gibco</td><td>15140-122</td><td>-20 &deg에 저장; C</td></tr><tr><td>비필수 아미노산 용액 (100x)</td><td>Gibco</td><td>11140-050</td><td>4°C에 보관; C</td></tr><tr><td>섬유 아세포 성장 인자 2 (FGF2)</td> <td>Peprotech</td><td>100-18B</td><td>-20 또는 -80 &deg에서 저장; C</td></tr><tr><td>인슐린-트랜스페린-셀레늄(ITS, 100x)</td><td>Gibco</td><td>41400-045</td> 4°C<td>에 저장; C</td></tr><tr><td>아스코르브산</td><td>시그마</td><td>49752</td><td>-20 &deg에 저장; C</td></tr><tr><td>DMEM (고포도당) 매체</td><td>Thermo</td><td>SH30243.01B</td> 4°C<td>에 저장; C</td></tr><tr><td>Fetal Bovine Serum (FBS)</td><td>Hyclone</td><td>SV30087.01</td><td>-20 &deg에 보관; C</td></tr><tr><td>Ficoll</td><td>GE Healthcare, SIGMA</td><td>17-5442-02</td><td>RT</td></tr><tr><td>Trehalose</td><td>Sigma</td><td>T9531</td><td>Store at 4 &deg; C</td></tr><tr><td>Dimethylsulfoxide (DMSO)</td> <td>Sigma</td><td>D2650</td><td>RT에 저장, 빛으로부터 보호</td></tr><tr><td>Endofree Plasmid Maxi Kit (10)</td> <td>Qiagen</td><td>12362</td><td>RT</td></tr><tr><td>IMDM</td><td>Gibco</td><td>21056-023</td><td>Store at 4 &deg; C</td></tr><tr><td>Human CD34+ Cell Nucleofection Kit</td><td>Lonza</td><td>VPA-1003</td><td>RT에 보관, nucleofection buffer와 supplement는 4 &deg에서 보관해야 합니다; C</td></tr><tr><td>나트륨 부티레이트</td><td>시그마</td><td>B5887</td><td>-20 또는 -80 &deg에서 보관하십시오. C</td></tr><tr><td>ROCK 억제제 - Y27632</td><td>STEMGENT</td><td>04-0012-10</td><td>-20 &deg에 저장; C</td></tr><tr><td>필수 8 기초 매체 (E8)</td> <td>Gibco</td><td>A15169-01</td><td>4 &deg에 저장; C, 보충제는 -20 또는 -80 &deg에 보관해야합니다. C</td></tr><tr><td>Matrigel</td><td>BD</td><td>354277</td><td>-20 또는 -80 &deg에서 저장합니다. C</td></tr><tr><td>2x EasyTaq PCR SuperMix (+dye)</td><td>TransGen Biotech</td><td>AS111</td><td>-20 &deg에서 저장; C</td></tr><tr><td>세포 분리 용액</td><td>STEMGENT</td><td>01-0006</td><td>-20°C에 보관 &deg; C, 세포 분리 용액으로서의 Accutase는 단일 세포 현탁액</td></tr><tr><td>DAPI</td><td>Sigma</td><td>D9542-1MG</td>를 얻기 위해 <td>4 또는 -20 °deg에서 저장합니다. C</td></tr><tr><td>Anti-Nanog AF488</td><td>BD</td><td>560791</td><td>4 &deg에 저장; C, 면역형광에 사용되는 1차 항체,</td></tr><tr><td>Anti-OCT4</td><td>abcam</td><td>ab19857</td> 사용 시 1/100 희석 4°C<td>에 저장; C, 면역 형광에 사용되는 1 차 항체,</td></tr><tr><td>AF488 당나귀 안티 마우스 IgG</td><td>Invitrogen</td><td>A21202</td>를 사용할 때 1/100을 희석합니다.<td> C, 면역형광에 사용되는 2차 항체,&nbsp; </td></tr><tr><td>PE anti-human TRA-1-60-R 항체</td><td>Biolegend</td><td>330610</td> 사용시 1/500 <td>희석 4 &deg에 저장; C, 유세포 분석에 사용되는 항체</td></tr><tr><td>eFluor 570-conjugated anti-SSEA4</td><td>eBioscience</td><td>41-8843</td><td>Store at 4 &deg; C, 유세포 분석에 사용되는 항체</td></tr><tr><td>Isotype 항체</td><td>eBioscience</td><td>11-4011</td><td>4 &deg에 저장; C, 유세포 분석에 사용되는 항체</td></tr><tr><td>알칼리성 인산가수분해효소 검출 키트</td><td>SiDanSai</td><td>1102-100</td><td>4°C에 저장; C</td></tr><tr><td>게놈 DNA 추출 키트</td><td>TIANGEN</td><td>DP304-02</td><td>RT</td></tr><tr><td>Trypan Blue 솔루션에</td> 저장 <td>Sigma</td><td>T8154</td><td>RT</td></tr><tr><td>저장 유세포 분석 세포 분석기</td><td>BD</td><td>LSRII</td><td></td></tr><tr><td>회전 디스크 컨포칼 현미경(SDC)</td><td>PerkinElmer</td><td>UltraVIEW VOX</td><td>컨포칼 이미징</td></tr><tr><td>Nucleofection device</td><td>Lonza</td><td>Nucleofector 2b</td><td>PB MNC</td></tr><tr><td>ImageQuant LAS-4010</td><td>GE</td><td></td>의 핵 발굴을 위해 <td>AP 염색 사진을 대량으로 촬영합니다</td></tr></tbody></table>.

에피 솜 벡터를 이용하여 인간 말초 혈액 단핵 세포로부터의 통합없이 유도 다 능성 줄기 세포의 생성

Generation of Integration-free Induced Pluripotent Stem Cells from Human Peripheral Blood Mononuclear Cells Using Episomal Vectors

유도 만능 줄기 세포 (iPSCs)는 질병 모델링 및 재생 치료를위한 위대한 약속을 개최합니다. 우리는 이전에 말초 혈액 단핵 세포 (PB 다국적)에서 통합없는 iPSCs를 생성하는 에피 솜 벡터 (EV)의 사용을보고 하였다. 사용되는 에피 솜 벡터들은 각각 포유 동물 세포에서 플라스미드의 복제 및 장기 retainment 허용 엡스타인 - 바르 (EB) 바이러스로부터 oriP 및 EBNA1 요소 혼입 DNA 플라스미드이다. 상기 최적화, IPSC 콜로니 수천 말초 혈액 1 ㎖로부터 얻을 수있다. 높은 프로그래밍 효율성을 달성하기위한 두 가지 중요한 요인은 : 1) (2A)의 사용은 &quot;자가 절단은&quot;펩티드 따라서 두 요인 등몰 발현을 달성 OCT4 및 SOX2을 연결하는 단계; 2) 두 벡터의 사용은 MYC 및 KLF4에게 개별적으로 표현합니다. 여기 통합없는 IP를 생성하는 단계별 프로토콜을 설명성인 말초 혈액 샘플에서 희주. 잔류 에피 솜 플라스미드 다섯 구절 후 발견 할 수없는만큼 생성 된 iPSCs 통합-무료입니다. 리 프로그래밍 효율이 센다이 바이러스 (SV) 벡터에 필적하지만, EV 플라스미드 상당히 경제적 시판 SV 벡터 이상이다. 이 저렴한 EV의 재 프로그래밍 시스템은 재생 의학의 임상 적용 가능성 보유 등 통합이없는 중간 엽 줄기 세포, 신경 줄기 세포에 PB의 다국적 기업의 직접 리 프로그래밍에 대한 접근 방식을 제공합니다.

이 프로토콜을 이용하여, 1 × 105 nucleofected PB 다국적 콜로니에서 수백를 얻을 수있다 (도 1a 및도 1b). 0.5 %와 식민지가 능성 마커 (도 1C 및 1D)를 표현 - 재 프로그래밍 효율은 약 0.2이다. 전술 한 프로토콜을 사용하여 생성 iPSCs 통합 무료이며 기형은 세 배엽 (도 1E 및 1F)을 형성하는 구성하는 능력을 가지고있다. <img alt="그림 1" src="/files/ftp_upload/55091/55091fig1.jpg" /> 그림 1 : 말초 혈액 단핵 세포...

이 프로토콜은 인간 성인 말초 혈액 세포에서 통합이 없는 iPSC를 효율적으로 생성하기 위한 자세한 방법을 설명합니다. 재프로그래밍 인자를 발현하기 위해 KLF4, MYC, BCL-XL 또는 OCT4 및 SOX2와 같은 4개의 oriP/EBNA 기반 에피솜 벡터를 사용하여 1mL의 말초 혈액에서 수천 개의 iPSC 콜로니를 얻을 수 있습니다.

Induced Pluripotent Stem Cells (iPSCs) hold great promise for disease modeling and regenerative therapies. We previously reported the use of Episomal ...

본 실험 절차의 전반적인 목표는 비통합 에피솜 벡터를 사용하여 성인 인간 말초 혈액 단핵 세포로부터 iPS 세포를 생성하는 것입니다. 이 프로토콜은 질병 모니터링, 약물 스크리닝 및 일반 방사선 의학을 위한 iPS 세포 생성을 원하는 줄기세포 분야의 연구자들에게 도움이 될 수 있습니다. 당사의 리프로그래밍 프로토콜은 매우 간단하면서도 효율성이 높습니다.본 절차를 따르면 혈구 세포 리프로그래밍 기술을 쉽게 익힐 수 있습니다. 성공적인 리프로그래밍을 위해서는 플라스미드의 품질 또한 매우 중요합니다. 오염 물질은 리프로그래밍 효율을 떨어뜨릴 수 있으므로, 에피소말 플라스미드를 정제할 때 Endofree 키트를 사용할 것을 권장합니다.iPS 세포는 다른 세포들에 비해 더 취약합니다. 계대 배양 과정 중 세포를 1분 이상의 시간 동안 방치하면, 특히 초기 계대에서 대량의 세포 사멸이 유발될 수 있습니다. 이 절차를 시작하기 위해, 함께 제공된 논문에 따라 필요한 모든 배양 배지를 준비하십시오.그런 다음 10 mL의 신선한 PB 샘플과 10 mL의 PBS 버퍼를 50 mL 튜브에 넣고 잘 섞습니다. PBS는 사용 전에 실온 또는 37 °C로 맞춥니다. 이어서, 튜브 바닥에 ficoll 10 mL를 추가합니다.Ficoll 층이 PB와 섞이지 않도록 이 과정은 천천히 수행해야 합니다. 혼합물을 낮은 가속 및 감속 설정으로 400 x g에서 30분 동안 원심분리하십시오. 원심분리 후, PB MNCs는 PB 혈장과 ficoll 사이에 위치한 흰색 층에 존재합니다. 버프 ficoll 층을 건드리지 않도록 주의하며 PB 혈장 10 mL를 천천히 흡입하십시오.그런 다음 흰색 층을 새로운 50 mL 튜브에 조심스럽게 수집합니다. 흰색 층에서 수집된 세포의 총 부피는 약 3~6 mL가 되어야 합니다. 그 후, PBS를 추가하여 총 부피를 30 mL로 맞춘 다음 잘 섞어줍니다.그런 다음 샘플을 400 x g에서 10분 동안 원심분리합니다. 10분 후, 상층액을 제거하고 세포 펠릿을 20 mL의 배양 배지에 재현탁합니다. 잘 혼합한 후 샘플을 400 x g에서 5분 동안 원심분리하여 대부분의 혈소판을 제거합니다.그 후, 상층액을 제거하고 세포 펠릿을 1~2 mL의 IMDM에 재현탁합니다. 세포는 즉시 배양하거나 나중에 사용하기 위해 동결 보관할 수 있습니다. 동결 보존을 위해서는 동일한 양의 동결 보존 배지를 추가하십시오.세포를 크라이오바이알에 분주하고 즉시 -80 °C 냉동고로 옮깁니다. 이 과정에서 15 mL 튜브에 IMDM 배지 5 mL를 준비합니다. 냉동된 PB MNCs를 37 °C 항온수조에서 빠르게 해동한 후, IMDM 배지가 들어 있는 튜브로 옮깁니다.샘플을 400 x g에서 5~10분 동안 원심분리합니다. 그 후, 상층액을 제거하고 세포 펠릿을 적혈구 배지에 재부유시킵니다. 그런 다음 헤모사이토미터를 사용하여 현미경으로 세포 수를 측정합니다.그 후, 비조직 배양 처리된 6-웰 플레이트에 웰당 2 mL의 배지를 넣고 37 °C, 5% Carbon Dioxide, 가습 인큐베이터에서 PB MNCs를 배양합니다. 3일째와 5일째에 배지를 교체하지 않고 각 웰에 신선한 적혈구 배지 1 mL를 직접 추가합니다. 6일째에 nucleofection을 위해 PB MNCs를 수확합니다.뉴클레오펙션(nucleofection) 하루 전, 조직 배양 처리된 6-웰 플레이트를 37°C에서 20분 동안 0.1% 젤라틴으로 사전 코팅합니다. 불활성화된 MEF 피더 세포를 37°C 항온수조에서 해동한 후, 즉시 5 mL의 MEF 배지가 들어 있는 15 mL 튜브로 옮깁니다. 그다음, 400 ×g에서 5분간 원심분리하고 상층액을 제거합니다.그 다음 6-웰 플레이트에서 젤라틴을 제거하고 세포 펠렛을 MEF 배지에 재현탁합니다. 이후, 젤라틴으로 전처리된 6-웰 플레이트의 각 웰에 불활성화된 MEF 세포를 2 mL의 MEF 배지와 함께 분주하고, 5% 이산화탄소가 공급되는 37 °C 습윤 인큐베이터에서 배양합니다. 뉴클레오펙션 당일에 MEF 배지를 흡입하여 제거하고 이를 1 mL의 적혈구 배지로 교체합니다.그 후, 5% carbon dioxide 가습 인큐베이터의 37 °C에서 배양 플레이트를 10-30분 동안 예비 평형화합니다. 1.5 mL 멸균 튜브에 2 µg의 PEV OCT4를 Sox2에 추가하고, 1 µg의 PEV MYC, 1 µg의 PEV KLF4, 그리고 0.5 µg의 PEV Bcl-XL을 추가합니다. 오염을 방지하기 위해 튜브를 50 °C에서 5분 동안 가열한 다음, 실온으로 식힙니다.그 후, 샘플에 57 µL의 nucleofection buffer와 13 µL의 supplement buffer를 첨가합니다. 200 x g에서 7분간 원심분리하여 2 x 10⁶개의 배양된 PBMNC를 5 mL 튜브에 수집합니다. 그 다음, 상층액을 제거하고 세포 펠렛에 플라스미드와 nucleofection buffer 혼합물을 첨가합니다.그 후 손가락으로 튜브를 튕겨 잘 섞어줍니다. 다음으로, 세포 현탁액 내의 DNA를 키트에 제공된 큐벳으로 옮기고 큐벳 캡을 닫습니다. 뉴클레오펙션 장치에서 U-008 프로그램을 선택합니다.그 다음, 큐벳을 홀더에 삽입하고 OK를 누릅니다. 이후 홀더에서 큐벳을 꺼냅니다. 각 큐벳에 미리 데워둔 적혈구 배지를 0.5-1 mL 첨가하고, 세포를 즉시 평형화된 MEF 플레이트로 옮깁니다. 일부 샘플의 경우, 혈액 1 mL에서 수천 개의 콜로니를 얻을 수 있습니다.추후 배양을 위해 단일 콜로니를 분리하고자 하는 경우, 1 million cells만 접종한 웰을 하나 더 준비해야 할 수도 있습니다. 저산소 챔버를 인큐베이터에 넣기 직전에 챔버를 부드럽게 여러 번 흔들어 배양 웰 내의 세포들이 균일하게 분포되도록 합니다. 그 후 플레이트를 저산소 챔버로 옮깁니다.혼합 가스로 챔버를 분당 20 Liters의 속도로 1~2분 동안 퍼지합니다. 그 후, 챔버를 밀봉하고 샘플을 37 °C에서 배양합니다. 뉴클레오펙션 후 2일째에, 각 웰에 iPSC 배지 2 mL를 직접 첨가합니다.뉴클레오펙션 후 4일째에 배지 3 mL를 제거하고 신선한 iPSC 배지 2 mL를 추가합니다. 이 단계에서 대부분의 살아있는 세포는 피더 층에 부착된 상태입니다. 뉴클레오펙션 후 6일 이후부터 14~18일째까지는 500 µL의 폐배지를 남기고 0.25 mM sodium butyrate가 첨가된 신선한 E8 배지 2 mL를 추가하여 2일마다 배지를 교체합니다.여기 말초혈액 세포의 재프로그래밍 프로토콜에 대한 모식도가 제시되어 있습니다. 이 이미지는 bowl 내에서 배양 중인 AP를 보여주며, 다른 이미지는 PB MNCs 뉴클레오펙션 후 14일째의 전형적인 ESC 유사 iPSC 콜로니를 보여줍니다. 여기 TRA-1-60 또는 SSEA4를 발현하는 계대 배양 5대의 iPSCs에 대한 대표적인 FACS 다이어그램이 있습니다.다음은 NANOG와 OCT4를 발현하는 iPSC 콜로니의 대표적인 공초점 이미지입니다. 여기의 이미지들은 세 가지 배엽 모두로 구성된 테라토마의 H&amp;E 염색 결과를 보여줍니다. 이 영상을 시청한 후에는 인간 말초혈액 단핵세포로부터 통합 프리(integration free) iPS 세포를 생성하는 방법에 대해 충분히 이해하게 될 것입니다.이 방법을 숙달하면 3주 만에 대량의 iPS 세포를 생성할 수 있으며, 실제 작업 시간은 3시간 미만이 됩니다. 당사는 효율적인 혈액 세포 리프로그래밍을 위해 간단한 에피좀 벡터 시스템을 개발했습니다. 우리는 이 저렴한 시스템이 특히 자원이 제한된 소규모 실험실에서 쉽게 도입될 수 있을 것이라고 믿습니다.사람의 혈액 및 혈장 작업은 위험할 수 있으므로, 이 절차를 수행하는 동안 장갑과 실험복을 착용하는 등의 예방 조치를 취해야 함을 잊지 마십시오.

generation-integration-free-induced-pluripotent-stem-cells-from-human

Research

연구

JoVE Journal

Developmental Biology

발생생물학

여기 하나의 lentiviral 재활 벡터를 사용하여 말초 혈 3-4 ML에서 인간 iPSCs의 생성을위한 간단하고 효과적인 프로토콜을 보여줍니다. 즉시 사용할 수 혈액 세포의 재 프로그래밍하면 폭 넓은 연구 공동체에 액세스하여 iPSC 기술의 활용을 촉진 것을 약속드립니다.

STEMCCA Lentiviral 벡터를 사용하여 말초 혈에서 인간 유도 만능 줄기 세포의 생성

여기, 우리는 일관된 결과 및 향상된 효율성을 보여줍니다 센다이 바이러스와 유전자가없는 인간 유도 만능에 인간의 체세포를 재 프로그램하는 우리의 설립 방법을 제시한다.

센다이 바이러스와 인간의 체세포의 효율적인 생성 인간 유도 만능 줄기 세포

여기에서는 에피솜 기반 재프로그래밍 전략과 히스톤 탈아세틸화효소 억제제를 사용하여 말초 혈액에서 인간 유도 만능 줄기 세포를 생성하는 프로토콜에 대해 설명합니다.

에피 솜과 HDAC 억제제를 사용하여 혈액에서 효율적인 유도 만능 줄기 세포 생성

직접 방법 말초 혈 세포로부터 농축 조혈 전구 세포로부터 인간 신경 줄기 세포를 유도하기 위해 개발되었다.

말초 혈액 조혈 전구 세포에서 인간 신경 줄기 세포의 직접 유도

유도 만능 줄기 세포 (iPSCs)의 임상 응용 프로그램 및 기초 연구에 대한 환자의 특정 조직의 소스를 나타냅니다. 여기서는 비 - 에피 솜 통합 플라스미드를 사용하여 바이러스 프리 iPSCs에 냉동 버피 코트로부터 얻은 인간의 말초 혈 단핵 세포 (PBMNCs)를 재 프로그래밍 상세한 프로토콜을 제시한다.

비 통합 에피 솜 플라스미드를 사용하여 냉동 버피 코트에서 유도 만능 줄기 세포의 생성

이 프로토콜은 전사 인자의 강제 발현을 통해 인간 만능 줄기 세포에서 혈구 내피 및 다중전위 조혈 전구 세포의 효율적인 유도를 설명합니다.

인간 만능 줄기 세포에서 전사 인자의 과발현에 의해 직접 Hemogenic 내피 세포의 유도 및 혈액

이 원고는 뽑은 모발에서 인간 각질세포를 유도 및 유지하고 우발적 벡터에 의한 통합이 없는 인간 유도 만능 줄기세포(hiPSC)를 후속 생성하기 위한 단계별 절차를 제공합니다.

헤어 유래 각질 세포를 사용하여 통합없는 인간 유도 만능 줄기 세포의 생성

이 프로토콜은 재프로그래밍 인자를 포함하는 마트리겔 및 센다이 바이러스 벡터의 조합을 사용하여 공급자가 없는 조건에서 인간 말초 T 세포에서 유도 만능 줄기 세포(iPSC)를 생성하는 방법을 설명합니다.

피더가없는 조건에 센다이 바이러스를 사용하여 인간 말초 T 세포로부터 유도 된 다 능성 줄기 세포의 생성

우리는 말초혈액 단핵세포(PBMC)를 유도만능줄기세포(iPSC)로 재프로그래밍하는 프로토콜을 제안합니다. 원심분리를 통해 형질도입된 혈액 세포를 매트릭스 코팅된 플레이트에 도금함으로써 부유 세포에서 iPSC를 성공적으로 유도할 수 있습니다. 이 기술은 PBMC 및 CBMC와 같은 셀에 대한 간단하고 효과적인 재프로그래밍 프로토콜을 제안합니다.

센다이 바이러스 원심 분리를 이용하여 혈액 세포로부터 유도 만능 줄기 세포의 생성

인간 유래 다 능성 줄기 (hiPS) 세포의 강력한 유도는 피부 섬유 아세포의 비 통합 적 센다이 바이러스 (SeV) 벡터 매개 재 프로그램 화를 사용하여 달성되었다. 재조합 인간 라미닌 521 (LN-521) 매트릭스 및 필수 E8 (E8) 배지를 사용하여 제노 프리 및 화학적으로 한정된 배양 조건을 사용하여 hiPS 세포 유지 및 클론 확장을 수행 하였다.

Laminin 521 매트릭스를 이용한 인간 유래 다 능성 줄기 세포의 통합 된 자유 유도

학습하세요 비통합 에피솜 벡터를 이용하여 인간 말초 혈액 단핵 세포로부터 통합 없는 유도 다능성 줄기 세포를 생성하는 방법을. 이 효율적인 재프로그래밍 기술은 질병 모델링과 약물 스크리닝 연구에 활용됩니다.

에피 솜 벡터를 이용하여 인간 말초 혈액 단핵 세포로부터의 통합없이 유도 다 능성 줄기 세포의 생성

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