Name: Zika 바이러스 유도 신경 장애 Intracerebral 주입 전략을 사용 하 여 마우스 모델을 수립: 배아, 신생아, 및 성인 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-04-26T13:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 39 s
Description: 학습하세요 뇌내 주입을 통한 지카 바이러스 감염 마우스 모델 수립 방법을 배아, 신생아, 성인 단계에서 적용하여 신경발달 장애 병리 메커니즘을 연구하고 치료법 개발에 기여하는 실험 기술을 익히세요.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

저자 그의 멘토링 및 토론에 대 한 로체스터의 대학에 박사 Abdellatif Benraiss 성인 수술과 신생아 기법 학습 관련 인정 하 고 싶습니다. 저자 또한 자신의 stereotaxic 장비 및 토론의 사용을 위한 UGA에서 박사 제임스 로더 데 일이이 기술에 대 한 방법론 및 연구 대학 과학자 (호) 재단 발전 관련을 인정 하 고 싶습니다 그들의 지원 및 우리의 NIH 지원 (NINDS 부여 R01NS096176-02, R01NS097231-01, & F99NS105187-01).

모든 동물 프로토콜 따라 대학 남부 캘리포니아와 조지아의 대학의 동물 관리 지침을 사용 합니다. 임신 댐 및 성인을 위한 안락사 방법을 승인 된 프로토콜에 따라 수행 됩니다: 이산화탄소 질 식, 뒤에 안락사를 위해 보조 방법으로 자 궁 경관 탈 구. 신생아 강아지 잘린 여 안락사 된다.
주의: 다음 프로토콜 병원 성 바이러스 처리 작업이 포함 됩니다. 바이러스를 처리 하는 동안 적절 한 예방 조치를 취해야 한다. 모든 프로토콜을 사용 하 여 적절 한 기관 위원회 사전에 의해 승인을 받아야 한다.
1. 배아 Intracerebral 접종 Zika 바이러스의
<ol><li>초과 임신 짝짓기, E0.5로 짝짓기 후 하루의 정오를 고려 하십시오. 하루의 끝에서 마우스를 연결 하 고 시간 짝짓기의 다양성을 줄이기 위해 이른 아침에 플러그를 확인 합니다.</li>
	<li>수술 전에 유리 바늘을 준비 합니다. 당겨 바늘의 길이 1/3에서 잘라 다음 50-70 µ m. 체크 바늘 팁 stereoscope 품질 및 파손에 대 한 아래에 기 공 크기가 될 때까지 물 똑으로 micropipette 분쇄기를 사용 하 여 45 ° 각도에서 선명 하 게 합니다.</li>
	<li>계속 바이러스 aliquot 얼음. 수술 직전 준비 유리 주입 바늘 ZIKV 주입 혼합 로드. 어셈블합니다 가스 꽉 주입 주사기 (50 µ L 볼륨), luer 잠금 첨부 파일 및 튜브, 고 미네랄 오일 배관 조립된 주사기를 포화. 일단 포화, 바늘, 연결 하 고 그릴 ~ 바늘에 6-7 µ L ZIKV (~ 1 µ L는 1.7 × 106 TCID50/mL).</li>
	<li>(Intracranial 주입)에 대 한 배아 하루 E14.5 배아와 케 타 민 염 산 염 (80-100 mg/kg)와 xylazine (5-10 mg/kg) 멸 균 생리 식 염 수에 희석 (자궁내 주입)에 대 한 E10.5 배아 임신 C57BL/6J 또는 129S1/SvImJ 쥐를 주사 어머니 마 취 유도를 intraperitoneally. 해당 되는 경우 또는 모니터링된 isoflurane isoflurane 폐기물 가스 청소와 흡입에 의해 제공으로 어머니 anesthetize. Buprenorphine-SR (0.5-1.0mg/kg) 무 통을 유발 하는 것을 피하 주사.</li>
	<li>꼬 집 음 시험 취 발가락 끝 또는 꼬리에 어머니 하 고에 그들을 하다 부정사 동물 승인 난방 패드 (100 x 200 2.5 m m의 열 패드). 발가락 핀치 집게 살 균 되지 않으며 수술에서 조직 처리에 사용 되지 않습니다. 또는, gloved 손 발가락 핀치 철수 반사를 테스트를 사용할 수 있습니다. 참고: 기본 수술 난방 방법에 대 한 기관 수의 직원을 참조 하십시오. 커버는이 난방 패드와 동물 사이 배치 했다.</li>
	<li>눈에 눈 연 고를 추가 합니다.</li>
	<li>복 부의 표면에 면도 하 고 세 번 요오드와 알코올 소독. 요오드와 알코올 잎사귀; 대체 수술 사이트에서 원형 모션 닦으십시오.</li>
	<li>피부 절 개 및 악기의 오염을 피하기 위하여 메 마른 천으로 수술 사이트를 둘러싼 드러 워 진. 참고: 드 레이프 개방 하지 보다 커야 준비 외과 사이트; 머리카락은 드 레이프 오프닝에서 보여야 한다.</li>
	<li>집게와 그녀의 복 부에서 어머니의 피부를 꼬 집 그리고 아랫으로 중간 화살 줄에 1-1.5 cm 선 무 균 수술가 위. 이 피부에 상처 하 고 태아는 이제 노출 되도록 복 부 구멍으로 더. 참고: 수술가 위 incise 피부 및 복 막 층 하는 데 사용 됩니다. 무 균 악기와 장갑 각 수술에 사용 됩니다.</li>
	<li>작은 멸 균 거 즈에 중간에 슬릿을 절단 하 고 외과 여 위에 적용. 멸 균 식 염 수와 하이드 레이트. 4-5 개 이상 배아를 한 번에 한 자 궁 경적에 초점을 제거 하지 하 주의 무 균 거 즈에 슬릿을 통해 배아를 당겨.</li>
	<li>이전에, 그들은 밖으로 건조 하지 마십시오 있도록 접종을 통해 메 마른 염 분으로 배아 하이드 레이트. 추적할 어떤 태아 주입 하 고 자 궁 경적 내의 그들의 위치. 개별 배아 배아 utero에서개발 하는 동안 위치를 변경 하지 마십시오으로 별도 실험, 따라서 처리 됩니다. (1.15 자궁내 주입에 대 한 단계를 계속).</li>
	<li>부드럽게 태아의 머리 아래 주걱 장소. 머리와 두개골 봉합을 시각화 하는 램프와 잘 배아를 밝히는. 참고: 무 균 기술 뒤, 무 균 수술 장갑과 악기를 포함 하 여. 후 살 균 되지 않은 항목 (예: 램프) 조작, 장갑 살 균 악기와 영역을 처리 하기 전에 새로운 멸 균 장갑으로 대체 되어야 한다.</li>
	<li>위치는 태아의 머리까지 (뒤에 시정에 대 한 머리) 램프와 무료 손가락 배아를 조작 하 여 머리를 직접 자 궁 벽에 밀어 이며 비 지배적인 손을 가진 장소에서 개최. 참고: 중요 한 부분과 대부분 연습이 필요 기술 이다 태아 위치. 너무 많은 손가락 압력 치 사 율으로 이어지는 배아 세포 막을 손상 시킬 수 있습니다 그리고 충분 하지 않은 압력 주입을 어렵게 만들 수 있습니다.</li>
	<li>가이드로 두개골 봉합 따라 혈관을 사용 합니다. ZIKV 바이러스를 주입 (~ 1 µ L, 1.7 × 106 TCID50/mL 멕시코 격리 MEX1-44) 조립된 주사기와 바늘 E14.5 태아 두뇌의 측면 뇌 실에. 컨트롤 미디어를 사용 하 여 가짜 사출으로.</li>
	<li>임신의 유지 향상, 난소 옆 두 개의 배아와 위 질 (그림 1A) 옆에 있는 두 개의 배아의 바이러스 주입을 하지 마십시오. 전반적으로, 6 개 이상의 태아 수술 시간을 단축 하며 태아 손실을 방지 쓰레기 당 주입 됩니다.</li>
	<li>임신 댐에 다시 주입된 태아를 놓고와 함께 복 부 구멍 채우기 ~ 0.5 mL 메 마른 염 분. 종료, 먼저 두 복 부 복 막 근육을 봉합 하 고 둘째 4.0 살 균 봉합 외부 피부 층을 봉합. 중단된 봉합;를 사용 하는 것이 좋습니다. 경우 마우스 씹는 다 봉합 상처 dehiscence의 가능성이 있다.</li>
	<li>부분적으로 필요한 경우 탈출 비가 열 영역을 마우스 수 있도록 난방 패드에 휴식에 마우스를 놓습니다. 마 취에서 어머니 (1-2 h)를 복구 하는 동안 모니터링 합니다. 수술에 대 한 다양 한 개별 실험에 따라 시간 후 배아를 개발 합니다.</li>
	<li>
자궁내 주입
	<ol>
<li>한 자 궁 경적 및 노출 태아를 사용 하 여 1 mL 주사기와 27 G 바늘 주사 100 μ Zika 바이러스 (106 TCID50 단위 100 μ DMEM에), 또는 제어 매체, 자궁내 공간으로 또는 placental 조직으로. Note는 배아 배아 단계 해에 대 한 주입 되어 있다. 자세한 내용은18에 대 한 이전 게시 된 작업을 참조 하십시오.</li>
		<li>임신 댐에 다시 주입된 태아를 놓고와 함께 복 부 구멍을 채우기 ~ 0.5 mL 메 마른 염 분. 닫습니다, 먼저 복 부 복 막 근육을 봉합 하 고 둘째 4.0 살 균 봉합 외부 피부 층을 봉합 합니다. 중단된 봉합;를 사용 하는 것이 좋습니다. 경우 마우스 씹는 다 봉합 상처 dehiscence의 가능성이 있다.</li>
		<li>부분적으로 필요한 경우 탈출 비가 열 영역을 마우스 수 있도록 난방 패드에 휴식에 마우스를 놓습니다. 마 취에서 어머니 (1-2 h)를 복구 하는 동안 모니터링 합니다. 수술에 대 한 다양 한 개별 실험에 따라 시간 후 배아를 개발 합니다.</li>
	</ol>
</li>
</ol>2. 신생아 Intracerebral 접종 Zika 바이러스의: P0/P1
<ol><li>가스 꽉 주입 주사기 (10 µ L 볼륨) 및 바늘 하지 막혀 있는지 확인 합니다. 청소 하 고 26-게이지 바늘 3 20 mL 일회용 주사기를 로드 하 여 테스트: 한 식 염 수, 70% 에탄올, 및 공기 솔루션을 취소. 이전 바이러스 주입에 사용 하는 경우에 10% 표 백제로 소독.</li>
	<li>얼음에 바이러스를 유지. 주사기는 주사기에 죽은 볼륨을 줄이기 위해 염 분으로 작성 하 여 로드 하 고 염 분 해결책 주입 물질에서 분리 하는 공기의 0.75 µ L를 그립니다.</li>
	<li>주입 된 강아지는 따뜻하게 습도 복구 챔버를 설정 합니다. 열 블록을 사용 하 여, 멸 균 거 즈와 closeable 컨테이너 (예: 빈 팁 상자) 놓고 식 염 수와 축이다. 주사를 시작 하기 전에 그것을 예 열.</li>
	<li>펌프 및 컨트롤러를 포함 하 여 microinjector를 설정 합니다. 장치 유형 코드 특정 주사기에 대 한 결정 (즉, 10 µ L 주사기, 장치 종류에 대 한 "D"는 이다). 사출 속도 결정 합니다.</li>
	<li>수술 설치 근처 출생 후 하루 0 또는 1 강아지 (P0/P1)를 수집 합니다. 바이러스 주입 주사기를 로드 합니다. 70%와 강아지 머리 산 소독 EtOH.</li>
	<li>거 즈의 얇은 층에 새끼를 포장 하 고는 마 취 상태를 달성 하기 위해 얼음에서 그들을 완전히 묻어. 강아지는 5 분은 새끼는 충분히 마 취 주입에 대 한 응답 없이 꼬리/발가락 핀치를 수행 하 여 확인에 대 한 cryoanesthetized. 이 대략 15 분의 마 취 상태 생성합니다.</li>
	<li>강아지에 머리 산, 요오드, 에탄올 머리의 표면에 소독 (세 번) 놓고 다음 살 균 삭제 기능으로 닦아 건조 (소 프로 파 놀 또는 70 %EtOH).</li>
	<li>람다 블랙 마커를 표시 하 고 람다 stereotaxic 악기를 사용 하 여 좌표를 기록 합니다. 눈와 람다 stereotaxic 좌표에서 가장자리에 람다에서 거리 측정 람다 (두 반구 둘 다를 주입 하는 경우)에 대 한 눈의 2/5 거리를 계산 합니다.</li>
	<li>다시 마 취 깊이 주사 사이트에 대 한 구멍을 만들기 전에 확인 합니다. 26-게이지 바늘을 사용 하 여 신중 하 고 피상적으로 두 피와 두개골 (두개골은 매우 부드러운 신생아에) 주입 위치에 주사 바늘에 대 한 개방을 만들려고 펑크.</li>
	<li>주사 바늘 구멍이 위치에 낮은 고 바늘은 그냥 피부 위반, 일단 stereotaxic 악기를 사용 하 여 사출 사이트 (측면 심)에 대 한 1 mm 깊이 계산.</li>
	<li>일단 바늘 주입 깊이를 낮 췄 다, 프로그램 삽입 microinjector: 1 µ L 10 nL/s, 1.5 분 이상 약 1 µ L 주입의 속도에서 바이러스의 (~ 1 μ 3.4 x 105 TCID50/mL ZIKV).</li>
	<li>때 주입 완료, 대기 30 s, 바늘을 철회 하 고 (dorsally) 나사를 회전 하 여 0.5 m m 단위로, 대기 30 각 증가 후 s. 참고:이 주입 된 바이러스의 누설을 줄일 수 있습니다.</li>
	<li>일단 제거 하거나 신속 하 게 로드 바늘과 주사기 더 많은 바이러스 (다른 바이러스 또는 모의 컨트롤 로드 해야 별도 주사기/바늘에) 미리 데워 진된 습도 챔버에 머리 산에서 강아지를 제거 하거나. 몇 분 마다 복구를 측정 하는 강아지를 모니터링 합니다. 그 쓰레기 새끼를 바꿉니다.</li>
</ol>3. 성인 Intracerebral 접종 Zika 바이러스의
<ol><li>주사 마 취를 유도 하기 위해 멸 균 식 염 수에 희석 하는 케 타 민 염 산 염 (80-100 mg/kg)와 xylazine (5-10 mg/kg) intraperitoneally 성인 쥐. Buprenorphine-SR (0.5-1.0mg/kg) 무 통을 유발 하는 것을 피하 주사. 발가락/꼬리의 마 취 상태를 확인 하 고 그 후 마운트 (생리대)와 stereotaxic 악기에 수술 하는 동안 머리를 고정 마우스를 꼬집어.</li>
	<li>마우스의 눈 수술 하는 동안 밖으로 건조 하지 않도록 눈 안과 연 고를 추가 합니다. 귀 앞에 눈 뒤에 시작 하는 두 피를 면도. 요오드와 70% 노출 된 피부를 소독 EtOH 3 번. 요오드와 알코올 잎사귀; 대체 수술 사이트에서 원형 모션 닦으십시오.</li>
	<li>다시 피부를 incising 전에 마 취 깊이 확인 합니다. 메스를 사용 하 여, 확인 머리의 화살 중간 라인을 따라 0.5 c m 절 개 소독된 위치에 bregma 노출 합니다. 솜 밀고 주걱으로 롤링 모션을 사용 하 여, 사출 사이트에서 피부를 동시에 추진 하는 동안 meningeal 조직, 두개골의 표면 선택을 취소 합니다.</li>
	<li>수술 드릴 비트 정렬 bregma에서 시작, 및 다음 좌표를 사용 하 여 사출 사이트 식별: AP-0.5 m m, ML: ± 1.5 m m. 제어 발 페달을 사용 하 여, 천천히만 구멍 바늘에 대 한 삭제 되었습니다 때까지 뼈를 드릴로 두개골을 드릴.</li>
	<li>Microinjector 펌프와 가스 꽉 주사기 (10 µ L 볼륨)에 stereotaxic 드릴을 교체 합니다. 무승부는 생리 식 염 수와 바이러스 사이 작은 기포를 떠나 ~ 바이러스의 µ L 4-5. 특정 주사기 볼륨 (즉, 10 μ 볼륨 주사기에 대 한 D)에 대 한 장치 유형 코드를 확인 합니다. DV 바늘 낮은:-1.5 m m 뇌 표면에서. 바이러스의 1 µ L를 투입, 10 nL/s, 1.5 분 이상 약 1 µ L 주입의 프로그램.</li>
	<li>때 주입 완료, 대기 30의 30을 기다리고 0.5 m m 단위로 바늘을 제거 하 고 각 턴 후 s. 이 역류와 주입 된 바이러스의 유출을 감소 시킨다.</li>
	<li>injection(s) 끝나면는 집게를 사용 하 여 피부를 느슨하게 노출된 두개골을 복구. 봉합 사 두 피 4.0 봉합을 사용 하 여 함께 다시 고 stereotaxic 악기에서 마우스를 제거 마 취에서 필요한 경우 비가 열 영역을 탈출 하 고 그들은 (1-2 h)을 복구 하는 동안 모니터 마우스를 수 있도록 장소 부분적으로 난방 패드에 휴식에 마우스.</li>
</ol>

<ol><li>Dreher, A. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Spectrum+of+Disease+and+Outcome+in+Children+with+Symptomatic+Congenital+Cytomegalovirus+Infection%5BTitle%5D)+AND+%22J+of+Pediatr%22%5BJournal%5D)">Spectrum of Disease and Outcome in Children with Symptomatic Congenital Cytomegalovirus Infection.</a> J of Pediatr. 164 (4), 855-859 (2014).</li>
<li>Lanzieri, T. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Long-term+outcomes+of+children+with+symptomatic+congenital+cytomegalovirus+disease%5BTitle%5D)+AND+%22J+of+Perinatol%22%5BJournal%5D)">Long-term outcomes of children with symptomatic congenital cytomegalovirus disease.</a> J of Perinatol. 37 (7), 875-880 (2017).</li>
<li>Naseer, M. I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+WDR62+mutation+causes+primary+microcephaly+in+a+large+consanguineous+Saudi+family%5BTitle%5D)+AND+%22Ann+Saudi+Med%22%5BJournal%5D)">A novel WDR62 mutation causes primary microcephaly in a large consanguineous Saudi family.</a> Ann Saudi Med. 37 (2), 148-153 (2017).</li>
<li>Abuelo, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microcephaly+Syndromes%5BTitle%5D)+AND+%22Semin+Pediatr+Neurol%22%5BJournal%5D)">Microcephaly Syndromes.</a> Semin Pediatr Neurol. 14 (3), 118-127 (2007).</li>
<li>Nicholas, A. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((WDR62+is+associated+with+the+spindle+pole+and+is+mutated+in+human+microcephaly%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Genet%22%5BJournal%5D)">WDR62 is associated with the spindle pole and is mutated in human microcephaly.</a> Nat Genet. 42 (11), 1010-1014 (2010).</li>
<li>Pulvers, J. N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mutations+in+mouse+Aspm+%28abnormal+spindle-like+microcephaly+associated%29+cause+not+only+microcephaly+but+also+major+defects+in+the+germline%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Mutations in mouse Aspm (abnormal spindle-like microcephaly associated) cause not only microcephaly but also major defects in the germline.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 107 (38), 16595-16600 (2010).</li>
<li>Shao, Q., Herrlinger, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Zika+virus+infection+disrupts+neurovascular+development+and+results+in+postnatal+microcephaly+with+brain+damage%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Zika virus infection disrupts neurovascular development and results in postnatal microcephaly with brain damage.</a> Development. 143 (22), 4127-4136 (2016).</li>
<li>Li, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Zika+Virus+Disrupts+Neural+Progenitor+Development+and+Leads+to+Microcephaly+in+Mice%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Stem+Cell%22%5BJournal%5D)">Zika Virus Disrupts Neural Progenitor Development and Leads to Microcephaly in Mice.</a> Cell Stem Cell. 19 (5), 672(2016).</li>
<li>Miki, T., Fukui, Y., Takeuchi, Y., Itoh, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+quantitative+study+of+the+effects+of+prenatal+X-irradiation+on+the+development+of+cerebral+cortex+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Neurosci+Res%22%5BJournal%5D)">A quantitative study of the effects of prenatal X-irradiation on the development of cerebral cortex in rats.</a> Neurosci Res. 23, 241-247 (1995).</li>
<li>Cragan, J. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Population-based+microcephaly+surveillance+in+the+United+States%2C+2009+to+2013%3A+An+analysis+of+potential+sources+of+variation%5BTitle%5D)+AND+%22Birth+Defects+Res+Part+A+Clin+Mol+Teratol%22%5BJournal%5D)">Population-based microcephaly surveillance in the United States, 2009 to 2013: An analysis of potential sources of variation.</a> Birth Defects Res Part A Clin Mol Teratol. 106 (11), 972-982 (2016).</li>
<li>Cragan, J. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Baseline+Prevalence+of+Birth+Defects+Associated+with+Congenital+Zika+Virus%5BTitle%5D)+AND+%22MMWR+Morb+Mortal+Wkly+Rep%22%5BJournal%5D)">Baseline Prevalence of Birth Defects Associated with Congenital Zika Virus.</a> MMWR Morb Mortal Wkly Rep. 66 (8), 219-220 (2017).</li>
<li>Mlakar, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Zika+Virus+Associated+with+Microcephaly%5BTitle%5D)+AND+%22N+Engl+J+Med%22%5BJournal%5D)">Zika Virus Associated with Microcephaly.</a> N Engl J Med. 374 (10), 951-958 (2016).</li>
<li>Jaenisch, T., Rosenberger, D., Brito, C., Brady, O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Risk+of+microcephaly+after+Zika+virus+infection+in+Brazil%2C+2015+to+2016%5BTitle%5D)+AND+%22Bull+World+Health+Organ%22%5BJournal%5D)">Risk of microcephaly after Zika virus infection in Brazil, 2015 to 2016.</a> Bull World Health Organ. 95 (3), 191-198 (2017).</li>
<li>Clancy, B., Darlington, R. B., Finlay, B. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Translating+developmental+time+across+mammalian+species%5BTitle%5D)+AND+%22Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Translating developmental time across mammalian species.</a> Neuroscience. 105 (1), 7-17 (2001).</li>
<li>Driggers, R. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Zika+Virus+Infection+with+Prolonged+Maternal+Viremia+and+Fetal+Brain+Abnormalities%5BTitle%5D)+AND+%22N+Engl+J+Med%22%5BJournal%5D)">Zika Virus Infection with Prolonged Maternal Viremia and Fetal Brain Abnormalities.</a> N Engl J Med. 374 (22), 2142-2151 (2016).</li>
<li>Semple, B. D., Blomgren, K., Gimlin, K., Ferriero, D. M., Noble-Haeusslein, L. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Brain+development+in+rodents+and+humans%3A+Identifying+benchmarks+of+maturation+and+vulnerability+to+injury+across+species%5BTitle%5D)+AND+%22Prog+Neurobiol%22%5BJournal%5D)">Brain development in rodents and humans: Identifying benchmarks of maturation and vulnerability to injury across species.</a> Prog Neurobiol. 106, 1-16 (2013).</li>
<li>Li, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Zika+Virus+Infects+Neural+Progenitors+in+the+Adult+Mouse+Brain+and+Alters+Proliferation%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Stem+Cell%22%5BJournal%5D)">Zika Virus Infects Neural Progenitors in the Adult Mouse Brain and Alters Proliferation.</a> Cell Stem Cell. 19 (5), 593-598 (2016).</li>
<li>Vermillion, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intrauterine+Zika+virus+infection+of+pregnant+immunocompetent+mice+models+transplacental+transmission+and+adverse+perinatal+outcomes%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Commun%22%5BJournal%5D)">Intrauterine Zika virus infection of pregnant immunocompetent mice models transplacental transmission and adverse perinatal outcomes.</a> Nat. Commun. 8, 14575(2017).</li>
<li>Goodfellow, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Zika+Virus+Induced+Mortality+and+Microcephaly+in+Chicken+Embryos%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cells+Dev%22%5BJournal%5D)">Zika Virus Induced Mortality and Microcephaly in Chicken Embryos.</a> Stem Cells Dev. 25 (22), 1-27 (2016).</li>
<li>Dick, G. W. A., Kitchen, S. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Zika+Virus+%28I%29.+Isolations+and+serological+specificity%5BTitle%5D)+AND+%22Trans+R+Soc+Trop+Med+Hyg%22%5BJournal%5D)">Zika Virus (I). Isolations and serological specificity.</a> Trans R Soc Trop Med Hyg. 46 (5), 509-520 (1952).</li>
<li>Shao, Q., Herrlinger, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+African+Zika+virus+MR-766+is+more+virulent+and+causes+more+severe+brain+damage+than+current+Asian+lineage+and+Dengue+virus%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">The African Zika virus MR-766 is more virulent and causes more severe brain damage than current Asian lineage and Dengue virus.</a> Development. , (2017).</li>
</ol>

저자는 공개 없다.

여기서 설명 하는 것은 두뇌 개발에 ZIKV 유도 손해의 조사에 대 한 미 발달, 신생아, 및 성인 단계에는 ZIKV의 intracerebral 접종에 대 한 방법이입니다. 동안 간단, 조사 연구의 품질 및 그 참여의 안전을 보장 하기 위해 취해야 하는 몇 가지 고려 사항이 있다.
DENV는 flavivirus 속에 ZIKV 밀접 하 게 관련 있다. DENV 하지 원인이 인 간에 있는 소아 뇌 장애와 연결 되어있다. DENV2 수 있습니다 성공적으로 감염 하 고 배아 접종 방법을 사용 하 여 개발 두뇌에 복제 (~ 3.4 x 10의 1 µ L5 TCID50/mL) (그림 2D). 따라서 감염 되지 않은 Vero 세포 미디어 (모의), 뿐만 아니라 DENV 감염 사용할 수 있습니다 부정적인 제어로 개발 두뇌 병 인 ZIKV 관련 공부 하기 위하여. 그것은 바이러스 누설에 방지 utero에서, ...

Microcephaly 결함이 두뇌 개발 신생아에서 평균 머리 크기 보다 작은 특징에서 유래 하는 조건입니다. Microcephaly 어린이 발달 지연, 발작, 지적 장애, 난청, 시력 문제, 그리고 운동 및 균형, 다른 가운데, 질병의 심각도 따라 문제를 포함할 수 있는 증상의 범위를 전시 하 고 원인1,2,3. 이 상태는 자연, 유전적, 전염 성 에이전트와 일으키는 microcephaly4,,56,,78에 연결 하는 환경 요인에 multifactorial 9. ZIKV 2015-2016 발발 전에 10000 출생에서 8 어린이 microcephaly10CDC 따르면 미국에서 진단 했다. 에 2 월 1일 2016 년 세계 보건 기구 선언 Zika 바이러스 microcephaly 진단 어머니11, ZIKV 감염과 관련 된 놀라운 증가로 인해 국제 관심사의 공중 보건 비상 사태 12. 미국에서 ZIKV 경우에 CDC에서 최근 연구 개발 microcephaly 미국에서 감염 되지 않은 개인, 및 ZIKV 감염 어머니의 4%에 비해 자녀에 대 한 위험을 증가 20-fold에 모성 ZIKV 감염 결과 귀착되 었 제안 microcephaly11아이 들. 브라질의 ZIKV 감염에서 임신 중 microcephaly 관련 된 출생 결함의 비율 최대 17% 라틴 아메리카에 있는 다른 요인 위험 증가에 기여 수 있습니다 나타내는 감염 된 어머니에 아기의 영향을 보고 되었습니다. 13. 우리는 ZIKV은 신경 조상 세포 (NPC) 인구7,,814는 microcephaly pathogenesis 발생할 수 있습니다 알고, 하는 동안 개발에 ZIKV의 완전 한 병 인 뇌 애매 하 게 남아 있다. 그것은 더 ZIKV 감염과 관련 된 뇌 이상이 기본 질병 메커니즘을 조사 하기 위해 동물 모델을 개발 하는 것이 중요입니다.
직접 효과 ZIKV는 두뇌 개발에 연구, 우리는 먼저 ZIKV7배아 일 14.5 (E14.5) 두뇌의 intracerebral 접종을 사용 하 여 마우스 모델을 개발 했다. 이 단계는 인간의 임신14첫 번째 임신의 끝의 대표자 이라고 여겨진다으로 선정 되었다. 새끼는 출생 후 하루 5 (P5)이 배아 intracerebral 주입 방법으로 살아남을 수 (~ 106 조직 문화 감염 복용량 (TCID50/mL) x 1.7의 1 µ L). 이러한 산 후 새끼 고기 마찬가지로 확대 심, 신경 손실, axonal 희박, astrogliosis, 및 microglial 활성화12,15를 포함 하 여 감염 된 인간 유아에서 관찰의 범위를 전시 한다. 신생아 쥐의 뇌 중간 임신16, 인간 두뇌의 발달 단계에 가깝다 상대적으로 성숙 이며 마우스 두뇌 개발 주요 출생 후 구성 요소를 포함 합니다. 공부 하 고 나중에 임신 단계 감염, 출생 후 감염에 대 한 방법은 또한 설명 합니다. 신생아 감염 p 1에서 ZIKV 13 일 후 주입에 살아남을 수 있습니다. 혈액 태어난 성인 무대 감염 마우스 이전17 만 사용 해야 합니다에 설명 하 고 인터페론 (IFN) 규정 요인 (IRF) 녹음 방송 요인 IRF-3,-5,-7 트리플 녹아웃 스트레인. 이 프로토콜 murine 모델은 성인에서의 항 바이러스 반응 억제를 회피 하는 intraventricularly ZIKV를 접종 하는 방법을 설명 합니다. 동안이 circumvents murine 면역 시스템, 주입의이 경로 감염의 전형적인 경로 모방 직접 않습니다. 이러한 불일치를 해결 하기 위해 직접는 실험 intracranial 경로 대신 ZIKV의 자궁내 감염을 수행할 수 있습니다. 이전 작업18채택, 우리 간단히이 배아 감염 프로토콜에서이 기법을 설명 했습니다.
이 기술로 구현 Zika 바이러스 변종 멕시코 격리 MEX1-447,19 와 아프리카 씨-766 194720에 고립 된 분리 있습니다. Zika MEX1-44 감염된 Aedes aegypti 에서 2016 년 1 월에에서 치아 파스, 멕시코에서 분리 되었습니다 모기. 우리는 텍사스 대학 의료 지점 Galveston (UTMB)에서 통해 권한이 있는이 바이러스를 얻었다. 또한, 뎅기열 바이러스 serotype 2 (DENV2)이이 기법을 사용 하 여 비교 연구에 주사 했다. DENV2, 스트레인 S16803 (시퀀스 은행 GU289914), 1974 년에 태국에서 환자 샘플 로부터 격리 했다 및 C6/36 셀에 passaged. 바이러스는 passaged Vero 세포에 (서) 두번 세계 참조 센터 신흥 바이러스 및 Arboviruses (WRCEVA)에 대 한 마우스 주사 하기 전에. 이이 기술을 동일 하 게 작동 하는 방법을 보여 줍니다 ZIKV 및 두뇌 발달에 영향을 미칠 수 있는 다른 flaviviruses의 다양 한 변종에 대 한 잘.

<table><tbody><tr><td>플렉시블 드라이브 샤프트 드릴 교수형 모터</td><td>라이카</td><td>39416001</td><td></td></tr><tr><td>마우스 스테레오택스</td><td>Kopf</td><td>04557R</td><td></td></tr><tr><td>Micro4 Microsyringe 펌프 컨트롤러</td><td>WPI</td><td>SYS-MICRO4</td><td></td></tr><tr><td>UMP3 UltraMicroPump</td><td>WPI</td><td>UMP3</td><td></td></tr><tr><td>Modulamp</td><td></td> Schott-Luer-lock <td></td><td></td></tr><tr><td>tubing (19-gauge)</td><td>Hamilton</td><td>90619</td><td></td></tr><tr><td>융점 모세관</td><td>Kimble</td><td>34500-99</td><td>유리 바늘</td></tr><tr><td>Fluoro-Max : 적색 형광 마이크로 스피어</td><td>Thermo Scientific</td><td>R25</td><td>희석 없음; 연습 주사를 위한 사용</td></tr><tr><td>10 &micro; L, 모델 1701 LT SYR</td><td>Hamilton</td><td>80001</td><td>배아 접종 10</td></tr><tr><td>&micro; L, 모델 1701 RN SYR, 소형 탈착식 NDL, 26s ga, 2 in, 포인트 스타일 2</td><td>Hamilton</td><td>80030</td><td>신생아/성인용</td></tr><tr><td>4-0 Ethilon 나일론 봉합사</td><td>Ethicon-Mineral</td><td></td><td></td></tr> <tr><td>Oil</td> <td>VWR-micropipette</td><td></td><td></td></tr> <tr><td>puller</td><td>Sutter Instruments</td><td>P-1000</td><td></td></tr><tr><td>Micropipette Grinder</td><td>Narishige</td><td>EG-44</td><td></td></tr><tr><td>Fastgreen FCF Dye</td><td>Sigma</td><td>F7252</td><td>주입 0.5% 염료</td></tr><tr><td><강한>항체</강한></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>플라비바이러스 그룹 항원 항체</td><td>Millipore</td><td>MAB10216</td><td>ms IgG2a 1:400 (그림 2, 그림 3)</td></tr><tr><td>Pax6</td><td>DBHB</td><td>Pax6-s</td><td>ms IgG1 1:20</td></tr></tbody></table>

zika 바이러스 유도 신경 장애 intracerebral 주입 전략을 사용 하 여 마우스 모델을 수립: 배아, 신생아, 및 성인

Establishing Mouse Models for Zika Virus-induced Neurological Disorders Using Intracerebral Injection Strategies: Embryonic, Neonatal, and Adult

Zika 바이러스 (ZIKV) 북쪽, 중앙, 그리고 남아메리카에 현재 발병 flavivirus는 이다. 이제는 ZIKV microcephaly 및 추가 뇌 이상이 발생할 수 있습니다 설치 된다. 그러나, 발전 두뇌에 있는 ZIKV의 병 인을 기본 메커니즘 불분명 남아 있습니다. Intracerebral 수술 방법은 자주 주소 질문 정상과 비정상적인 두뇌 개발 및 뇌 기능에 대 한 신경 과학 연구에 사용 됩니다. 이 프로토콜 클래식 수술 기법을 활용 하 고 마우스 신경 시스템에서 하나의 모델 ZIKV 연관 된 인간의 신경 질환을 허용 하는 방법에 설명 합니다. 직접 뇌 접종 바이러스 전송의 정상 모드를 모델링 하지 않습니다, 하는 동안 메서드를 사용 하면 개발 두뇌의 ZIKV 감염 후 결과 관한 대상 질문을 조사 수 있습니다. 이 프로토콜의 ZIKV intraventricular 접종의 미 발달, 신생아, 및 성인 단계를 설명합니다. 일단 마스터,이 방법만 수행 하는 몇 시간을 소요 하는 간단 하 고 재현성 기술 될 수 있다.

미 발달 두뇌의 ZIKV 접종에 대 한 우리의 주입 방법의 대표 이미지 intracerebral 주사 (그림 1A)를 묘사 하는 다이어그램에 표시 됩니다 및 자궁내 intraplacental 주사 (그림 1B), 설명 하 고는 방법은 임신 댐과 배아에 볼와 수술 (배아 접종 프로토콜)에 대 한 지향 있어야 합니다. 그림 2A 전시 E18.5 대뇌 피 질에서 ZIKV (MEX1-44) 감염 (flavivirus 그룹 항 원, 녹색에 대 한 항 체와 immunostained). Pax6 (빨간색) 개발 피에 Npc를 라벨. ZIKV는 E14.5 미 발달 머리에 주사 했다. 우리의 성장 곡선 분석 표시 하는 ZIKV 한 조직 샘플7, TCID50 분석 결과 사용 하 여 복제 ...

여기는 마우스에서 바이러스 유도 microcephaly Zika의 모델을 설정 하는 방법에 설명 합니다. 이 프로토콜에는 Zika 바이러스의 미 발달, 신생아, 그리고 성인 무대 intracerebral 접종에 대 한 메서드가 포함 됩니다.

Zika 바이러스 유도 신경 장애 Intracerebral 주입 전략을 사용 하 여 마우스 모델을 수립: 배아, 신생아, 및 성인

The Zika virus (ZIKV) is a flavivirus currently endemic in North, Central, and South America. It is now established that the ZIKV can cause microcephaly ...

여기에 제시된 수술 방법의 전반적인 목표는 두개내 지카 바이러스 감염의 생체 내 모델을 확립하는 것입니다. 이 방법은 병리학 및 뇌의 지카 바이러스 감염 메커니즘과 같은 분야의 핵심 질문을 해결하는 데 도움이 될 수 있으며, 이는 초기 및 후기 발달 단계와 성인 단계 모두에서 이루어집니다. 이 기술의 가장 큰 장점은 뇌의 방향 감염을 쉽게 달성할 수 있다는 것입니다.이 기술의 의미는 지카 바이러스에 의한 소두증 또는 기타 신경 발달 장애의 치료 또는 진단으로 확장됩니다. 이 방법은 지카 바이러스 발병에 대한 통찰력을 제공할 수 있지만 뎅기열 바이러스와 같은 뇌의 다른 플라비바이러스 감염을 연구하는 데에도 적용할 수 있습니다. 수술 직전에 먼저 가스 밀폐 50마이크로리터 주사기 Luer-lock 부착물과 튜브를 조립하여 준비된 유리 주사 바늘에 지카 바이러스 주사 혼합물을 로드합니다.조립된 주사기와 튜브를 미네랄 오일로 적십니다. 일단 포화되면, 바늘을 부착하고 약 6-7마이크로리터의 바이러스를 바늘로 빨아들입니다. E14.5 배아가 임신한 댐을 마취한 후 발가락이나 꼬리를 꼬집어 마취 깊이를 테스트합니다.마취의 수술 평면이 달성되면 댐이 가열 패드에 누운 자세로 놓여 있는지 확인하십시오. 복부 표면을 면도하고 요오드와 알코올로 3회 살균합니다. 절개 부위와 기구가 오염되지 않도록 멸균 천으로 수술 부위 주변 피부를 덮습니다.집게로 복부 피부를 꼬집고 들어 올린 다음 멸균 가위를 사용하여 내측-시상선에서 하복부를 1-1 1/2cm 절개하고 배아를 노출시킵니다. 다음으로, 작은 멸균 거즈 중간에 있는 슬릿을 잘라 수술 구멍 위에 놓습니다. 입구와 거즈에 멸균 식염수로 수분을 공급하십시오.그런 다음 슬릿을 통해 배아를 당겨 거즈 위에 올려놓고 한 번에 4-5개 이상의 배아를 제거하지 않도록 주의합니다. 접종 전과 접종 기간 내내 배아에 멸균 식염수를 수화하여 배아가 건조되지 않도록 합니다. 램프로 주입할 배아를 조명하여 머리와 두개골 봉합사를 시각화한 다음, 주입할 배아의 머리 아래에 주걱을 부드럽게 놓고 머리가 자궁벽에 직접 닿을 때까지 배아를 조작합니다.주로 사용하지 않는 손으로 배아를 제자리에 잡습니다. 주사기를 사용하여 지카 바이러스를 주입하거나 배지를 배아 뇌의 외측심실에 주입합니다. E11.5 단계 자궁 내 주사의 경우 1ml 주사기와 27게이지 바늘을 사용하여 지카 바이러스 또는 대조 배지를 자궁 내 공간에 주입합니다.임신 유지율을 높이려면 난소 옆에 두 개의 배아를 주입하고 상부 질 옆에 두 개의 배아를 주입하지 마십시오. 자궁 내 주사를 시술하는 경우, 자궁 내 공간이나 태반에 주사합니다. 배아를 임신한 댐에 다시 넣고 복강을 약 0.5ml의 멸균 식염수로 채웁니다.복부 복막 근육과 외부 피부층을 모두 4-0 멸균 봉합사로 봉합합니다. 마취에서 회복하는 동안 댐을 가열 패드와 모니터에 보관하십시오. 얼음에서 바이러스를 해동한 다음 주사기의 데드 볼륨을 줄이기 위해 식염수를 채워 주사기를 로드합니다.주입 재료에서 식염수를 분리하기 위해 최대 0.75마이크로리터의 공기를 흡입합니다. 예열된 가습 회수 챔버를 설정하려면 섭씨 37도로 설정된 열 상자에 멸균 거즈가 있는 밀폐 가능한 용기를 놓고 식염수를 담그십시오. 마이크로인젝터 펌프와 컨트롤러를 설정한 후 주사기 주사기에 바이러스를 넣고 수술 설비의 펌프 헤드 마운트를 70% 에탄올로 살균합니다.그런 다음 신생아 새끼를 5분 동안 냉동 마취한 후 꼬리나 발가락 꼬집음에 반응이 없어 주사를 위한 충분한 마취를 확인합니다. 헤드 마운트에 강아지를 놓습니다. 머리 표면을 요오드와 에탄올로 살균한 다음 알코올 물티슈로 물기를 닦아냅니다.람다를 검은색 마커로 표시한 다음 람다에서 눈 가장자리까지의 거리를 측정하고 입체 좌표를 사용하여 람다에서 눈까지의 2/5 거리를 계산합니다. 그런 다음 26게이지 바늘을 사용하여 주입 위치에서 두피와 두개골을 정중하고 표면적으로 뚫고 주사 바늘을 위한 구멍을 만듭니다. 이제 주사 바늘을 천자 부위로 내리고 바늘이 피부를 뚫고 나오면 입위 기구를 사용하여 외측 심실에 주입하기 위한 1mm 깊이를 계산합니다.바늘이 주입 깊이까지 내려가면 초당 10나노리터의 속도로 1마이크로리터의 바이러스를 주입합니다. 주입 후 30초 동안 기다린 다음 나사를 등쪽으로 회전시켜 바늘을 0.5mm 단위로 후퇴시키고 주입된 바이러스의 누출을 줄이기 위해 각 증분 후 30초 동안 기다립니다. 주입이 끝나면 강아지를 예열 및 가습 챔버로 옮기고 회복될 때까지 모니터링합니다.마취된 성인 마우스의 머리를 정위 기구에 고정시키고 마우스 아래에 가열 패드를 놓습니다. 수술용 마취를 위해 발가락이나 꼬리를 꼬집은 후 눈 뒤에서 귀 시작 부분까지 두피를 면도합니다. 노출된 피부를 요오드와 70% 에탄올로 살균합니다.멸균된 위치에서 두구의 내측-시상선을 따라 0.5cm 절개를 만들어 브레그마를 노출시킨 후 수막 조직의 두개골 표면을 청소하는 동시에 주사 부위에서 피부를 밀어냅니다. 수술용 드릴 비트를 브레그마에 정렬한 다음 입체성 좌표로 주입 부위를 식별합니다. 컨트롤 풋 페달을 사용하여 바늘을 위한 구멍이 깨끗해질 때까지 두개골을 천천히 뚫습니다.드릴 비트를 마이크로인젝터 펌프와 기밀 10마이크로리터 주사기로 교체합니다. 식염수와 바이러스 사이에 작은 기포를 남겨두고 4-5마이크로리터의 바이러스를 끌어냅니다. 바늘을 뇌 표면에서 뇌 표면 아래 1.5mm로 내리고 초당 10나노리터의 속도로 1마이크로리터의 바이러스를 주입하여 1 1/2분에 걸쳐 1마이크로리터를 주입합니다.이전과 같이 뇌에서 바늘을 점진적으로 제거한 후 집게를 사용하여 피부를 풀고 노출된 두개골을 다시 덮습니다. 두피를 4-0 봉합사로 봉합한 후 스테레오탁스에서 마우스를 제거하고 회복될 때까지 가열 패드에서 모니터링합니다. 신경전구세포는 E18.5 주입 후 4일 후에 Pax6(빨간색으로 표시)와 플라비바이러스 항원(녹색)을 통한 지카 바이러스로 면역 표지됩니다.배아의 뇌는 발달 중인 신피질의 모든 층에 걸쳐 지카 바이러스의 MEX1-44 균주에 감염되어 있습니다. E14.5를 접종한 출생 후 3일차 뇌 조직을 사용한 TCID50 분석은 지카 바이러스가 발달 중인 뇌에서 효율적으로 복제하고 성장할 수 있음을 보여줍니다. 이 이미지는 P0 주사 후 P13 대뇌 피질에서 MEX1-44 지카 바이러스 감염을 보여줍니다.지카 바이러스는 빨간색으로 표시된 플라비바이러스 그룹 항원에 대한 항체를 사용하여 검출됩니다. 이 이미지는 성인의 주입 위치와 외측 심실 주입 성공을 연습하는 데 사용된 형광 구슬을 보여줍니다. 이 절차를 시도하는 동안 주입된 배아를 추적하고, 적절한 통제를 하고, 수술 상처를 작게 유지하는 것을 기억하는 것이 중요합니다.이 절차에 따라 복강내 또는 동맥 주사와 같은 다른 방법을 수행하여 지카 바이러스가 태반을 통과하는 방법과 같은 추가 질문에 답할 수 있습니다. 이 비디오를 시청한 후에는 뇌에서 지카 바이러스 감염의 생체 내 마우스 모델을 생성하는 방법을 잘 이해하게 될 것입니다.

establishing-mouse-models-for-zika-virus-induced-neurological

Research

연구

JoVE Journal

Neuroscience

신경과학

이 비디오는 뇌성 말라리아의 실험용 마우스 모델의 생성을 보여줍니다. Plasmodium berghei에 감염된 암컷 모기에서 분리된 포자암을 구속된 쥐의 꼬리 정맥에 주입하여 혈액-뇌 장벽 파괴 및 뇌 염증을 유발하여 뇌성 말라리아를 유발합니다. 이 감염된 마우스 모델은 뇌성 말라리아와 관련된 생체 내 미세혈관 병리학을 연구하는 데 유용한 도구를 제공합니다.

숙주 모기 유래 포자동물을 이용한 실험적 뇌성 말라리아의 마우스 모델 생성

이 비디오는 발달 중인 뇌에서 지카 바이러스 감염의 체외 모델을 확립하는 방법을 보여줍니다. 줄기세포, 신경전구세포(NPC) 및 뉴런의 장미를 포함하는 인간 대뇌 오가노이드는 지카 바이러스에 감염되었습니다. 이 바이러스는 NPC를 감염시키고 세포사멸을 유발하여 오가노이드 발달을 방해합니다.

대뇌 오가노이드에서 지카 바이러스 감염의 체외 모델 개발

이 비디오는 CNS에 감염된 마우스 모델의 생성을 보여줍니다. 젖먹이 새끼는 두개골 내 및 복강 내 바이러스를 주입합니다. 바이러스가 퍼져 중추신경계를 감염시켜 신경 세포 사멸과 염증을 일으킵니다. 새끼는 질병이 진행됨에 따라 감염 증상을 평가합니다.

중추신경계 감염이 있는 쥐 모델의 생성

이 비디오는 신경 퇴행을 유도하기 위해 성인 마우스에 지카 바이러스 현탁액을 뇌내 주사하는 방법을 보여줍니다. 마취된 마우스는 입체성 프레임에 고정되고 주입을 위해 노출된 두개골에 구멍을 뚫습니다. 지카 바이러스의 현탁액이 뇌 조직에 주입됩니다. 바이러스 감염은 염증을 일으켜 신경 퇴행을 유발합니다.

성체 마우스에서 지카 바이러스에 의한 신경퇴행 모델 확립

이 비디오는 인간 태아의 신경 줄기 세포를 지카 바이러스에 감염시키는 절차를 보여줍니다. 감염된 세포는 추가 연구에 사용할 수 있습니다.

태아 신경 줄기 세포의 지카 바이러스 감염

여기서 우리는 신생아 마우스 뇌에 아데노 관련 바이러스를 뇌실 내 주입하여 광범위한 신경 세포 전달을 위한 기술을 보여줍니다.  이 방법은 바이러스로 전달된 transgenes의 평생 발현을 달성하는 빠르고 쉬운 방법을 제공합니다.

영구와 광범위한 신경 세포의 형질 도입에 대한 신생아 마우스 뇌의 뇌실 바이러스 감염

이 프로토콜 개발 인간의 두뇌의 Zika 바이러스 감염을 모델링 하는 데 사용 되는 기술을 설명 합니다. Wildtype 또는 설계 된 줄기 세포를 사용 하 여, 연구원은 다양 한 메커니즘 또는 초기 뇌 감염 및 결과 microcephaly Zika 바이러스에 감염 된 태아에 영향을 미칠 수 있는 치료를 밝히기 위해이 기술을 사용할 수 있습니다.

대뇌 Organoids 파생 Zika 바이러스 감염 개발 인간의 두뇌에는 생체 외에서 줄기 세포를 사용 하 여 모델링

이 문서는 문화, 다양 한 신경 하위와 이다, Zika 바이러스 감염 연구 신경 줄기 세포의 사용에 대 한 강조와 함께 그들을 차별화 하는 방법에 있는 인간적 인 태아 두뇌 신경 줄기 세포를 확장 하는 데 사용 되는 방법을 자세히 설명 합니다.

Immunocytochemical 분석에 대 한 교양된 인간 태아 뇌 신경 줄기 세포의 Zika 바이러스 감염

Zika 바이러스 (ZIKV) 감염에 대 한 Ifnar1-/- murine 모델의 immunoprivileged 장기에 항 원 특정 T 세포 응답을 평가 하는 프로토콜을 설명 합니다. 이 메서드는 보호의 셀룰러 메커니즘 및 immunopathogenesis ZIKV 백신의 조사에 대 한 중추적인 이며 또한 그들의 효능 평가 위한 귀중 한.

감염 된 Ifnar1/- 생쥐의 Immunoprivileged 장기에서 Zika 바이러스 관련 T 세포 응답의 평가

여기에서, 우리는 신경병의 발달을 표시하기 위하여 중추 신경계 감염의 면역적격 ICR (암 연구 연구소) 뮤린 모형을 만들기위한 프로토콜을 제시합니다. 동일한 질병 점수에 의한 급성 바이러스 성 뇌질환 모니터링은 생체 내에서 뎅기열 바이러스 유발 신경병증을 나타내는 데 수행될 수 있었다.

뎅기열 바이러스 유발 급성 바이러스 뇌염 같은 질병의 뮤린 모델

프로토콜의 목표는 감염 다음 마우스에 있는 다중 기관에서 Zika 바이러스를 격리하고 정량화하여 바이러스성 질병을 조사하기 위하여 이용된 기술을 설명하는 것입니다.

마우스의 여러 장기에서 Zika 바이러스의 격리 및 정량화

학습하세요 뇌내 주입을 통한 지카 바이러스 감염 마우스 모델 수립 방법을 배아, 신생아, 성인 단계에서 적용하여 신경발달 장애 병리 메커니즘을 연구하고 치료법 개발에 기여하는 실험 기술을 익히세요.

Zika 바이러스 유도 신경 장애 Intracerebral 주입 전략을 사용 하 여 마우스 모델을 수립: 배아, 신생아, 및 성인

더 많은 동영상 탐색