Name: 동굴 같은 신경 자극 및 쥐에 Intracavernous 압력의 녹음 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-04-23T12:30:00.000+00:00
Duration: 7 min 43 s
Description: 배우세요 쥐의 동굴 신경 자극 및 해체 내 압력 측정을 위한 간소화된 외과 기법. 실리콘 접착제를 사용한 신경-전극 복합체 격리 방법으로 발기 부전의 병태생리학 연구와 새로운 치료법 테스트에 활용할 수 있습니다.

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저자 아무 승인 있다.

동물 기관 지침에 의하여 남쪽 덴마크의 대학 동물 보호 시설에 보관 되어 있었다. 모든 동물 실험 관리 및 실험 동물의 사용에 대 한 국립 보건원의 가이드에 따라 실행 되었다. 이것은 급성, 비 생존 수술 절차입니다.
1. 튜빙, 전극, 및 수술에 대 한 악기의 준비
<ol><li>다음 microsurgical 악기를 사용 하 여: 수술가 위, 각도 마이크로 위, 조직 집게, 뒤 몽 # 7의 쌍 및 #5 곡선된 마이크로 집게, 마이크로 바늘 홀더, 및 견인 기. 참고: 이것은 급성 절차, 악기 할 살 균 될 필요가 없습니다. 사용 후, 청소 하 고 70% 에탄올과 팁을 닦아냅니다.</li>
	<li>70% 에탄올에 튜브를 담근 다 고 다음 살 균 0.9% 물을 사용 하기 전에 100 U/mL 헤 파 린과 NaCl. 튜빙 시스템으로 기포를 도입 하지 않으려면 가득 남겨 주세요.</li>
	<li>ICP 측정에 대 한 카 테 터를 만들기 위해 폴 리 에틸렌 (PE)-50 튜브의 20-30 cm 길이 조각 잘라. 튜빙 꺾는 압력을 줄이기 위해 가능한 한 짧게 인지 확인 합니다.</li>
	<li>바늘 중간에 중단 될 때까지 한 무 균 24 G 바늘 사이드-투-사이드 벤드. 경사 penile cru로 삽입에 대 한 PE 튜브의 선단부를 조각을 연결 합니다. 다른 절반 압력 트랜스듀서에 대 한 연결 허브에 삽입 합니다. Heparinized 염 (100 U/mL)로 시스템을 채우십시오.</li>
	<li>바이 폴라 테 플 론 코팅된 전극 수 있도록, 컷된 2 125 µ m은 동등한 길이 전선. 테이프의 조각을 사용 하 여 테이블의 가장자리에 철사를 연결 하 여 함께 스레드 합니다. 그 후, 검은 접시 전극을 연결 합니다.</li>
	<li>테 플 론에 작은 절 개를 만들고 전극의 끝에서 테 플 론 코팅의 4-5 m m 길이 #5 마이크로 집게를 사용. 메스 칼의 무딘 가장자리 끝 여 걸 만들고 심지어 길이를 메스로 팁을 잘라.</li>
	<li>전극 끝이 약간 검은 접시의 가장자리 위쪽으로 가리키는 후크 확장 테이프. 10 s 하 고 포장 접착제 거품 후크 로부터 1-2 mm 전극 주위에 대 한 플라스틱 접시에 실리콘 접착제를 혼합.</li>
	<li>(그림 1) 사용 하기 전에 약 5 분 동안 건조 하실 수 있습니다. 스트립은 자극에 대 한 연결 허용을, 다른 끝에 긴 섹션에서 테 플 론. 참고: 다시는 선단부에 후크를 하 고, 함께 전극 여러 번 재사용할 수 있습니다.</li>
</ol>2입니다. 동물의 준비
<ol><li>동물을 마비, 후 복 부, 목, 및 회음부의 아래쪽 절반을 면도. Povidone-요오드 세 번 뒤 70% 알코올로 동물 스크럽. 부정사 위치에 온수 외과 패드에 쥐를 놓습니다. 수 의사 눈 연 고를 적용 하 고 마 취 코 콘 캐리어로 2.5 %isoflurane 및 0.8 L/min 산소로 전환. 참고: Isoflurane 마 취의 수락 가능한 수준을 달성 하기 위해 산소의 수준을 조정 합니다.</li>
</ol>3. presurgical 준비
<ol><li>운영 현미경 전체 수술 절차를 수행 하십시오: 20 X 3.15 X에서에서까지 확대는 충분. 장갑을 사용 하 고는 수술을 통해 깨끗 한 환경을 유지. 장소는 드 레이프에 쥐입니다.</li>
</ol>4. Ischiocavernosus 근육 ICP 측정에 대 한 해 부
<ol><li>메스, 바로 위를 사용 하 여 및 Dumont #7 곡선 1 cm 수직 수 있도록 마이크로 겸 중간 선 경의 기지의 수준에서 시작 하 고 확장 하향 (그림 2A)에 피부 절 개 5 m m 옆. 면봉을 사용 하 고 신중 하 게 음 낭 (그림 2B)에 근 막 측면을 분리. 근 막 해 부, 후 견인 기를 부착 하 고 목화-밀고-스왑 ischial tuberosity (그림 2C)를 찾을 수와 함께 만져.</li>
	<li>Ischiocavernosus 근육 시각까지이 이때의 지방 조직 중간을 통해 해 부 (그림 3A). 뒤 몽 #7 곡선된 마이크로 집게의 쌍을 사용 하 여 고 경도 근육을 분리. Tunica albuginea 밝은 흰색 구조 (그림 3B)으로 표시 됩니다. Using 마이크로 집게와 마이크로 시저, 적절 하 게 그것의 과정 (그림 3C)를 보러 tunica albuginea 노출.</li>
	<li>시스템 설정의 교정, 후 penile cru (그림 4)를 병렬 실행 하는 회음부에 피부를 통해 튜브를 삽입 합니다. 자리에 라인을 두고 절 개를 염 분으로 촉촉한 유지.</li>
</ol>5. CN 자극에 대 한 해 부
<ol><li>2cm 낮은, 중간 피부를 사용 하 여, 첫째, 메스, 그리고 똑 바른가 위 및 마이크로 집게의 쌍을 통해 복 부 절 개를 확인 합니다. 교육에 따라 근 막 통해 일치 하는 절 개를 만드는 알바와 기본 근육 조직을 노출 방광과 전립선.</li>
	<li>견인 기를 사용 하 여 좋은 노출을 달성. 주요 골반 신경 절 (MPG)의 명확한 시각화를 지방 조직에서 전립선을 목화-팁 면봉을 사용 하 여 및 CN, 전립선 (그림 5)의 dorsolateral 부분에서 실행.</li>
	<li>MPG와 CN의 시각화, 후 신중 하 게 각 마이크로 위 (그림 6a) 2-5 m m는 MPG에 말 초 신경 overlying 근 incise. #5 마이크로 집게를 사용 하 여, 신경의과 4 m m 긴 부분 (그림 6b), 무료 밑 양쪽에 조직 확산와 신경 (그림 6c)에서 9-0 봉합을 슬라이드.</li>
	<li>신경 신경 (그림 7b) 주위 양극 전극의 갈고리의 배치를 촉진 하기 위하여 봉합 (그림 7a)의 도움으로 약간 상승 합니다. 보조 믹스는 인슐린의 팁 2-구성 요소 실리콘 접착제 신경 5 미 드라이 바늘 갈고리와 신경 (그림 7 c, d) 주변 지역에 접착제를 적용 하자. 접착제를 건조 수 있도록 약 1 분 동안 전극에 약간 당겨서 신경 높은 유지.</li>
	<li>견인 기, 어떤 철수 또는 전극의 왜곡을 피하기 위해 오른쪽에 견인 기 제외를 제거 합니다. 절 개를 통해 식 염 수에 담가 염 분 및 누워 거 즈와 노출 된 장기를 젖은.</li>
</ol>6. 동굴 몸 Cannulation ICP 측정에 대 한
<ol><li>견인 기를 사용 하 여 tunica albuginea의 시각화를 복원 합니다. Cru를 왜곡할 것 이다 그것으로 견인 기 ischiocavernosus 근육에 연결 되었는지 확인 합니다.</li>
	<li>바늘을 연결 하 고 tunica albuginea에 도입 하기 전에 heparinized 염 분으로 튜브를 플러시. 계속 뻗어, Dumont #7 곡선된 마이크로 집게를 사용 하 여 한 손으로 tunica albuginea (비 지배적인), 삽입 지점에 원심 tunica albuginea 및 overlying 근육의 나머지 부분을 잡고. 다른 지배적인 손에 바로 마이크로 집게와 바늘을 잡고 고 있는지 그것을 소개 하 동굴 몸 (그림 8)의 코스와 함께 병렬.</li>
	<li>동굴 몸으로 바늘 5-8 밀리미터를 밀어. 튜브를 플러시를 누르고 cru에 테스트 라인 (그림 9). 아무 누출 확인 합니다. 테이프 라인에 실수로 당기를 방지 하기 위해 테이블에 튜브를 고정 시킵니다. 견인 기를 제거 합니다.</li>
</ol>7입니다. CN의 자극
<ol><li>녹음 프로그램 (예를 들면, 스파이크 2) 두 intracavernous 고 평균 동맥 압력 기록 지속적으로 실행.</li>
	<li>CN 자극에 대 한 자극 (예를 들어, SD9 잔디 악기, 재료의 표참조)에 다음 매개 변수를 설정: 1.5 mA, 16 Hz, 3 V, 전압 및 펄스 폭의 1 분의 최소 자극의 5 양 적용 50 s에서 주파수에 현재 stimulations 사이 휴식. 참고: 첫 번째 stimulations 저하 응답 (그림 10)에 보통 결과.</li>
</ol>

<ol><li>Eckhard, C. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aEckhard%2C+C+%22Untersuchungen+%C3%BCber+die+Erektion+des+Hundes+In%3A+Beitr%C3%A4ge+zur+Anatomie+und+Physiologie%22">Untersuchungen über die Erektion des Hundes In: Beiträge zur Anatomie und Physiologie</a>. , Vol. Band III Giessen: Ferber 123-166 (1863).</li>
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</ol>

저자는 공개 없다.

이 연구의 주 목표 penile cru cannulation ICP 녹음의 단순화 된 수술 기법 및 통해에 대 한 CN의 격리를 설명 했다. 수술을 단순화 하는 ICP의 증가의 재현 녹음 CN 자극 제공 동굴 시체의 해 부에 대 한 수정 도입 했습니다. 1 cm 수직 피부 절 개를 만져 서 ischial tuberosity 지침으로 사용 하 여 음 경의 기지에 측면 우리 달성 ischiocavernosus 근육과 tunica albuginea의 좋은 노출을. 이 절차는 빨리 (15 분이 하) 보다는 문학과 원인 최소한의 조직 장애2,3,4에 설명 된.
CN의 현재 사용 된 기술은 포함 연결, 해제, 그리고 각 통해 전에 CN의 건조 적용된10. 이 기술은 조건 각 자극에 ...

Vivo에서 연구 실험 동물에서 발기 기능에1의 선구적인 실험적인 작품으로 1863 년에 시작 했다. 통해 골반 신경의 개에 있는 증가 ICP를 유도 하기 위해 사용 되었다. 20 세기에 걸쳐 비슷한 실험 프로토콜은 개, 원숭이, 고양이, 토끼 같은 더 큰 동물에 사용 되었다. 쥐의 발기 기능을 평가 퀸 란 외. 19892에 의해 처음 개발 되었다. 메서드 수정 고 여러 다른 그룹34업데이트 이후는. 오늘, 쥐는 가장 널리 사용 되는 동물 모델 발기 부전의 병리학을 공부 하 고 새로운 치료 옵션을 평가 대 한. 절차의 주요 단계는 ICP에 있는 증가 유도 하 경 동맥 측정 ICP, penile cru cannulation 및 CN의 자극에에서 라인을 사용 하 여 조직의 혈압 기록 포함 됩니다. 여러 연구자 모델 정제는, 비록 그 재현성 유지 문제, 그리고 가변 결과 다른 실험실에 의해 보고 되었습니다. 여러 함정 아직도 지속 한다.
이전 기사5,6,7,,89,10 동굴 몸 cannulation 위한 성 기의 degloving로 전체 성 기 노출의 사용을 설명 합니다. 이것은 조작으로 최적의 접근 하 고 파괴 해 부 구조, 발기 기능에 필수적인 부상 발생. CN의 해 부 잘 설명된10,11, 했지만 신경의 자극 실험 결과 영향을 미칠 수 있는 여러 요인으로 인해 최적입니다. CN 자극 기술은 신경 주위 위치 후크 바이 폴라 전극에 당기 및 건조 각 자극 하기 전에 신경 주위 조직에서 신경 운동 포함 됩니다. 이 신경 손상 및 전기 전류 누설, 저하 응답 또는 대체 경로 예를 들어, 골반 바닥 근육, 방광의 자극을 통해 ICP에 거짓 증가 그리고 위장의 다양 한 학위를 이어질 수 있습니다. 로12. 이러한 모든 요소는 재현성을 제한합니다.
우리의 연구 기간 동안 우리는 깊이 마 취의 종류는 ICP에 심대한 영향을 미칠 다는 것을 관찰. 사용 하는 마 취약은 나트륨 pentobarbital, 케 타 민/xylazine 또는 케 타 민/midazolam 주입, 또는 isoflurane/산소 흡입.
여기 우리가 간단한 수술 방법에 설명 하 고 실험 프로토콜의 표준화 지원 데이터를 제공.

<table><tbody><tr><td>Adson 집게</td><td>Fine Science Tool</td><td>11006-12</td><td></td></tr><tr><td>Dumont #7 집게</td><td>Fine Science Tool</td><td>11271-30</td><td></td></tr><tr><td>Dumont #5 집게</td><td>Fine Science Tool</td><td>11273-20</td><td></td></tr><tr><td>ToughCut Mayo 가위</td><td>Fine Science Tool</td><td>14110-15</td><td></td></tr><tr><td>미니어처 Vannas 스프링 가위</td><td>Fine Science Tool</td><td>15006-09</td><td></td></tr><tr><td>울트라 파인 헤모스탯</td><td>파인 사이언스 도구</td><td>13020-12</td><td></td></tr><tr><td>Crile 헤모스탯</td><td>파인 사이언스 툴</td><td>13004-14</td><td></td></tr><tr><td>Kwik-Sil 접착제</td><td>세계 정밀 기기</td><td>KWIK-SIL</td><td></td></tr><tr><td>테플론 코팅 실버 와이어 0.125 mm</td><td>세계 정밀 기기</td><td>AGT0510</td><td></td></tr><tr><td>탄성 와이어 견인기</td><td>맞춤 제작</td><td></td><td></td></tr><tr><td>메스 블레이드</td><td>Fine Science Tool</td><td>10023-00</td><td></td></tr><tr><td>PE-50 튜빙</td><td>Warner Instruments</td><td>64-0753</td><td></td></tr><tr><td>23 G 바늘</td><td>Kruuse</td><td>121272</td><td></td></tr><tr><td>SD-9 사각 펄스 자극기</td><td>Somatco</td><td>1077/183</td><td></td></tr><tr><td>혈압 변환기 및 케이블</td><td>World Precision Instruments</td><td>BLPR2</td><td></td></tr><tr><td>Raucotupf 면 팁 애플리케이터</td><td>Lohmann-Raucher</td><td>11966</td><td></td></tr><tr><td>Pro-ophta 안구 스틱</td><td>Lohmann-Raucher</td><td>16515</td><td></td></tr><tr><td>NaCl 0,9 % 100 mL</td><td>지역 약국</td><td></td><td></td></tr><tr><td>헤파린</td><td>지역 약국</td><td></td><td></td></tr><tr><td>25 mL 주사기</td><td>Odense 대학 병원</td><td></td><td></td></tr><tr><td>수의사 안연 - Viscotears</td><td>지역 약국</td><td></td><td></td></tr><tr><td>은선&nbsp;</td><td>Science Products GmbH, 하이델베르크, 독일</td><td></td><td></td></tr><tr><td>실리콘 접착제&nbsp;</td><td>Kwik-Sil, World Precision Instruments, 미국</td><td></td><td></td> 플로리다주 새러소타</tr></tbody></table>

동굴 같은 신경 자극 및 쥐에 intracavernous 압력의 녹음

Cavernous Nerve Stimulation and Recording of Intracavernous Pressure in a Rat

해 면 신경 (CN)의 자극 및 intracavernous 압력 (ICP)의 측정 테스트 하 고 평가 하는 발기 부전 치료에 광범위 하 게 사용 되어 왔습니다. 그러나, 실험실, 사이 다를 사용 하는 방법 그리고 여전히 존재 하는 함정. 이 연구의 목표는 안정적이 고 재현 가능한 모델을 제공 하는 수술 기법을 설명 했다. Ischial tuberosity에 삽입 지점에서 ischiocavernosus 근육을 노출 하 여 최소한의 해 부와 발기 기능에 관련 된 구조를 부상 penile cru는 cannulated 수 있습니다. 리프팅 하 고 건조, 필요 없이 CN의 반복된 자극 전극 신경 복합물을 125 µ m 바이 폴라 실버 전극과 생체 실리콘 접착제를 사용 하 여 달성 되었다. 이 방법은 스트레칭과 신경 건조를 줄여 neuropraxia을 방지 하 고 전기 누설을 negating와 대체 통로의 자극을 방지 신경의 완전 한 격리를 제공 합니다.

사용 권장된 자극 설정으로이 프로토콜의 흡입 마 취와 isoflurane 2.0% 산소 0.8 L/min, 생성 해야 결과 그림 11 및 그림12와 같이 있는 여러 다시 다시 75-80 mm Hg. 그림 13 사이 stimulations 보여 줍니다 같은 안정적인 응답 응답 20 분 자극 73-77 m m Hg. ICP 측정에 대 한 테스트 라인에서 안정적인 튜브 홍 조와 cru (그림 9)에 활용 하 여. 신속한 응답 기준선을 다시 잘 배치 라인의 특징 이다. Tunica albuginea의 무결성이 손상 되 면 테스트는 낮은 피크 압력 및 기준선 홍 조 및 도청, 후에 다시 느린 응답 및 감소 응답 때 발생할 자극 (<strong class="xfi...

이 연구에서는 동굴 같은 신경 자극 신경 전극의 절연을 수행 하기 위한 기술과 간단한 수술에 설명 합니다 intracavernous 압력 측정 및 실리콘 접착제를 사용 하 여 복잡 한.

동굴 같은 신경 자극 및 쥐에 Intracavernous 압력의 녹음

The stimulation of the cavernous nerve (CN) and measurement of intracavernous pressure (ICP) have been used extensively to test and evaluate therapies for ...

이 방법의 전반적인 목표는 해면체 내 압력 기록을 위한 음경 유관 삽관의 단순화된 수술 기술과 전기 자극을 위한 해면 신경의 해부 및 격리를 설명하는 것입니다. 이 실험적인 프로토콜은 발기 부전의 병태 생리학을 연구하고 새로운 치료법을 테스트하는 데 사용할 수 있습니다. 이 기술의 주요 장점은 재현 가능하고 빠르며 신뢰할 수 있다는 것입니다.이 자습서에 설명된 주요 위험을 해결하고 제거했습니다. 이 방법은 발기 부전에 대한 통찰력을 제공할 수 있지만, 생체 적합성 실리콘 접착제를 사용한 신경 전극 복합체 절연은 모든 말초 신경의 전기 자극에 적용할 수 있어 다른 장기의 생리학적 테스트가 가능합니다. 이 절차를 시작하려면 동물을 마취 한 후 복부와 회음부의 아래쪽 절반을 면도하십시오.70% 알코올과 포비돈 요오드로 동물을 번갈아 세 번 문지릅니다. 그런 다음 가열된 수술 패드에 쥐를 누운 자세로 놓습니다. 눈에 연고를 바르고 2.5% 이소플루란이 함유된 콧방울을 통해 쥐를 마취시킵니다.그런 다음 커튼에서 작동 현미경으로 전체 수술 절차를 수행합니다. 그런 다음 음경 기저부 수준에서 시작하여 아래쪽으로 뻗어 정중선 옆으로 5mm 떨어진 1cm 피부 절개를 만듭니다. Q-tip을 사용하여 음낭 측면의 근막을 조심스럽게 분리합니다.근막을 절개한 후 한 쌍의 견인기를 사용하여 피부 가장자리와 고환을 뒤로 당기고 면봉으로 촉진하여 좌골 결절을 찾습니다. ischiocavernosus 근육이 보일 때까지 지방 조직을 내측으로 절개합니다. 한 쌍의 집게를 사용하여 근육을 세로로 분리하고 tunica albuginea를 노출시킵니다.tunica albuginea는 밝은 흰색 구조로 나타납니다. 시스템 설정을 보정한 후 회음부 피부를 통해 튜브를 삽입하여 음경 유층과 평행하게 달리는지 확인합니다. 그런 다음 라인을 제자리에 두고 절개 부위를 식염수로 촉촉하게 유지합니다.이 절차에서는 피부를 통해 2cm 아래 정중선 복부 절개를 만듭니다. 알바 선을 따라 근막을 통해 일치하는 절개를 만들어 방광과 전립선을 노출시킵니다. 견인기를 사용하여 좋은 노출을 얻으십시오.그런 다음 면봉을 사용하여 전립선과 지방 조직을 분리합니다. 견인기를 조정하고 전립선의 등쪽 측면에서 실행되는 MPG와 CN을 명확하게 시각화할 때까지 해부를 완료합니다. MPG와 CN을 찾은 후 MPG 원위 2-5mm 신경에 있는 근막을 조심스럽게 절개합니다.다음으로, 신경의 양쪽과 그 아래에 조직을 펴서 4mm 길이의 부분을 빼낸 다음 신경 아래로 봉합사를 밀어 넣습니다. 봉합사의 도움으로 신경을 약간 들어 올려 신경 주위에 양극성 전극의 고리를 쉽게 배치할 수 있습니다. 조수가 두 가지 성분으로 된 실리콘 접착제를 인슐린 바늘 끝과 5초 동안 섞게 합니다.신경을 건조시키고 갈고리와 신경 주변 부위에 접착제를 바릅니다. 접착제가 마를 때까지 약 1분 동안 전극을 약간 당겨 신경을 상승 상태로 유지합니다. 그런 다음 전극이 당기거나 비틀리지 않도록 오른쪽에 있는 견인기를 제외하고 견인기를 제거하십시오.그런 다음 노출 된 장기를 식염수로 적시고 절개 부위에 식염수에 적신 거즈를 놓습니다. 이 절차에서는 견인기를 사용하여 tunica albuginea의 시각화를 복원합니다. 견인기를 ischiocavernosus 근육에 부착하면 crus가 왜곡될 수 있으므로 주의하세요.다음으로, 바늘을 PE50 튜브에 부착하고 튜빙을 튜니카 알부기니아에 넣기 전에 헤파린 식염수로 튜브를 세척합니다. 튜니카 알부기니아(tunica albuginea)를 늘린 상태로 유지하고 주로 사용하는 손으로 위에 놓인 근육을 삽입 지점까지 원위부로 잡습니다. 그런 다음 주로 사용하지 않는 손에 바늘을 잡고 해면체 몸에 삽입합니다.라인을 세척하여 누출 없이 동굴 같은 물체에 올바른 배치를 확인하십시오. 압력 기록을 위해 해면체 내부에 바늘을 삽입하는 것은 중요한 단계를 구성합니다. 바늘을 크러스에 배치할 때 크러스를 늘리고 니들을 코스와 평행하게 배치하는 것이 중요합니다.튜브를 세척하고 크러스를 눌러 라인을 테스트합니다. 누출이 없는지 확인하십시오. 그런 다음 실수로 라인을 당기는 것을 방지하기 위해 테이프로 튜브를 테이블에 고정하십시오.그런 다음 견인기를 제거합니다. 자극기의 매개변수를 설정하고 자극 사이에 최소 1분의 휴식을 취하면서 50초 동안 자극을 가합니다. 이 그림은 50mm 수은의 자극으로 감소된 첫 번째 반응을 보여주고, 그 후 66mm 수은의 두 번째 및 세 번째 자극이 뒤따릅니다.그런 다음 후속 측정은 수은 73mm의 정상 수준으로 기록되었습니다. 그리고 여기에 표시된 것은 75mm와 78mm 수은 사이에서 10번의 연속 자극과 함께 이 프로토콜을 사용한 결과의 안정성입니다. 이 그림은 해면체 내 압력에 대한 효과적인 마취 용량을 보여줍니다.처음 2개 및 마지막 3개의 자극에서 2%에 대한 안정적인 반응에 비해 이소플루란 증가에 대한 감소하고 변동이 더 많은 반응이 관찰되었습니다. 상단의 파란색 자국은 일정한 주요 동맥압을 나타냅니다. 이 그림은 해면체 내 압력에 대한 마취 유형의 효과를 보여줍니다.이소플루란 마취 하에서 수행된 초기 자극은 수은주 80mm의 압력 증가를 보여주었습니다. 펜타닐 미다졸람을 투여한 후 110mm 수은에 대한 반응이 증가했습니다. 이 그림은 노즈 콘을 통한 산소 투여의 효과를 보여줍니다.콧방울을 통한 산소 공급을 중단하면 해면체 신경 자극으로 인한 해면체 압력 증가가 크게 감소했습니다. 주요 동맥압에 대한 영향은 관찰되지 않았습니다. 일단 숙달하고 적절하게 수행되면 이 절차를 30분 안에 완료할 수 있습니다.자극을 수행하는 동안 마취 및 산소 공급의 유형과 수준 모두 해면체 내 압력에 큰 영향을 미친다는 것을 기억하는 것이 중요합니다. 이 절차에 따라 발기 부전의 병태 생리학 및 새로운 치료법 도입과 관련된 질문에 답하기 위해 다양한 에이전트를 테스트 할 수 있습니다. 이 비디오를 시청한 후에는 밀봉 접착제로 신경 전기 복합체를 격리하고 해면체 부분의 최소 침습 해부 및 캐뉼러 후 해면체 내 압력을 기록하는 것을 포함하여 캐뉼라 신경 자극을 수행하는 방법을 철저히 이해하게 될 것입니다.

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Research

연구

JoVE Journal

Medicine

의학

출처: Sanchez, CA, et al. 쥐의 만성 이식을 위한 말초 신경 자극 전극의 준비. J. Vis. 경험. (2020).이 비디오는 깨어 있는 쥐의 미주 신경 자극을 보여줍니다. 만성 말초 신경 커프 전극을 이식하고 레버 누르기 작업을 훈련받은 쥐는 이식된 헤드 캡을 통해 자극 발생기에 연결됩니다. 미주 신경은 레버를 성공적으로 누를 때마다 즉시 자극되어 운동 지도가 확장됩니다.

쥐에게 만성적으로 이식된 말초 신경 커프 전극을 통한 미주 신경 자극

이 비디오는 척골 신경에 전기 자극을 가하고, 최적의 신호를 위해 전극을 조정하고, 신경 기능을 평가하기 위해 자극을 증가시켜 쥐의 복합 근육 활동 전위(CMAP)를 기록하는 절차를 보여줍니다. 이 방법을 사용하면 신경 장애에서 말초 신경 기능에 대한 생체 내 조사를 할 수 있습니다.

쥐의 복합 근육 활동 전위의 생체 내 측정

이 비디오는 해면체 내 혈압 변화를 연구하기 위해 마취된 쥐의 해면체 신경의 격리와 자극을 보여줍니다.

해면체 내 압력을 측정하기 위해 쥐에서 해면체 신경 자극 수행

Axonal 흥분 기법 이상 및 퇴행 성 돌이킬 수 없는 이벤트를 앞 생물 변화를 검사 하는 강력한 도구를 제공 합니다. 이 원고는 마 취 쥐의 척 골 신경에 이러한 기술의 사용을 보여줍니다.

Vivo에서 Axonal 흥분 테스트 쥐 척 골 신경의 electrophysiological 측정

Intracavernosal 압력 기록 (ICP)는 실험 동물의 발기 기능을 평가 하는 중요 한 방법입니다. 여기, 상세한 프로토콜 crura 음 경 catheterizing 하 고 다음 전기 쥐 동굴 신경을 자극 하 여 ICP의 기록 절차에 대 한 설명 했다.

Intracavernosal 압력 기록 설치류에 발기 기능을 평가 하

우리는 동시에 응답 nociceptive 레이저 자극으로 자유롭게 이동 하는 쥐에서 electrocorticography와 로컬 필드 전위를 기록 하는 기술을 개발 했다. 이 기술은 nociceptive 정보를 뇌에서 처리 조사를 용이 하 게 electrocortical 신호는 생체 및 거시적인 수준에서의 직접적인 관계를 설정 하는 데 도움이 됩니다.

대뇌 피 질의 로컬 필드 전위 및 응답 Nociceptive 레이저 자극으로 자유롭게 이동 하는 쥐에서 Electrocorticograms의 동시 녹음

작은 설치류에 사용하기 위해 만성 이식형 말초 신경 소맷전극을 구축하기 위한 기존 접근 법은 종종 특수 장비 및/또는 고도로 훈련된 인력이 필요합니다. 이 프로토콜에서 우리는 만성 이식형 커프 전극을 제작하기위한 간단하고 저렴한 접근 방식을 시연하고 쥐의 미주 신경 자극 (VNS)에 대한 효과를 보여줍니다.

쥐에서 만성 이식을 위한 말초 신경 자극 전극의 준비

이 프로토콜은 동시 트랜스 척추 직접 전류 자극을 가진 쥐 요추 모토뉴런의 생체 내 세포 내 기록을 설명합니다. 이 방법을 통해 멤브레인 특성을 측정하고 척수의 무음 또는 음극 편광 전, 도중 및 후에 모토뉴런의 리듬 발사를 기록할 수 있습니다.

트랜스 척추 직접 전류 자극 중 유형 식별 쥐 척추 운동 신경의 생체 내 세포 내 기록

본 프로토콜은 이식된 장치를 이용한 만성 전기생리학 검사 및 자극 방법과 함께 쥐의 복부 미주신경에 전극 어레이를 이식하는 수술 기법을 설명합니다.

깨어 있는 쥐의 복부 미주 신경 자극 및 기록 연구를 위한 이식 수술

두개골 내의 압력을 기록하는 소설 기법이 설명되어 있습니다. 최소한 침략적 방법은 정확하게 심각한 뇌 손상을 유발하지 않고 anaesthetized 쥐에게 intracranial 압력 (ICP)를 측정하기위한 광섬유 압력 감지 시스템을 사용합니다. 기술은 실험적 모델의 넓은 범위에서 사용할 수 있습니다.

광섬유 압력 변환기를 사용하여 쥐에서 경막외 Intracranial 압력 측정

배우세요 쥐의 동굴 신경 자극 및 해체 내 압력 측정을 위한 간소화된 외과 기법. 실리콘 접착제를 사용한 신경-전극 복합체 격리 방법으로 발기 부전의 병태생리학 연구와 새로운 치료법 테스트에 활용할 수 있습니다.

동굴 같은 신경 자극 및 쥐에 Intracavernous 압력의 녹음

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