Name: Decellularization 및 Recellularization 방법론을 인간의 Saphenous 정 맥에 대 한 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-07-27T13:30:00.000+00:00
Duration: 11 min 35 s
Description: 학습하세요 인간 대퇴정맥의 세포제거 및 재세포화 방법론을. 세제와 생물반응기를 이용한 관류 기술로 조직공학 및 재생의학 연구에 활용할 수 있습니다.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

우리는 교수 Anders Jeppsson는 실험에 사용 된 혈관을 제공 하는 방법에 대 한 감사 하 고 싶습니다. 이 연구를 융자 되었다 SSH LUA ALF 그랜트에 의해.

조직을 사용 하 고이 종이의 프로토콜 예테보리 대학교의 윤리 지침을 따릅니다.
1. 조직 준비 및 저장
<ol><li>절단 수술 집게와가 위를 사용 하 여 검색 된 saphenous 정 맥에서 주변 조직. 참고: saphenous 정 맥은 해 부의 더 낮은 다리에서 혈관 외과 의사에 의해. 이 문서에 사용 된 saphenous 정 맥 수술 후 취소 사용된 부분입니다.</li>
	<li>관류 동안 누설을 방지 하기 위하여 봉합 및 집게 그들의 끝에 모든 측 지점.</li>
	<li>포함 하는 인산 염 버퍼 식 염 수 (PBS)의 40 mL 50 mL 튜브에 정 맥을 유지. 과잉 혈액을 제거 하려면 PBS 2-3 번을 변경 하 여 정 맥을 씻어. -80 ° c.에 냉동 하 여 정 맥을 저장</li>
</ol>2. Decellularization 설정 및 Recellularization 생물의 준비
주: 표 1에서 보는 바와 같이 실리콘 튜브를 잘라가 위를 사용 합니다.
<ol><li>
Decellularization 설치 1 (대 한 Triton X-100 관류 및 세척)
	<ol>
<li>2 l (플라스틱 욕조) 챔버, 튜브 A 그림 1A와 같이 모든 세 가지 테이프. 참고: 테이프 가장자리 챔버 (세제의 입구)의 하단을 접촉 한 벽에 1 개의 관 및 정 맥의 길이 따라 사이 5-10 cm의 거리와 반대 벽에 다른 2 개의 관. 이러한 튜브의 적어도 5 cm (정 맥의 입구 및 출구) 챔버의 바닥에도 녹화 한다.</li>
		<li>세제의 유입 튜브 튜브 C F 이어서 튜브 튜브 B 시리즈에서 연결 남성과 여성의 Luer 커넥터를 사용 하 여 마지막으로 정 맥 입구에. 장소는 연동의 카세트로 F 튜브 나 펌프.</li>
		<li>다른 튜브 C를가지고 가십시오을 한 정 맥의 콘센트에 연결 합니다. 챔버 (세제 콘센트) 위에 45 cm 배치 된 하단 호스 콘센트와 함께 유리 항아리에 다른 쪽 끝을 놓고 테이프를 확보 합니다. 튜브 G를가지고 가십시오 유리 항아리의 호스 콘센트에 한쪽 끝을 밀어 하 고 정 맥 챔버로 다른 쪽 끝을 장소. 참고: 전체 설치 (빨간색 화살표), 챔버, 및 흐름 방향 (흰색 화살표)의 사진은 그림 1A에 표시 됩니다.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Decellularization 설치 2 (TnBP 대 한 관류)
	<ol>
<li>1 L 유리 용기 고 놓고 C 튜브의 한쪽 끝을 (세제 입구) 항아리에 튜브만 지 병의 하단.</li>
		<li>튜브 튜브 C. 장소 C 튜브의 다른 쪽 끝 항아리에 절반 깊이 (정 맥의 입구)까지 다음 F 다른 쪽 끝을 연결 합니다. 연동 펌프의 카세트로 튜브 F 장소 나.</li>
		<li>튜브 D 하 고 정 맥의 입구 (세제 콘센트)에서 45cm 높이 아래쪽 호스 절반 깊이 유리 항아리에 다른 쪽 끝까지 항아리 (정 맥의 콘센트)에 한쪽 끝을 배치. 확보 하기 위해, 세제의 입구 및 출구 관 테이프.</li>
		<li>자력에 1 L 유리 용기를 놓고 병 안에 자석을 유지 합니다.</li>
		<li>튜브 G 걸립니다 하 고 유리 항아리의 호스 콘센트에 한쪽 끝을 밀어 1 L 유리 용기에 다른 쪽 끝을 장소. 참고: 그림의 완벽 한 설치 (빨간색 화살표), 약 실 및 흐름 방향 (흰색 화살표) 그림 1B에서 표시 됩니다.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Decellularization 설치 3 (대 한 DNase 관류)
	<ol>
<li>250 mL 유리 병 고 튜브 C. 장소 튜브의 중간 영역의 두 끝 다 연동 펌프 II의 카세트 합니다. 참고: 튜브의 한쪽 끝은 솔루션 입구 그리고 튜브의 다른 쪽 끝은 정 맥의 입구에 연결 된. 정 맥의 콘센트는 솔루션에서 무료로 남아 있습니다.</li>
		<li>37 ° c.에 펌프를 포함 하 여 전체 설치 장소 완전 한 설치 및 흐름 방향 그림 그림 1C에 표시 됩니다.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Recellularization 생물
	<ol>
<li>계속 준비 모든 부품 그림 2A와 같이.</li>
		<li>그림 2B에서 같이, 4-포트 뚜껑을 각 포트에 삽입, H (정 맥의 콘센트) 튜브, 튜브 나 (미디어 입구), 그리고 J (정 맥의 입구) 튜브. 4번째 포트 (언론 매체) 관 H의 다른 쪽 끝을 삽입 합니다. 참고: 위에서 4-포트 캡의 보기는 그림 2C에 표시 됩니다. 튜브의 쉬운 삽입에 대 한 날카로운 포인트는 시저와 가장자리를 잘라.</li>
		<li>U 모양으로 관 J의 다른 쪽 끝을 구 부하 고는 봉합과 넥타이. H 조 & 제이 튜브의 내부 끝에 줄이는 커넥터 연결</li>
		<li>250 mL 유리병에 플랫 베이스와 60 mL 튜브를 놓고 그림 2D와 같이 튜브에 위의 만든된 설치 프로그램을 배치 합니다. 그림 2E같이 튜브 K, E 및 K 시리즈에 연결 합니다. 정 맥의 입구에 1 개의 관 K와 다른 튜브 K 미디어 입구를 연결 합니다. 참고: 설치, 방향과 흐름의 회로도 그림 2 층에 표시 됩니다.</li>
		<li>압력가 마로 소독으로는 생물 반응 기를 소독.</li>
	</ol>
</li>
</ol>3입니다. 솔루션의 준비
<ol><li>해결 방법 1 (10 x 물): 1 L의 초순, 나트륨 아 지 드의 작품 및 ethylenediaminetetraacetic 산 (EDTA)의 18.6 g 2 g 추가. 소금은 녹아 때까지 휘저어입니다.</li>
	<li>해결 방법 2 (1 x 물): 솔루션 1의 100 mL 고 초순의 900 mL을 추가.</li>
	<li>해결 방법 3 (Triton X-100 x 5): 초순의 950 mL, 50 mL Triton X-100, 나트륨 아 지 드, 1 g와 EDTA의 9.3 g 추가. 해산 때까지 휘저어.</li>
	<li>해결 방법 4 (Triton X-100 x 1): 초순 물 800 mL를 추가 하 고 솔루션 3의 200 mL.</li>
	<li>해결 방법 5 (1 x TnBP): 990 솔루션 2 mL에 10 mL 피 펫과 TnBP의 10 mL를 추가.</li>
	<li>해결 방법 6 (40 Kunitz 단위/mL DNase): Dulbecco의 인산 염 버퍼 염 CaCl2 및 MgCl2의 50 mL에 DNaseI의 추가 2000 Kunitz 단위. 신선 하 게 준비 하 고 즉시 사용 합니다.</li>
	<li>해결 방법 7 (PBS): 24 g의 염화 나트륨, 염화 칼륨 0.6 g, 4.32 g의 나트륨 인산 염, 및 칼륨 인산 염의 0.72 g 초순 물 3 L를 추가 합니다. 해산 때까지 휘저어. PH 7.4에 조정 합니다. PBS는 압력솥에서 1 리터를 소독 하 고 별도로 저장 합니다.</li>
	<li>솔루션 8 (0.1% 초 산): 살 균 솔루션 7의 50 mL, 초 산의 50 µ L 추가. 신선 하 게 준비 하 고 즉시 사용 합니다.</li>
</ol>4입니다. 내 피 매체의 준비
<ol><li>L-글루타민의 5 mL 5 mL의 방지, 인간의 AB 세럼 50 mL와 멸 균 후드 MCDB131 매체의 500 mL 소 태아 혈 청을 제외한 EGM 2 성장 인자 키트의 모든 구성 요소를 추가 합니다.</li>
</ol>5입니다. decellularization Saphenous 정 맥의
<ol><li>실 온에서-80 ° C에서 인간의 saphenous 정 맥 동 -80 ° C에 다시 고정 하 고 다시 실 온에서 해 동.</li>
	<li>잘라가 위를 사용 하 여 2 mm 길이 생 하 고 실 온에서 24-48 h에 대 한 포름알데히드에 수정. 남성과 여성의 Luer 커넥터는 봉합의 가시에 정 맥의 각 끝을 묶어.</li>
	<li>Decellularization 설치 1 정 맥을 연결 하 고 솔루션 2의 1 L를 입력 합니다. 35 mL/분에서 15 분 설정의 내용을 비어에 대 한 perfuse.</li>
	<li>솔루션 4의 1 패를 추가 하 고 35 mL/분에서 h 4는 설치 프로그램의 내용을 비어에 대 한 perfuse.</li>
	<li>솔루션 2의 500 mL를 추가 하 고 5 분 설치의 내용을 비어에 대 한 perfuse. 이 단계를 반복 합니다. 관류 설치 1에서에서 정 맥을 분리 하 고 관류 설치 2에 연결.</li>
	<li>솔루션 5의 1 패를 추가 하 고는 활동가 설정 35 mL/min에서 4 h perfuse. 참고: 솔루션 5 흐린는 활동가 대 고 관류 전역 후 보인다.</li>
	<li>관류 설정 2에서에서 정 맥을 분리 하 고 초순 5-10 분의 4 변화에 정 맥의 외부와 내부 주사기 또는 10 mL 피 펫 세척.</li>
	<li>관류 설치 3 정 맥을 연결 솔루션 6의 50 mL를 추가 하 고 37 ° C 챔버에 10 mL/min에서 perfuse 4 h. 설치의 내용을 비어 및 설정에서 정 맥을 분리.</li>
	<li>관류 설치 1 정 맥을 연결, 솔루션 2 1 리터를 하룻밤 35 mL/분 반복 단계 5.4 단계 5.9 4 회 (총 5 사이클)에서 perfuse. 5.2 단계에서 제시 된 대로 다시 생을 가져가 라. 참고: 건너뛰기 사이클 1과 3에에서 5.8 두 번째 부분을 단계.</li>
	<li>설정의 내용이 비어 있습니다. 솔루션 2의 1 L를 perfuse 35 mL/분 변경 솔루션에서 24 h에 대 한 12 헤 후 2 설치 프로그램의 내용을 비어. 1l의 초순 수를 설정의 내용을 12 h.Empty 후 24 h 35 mL/분 변화는 초순에 대 한 perfuse. 7 솔루션의 1 리터와 7 후 12 h 35 mL/분 변경 솔루션에서 24 h에 대 한 perfuse.</li>
</ol>6입니다. Decellularization의 확인
<ol><li>포 르 말린 고정 초순 15 분 과정 표준 프로토콜에 따라 조직 프로세서에 대 한 생 검을 세척 하 고 파라핀22에 포함.</li>
	<li>톰을 사용 하 여 5 µ m 섹션을 잘라 얼룩 메이어의 hematoxylin 및 0.2% 알콜 오신 (H & E)와 함께 다음 표준 프로토콜22.</li>
	<li>정상 조직에 비해 decellularized 조직에서 핵의 손실에 대 한 확인을 현미경으로 볼 수 있습니다.</li>
</ol>7입니다. recellularization
<ol><li>포함 하는 솔루션 8의 50 mL 50 mL 튜브에 그것을 배치 하 여 정 맥을 소독. 분 (rpm) 당 80 회전에서 37 ° c.에 1 시간에 대 한 셰이 커에 선동</li>
	<li>층 류 흐름 (LAF) 불 임을 유지 하기 위해 지금부터 캐비닛 아래 정 맥을 처리 합니다. 방지의 살 균 솔루션 7, 500 µ L의 50 mL를 포함 하는 새로운 50 mL 튜브를 무 균 집게를 사용 하 여 정 맥을 전송 합니다. 위의 12 h. 변경 솔루션 7 적어도 두 번 사이 대 한 교 반 하십시오.</li>
	<li>소독 집게를 사용 하 여 새로운 50 mL 튜브에 정 맥을 전송 하 고 내 피 미디어의 50 mL를 추가 합니다. 위의 11 h에 대 한 교 반 하십시오.</li>
	<li>LAF 캐비닛 아래 멸 균 글러브를 사용 하 여 생물을 조립. 생물 반응 기의 정 맥 입구 및 출구 무 균 봉합와 집게를 정 맥을 묶어.</li>
	<li>생물을 채우기 같은 매체와 정 맥을 연결 합니다. 50 IU/mL에서 헤 파 린을 추가 하 고 37 ° C에 2 mL/min에서 1 h perfuse</li>
	<li>헤 파 린 코팅 vacutainer 튜브에 기증자에서 신선한 혈액 (정 맥의 길이)에 따라 15-25 mL를 수집 하 고 1:1 스 틴 솔루션을 희석. 나중에, 내 분 비 동맥-유래 혈관 내 피 성장 인자 (VEGF EG, 80 ng/mL), 기본적인 섬유 아 세포 성장 인자 (FGF b, 4 µ L/mL)와 아 세 틸 살리실산 (5 µ g/mL)를 추가 합니다.</li>
	<li>5% CO2 와 37 ° C 배양 기에는 생물을 이동 하 고 2 mL/min에서 48 h에 대 한 perfuse.</li>
	<li>약 후 12 h, 캐비닛, LAF는 생물 이동 혈액의 방울 고 혈액 포도 당 감시 장치를 사용 하 여 포도 당을 측정. 수준 미만 3 mmol/L 이면 추가 려 포도 당 7-9 mmol/l. 반복의 범위에이 모든 8-12 h 단계.</li>
	<li>48 h 후 LAF 캐비닛에 생물을 이동 하 고는 생물에서 혈액을 배출 합니다. 살 균 솔루션 7의 30 mL를 추가 하 고 5 분 드레인 솔루션에 대 한 perfuse. 살 균 솔루션 7의 30 mL를 추가 하 고 두 번 이나 붉은 색 손실 됩니다 때까지 5 분 반복에 대 한 perfuse. 참고: 생 검 셀 첨부 파일의 확인을 위해 취할 수 있습니다. 정 맥, 정 맥의 5mm 가장자리가 위로 잘라 고 그들을 무시. 생 검 단계 5.2에서에서 명시 된 고 생물 (선택 사항)을 다시 정 맥을 연결.</li>
	<li>내 피 매체의 30-45 mL를 추가 하 고 2 mL/min에서 인큐베이터에서 96 h에 대 한 perfuse. 참고: 추가 내 피 중간 정 맥 빠져들 때까지.</li>
	<li>LAF 캐비닛에는 생물을 이동, recellularized 정 맥을 분리가 위를 사용 하 여 정 맥의 5mm 가장자리 잘라내어 버리고. 5.2 단계에서 제시 된 대로 생 검을 가져가 라.</li>
</ol>8입니다. Recellularization의 확인
<ol><li>섹션 6에에서 지시 하 고 H & E 염색을 수행 합니다. 셀의 존재에 대 한 현미경 슬라이드를 검사 합니다.</li>
</ol>

<ol><li>Brockbank, K. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+cryopreservation+upon+vein+function+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22Cryobiology%22%5BJournal%5D)">Effects of cryopreservation upon vein function in vivo.</a> Cryobiology. 31 (1), 71-81 (1994).</li>
<li>O'Donnell, T. F. Jr, et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Correlation+of+operative+findings+with+angiographic+and+noninvasive+hemodynamic+factors+associated+with+failure+of+polytetrafluoroethylene+grafts%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Vascular+Surgery%22%5BJournal%5D)">Correlation of operative findings with angiographic and noninvasive hemodynamic factors associated with failure of polytetrafluoroethylene grafts.</a> Journal of Vascular Surgery. 1 (1), 136-148 (1984).</li>
<li>Atala, A., Bauer, S. B., Soker, S., Yoo, J. J., Retik, A. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tissue-engineered+autologous+bladders+for+patients+needing+cystoplasty%5BTitle%5D)+AND+%22Lancet%22%5BJournal%5D)">Tissue-engineered autologous bladders for patients needing cystoplasty.</a> Lancet. 367 (9518), 1241-1246 (2006).</li>
<li>Raya-Rivera, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tissue-engineered+autologous+urethras+for+patients+who+need+reconstruction%3A+an+observational+study%5BTitle%5D)+AND+%22Lancet%22%5BJournal%5D)">Tissue-engineered autologous urethras for patients who need reconstruction: an observational study.</a> Lancet. 377 (9772), 1175-1182 (2011).</li>
<li>Macchiarini, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Clinical+transplantation+of+a+tissue-engineered+airway%5BTitle%5D)+AND+%22Lancet%22%5BJournal%5D)">Clinical transplantation of a tissue-engineered airway.</a> Lancet. 372 (9655), 2023-2030 (2008).</li>
<li>Olausson, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transplantation+of+an+allogeneic+vein+bioengineered+with+autologous+stem+cells%3A+a+proof-of-concept+study%5BTitle%5D)+AND+%22Lancet%22%5BJournal%5D)">Transplantation of an allogeneic vein bioengineered with autologous stem cells: a proof-of-concept study.</a> Lancet. 380 (9838), 230-237 (2012).</li>
<li>Olausson, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+Vivo+Application+of+Tissue-Engineered+Veins+Using+Autologous+Peripheral+Whole+Blood%3A+A+Proof+of+Concept+Study%5BTitle%5D)+AND+%22EBioMedicine%22%5BJournal%5D)">In Vivo Application of Tissue-Engineered Veins Using Autologous Peripheral Whole Blood: A Proof of Concept Study.</a> EBioMedicine. 1 (1), 72-79 (2014).</li>
<li>Ott, H. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Regeneration+and+orthotopic+transplantation+of+a+bioartificial+lung%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Medicine%22%5BJournal%5D)">Regeneration and orthotopic transplantation of a bioartificial lung.</a> Nature Medicine. 16 (8), 927-933 (2010).</li>
<li>Uygun, B. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Organ+reengineering+through+development+of+a+transplantable+recellularized+liver+graft+using+decellularized+liver+matrix%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Medicine%22%5BJournal%5D)">Organ reengineering through development of a transplantable recellularized liver graft using decellularized liver matrix.</a> Nature Medicine. 16 (7), 814-820 (2010).</li>
<li>Conconi, M. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tracheal+matrices%2C+obtained+by+a+detergent-enzymatic+method%2C+support+in+vitro+the+adhesion+of+chondrocytes+and+tracheal+epithelial+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Transplant+International%22%5BJournal%5D)">Tracheal matrices, obtained by a detergent-enzymatic method, support in vitro the adhesion of chondrocytes and tracheal epithelial cells.</a> Transplant International. 18 (6), 727-734 (2005).</li>
<li>Gilbert, T. W., Sellaro, T. L., Badylak, S. F. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/16519932">Decellularization of tissues and organs.</a> Biomaterials. 27 (19), 3675-3683 (2006).</li>
<li>Zhang, Z. Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+potential+of+human+fetal+mesenchymal+stem+cells+for+off-the-shelf+bone+tissue+engineering+application%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">The potential of human fetal mesenchymal stem cells for off-the-shelf bone tissue engineering application.</a> Biomaterials. 33 (9), 2656-2672 (2012).</li>
<li>Elebring, E., Kuna, V. K., Kvarnstrom, N., Sumitran-Holgersson, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cold-perfusion+decellularization+of+whole-organ+porcine+pancreas+supports+human+fetal+pancreatic+cell+attachment+and+expression+of+endocrine+and+exocrine+markers%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Tissue+Engineering%22%5BJournal%5D)">Cold-perfusion decellularization of whole-organ porcine pancreas supports human fetal pancreatic cell attachment and expression of endocrine and exocrine markers.</a> Journal of Tissue Engineering. 8, 2041731417738145(2017).</li>
<li>Masumoto, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Human+iPS+cell-engineered+cardiac+tissue+sheets+with+cardiomyocytes+and+vascular+cells+for+cardiac+regeneration%5BTitle%5D)+AND+%22Science+Reports%22%5BJournal%5D)">Human iPS cell-engineered cardiac tissue sheets with cardiomyocytes and vascular cells for cardiac regeneration.</a> Science Reports. 4, 6716(2014).</li>
<li>Wiles, K., Fishman, J. M., De Coppi, P., Birchall, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Host+Immune+Response+to+Tissue-Engineered+Organs%3A+Current+Problems+and+Future+Directions%5BTitle%5D)+AND+%22Tissue+Engineering+Part+B+Reviews%22%5BJournal%5D)">The Host Immune Response to Tissue-Engineered Organs: Current Problems and Future Directions.</a> Tissue Engineering Part B Reviews. 22 (3), 208-219 (2016).</li>
<li>Young, M. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Endothelial+cells+in+the+eyes+of+an+immunologist%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Immunology+Immunotherapy%22%5BJournal%5D)">Endothelial cells in the eyes of an immunologist.</a> Cancer Immunology Immunotherapy. 61 (10), 1609-1616 (2012).</li>
<li>Graham, L. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Endothelial+cell+seeding+of+prosthetic+vascular+grafts%3A+early+experimental+studies+with+cultured+autologous+canine+endothelium%5BTitle%5D)+AND+%22Archives+of+Surgery%22%5BJournal%5D)">Endothelial cell seeding of prosthetic vascular grafts: early experimental studies with cultured autologous canine endothelium.</a> Archives of Surgery. 115 (8), 929-933 (1980).</li>
<li>Onuki, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Accelerated+endothelialization+model+for+the+study+of+Dacron+graft+healing%5BTitle%5D)+AND+%22Annals+of+Vascular+Surgery%22%5BJournal%5D)">Accelerated endothelialization model for the study of Dacron graft healing.</a> Annals of Vascular Surgery. 11 (2), 141-148 (1997).</li>
<li>Clowes, A. W., Kirkman, T. R., Reidy, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanisms+of+arterial+graft+healing.+Rapid+transmural+capillary+ingrowth+provides+a+source+of+intimal+endothelium+and+smooth+muscle+in+porous+PTFE+prostheses%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Pathology%22%5BJournal%5D)">Mechanisms of arterial graft healing. Rapid transmural capillary ingrowth provides a source of intimal endothelium and smooth muscle in porous PTFE prostheses.</a> American Journal of Pathology. 123 (2), 220-230 (1986).</li>
<li>L'Heureux, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Human+tissue-engineered+blood+vessels+for+adult+arterial+revascularization%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Medicine%22%5BJournal%5D)">Human tissue-engineered blood vessels for adult arterial revascularization.</a> Nature Medicine. 12 (3), 361-365 (2006).</li>
<li>Syedain, Z. H., Meier, L. A., Lahti, M. T., Johnson, S. L., Tranquillo, R. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Implantation+of+completely+biological+engineered+grafts+following+decellularization+into+the+sheep+femoral+artery%5BTitle%5D)+AND+%22Tissue+Engineering+Part+A%22%5BJournal%5D)">Implantation of completely biological engineered grafts following decellularization into the sheep femoral artery.</a> Tissue Engineering Part A. 20 (11-12), 1726-1734 (2014).</li>
<li>Cardiff, R. D., Miller, C. H., Munn, R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Manual+hematoxylin+and+eosin+staining+of+mouse+tissue+sections%5BTitle%5D)+AND+%22Cold+Spring+Harb+Protocols%22%5BJournal%5D)">Manual hematoxylin and eosin staining of mouse tissue sections.</a> Cold Spring Harb Protocols. 2014 (6), 655-658 (2014).</li>
<li>Pollack, A. A., Taylor, B. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+effect+of+exercise+and+body+position+on+the+venous+pressure+at+the+ankle+in+patients+having+venous+valvular+defects%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Clinical+Investigation%22%5BJournal%5D)">The effect of exercise and body position on the venous pressure at the ankle in patients having venous valvular defects.</a> Journal of Clinical Investigation. 28 (3), 559-563 (1949).</li>
<li>Li, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Low-molecular-weight+peptides+derived+from+extracellular+matrix+as+chemoattractants+for+primary+endothelial+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Endothelium%22%5BJournal%5D)">Low-molecular-weight peptides derived from extracellular matrix as chemoattractants for primary endothelial cells.</a> Endothelium. 11 (3-4), 199-206 (2004).</li>
<li>van Ark, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Type+2+diabetes+mellitus+is+associated+with+an+imbalance+in+circulating+endothelial+and+smooth+muscle+progenitor+cell+numbers%5BTitle%5D)+AND+%22Diabetologia%22%5BJournal%5D)">Type 2 diabetes mellitus is associated with an imbalance in circulating endothelial and smooth muscle progenitor cell numbers.</a> Diabetologia. 55 (9), 2501-2512 (2012).</li>
<li>Steen, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transplantation+of+lungs+from+a+non-heart-beating+donor%5BTitle%5D)+AND+%22Lancet%22%5BJournal%5D)">Transplantation of lungs from a non-heart-beating donor.</a> Lancet. 357 (9259), 825-829 (2001).</li>
<li>Van Raemdonck, D., Neyrinck, A., Cypel, M., Keshavjee, S. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC4133548/">Ex-vivo lung perfusion.</a> Transplant International. 28 (6), 643-656 (2015).</li>
<li>Cross, M. J., Claesson-Welsh, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((FGF+and+VEGF+function+in+angiogenesis%3A+signalling+pathways%2C+biological+responses+and+therapeutic+inhibition%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+in+Pharmacological+Science%22%5BJournal%5D)">FGF and VEGF function in angiogenesis: signalling pathways, biological responses and therapeutic inhibition.</a> Trends in Pharmacological Science. 22 (4), 201-207 (2001).</li>
<li>Peplow, P. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Growth+factor-+and+cytokine-stimulated+endothelial+progenitor+cells+in+post-ischemic+cerebral+neovascularization%5BTitle%5D)+AND+%22Neural+Regeneration+Research%22%5BJournal%5D)">Growth factor- and cytokine-stimulated endothelial progenitor cells in post-ischemic cerebral neovascularization.</a> Neural Regeneration Research. 9 (15), 1425-1429 (2014).</li>
<li>Xiao-Yun, X., Zhao-Hui, M., Ke, C., Hong-Hui, H., Yan-Hong, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Glucagon-like+peptide-1+improves+proliferation+and+differentiation+of+endothelial+progenitor+cells+via+upregulating+VEGF+generation%5BTitle%5D)+AND+%22Medical+Science+Monitor%22%5BJournal%5D)">Glucagon-like peptide-1 improves proliferation and differentiation of endothelial progenitor cells via upregulating VEGF generation.</a> Medical Science Monitor. 17 (2), BR35-BR41 (2011).</li>
<li>Dragoni, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Vascular+endothelial+growth+factor+stimulates+endothelial+colony+forming+cells+proliferation+and+tubulogenesis+by+inducing+oscillations+in+intracellular+Ca2%2B+concentration%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cells%22%5BJournal%5D)">Vascular endothelial growth factor stimulates endothelial colony forming cells proliferation and tubulogenesis by inducing oscillations in intracellular Ca2+ concentration.</a> Stem Cells. 29 (11), 1898-1907 (2011).</li>
<li>Sai, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Basic+fibroblast+growth+factor+is+essential+to+maintain+endothelial+progenitor+cell+phenotype+in+TR-BME2+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Biological+and+Pharmaceutical+Bulletin%22%5BJournal%5D)">Basic fibroblast growth factor is essential to maintain endothelial progenitor cell phenotype in TR-BME2 cells.</a> Biological and Pharmaceutical Bulletin. 37 (4), 688-693 (2014).</li>
<li>Gallus, A. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Aspirin+and+other+platelet-aggregation+inhibiting+drugs%5BTitle%5D)+AND+%22Medical+Journal+of+Asutralia%22%5BJournal%5D)">Aspirin and other platelet-aggregation inhibiting drugs.</a> Medical Journal of Asutralia. 142 (1), 41-47 (1985).</li>
</ol>

SSH Verigraft, 조직의 혈관 엔지니어링 기술 라이센스는 회사에서에서 주식 보유. 다른 저자는 공개 없다.

Saphenous 정 맥의 decellularization에 대 한 여기에 제시 된 기술 또한 탯 줄 고 유 방 정 맥 처럼 모든 직경이 작은 혈관에 적용 될 수 있는 쉽게, 간단 하 고 비용 효율적인 방법입니다. Decellularization 솔루션 및이 방법에 사용 되는 그들의 농도 우리의 이전 결과6,7. 비록 decellularization의 5 주기를 권장 하 고, 특정 혈관에 우리도 눈치 3 주기에서 완전 한 decellularization. 그러나, 재현 결과 5 주기를 사용 하 여 얻은 했다. 우리는 다양 한 길이의 혈관 decellularized이 프로토콜을 적용, 30 cm까지 성공적으로 (되지 않은 결과). 45 m decellularization 솔루션의 콘센트를 리프팅 정 맥 안에 33 mmHg의 압력을 만들 것입니다. 우리의 경험에서 우리 전체 맥락을 균일 하 게 decellularizing에 그리고 reproducibly 5 주기에서 주요 단계로이 나타났습니다. 선택된 압력은 정상적인 saphenous 정 맥 압력 (5-10 mmHg) 보다 3 배 높은 하지만 무능에서와 같이 혈관 (정 맥)23. 또한, 우리는이 높은 압력 정 맥 벽에 큰 힘을 만들 것입니다 하 고 따라서 효율적이 고 빠른 세포 제거에 도움이 있습니다, 사색 한다.
TnBP은 유기 용 매와 물에 불용 성, 흐린 될 때까지 세제를 감동이 중요; 그렇지 않으면, 세제에 플 로트 것입니다. 같은 이유로 TnBP 솔루션, 혼합 계속 세제의 콘센트 튜브가 두었다 호스 콘센트와 함께 유리 항아리의 상단에. 효율적인 제거 후 씻어 물에 TnBP 방울의 부재 모든 주기에 그것의 사용을 볼 수 있습니다 정 맥에서 TnBP의. 우리는 또한 decellularized 조직 생산 또한 DNase 단계를 건너뛰는 하지만 몇 가지 경우, decellularized 조직에서 비교적 높은 DNA 콘텐츠 발견 했다 나타났습니다. 높은 압력 및 높은 흐름 율 효율적인 DNase 활동에 대 한 필요 하지 않습니다, 낮은 관류 속도 (10 mL/min) 사용할 수 있습니다. 그것의 더 작은 크기는 설치의 쉬운 처리에 도움이 됩니다 다른 연동 펌프 사용 했다. 이후 우리는 주기 2에에서 decellularization 결과 중 대부분의 세포의 손상을 발견, 건너뛰는 DNase 1 고 3 (게시 되지 않은 결과) 주기 동안 치료 하는 것이 좋습니다. 특성화 및 정량화의 세포 외 기질 단백질이이 원고 수행 했다, 비록 유사한 decellularization 프로토콜 우리의 이전 경험이 했다 biomechanical 속성의 보존 세포 외 기질 단백질 및 구조7. 비록 이러한 혈관 우리의 예비 정량화 실험 (미 발표) 비슷한 결과 생산, 우리의 이미 게시 된 결과이 신뢰를 강화 것입니다.
Recellularization 혈액을 사용 하 여 하나 긴 셀 확장 시간, 환자에 대 한 확장 된 셀, 외과 침략, 및 불편에 자발적인 돌연변이 피할 수 있다 확장 하는 골 수 세포를 통해 편리 하 고 쉬운 프로세스입니다. 이후 endothelialization도 Epc 순환에서 발생할 수 있습니다, 우리는 혈액 내 피 매체 관류 뒤 그 관류 가설 알려져 있다 recellularization에 대 한 충분 한 될 것입니다. 이러한 두 개의 혈관 여분 간 문맥 방해7자식으로 이식 했다 때 비슷한 메서드를 사용 하 여 설계 하는 정 맥 조직의 안전 이식의 성공적인 결과에서 볼 수 있다. 우리는 decellularized 세포 외 기질에 성장 요인 혈액24에서 Epc를 순환의 첨부 파일을 허용할 것 이다을 추측 한다. 유사한 프로토콜에 따라 혈관의 recellularization 셀 VEGF 수용 체-2와 차별화 (CD) 14 CD45 표현 셀 adventitia7에서 보인 동안 루멘에의 클러스터에 대 한 긍정적인 했다. 우리는 또한 그 지속적인 내 피 층 하지 관찰 수 있습니다 모든 경우에 이러한 개인 조상 세포25순환 수가 감소 알려진 대로 이전 하 고 병에 걸린 환자에서 혈액을 사용 하는 경우에 특히 상상. 그러나 우리는 관류와 받는 사람의 자신의 가정 혈액 항 원 decellularization 때문에 노출 되 고 따라서 불리 한 염증 반응 때 반대만 이식 이식의 기회를 줄일 수 있습니다의 많은 마스크 수 있습니다 decellularized 혈관입니다. 또한, 혈액 관류 루멘에 조상 세포 vivo에서recellularization의 빠른 과정에 인 순환의 증가 숫자를 모집 수 있습니다 adventitia에 성장 요인의 증가 수준을 입금 수 있습니다.
이 연구에 사용 된 생물 반응 기 디자인의 장점은 완전 한 압력가 마로 소독, 쉬운 조립, 비용 효율성, 쉬운 취급 및 손상의 적어도 가능성입니다. 우리의 경험에서는, 현재 디자인, 정 맥 길이 10 cm까지 했다 recellularized를 사용 하 여. 비록 최대 정 맥 길이 25cm는 생물 안에 "U" 모양 정 맥을 유지 하 여 recellularized도 수, 유효성을 검사 해야 합니다. 생물 반응 기 디자인 정 맥에서 흐름의 방향은 중력에 대 한 설계 되었습니다 같은 때문에 인 간에 있는 이러한 혈관에 대 한 흐름의 수직 방향을 보여줍니다. 내 피 중간 단계의 12 h 관류 혈관 precondition 들어오는 Epc의 첨부 파일에 대 한 선호도 증가입니다. 추가 추가 헤 파 린 및 1 시간에 대 한 관류의 혈액 관류 동안 튜브에 혈전 형성의 위험을 낮출 것 이다.
필요한 혈액의 양을 정 맥의 길이에 따라 달라 집니다. 우리 혈액 볼륨에 따라 기본 원리는 정 맥 혈액에 빠져들 수 한다입니다. 45 mL 보다 큰 혈액 볼륨을 처리 하는 동안 가끔 혼합 세포는 생물의 하단에 축적을 방지 하기 위해 요구 수 있습니다. 우리 혈액의 단백질 조직 장기 이식26,27동안 건강 한 유지 하는 데 필요한 높은 금액을 포함 하기 때문에 Steen의 솔루션 추가. 그들은 강력한 신생 성장 인자28 및 마이그레이션, 확산, 및 Epc29,,3031,32의 차별화를 유도 하는 그들의 존재로 VEGF와 b-FGF의 추가 도움이 됩니다. . VEGF 추가 금액은 Epc의 확산 80 ng/mL에서 목격 된 우리의 이전 되지 않은 결과 기반으로 합니다. 아스피린의 혈소판33 내 피 층에 그들의 부착의 기회 감소의 활성화를 억제. 지속적인 모니터링 및 포도의 추가 세포 증식 및 적혈구의 용 혈을 방지 도움이 됩니다.
간단한 혈액 샘플만 받는 이기 때문에, 보다 적게 기술 전문 간단 하 고 가능한 절차로 여겨질 수 있다. 비록, 완료부터 여기 표시 된 모든 절차는 20 일 소요, 저장으로 decellularized 혈관은 선반에서 제품 환자에 대 한 일 절차 단축 됩니다. Decellularized 혈관의 스토리지 기술적으로 미치지 않습니다 recellularization 효율성, 비록 평가 되어야 합니다. 조직 설계 혈관 생성이 절차에 따라 병원에 바이패스 수술, 방해 혈관, 면역 억제를 위한 필요 없이 정을 선도 하 고 따라서 더 나은 품질을 제공 하는 정 맥 불충분을 대체 사용할 수 있습니다. 환자를 위한 생활입니다.

혈관 도관이 동맥 류, 경 동맥 협 착 증 및 심한 혈관 문제로 이어지는 동맥 경화 같은 여러 임상 조건에 대 한 필요 합니다. 외과 "헌, 수용자 또는 합성 혈관 도관"을 사용 하 여 복원 기능 혈액 공급. 만 헌 혈관의 사용은 여전히 이상적인 접근, 환자에서 가용성 majorly 제한 됩니다. 수용자 또는 합성 이식 등 대안 면역 치료와 가난한 patency reoperation1,2, 국가 경제 부담 주요 건강 결과로 이어지는 깊은 문제가 있다. 혈관의 조직 공학 자연 상 동 및 autologous 세포 이식 제공 하는 것을 목표로. 따라서, 받는 사람 면역 시스템 자체도 이식된 이식 인식 하 고 이러한 이식 자연 단백질 및 원래 구성에 있는 셀에 포함 되어 있는, 그것은 현재 대안에 비해 더 나은 작동 수도 있습니다. 3방광, 요도4, 기관5및 정 맥6,7, 성공적으로 사용 되었습니다 병원에서와 같은 조직 기관, 설계.
조직 공학 생산 맞춤된 이식 decellularization 및 recellularization 기증자 로부터 이식을 필요 합니다. Decellularization 조직 및 장기8,,910에서 세포를 제거 하는 유망한 기술 이다. Decellularization 특정 물리적, 화학적 및 효소 방법11 또는 그들을 결합 하 여 수행할 수 있습니다. 이러한 방법의 최적 사용에 decellularized 조직 기질 비슷한 기본 조직에에서 유사한 구조상과 기능적인 단백질을 가질 수 있습니다. 이러한 장기 첨부 파일, 마이그레이션, 확산, 그리고 들어오는 줄기 세포의 분화를 향상 시키기 위해 본질적인 능력 소유.
Recellularization 세포는 이식에 뿌리기의 동적 프로세스 이며 받는 사람 줄기 세포 임상 이식에 사용할 수 있습니다. 현재 이러한 목적을 위해 사용 하는 줄기 세포 골 수, 간 엽 등 장기 거주자3,,56. 동물 및 연구 지향적인 연구 태아 및 유도 만능12,,1314엽 기원에서 줄기 세포를 이용 했다. 이 프로세스에서는 생물 반응 기 (정 맥을 보유 하 고 온도, 가스, pH, 압력과 같은 필요 조건을 제공 하는 챔버), 세포 및 문화 미디어. Recellularization에도 전에 세포의 특정 유형 및 셀 전체 조직 또는 기관에 도달할 수는 시드 전략의 필요한 수를 얻을 것입니다. 비록 완전 한 조직 또는 기관 구조적 및 기능적으로 생성 되었으며 지금까지 평가, 필드와 초기 결과에 여러 발전 미래의 가능성15를 표시 합니다. 정 맥의 핵심 기능 조직 및 수축에 도움이 되 고 또한 혈압16를 힘을 제공 한다 중간 매끄러운 근육 층으로 선 동적인 세포의 침투를 제어 luminal endothelium에 놓여 있습니다. 연구는 손상, 동안 endothelialization 발생 또는 순환 혈액17,,1819에 내 피 조상 세포 (Epc)에서 문 합에서 설명 했다. 혈관의 recellularization에 대 한 우리의 전략 Epc 혈액 순환에 의존 합니다.
정 맥과 동맥의 조직 공학 다른 decellularization 및 recellularization 전략20,21다음 여러 그룹에 의해 수행 되었다. 우리의 그룹은 또한 수행 하 고 장 골과 유 정 맥6,7decellularization 및 recellularization 전략을 개발. Decellularization은 트라이 톤 X-100, 트라이-n-부 틸 인산 (TnBP), 그리고 효소 deoxyribonuclease (DNase)에서 정 맥의 동요에 의해 수행 되었다. recellularization 파생 하는 골 수 내 피와 부드러운 근육 세포6 또는 주변 혈액7를 사용 하 여 수행 되었다. 혈관 중 프로토콜 추가 간 문맥 방해6,7소아 환자 이식에 기능 혈액 공급을 제공 하 임상 약속을 보여주었다 recellularized.
우리는 현재 직경이 작은 혈관의 decellularization, recellularization 및 생물 처리의 향상 된 쉽고 성능에 대 한 동일한 프로토콜의 수정된 된 버전을 개발 했습니다. 현재 decellularization 프로토콜 세제와 동요 대신 압력을 사용 하 여 정 맥을 통해 세제의 관류가 필요 합니다. Recellularization 프로토콜의 늘어진 세포 접착 및 세포 접착, 생존 및 확산 개선을 위한 혈액 순환에 성장 요인의 개선에 대 한 추가 단계를 포함 한다. 우리는 또한 상업적으로 사용할 수 있는 제품을 사용 하 여 생물 반응 기의 디자인을 개량 했다. 이 논문에서는, decellularization와 인간의 saphenous 정 맥의 recellularization를 수행 하기 위한 수정 된 프로토콜에 대 한 자세한 설명을 선물이.

<table><tbody><tr><td>4-포트 캡</td><td>CPLabSafety</td><td>WF-GL45-4Kit</td><td></td></tr><tr><td>아세틸 살리실산</td><td>시그마 알드리치</td><td>A5376</td><td></td></tr><tr><td>안티</td>-<td>안티 라이프 테크놀로지</td>스 <td>15240-062</td><td></td></tr><tr><td>B-FGF</td><td>론자</td><td>cc-4113B</td><td></td></tr><tr><td>혈당 모니터링 시스템 - Free style Lite</td><td>Abbott</td><td>70808-70</td><td></td></tr><tr><td>D-글루코스</td><td>시그마 Aldrich</td><td>G8769</td><td></td></tr><tr><td>DNase-I</td><td>Worthington</td><td>LS0020007</td><td></td></tr><tr><td>CaCl2 및 MgCl2</td><td>Sigma Aldrich</td><td>D8662</td><td></td></tr><tr><td>EDTA 이나트륨 염 이수화물</td><td>AlfaAesar</td><td>A15161. </td><td></td>OB</tr><tr><td>EGM-2 성장 인자 키트</td><td>Lonza</td><td>CC-4176</td><td></td></tr><tr><td>EG-VEGF</td><td>Peprotech</td><td>100-44</td><td></td></tr><tr><td>유리병 250ml</td><td>VWR</td><td>2151593</td><td>GL45 캡이 있는 모든 병을 사용할 수 있습니다</td></tr><tr><td>유리병 1L</td><td>VWR</td><td>2151595</td><td>GL45 캡이 있는 모든 병을 사용할 수 있습니다</td></tr><tr><td>유리 항아리 500ml 하단 호스 배출구</td><td>Kimble Chase Life Science</td><td>14607</td><td></td></tr><tr><td>헤파린</td><td>레오</td><td>387107</td><td></td></tr><tr><td>헤파린 코팅 진공 튜브</td><td>Becton Dickinson</td><td>368480</td><td></td></tr><tr><td>인간 AB 혈청</td><td>시그마 Aldrich</td><td>H3667</td><td></td></tr><tr><td>L-글루타민</td><td>라이프 테크놀로지</td>스 <td>25030-024</td><td></td></tr><tr><td>Luer 여성 1/8 "ID 미늘</td><td>Oina</td><td>LF-2PP-QC</td><td>3X5mm 실리콘 튜브</td></tr><tr><td>Luer 3/32 "ID Barb</td><td>Oina</td><td>LF-1.5PP-QC</td><td>2X4mm 실리콘 튜브</td></tr><tr><td>Luer 남성 3/32 "ID Barb</td><td>Oina</td><td>LM-1.5PP-QC</td><td>2X4mm 실리콘 튜브</td></tr><tr><td>Luer 남성 1/8 "ID Barb</td><td>Oina</td><td>LM-2PP-QC</td><td>3X5mm 실리콘 튜브</td></tr><tr><td>Luer 남성 5/32 "ID Barb</td><td>Cole Parmer</td><td>EW-45518-06</td><td>5X8mm 실리콘 튜브</td></tr><tr><td>MCDB 131</td><td>수명 기술</td><td>10372-019</td><td></td></tr><tr><td>아세트산 당</td><td>Sigma Aldrich</td><td>433241</td><td></td></tr><tr><td>연동 펌프 I</td><td>Masterflex</td><td>7524-45</td><td>탈세포화 설정 1 및 2용. 사용된 카세트는</td></tr><tr><td>탈세포화 설정 3 및 재세포화 생물반응기용</td> 7519-75<td>연동 펌프 II</td><td>Ismatec</td><td>ISM941</td>입니다.</tr><tr><td>염화칼</td>륨 <td>Sigma Aldrich</td><td>P5405</td><td></td></tr><tr><td>인산수소</td>칼륨 <td>Sigma Aldrich</td><td>P9791</td><td></td></tr><tr><td>감소 커넥터 1.5mmX2.5mm</td><td>생명공학</td><td>ISM569A</td><td></td></tr><tr><td>쉐이커</td><td>Ika</td><td>KS4000 i&nbsp; 제어</td><td></td></tr><tr><td>아지드화</td><td>나트륨 Sigma Aldrich</td><td>71290</td><td></td></tr><tr><td>염화나트륨</td><td>Sigma Aldrich</td><td>13423</td><td></td></tr><tr><td>인산수소나트륨</td><td>Merck</td><td>71640-M</td><td></td></tr><tr><td>Steen 용액</td><td>Xvivo</td><td>19004</td><td></td></tr><tr><td>봉합사</td><td>Agnthos</td><td>14817</td><td></td></tr><tr><td>Tri-n-butyl Phosphate</td><td>AlfaAesar</td><td>A16084.AU</td><td></td></tr><tr><td>Triton-X-100</td><td>AlfaAesar</td><td>A16046. </td> 플랫 베이스가 있는 OF <td></td></tr><tr><td>튜브 60ml</td><td>Sarstedt</td><td>60596</td><td></td></tr><tr><td>튜브 A</td><td>VWR</td><td>2280706</td><td>탈세포화를 위한 각 25cm 길이의 3개 관류 관류 1 및 2</td></tr><tr><td>튜브 B</td><td>VWR</td><td>2280706</td><td>컷 탈세포화를 위한 35cm 길이의 1개 관류 관류</td></tr><tr><td>튜브 C</td><td>VWR</td><td>2280706</td><td>탈세포화 관류를 위한 각 75cm 길이의 5개 절단 steups 1-3</td></tr><tr><td>튜브 D</td><td>VWR</td><td>2280706</td><td>컷 탈세포화를 위한 90cm 길이의 1개 관류 steup 2</td></tr><tr><td>튜브 E</td><td>VWR</td><td>2280706</td><td>컷 재세포화를 위한 20cm 길이의 1개 관류 steup</td></tr><tr><td>튜브 F</td><td>VWR</td><td>2280713</td><td>탈세포화를 위한 각 15cm 길이의 2개 관류 관류 steup 1 및 2</td></tr><tr><td>튜브 G</td><td>VWR</td><td>2280713</td><td>탈세포화를 위한 60cm 길이의 각 2개 절단 관류 steup 1 및 2</td></tr><tr><td>튜브 H</td><td>VWR</td><td>2280703</td><td>재세포화를 위한 15cm 길이의 1개 절단 관류 steup</td></tr><tr><td>튜브 I</td><td>VWR</td><td>2280703</td><td>재세포화를 위한 20cm 길이의 1개 절단 관류 steup</td></tr><tr><td>튜브 J</td><td>VWR</td><td>2280703</td><td>재세포화를 위한 25cm 길이의 1개 절단 관류 steup</td></tr><tr><td>튜브 K</td><td>VWR</td><td>2280703</td><td>재세포화 관류 steup을 위해 각각 35cm 길이의 2개를 자릅니다</td></tr></tbody></table>.

decellularization 및 recellularization 방법론을 인간의 saphenous 정 맥에 대 한

Decellularization and Recellularization Methodology for Human Saphenous Veins

혈관 도관 대부분 혈관 수술 하는 동안 사용 되는 종종 면역 억제와 가난한 patency로 인 한 합병증으로 이어질 수용자 또는 합성 이식입니다. 조직 공학 decellularization 및 recellularization 메서드를 사용 하 여 받는 사람의 세포를 포함 하는 자연적인 기질과 개인된 이식 생성 하 새로운 솔루션을 제공 합니다. 우리 주변 혈액의 재 관류에 의해 인간의 saphenous 정 맥 및 recellularization의 decellularization를 수행 하기 위한 자세한 방법을 보여줍니다. Perfusing 1%에서 정 맥 decellularized 했다 트라이 톤 X-100, 1% 트라이-n-부 틸-인산 염 (TnBP) 및 deoxyribonuclease (DNase)의 2000 Kunitz 단위. 트라이 톤 X-100 및 TnBP DNase 4 h 37 ° C에서 10 mL/min에 끼얹는다는 하는 동안 4 h 35 mL/min에 끼얹는다 했다. 정 맥 초순와 PBS로 세척 되었고 0.1% 초 산에 멸 균. 그것은 다시 PBS로 세척 되었고 preconditioned 내 피 중간에. 정 맥은 생물에 연결 되었고 끼얹는다 50 IU/mL를 포함 하는 내 피 매체 1 h. Recellularization에 대 한 헤 파 린 신선한 혈액으로 생물, Steen 솔루션, 희석된 1: 1을 작성 하 고 내 분 비 동맥에서 파생 된 추가 의해 수행 됐다 혈관 내 피 성장 인자 (80 ng/mL), 기본적인 섬유 아 세포 성장 인자 (4 µ L/mL), 및 아 세 틸 살리실산 (5 µ g/mL). 생물에 인큐베이터에 이동 했다 그리고 3-9 mmol/l. 사이 포도 당을 유지 하면서 2 mL/min에서 48 h에 끼얹는다 나중에, 정 맥 PBS로 세척, 내 피 매체 가득 이었고 인큐베이터에서 96 h 끼얹는다. 트라이 톤 X-100, TnBP와 DNase 치료 5 사이클에서 saphenous 정 맥 decellularized. Decellularized 정 맥 백색 정상 및 recellularized 정 맥 (라이트 레드) 달리 보였다. 되며 & 오신 (H & E) 얼룩만 정상 decellularized 정 맥에만 핵의 존재를 보여주었다. Recellularized 정에서 H & E 염색는 정 맥의 luminal 표면에 세포의 존재를 보여주었다.

정상적인 정 맥의 심한 형태는 빛 빨강 (그림 3A). 붉은 색 진보적인 decellularization 주기에서 분실 된다 (주기 2, 그림 3B; 3, 주기 그림 3C) 5번째 사이클에 의해 그것은 창백 하 고 흰색 (그림 3D) 보입니다. Recellularized 정 맥 혈액 관류 (그림 3E)와 내 피 미디어 관류 (그림 3 층) 후 색상에 밝은 빨강을 보인다. Decellularization 치료의 5 주기 성공적으로 제거 세포는 정 맥에서 아니 블루 핵은 H &amp; E 염색 (그림 4B)에서 본 했다. 반면, 여러 핵 정상 정 맥 (그림 4A)에서 볼 수 있었다. Luminal 측에 연결 된 세포의 존재는 혈액 관류 96 h (그림 3D, 검은 화살표)에 대 한 내 피 매체와 전후 48 h (그림 4C, 검은 화살표)에 대 한 recellularized 정 맥에 H &amp; E 염색에 표시 됩니다.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57803/57803fig1.jpg"> 그림 1 : Decellularization에 대 한 설정을 관류의 조립. A) 그림 Triton X-100 조립된 decellularization 설치 1 표시 및 세척. 흰색 화살표 표시 솔루션에 대 한 흐름 경로 이며 빨간색 화살표 후미와 정 맥 및 솔루션에 대 한 콘센트. B) TnBP 관류에 대 한 조립된 decellularization 설치 2를 보여주는 그림. 마찬가지로, decellularization 설치 1에서 흰색 화살표 솔루션에 대 한 흐름 경로 나타내고 빨간색 화살표 표시 후미 및 정 맥 및 솔루션에 대 한 합니다. C) deoxyribonuclease 관류에 대 한 조립된 decellularization 설치 프로그램 3을 보여주는 그림. 와 흰색 화살표 표시 솔루션에 대 한 흐름 경로 빨간색 화살표 표시 정 맥 및 솔루션에 대 한 후미. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/57803/57803fig1large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.</a> 
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57803/57803fig2.jpg"> 그림 2 : 준비 및 recellularization에 대 한 생물의 조립. A) 그림을 보여주는 자료는 생물을 조립 하는 데 필요한. B) 정 맥 입구 및 출구 (흰색 화살표) 및 튜브 H, I 및 제이의 배열에 연결할 커넥터 (빨간색 화살표), 감소의 배치를 보여주는 4-포트 캡의 안쪽의 사진 포인트 튜브 H의 무료 끝 반환 미디어 생물에 배치 됩니다. C) 와 외출 각각 튜브 4 포트 캡의 상단 측면에서 볼 수 있습니다. D) 조립된 생물을 보여주는 그림. E) 연동 펌프 전체 생물 설치를 보여주는 그림. K 튜브 연동 펌프에는 생물 반응 기에서 연결을 확장합니다. F) 전체 생물 관류 시스템의 도식 대표. 주황색 화살표는 흐름의 방향을 나타냅니다. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/57803/57803fig2large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.</a> 
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57803/57803fig3.jpg"> 그림 3 : Decellularization 및 recellularization 중 혈관의 형태를 총. A) 정상 정 맥의 심한 형태 컬러로 밝은 빨간색을 보인다. 색상은 decellularization 사이클의 수를 증가 함께 손실 B) 2 주기 및 C) 3 주기. D) 5 주기, 정 맥 보이는 창백한, 흰색. E와 함께 perfusing 후 정 맥) 48 h와 F에 대 한 혈액) 96 h에 대 한 내 피 중간 컬러로 다시 한번 밝은 빨간색 보인다. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/57803/57803fig3large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.</a>
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57803/57803fig4.jpg"> 그림 4 : Decellularized와 recellularized 혈관의. 되며 고 오신 얼룩의 이미지 A) 정상 정 맥 포함 많은 블루 핵 하지만 그들은 결 석 하다에서 B) decellularized 정 맥. 정 맥으로 recellularized에서 C) 혈액 48 h에 대 한 D) 96 h, 루멘에 셀 (검은 화살표)의 첨부 파일에 대 한 내 피 매체 발견 했다. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/57803/57803fig4large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.</a>

여기, 우리 주변 혈액과 내 피 매체의 관류 하 여 세제 및 recellularization를 사용 하 여 saphenous 정 맥 decellularization에 대 한 프로토콜을 설명 합니다.

Decellularization 및 Recellularization 방법론을 인간의 Saphenous 정 맥에 대 한

Vascular conduits used during most vascular surgeries are allogeneic or synthetic grafts that often lead to complications caused by immunosuppression and ...

이 방법은 복재정맥 조직 공학에 대한 자세한 절차를 설명합니다. 또한 간단한 장치를 사용하여 재세포화를 위한 탈세포화 설정 및 생물반응기의 준비를 보여줍니다. 이 기술의 가장 큰 장점은 재세포화를 위해 간단한 혈액 샘플이 필요하여 고통스러운 골수 채취와 시간이 많이 걸리는 세포 배양 절차를 없애준다는 것입니다.Triton-X 100 관류 및 세척을 위해 탈세포화 설정을 준비합니다. 2리터 챔버에 세 개의 튜브 조각을 모두 테이프로 붙입니다.A.Tape 한 튜브를 가장자리가 세제 주입구용 챔버 바닥에 닿는 벽에 테이프를 붙입니다. 다른 두 개의 튜브를 정맥의 길이에 따라 5-10cm의 거리를 두고 반대쪽 벽에 테이프로 붙입니다.이 튜브 중 최소 5cm는 챔버 바닥에 테이프로 붙여야 합니다. 수형 및 암형 루어 커넥터를 사용하여 세제의 주입 튜브를 튜브 B에 연결합니다. 그런 다음 튜브 B를 튜브 F에 연결하고 튜브 F를 튜브 C에 연결합니다. 튜브 C를 정맥 입구에 연결합니다.이제 튜브 F를 연동 펌프의 카세트에 넣습니다. 다른 튜브 C를 가지고 한쪽 끝을 정맥의 출구에 연결합니다. 다른 쪽 끝을 바닥 호스 배출구가 있는 유리 병에 넣고 챔버에서 45cm 위에 놓고 테이프로 고정합니다.이것은 세제 배출구 역할을 합니다. 그런 다음 튜브 G의 한쪽 끝을 유리병의 호스 배출구에 밀어 넣고 다른 쪽 끝을 정맥 챔버에 넣습니다. 다음으로, 텍스트 프로토콜에 자세히 설명된 대로 TnBP 관류를 위한 탈세포화 설정 2를 준비합니다.또한 본문에 자세히 설명된 대로 DNA의 관류를 위한 탈세포화 설정 3을 준비하고 섭씨 37도에 배치합니다. 재세포화 생물반응기를 준비하려면 튜브 H를 정맥의 배출구 역할을 하는 4포트 캡의 한 포트에 삽입합니다. 두 번째 포트에 미디어 주입구 역할을 하는 튜브 I을 삽입합니다.그리고 세 번째 포트에 정맥 입구용 튜브 J를 삽입합니다. 그런 다음 튜브 H의 다른 쪽 끝을 미디어 콘센트 역할을 하는 네 번째 포트에 삽입합니다. 리듀싱 커넥터를 튜브 H의 안쪽 끝에 연결하고 J.튜브 J의 다른 쪽 끝을 U자 모양으로 구부리고 봉합사로 묶습니다.이제 바닥이 평평한 60ml 튜브를 250ml 유리에 넣습니다. 다음으로, 튜브 K의 한쪽 끝을 정맥의 입구에 연결하고 다른 쪽 끝을 튜브 E에 연결합니다.튜브 E를 두 번째 튜브 K에 연결한 다음 매체 입구에 연결합니다. 그런 다음 준비된 캡 설정을 병에 있는 튜브에 넣습니다.마지막으로 고압증기멸균으로 생물반응기를 살균합니다. 텍스트 프로토콜에 자세히 설명된 대로 인간 복재 정맥에 대해 두 번의 동결-해동 주기를 수행한 후 가위로 2mm 길이의 생검을 절단합니다. 실온에서 24-48시간 동안 포름알데히드에 생검을 고정합니다.정맥의 각 끝을 봉합사로 수컷과 암컷 루어 커넥터의 미늘에 묶습니다. 정맥을 탈세포화에 연결하고 1 차기를 설정하고 챔버를 1 리터의 용액 2로 채 웁니다. 이제 분당 35밀리리터로 15분 동안 관류하고 설정 내용을 비웁니다.그런 다음 용액 4 1리터를 넣고 분당 35밀리리터로 4시간 동안 관류합니다. 내용물을 비우고 용액 2 500ml를 넣고 5분 동안 관류한 다음 내용물을 다시 비웁니다. 관류 설정 1에서 정맥을 분리하고 관류 설정 2에 연결합니다.다음으로, 용액 5 1리터를 넣고 교반기를 켠 다음 분당 35밀리리터로 4시간 동안 관류합니다. 관류 설정 2에서 정맥을 분리하고 초순수 20ml로 정맥 외부를 두 번 씻습니다. 그런 다음 주사기를 사용하여 20ml의 초순수로 5-10분 동안 정맥 내부를 두 번 씻습니다.텍스트 프로토콜에 설명된 대로 관류 설정 3으로 관류 한 후 정맥을 관류 설정 1에 연결합니다. 용액 2 1리터를 채우고 분당 35밀리리터로 밤새 관류합니다. 핵 물질을 완전히 제거하기 위해 관류 과정을 4회 반복합니다.관류 후 설정을 비우고 용액 2 1리터를 채운 다음 분당 35밀리리터로 24시간 동안 관류합니다. 24시간 후 설정을 다시 비우고 초순수 1리터를 채웁니다. 분당 35밀리리터로 24시간 더 관류합니다.마지막으로, 동일한 조건을 사용하되 용액 7을 사용하여 관류를 반복합니다. 텍스트 프로토콜에 설명된 대로 탈세포화를 확인한 후, 50ml의 용액 8이 들어 있는 50ml 튜브에 정맥을 넣어 정맥을 살균합니다. 셰이커에서 분당 80회씩 섭씨 37도에서 1시간 동안 교반합니다.무균 상태를 유지하기 위해 층류 캐비닛에서 작업, 이제 멸균 집게를 사용하여 멸균 정맥을 50 밀리리터의 멸균 용액 7 밀리리터를 포함하는 새로운 50 밀리리터 튜브로 옮깁니다. 이전과 같이 12시간 동안 정맥을 교반하고 중간에 용액 7을 최소 두 번 변경합니다. 멸균 겸자를 사용하여 정맥을 새 50ml 튜브로 옮기고 50ml의 내피 매체를 추가한 다음 11시간 동안 교반합니다.이제 멸균 봉합사와 집게로 정맥을 생물 반응기의 정맥 입구와 출구에 묶어 정맥을 연결하고 캡 설정을 250ml 병에 조입니다. 생물 반응기를 동일한 내피 매체로 채웁니다. 헤파린을 밀리리터당 50 단위로 첨가하고 인큐베이터에서 분당 2 밀리리터로 1 시간 동안 관류합니다.헤파린이 코팅된 액포 튜브에 기증자로부터 15-25밀리리터의 신선한 혈액을 모아 스틴 용액으로 1:1로 희석합니다. 나중에 내분비선 유래 혈관 내피 성장 인자, 기본 섬유 아세포 성장 인자 및 미묘한 살리실산을 추가합니다. 생물반응기에서 내피 배지를 비운 후 혈액을 넣고 5%의 이산화탄소가 있는 섭씨 37도의 인큐베이터에서 분당 2밀리리터로 48시간 동안 관류합니다.약 12시간 후, 층류 캐비닛에서 작업하여 생물 반응기에서 혈액 한 방울을 제거하고 혈당 모니터링 장치를 사용하여 포도당을 측정합니다. 수치가 리터당 3밀리몰 미만인 경우 포도당을 첨가하여 리터당 7-9밀리몰 범위 내로 가져옵니다. 인큐베이터로 돌아온 지 48시간이 지난 후 층류 캐비닛의 생물 반응기에서 혈액을 배출합니다.멸균 용액 7 30ml를 넣고 5분 동안 관류한 다음 용액을 배출합니다. 핏빛 붉은색이 사라질 때까지 이 과정을 반복합니다. 마지막으로, 30-45 밀리리터의 내피 배지를 첨가하고 인큐베이터에서 분당 2 밀리리터로 96 시간 동안 관류합니다.층류 캐비닛의 생물 반응기에서 재세포화된 정맥을 분리하고 가위를 사용하여 정맥의 가장자리 5mm를 자른 다음 버립니다. 이전과 같이 생검을 실시하고 포름알데히드를 삽입하고 텍스트 프로토콜에 설명된 대로 재세포화 검증을 수행합니다. 정상 정맥의 전체적인 형태는 밝은 빨간색으로 보입니다.붉은 색은 점진적인 탈세포화 주기에서 사라지고 5주기의 치료 후에는 창백하고 하얗게 보입니다. 말초 혈액과 내피 매질의 관류에 의해 재세포화된 정맥은 다시 밝은 붉은색으로 보였다. 여기에 보이는 것은 정상 정맥의 대표적인 Haemotoxylin 및 Eosin 염색 이미지로, 많은 청색 핵의 존재를 보여줍니다.그러나 탈세포화된 정맥의 Haemotoxylin 및 Eosin 염색에서 파란색 핵이 보이지 않았습니다. 혈액과 내피 매질이 관류된 세포화된 정맥에서 Haemotoxylin 및 Eosin 염색은 내강에서 세포 부착의 존재를 보여주었습니다. 이 비디오를 시청한 후에는 세제에 의한 복재정맥의 탈세포화와 말초 혈액 및 내피 배지를 사용한 재세포화를 수행하는 방법을 잘 이해하게 될 것입니다.Triton-X 100, TnBP 및 DNA의 압력을 받는 관류를 사용하는 이 탈세포화 기술은 인간 복재 정맥에서 핵을 제거하는 데 성공적이고 재현 가능했습니다. 이 기술을 완료하는 데 20일이 걸리지만 탈세포화된 정맥을 기성품으로 보관하면 시술 시간을 8일로 줄일 수 있습니다. 수혜자의 말초 혈액을 사용한 정맥의 재세포화는 임상적으로 관련성이 있는 것으로 간주될 수 있습니다.유사한 프로토콜로 재세포화된 정맥은 수술 후 기능적 혈액 공급을 제공함으로써 임상 이식에서 가능성을 보여주었습니다. 약간의 수정으로 이 프로토콜은 모든 정맥 유형에 사용할 수 있으며 모든 혈관 수술을 위한 클리닉에서 맞춤형 이식편으로 사용할 수 있습니다.

decellularization-recellularization-methodology-for-human-saphenous

Research

연구

JoVE Journal

Bioengineering

생명공학

재관류의 decellularization는 기관의 세포외 기질 구성과 마이크로 아키텍처를 유지 전체 간 공사장 공중 발판을 생산하는 새로운 기술입니다. 여기에, hepatocytes과 재관류의 decellularization 이후 repopulation를 사용하여 전체 오르간 공사장 공중 발판을 준비하는 방법이 설명되어 있습니다. 기능 및 transplantable 간 이식이 기술을 사용하여 생성할 수 있습니다.

전체 간은의 Decellularization 및 Recellularization

혈액 - 문의 autologous 세포 및 시험 biocompatibility과 biomaterials 것은 시딩의 티타늄에 대한 방법을 설명합니다. 이 방법은 돼지의 venae cavae에 주입 수술의 분 이내에 씨앗 내피 전구 세포와 티타늄 튜브를 사용합니다. 이 기술은 다른 많은 implantable 생명 의학 장치에 적용할 수 있습니다.

Autologous 내피 전구 세포 - 심는 기술 및 대형 동물 모델에서 순환기 장치에 대한 Biocompatibility 테스트

테스트 시스템으로 인간의 3D 종양 조직을 만들 수있는 방법이 설명되어 있습니다. 이러한 기술은 decellularized 생물 혈관을 비계 (BioVaSc), 인간의 기본 세포와 흐름 생물 반응기의 동적 조건에서뿐만 아니라 정적에서 배양 할 수있는 종양 세포 라인을 기반으로합니다.

인간의 3 차원의 조직 공학<em&gt; 시험관</em&gt; 종양 테스트 시스템

내막 증식증 (IH) 및 정맥 이식 실패의 개발로 이어지는 메커니즘은 아직 제대로 이해하고 있습니다. 이 연구는 제어 흐름과 압력 하에서 인간의 혈관을 관류하는 생체 시스템을 설명합니다. 또한 외부 메쉬 보강 효율 IH의 개발 평가 하였다 제한한다.

인간 복재 정맥 절차 전의 VIVO 관류 및 외부 보강

여기, 우리는 두 번 시드를 부분적으로 유도 만능 줄기 세포로 쥐에 이식을위한 기능적인 조직 설계 혈관 이식을 생성하는 프로토콜을 제시 (PiPSC은) - 탈세 포화 선박 발판 생물 반응기에서 유래 내피 세포 - 평활근 세포 및 PiPSC 산출했다.

마우스 모델에서 조직 공학 혈관의 생성 및 손톱 확장

이것은 조직 공학 챔버 내부의 미세 수술 동정맥 루프 또는 관류 척추경 구성을 사용하여 생체 내 혈관 조직을 구성하기 위한 지침입니다. 생성된 혈관 조직은 장기 재생 및 조직 결함 교체, 약물 검사 및 질병 모델링에 사용할 수 있습니다.

에 내장 혈관 신생에 의하여 조직 공학<em&gt; 생체</em&gt; 조직 공학 상공 회의소

여기에 제시된 것은 일상적인 관상 동맥 우회 이식편에서 안전하게 도입될 수 있는 하부 다리에서 수확하는 내시경 정맥을 위한 프로토콜입니다. 정맥 이식편은 다리의 위치, 정맥에 대한 최소 침습적 접근, 내시경 정맥 수확과 함께 이 표준화된 프로토콜에 따라 우수한 이식 품질을 제공합니다.

하부 다리에서 훌륭한 사페누스 정맥 이식 품질의 개선을 위한 브리징 정맥 수확과 영양 내시경 시너지 효과

이 프로토콜은 맞춤형 관류 생물 반응기에서 플랩 혈관 구조를 통해 나트륨 도데 실 설페이트 세제의 관류에 의한 혈관 화 된 돼지 플랩의 외과 적 조달 및 후속 탈세포화를 설명합니다.

맞춤형 관류 생물 반응기에서 돼지 혈관 플랩의 조달 및 관류-탈세포화

우리는 복합 쥐 뒷다리에 대한 수술 기술과 탈세포화 과정을 설명합니다. 탈세포화는 생체 외 기계 관류 시스템을 통해 저농도 도데실 황산나트륨을 사용하여 수행됩니다.

혈관화된 복합 동종 이식을 위한 생체 내 관류 기반 생물반응기를 사용한 쥐 뒷다리의 조달 및 탈세포화

여기에서는 N- 부틸 시아 노 아크릴 레이트와 메타 크릴 옥시 설폴란 (NBCA + MS)으로 구성된 원래의 경화 및 색전술 시아 노 아크릴 레이트 기반 접착제를 사용하여 심각한 병리학 적 역류의 영향을받는 대 복재 정맥 (GSV) 및 소 복재 정맥 (SSV)을 치료하는 프로토콜을 제시합니다.

N- 부틸 시아 노 아크릴 레이트와 메타 크릴 옥시 설폴란을 기반으로 한 공중 접착제를 사용한 크고 작은 복재 정맥의 폐색

우리는 인간 복재 정맥 내피 세포(hSVEC)를 분리하고 배양하기 위한 프로토콜을 설명합니다. 또한 hSVEC의 기계적 응력을 연구하기 위해 전단 응력과 스트레치를 생성하는 자세한 방법을 제공합니다.

인간 복재 정맥 내피 세포 분리 및 제어된 수준의 전단 응력 및 스트레칭에 대한 노출

학습하세요 인간 대퇴정맥의 세포제거 및 재세포화 방법론을. 세제와 생물반응기를 이용한 관류 기술로 조직공학 및 재생의학 연구에 활용할 수 있습니다.

Decellularization 및 Recellularization 방법론을 인간의 Saphenous 정 맥에 대 한

더 많은 동영상 탐색