Name: 생체 내에서 단핵구 화학 적 활동의 정량화 및 혈액 단핵구 유래 대식세포의 특성화 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2019-08-12T13:30:00.000+00:00
Duration: 9 min 57 s
Description: 학습하세요 생체 내에서 단핵구 화학적 활동을 정량화하고 혈액 단핵구 유래 대식세포를 특성화하는 방법을 마우스 모델에서. 이 프로토콜은 영양 및 약리학적 개입이 단핵구 기능에 미치는 영향을 연구하는 데 활용됩니다.

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이 프로젝트는 NIH (AT006885)에서 R.A.에 대한 보조금에 의해 지원되었다.

이 프로토콜에 설명 된 모든 방법은 의학의 웨이크 포레스트 학교에서 기관 동물 관리 및 사용위원회에 의해 승인되었습니다.
1. MCP-1로드 성장 인자 감소 지하 멤브레인 유래 용액 의 준비
참고: 이것은 멸균 절차입니다.
<ol><li>지하 막 유래 용액(예를 들어, 마트리겔)을 준비하기 전에 소독제로 세포 배양 후드를 세척한다.</li>
	<li>개별적으로 포장 된 멸균 1 mL 주사기를 준비하고 주사기에 로드하기 전에 알코올 면봉으로 지하 막 파생 용액 바이알의 상단을 닦아.</li>
	<li>얼음에 성장 인자 감소 지하 막 유래 용액을 완전히 해동. 주의 사항: 지하 멤브레인 매트릭스가 실온(RT)에서 해동되는 경우, 용액이 겔화되는 것을 방지하기 위해 작은 얼음 입자가 남아 있는지 확인하십시오.</li>
	<li>일단 해동되면, 바이알을 열고 MCP-1 또는 1xPBS를 세포 배양 후드에서 0.1% BSA와 혼합한다.</li>
	<li>멸균 주사기 1mL를 26G 바늘로 준비하고 얼음으로 식힙니다.</li>
	<li>MCP-1을 0.1% BSA로 1x PBS에서 50 μg/mL의 최종 농도로 용해시킴으로써 MCP-1의 재고 용액을 준비한다.</li>
	<li>5 mL 의 차가운 지하 막 유래 용액에서 MCP-1을 500 ng/mL의 최종 농도로 희석하십시오. 차량 전용으로 동일한 양의 지하 멤브레인 유래 용액을 준비하십시오 (1x PBS는 0.1 % BSA를 포함합니다).</li>
	<li>차가운 1 mL 주사기에 지하 멤브레인 유래 용액 (MCP-1 유무)의 500 μL을 로드하십시오.</li>
	<li>균일 한 플러그 형성을 보장하기 위해 주입을하기 전에 지하 멤브레인 유래 용액로드 주사기에서 모든 기포를 제거합니다.</li>
</ol>2. 지하 멤브레인 유래 용액 주입
<ol><li>주입 전과 주사 중에 시술 부위 주변에 70% 에탄올을 뿌려 환경을 소독하십시오.</li>
	<li>마취를 유도하기 위해 마우스를 마취 챔버에 넣고 O2 유량계를 1 리터 / min으로 설정한 다음 기화기를 2 % 이소플루란으로 조정하십시오.</li>
	<li>호흡속도(속도/분), 각막 반사 및 수염의 움직임을 모니터링하여 마취의 깊이를 모니터링합니다.</li>
	<li>전체 절차 동안 코 콘을 사용하여 마취를 유지하십시오.</li>
	<li>절차 도중 마취의 깊이를 확인하기 위하여 호흡 비율 (비율/분), 각막 반사 및 수염의 운동을 계속 감시합니다.</li>
	<li>발가락 꼬치에 대한 반응부족을 확인한 후, 마우스의 오른쪽(MCP-1 없음)과 왼쪽(MCP-1 사용) 측면에 지하 막 유래 용액을 천천히 주입(약 100 μL/s)합니다. 주입이 너무 느리면, 지하 막 유래 젤 플러그는 불규칙하게 형성되거나 심지어 단편화될 수 있으며 제거하기가 어려울 수 있습니다.</li>
	<li>주사기를 주입 후 20-30s 동안 잡아 용액의 누출을 방지하고 단일 매끄러운 젤 플러그가 형성될 수 있도록 합니다.</li>
	<li>주입 후, 회복 될 때까지 모니터링과 함께 온난화 패드에 마우스를 놓습니다.</li>
	<li>마우스가 완전히 복구되면 마우스를 원래 케이지로 되돌아갑니다.</li>
</ol>3. 지하 멤브레인 유래 젤 플러그 수확
<ol><li>각 마우스에 대해 두 개의 별도의 1.5 mL 미세 원심 분리튜브를 계량하고 라벨을 붙입니다.</li>
	<li>지하막 유래 용액을 주입한 지 3일 후, 3% 이소플루란을 이용하여 마취실에서 마우스를 안락사시키고 자궁경부 탈구를 하였다.</li>
	<li>헤어 클리퍼를 사용하여 마우스의 등도 털을 제거하거나 면으로 된 스틱으로 헤어 리무버 크림을 5분 간 닦은 다음 닦아냅니다.</li>
	<li>하부 흉부 및 상류 척추 주위의 집게를 사용하여 마우스 피부를 잡고 피부에 2mm 길이의 절개를 합니다.</li>
	<li>자궁 경부 척추로 만든 절개에서 마우스 뒷면의 중간선을 절단하고 수술 용 가위를 사용하여 척추 접합부 (꼬리 접합부) 위 1cm로 줄입니다.</li>
	<li>근육 층에서 피부를 분리하고 폴리스티렌 폼 플랫폼에서 피부를 핀 다운합니다.</li>
	<li>미세 한 집게를 사용 하 여 지하실 막 파생 된 젤 플러그를 포함 하는 섬유 캡슐을 신중 하 게 잡고 플러그를 청소 하는 미세 가위를 사용 하 여 섬유 캡슐을 제거.</li>
	<li>세척된 지하 막 유래 젤 플러그를 제거하고 1.5 mL 미세 원심 분리기로 옮김(3.1 참조)으로 옮김을 제거합니다.</li>
	<li>미세 원심 분리기 튜브를 청소 된 지하 멤브레인 유래 젤 플러그로 계량하고 지하 멤브레인 유래 젤 플러그의 무게를 계산합니다.</li>
</ol>4. 지하 멤브레인 유래 젤 플러그 다이제스트
<ol><li>얼음에 해동 (10 mL).</li>
	<li>깨끗한 미세 가위를 사용하여 미세 원심 분리튜브에 지하 막 유래 젤 플러그를 다진다.</li>
	<li>지하 막 유래 젤 플러그를 함유한 각 미세 원심 분리튜브에 디스파스 800 μL을 추가합니다.</li>
	<li>플러그를 방해하는 10 초 최대 속도의 소용돌이.</li>
	<li>1,400 rpm에서 37°C에서 37°C에서 2시간 동안 미세원심지 튜브를 열믹서에서 배양하여 지하 막 유래 겔 플러그를 완전히 용해시킵니다.</li>
	<li>2 시간 후, RT에서 10 분 동안 400 x g에서 원심 분리기를 조심스럽게 제거하고 상급을 폐기하십시오.</li>
	<li>반전 또는 도청하여 1x PBS의 1 mL에서 펠릿을 다시 일시 중단합니다.</li>
	<li>RT에서 10 분 동안 200 x g에서 원심 분리를 반복하십시오.</li>
	<li>PBS의 300 μL에서 펠릿을 다시 중단합니다.</li>
	<li>별도의 미세 원심 분리튜브에 50 μL의 세포 현탁액을 복용하십시오.</li>
	<li>셀 서스펜션에 0.5 μL의 칼세인 AM(1M)을 추가합니다. 참고: Calcein AM은 살아있는 세포에서만 축적되는 녹색 형광 세포 생존 용염입니다.</li>
	<li>세포를CO2 인큐베이터에서 37°C에서 10분 동안 배양합니다.</li>
	<li>자동화된 세포 카운터를 사용하여 녹색 형광(live) 및 비형광(dead) 세포를 계산합니다.</li>
</ol>5. 단세포 웨스턴 블롯 (scWB) 분석을 사용하여 세포 현탁액에서 세포 조성을 결정
<ol><li>RT에서 적어도 10 분 동안 페트리 접시에 1x 서스펜션 버퍼의 15 mL에서 사용하기 전에 scWB 칩을 다시 수화.</li>
	<li>희석된 단일 셀 현탁액(10,000-100,000 셀/mL)의 1mL를 재수화 된 칩에 추가하십시오. 표면을 10cm 페트리 접시의 바닥에 놓습니다. 표면이 평평하게 설정되어 있는지 확인합니다.</li>
	<li>건조를 방지하기 위해 뚜껑으로 페트리 접시를 덮고 세포가 그라데이션으로 5-15 분 동안 정착하게하십시오.</li>
	<li>칩을 밝은 필드 현미경 아래에 놓고 10배 배율로 우물을 검사합니다. 참고: 대략 15-20% 마이크로웰은 단 하나 세포에 의해 점유되어야 합니다, 우물의 2% 미만은 2 개 이상의 세포를 포함해야 합니다</li>
	<li>칩이 들어있는 10cm 페트리 접시를 45도 기울입니다.</li>
	<li>칩의 상부에서 하부로 부드럽게 피펫팅하여 칩 표면에서 캡처되지 않은 셀을 제거하기 위해 1x 서스펜션 버퍼로 칩을 세척합니다. 3회 반복합니다.</li>
	<li>단일 셀 서양 악기를 준비합니다.</li>
	<li>용해 시간, 전기 동공 시간 및 UV 캡처 시간을 설정합니다. 지하 막 유래 젤 플러그에서 회수 된 모집 된 대식 세포를 분석하려면 다음과 같은 설정을 사용하십시오 : 용해 시간 : 0 s; 전기 동공 시간 : 160 s; UV 캡처 시간 240 s.</li>
	<li>조심스럽게 단일 셀 서양 악기의 전기 영동 셀에 칩을로드, 젤 측 직면. 칩의 젤 면이 손상되지 않도록 주의하십시오.</li>
	<li>챔버에 라시스 / 실행 버퍼를 부어 완전히 전체 단일 셀 웨스턴 칩을 커버. 세포 를 시작 하십시오.</li>
	<li>5.8에 나열된 설정을 사용하여 scWB 계측기를 실행합니다.</li>
	<li>실행이 완료되면, 10cm 페트리 접시에 칩을 전송하고 RT에서 10 분 동안 1x 세척 버퍼로 두 번 칩을 세척합니다.</li>
	<li>1 차 항체의 희석을 준비 (항 -vinculin: 1:10; 항 CD45: 1:15, 반대로 CD11b: 1:20, 반대로 F4/80: 1:10) 항체 희석제의 총 부피 80 μL (항체 의 8 μL 을 혼합 1 항체 의 8 μL 플러스 64μl 의 64l).</li>
	<li>항체 프로빙 챔버에 1차 항체 용액의 80 μL을 추가하고 칩 겔 면을 아래로 낮추어 항체 용액이 칩 을 가로질러 심지 않도록한다.</li>
	<li>RT에서 2 시간 동안 1 차 항체 용액으로 배양하십시오.</li>
	<li>셰이커의 1x 세척 버퍼에서 10분 동안 칩을 세 번 세척합니다.</li>
	<li>칩을 셰이커의 물에 10분 동안 세척하여 젤을 탈염시다.</li>
	<li>총 부피 80 μL에서 이차 항체의 1:20 희석을 준비합니다(이차 항체의 2 μL과 희석제 78 μL 혼합).</li>
	<li>RT에서 1 시간 동안 이차 항체로 칩을 배양하여 빛으로부터 보호합니다.</li>
	<li>셰이커에 1x 세척 버퍼로 칩을 10 분 동안 세 번 씻으하십시오.</li>
	<li>슬라이드 스피너를 사용하여 칩을 회전하여 남은 세척 버퍼를 제거합니다.</li>
	<li>이차 항체에 결합된 형광포의 스펙트럼 채널에서 5 μm 해상도로 듀얼 레이저 마이크로어레이 스캐너에서 칩을 스캔합니다.</li>
	<li>scWB 관련 소프트웨어를 사용하여 데이터를 분석합니다.</li>
</ol>6. scWB 칩 제거
<ol><li>스캔한 칩을 제거할 준비가 될 때까지 세척 버퍼에 보관하십시오.</li>
	<li>연기 후드에 물 목욕을 배치합니다.</li>
	<li>50 mL 튜브 랙을 랙 위에 1cm 의 물로 수조에 놓고 물 온도를 60 °C로 설정하십시오.</li>
	<li>스트리핑 버퍼를 준비합니다. 스트리핑 버퍼 용액 1L의 경우, 900 mL의 증류수에서 Tris-HCl (pH 6.8) 및 SDS 20g9.85 g을 용해하고 pH를 조정하십시오. 그런 다음 증류수를 1L로 채우십시오. 각 사용 직전에 β-메르카포에탄올(β-ME; 14.3 M)의 0.8% (v/v)를 추가합니다.</li>
	<li>초기 스캔 후, 칩을 10cm 페트리 접시에 담아 벗기전에 놓습니다.</li>
	<li>각 칩에 대해 40 mL의 스트리핑 버퍼를 취하고 β-ME 320 μl을 추가합니다. 주의: β-ME는 인체와 환경에 유해하며 유해합니다. 다음 절차는 연기 후드에서 수행해야합니다.</li>
	<li>캐니스터에 칩을 넣고 캐니스터로 물이 새는 것을 방지하기 위해 파라필름으로 캐니스터를 밀봉합니다.</li>
	<li>튜브 랙 내부에 캐니스터를 미리 데운 수조에 놓습니다.</li>
	<li>90 분 동안 배양하십시오.</li>
	<li>조심스럽게 캐니스터에서 칩을 제거하고 신선한 페트리 접시에 놓습니다.</li>
	<li>1x 세척 버퍼로 칩을 한 번 간략하게 씻으소서. 그런 다음 페트리 접시에 15 mL의 1x 세척 버퍼를 추가합니다.</li>
	<li>셰이커에서 칩을 15분 동안 씻습니다. 세척 단계를 4번 반복합니다. 참고: 칩은 다음 1차 항체에 대해 준비되었습니다(단계 5.12 - 5.21 참조).</li>
</ol>

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<li>Ullevig, S. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Protein+S-Glutathionylation+Mediates+Macrophage+Responses+to+Metabolic+Cues+from+the+Extracellular+Environment%5BTitle%5D)+AND+%22Antioxidants+and+Redox+Signaling%22%5BJournal%5D)">Protein S-Glutathionylation Mediates Macrophage Responses to Metabolic Cues from the Extracellular Environment.</a> Antioxidants and Redox Signaling. 25 (15), 836-851 (2016).</li>
</ol>

우리는 지하 막 파생 매트릭스의 독특한 물성과 화학으로이 독특한 매트릭스를로드하고 마우스에 주입 할 수있는 능력을 사용하여 생체 내 화학 요법 분석법을 개발했습니다. 이 분석법은 MCP-1에 대해 여기에 설명된 바와 같이 살아있는 마우스에서 단핵구(및 대식세포)의 반응성을 평가하고, 유전자 조작 또는 약리학, 식이 및 기타 환경 노출이 단핵구에 미치는 영향을 평가할 수 있게 해줍니다. 화학 요법. 우리가 이 마우스에서 만드는 chemokine 그라데이션은 유전, 약리학, 규정식 또는 환경 노출에 의해 본질적으로 영향을 받지 않습니다 때문에, 단핵구 화학 활성에 있는 변경은 실제로 이 단핵구에 있는 기능적인 변경을 반영하고, 우리가 보여주었듯이 이전에는 단백질 및 전사 수준 둘 다에서 재프로그래밍도17,20. 우리는 마우스에 있는 신진 대사 긴장이 화학력에 단핵구 반응을 증가시키고 이 hyper-chemotactic 활동이 증가한 단백질 S-glutathionylation, 가역적이고, 산화환원 의존적인 번역과 상관관계가 있다는 것을 보고했습니다 단백질 변형은 대부분의 경우 효소 및 단백질 기능 21,22의손실로 이어지며, 어떤 경우에는 단백질 분해를 촉진하기도한다 16,23.
이 절차를 성공적으로 실행하고 이 분석으로 최적의 결과를 얻으려면 지하 막 유래 용액의 정확한 부피가 천천히 주입되어 단수 의 잘 형성된 플러그및 섬유질 캡슐을 제거하는 것이 중요합니다. 완전히 수확 지하 막 유래 젤 플러그 때 깨끗한 플러그를 얻을, 디스파스 용액의 전체 플러그의 용해를 용이하게한다. 우리의 데이터는 3 일 동안 동물에 플러그를 남겨두는 것은 1) 신호 강도, 즉 각 플러그에 모집 된 단핵구 및 대식세포의 수, 2) 신호의 선택성, 즉 내의 단핵구 및 대식세포의 함량을 최적화한다는 것을 보여줍니다. 총 세포 집단 및 3) 신호의 특이성, 즉 차량에 비해 MCP-1에 대한 응답으로 단핵구 및 대식세포의 증가. 마지막으로, 우리는 지하 막 유래 젤 플러그 분석과 함께 최첨단 단일 세포 기반 접근법이 플러그에 모집 된 단핵구를 특성화하여 잠재적 인 표현형의 스냅 샷을 얻는 데 어떻게 사용될 수 있는지 보여줍니다. 특정 유전, 약리학, 식이 요법 또는 환경 적 개입에 대한 응답으로 주어진 마우스 모델에서 부상 부위에 모집되는 단핵구 유래 대식세포.
고려되어야 할 분석법의 여러 가지 제한사항이 있다. 첫째, 마취, 지하 막 유래 용액 의 주입 및 외과 용해를 포함한 마우스 처리는 단일 플러그 및 재현 가능한 데이터를 생성하는 연습이 필요합니다. 둘째, MCP-1 로 로드된 플러그로 모집된 대부분의 세포는 단핵구및 대식세포이지만, 상당수는 그렇지 않다. 이것은 이 세포 인구에 행한 그밖, 비 단세포 기지를 둔 분석 분석분석법의 해석에 영향을 미칠 수 있습니다. 마지막으로, scWB를 위한 세포 용해 조건은 온화하기 때문에, 단백질의 이동 거리는 표준 WB와 다를 수 있고 단백질 크기와 상관관계가 없을 수 있습니다. 따라서, 세포 용해 및 실행 시간 둘 다 시험될 각각의 새로운 단백질및 사용된 각각의 1 차적인 항체에 대하여 검증되어야 합니다.

단핵구 유래 대식세포의 모집은 동맥경화증 및 비만을 포함한 대사성 질환과 관련된 만성염증성 질환의 발병에 필수적이다 1,2,3, 4. 조직 손상 부위의 단핵구 유래 대식세포의 수와 가소성은 조직 항상성 및 수리에 매우 중요합니다. 단핵구 유래 대식세포의 미과및 과다 모집 모두 상처치유를 손상시킬 수 있습니다 5. 국소 조직 염증을 유발하는 것은 예를 들어, 대동맥 벽에 저밀도 지단백(LDL)의 축적 및 산화에 의해 또는 지방산 또는 세균성 리포폴리당산에 의한 지방세포의 염증 활성화에 의해 장내를 통해 누출되는 단핵구 화학유채 단백질-1(MCP-1/CCL2)과 같은 케모카인을 포함한 염증성 매개체의 방출을 유도한다. MCP-1은 C-C 케모카인 가문의 일원이며 조직 염증 및손상부위에 단핵구 유래 대식세포의 모집을 담당하는 주요 화학유채6, 7,8, 9,10. 혈관 내피의 염증 성 활성화는 세포 간 부착 분자 1 (ICAM-1) 및 혈관 세포 접착 분자 1 (VCAM-1)11,12,12와 같은 유착 분자의 발현을 초래합니다. MCP-1에 의해 활성화된 순환 단핵구는 단단히 부착하고 이어서 위전공간(12)으로이동한다. 침투 단핵구는 대식세포로 분화되어 전염증성 표현형으로 활성화되어 급성 염증 과정을 유도할 수 있습니다. 미세 환경에 의해 구동, 염증 성 대식 세포로 변환 할 수 있습니다, 이는 염증 세포의 제거에 중요한 역할을, 염증 성 신호를 제거하고 조직 복구 및 상처를 완료 치유12,13.
만성 대사 스트레스는 화학 적 매력과 증가 단핵구 모집에 극적으로 향상된 응답성을 위해 단핵구를 소수, 우리는 프라임 단핵구가 dysregulated 활성화 프로그램 및 양극화와 대식세포에 상승을 초래한다는 것을 보여주었습니다 상태14,15,16. 단핵구 프라이밍은 동맥 경화증, 비만 및 지방 간염, 신장 질환 및 암과 같은 대사 장애와 관련된 다른 만성 염증성 질환을 촉진합니다. 인간 질병의 마우스 모델에서 단핵구 프라이밍을 평가하고 정량화하기 위해, 우리는 생체 내 화학 활성을 측정하여 혈액 단핵구의 프라이밍 상태를 평가하는 새로운 기술을 개발했다14,15,16, 17. 우리의 접근은 화학유채로 적재된 지하 막 유래 젤의 주입을 관련시킵니다 - 우리는 일반적으로 MCP-1를 사용합니다 - 또는 마우스의 좌우 측면에 각각 차량을 사용합니다. 조심스럽게 피하주사할 때, 지하 막 유래 젤은 단일 플러그를 형성할 것이며, 이 로부터 케모카인은 주변의 대사 또는 염증 상태에 의해 영향을 받지 않는 정의된 화학전술 그라데이션을 확산시키고 생성할 수 있습니다. 또는 수신자 마우스.
우리가 우리의 분석에 사용하는 지하 막 유래 젤은 Engelbreth-Holm-Swarm (EHS) 마우스 육종, 세포외 매트릭스 (ECM) 단백질이 풍부한 종양에서 추출한 용해된 지하 막 제제입니다. 이 복잡한 단백질 혼합물에는 라미닌 (60 %), 콜라겐 IV (30 %), 브리징 분자 엔탁틴 (8 %) 및 여러 성장 인자를 포함합니다. 지하막 매트릭스 플러그 분석기는 원래 다양한 성장 인자18,19에반응하여 혈관신생을 조사하기 위해 개발되었다. 그러나, 단핵구 화학요법을 연구하기 위해서는 내피 세포 모집 및 혈관신생을 최소화하기 위해 성장 인자 고갈 된 지하 막 유래 겔을 사용하는 것이 중요합니다. Matrigel (지하 막 유래 젤이라고도 함)을 독특하고 특히 유용하게 만드는 것은 10 °C 이하의 온도에서 화학성분이 용해될 수 있다는 것입니다. 22 °C 이상의 온도에서 지하 멤브레인 유래 용액은 단계 전이를 빠르게 겪고 하이드로겔을 빠르게 형성합니다. 플러그는 간균 유래 중성 금속 loprotrotease로 외과적으로 절제, 세척 및 용해될 수 있으며, 이는 RNAeq, 단세포 RNA 및 기타 다양한 형광 활성화 세포 선별기(FACS)에서 분석할 수 있습니다. 오믹스 기술. 여기서 우리는 주사 후 1, 3 또는 5일 후에 지하 막 유래 겔 플러그로 모집된 세포 집단의 특성화에 대한 단세포 웨스턴 블롯 분석의 사용을 설명한다.

<table><tbody><tr><td>10cm 페트리 접시</td><td>그리너 bio-one</td><td>664 160</td><td></td></tr><tr><td>10x 현탁</td>액 <td>단백질단순</td><td>R101</td><td></td></tr><tr><td>15cm 페트리 접시</td><td>Falcon</td><td>353025</td><td></td></tr><tr><td>2-Mercaptoethanol</td><td>MP BIOMEDICALS</td><td>2194705</td><td></td></tr><tr><td>5% 세척 완충액</td><td>단백질단순</td><td>R252</td><td></td></tr><tr><td>항체 희석제</td><td>단백질단순</td><td>042-203</td><td></td></tr><tr><td>벤치 탑 원심분리기</td><td>Beckman Coulter</td><td></td><td>Microfuge 22R 원심분리기</td></tr><tr><td>소 세림 알부민</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A7906-100G</td><td></td></tr><tr><td>Calcein AM</td><td>ThermoFisher</td><td>C3099</td><td>1mL</td></tr><tr><td>CD11b</td><td>Novus Biologicals</td><td>NB110-89474</td><td></td></tr><tr><td>CD45(D4H7K) 토끼 mAb</td><td>세포 신호 기술</td><td>727987S</td><td></td></tr><tr><td>CD68/SR-D1 (FA-11)</td><td>Novus Biologicals</td><td>NBP2-33337SS</td><td></td></tr><tr><td>Cellometer Vision</td><td>Nexcelom</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Dispase</td><td>BD</td><td>354235</td><td>100 mL</td></tr><tr><td>Dissecting sissor</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Donkey anti-Rabbit IgG secondary 항체 [NL557]</td><td>Novus Biologicals</td><td>NL004</td><td>NL 557 conjugate</td></tr><tr><td>당나귀 항-쥐 IgG (H+L) 2차 항체 [DyLight 650]</td><td>Novus Biologicals</td><td>NBP1-75655</td><td>DyLight 650 conjugate</td></tr><tr><td>F4/80 (CI-A3-1)</td><td>Novus Biologicals</td><td>NB600-404SS</td><td></td></tr><tr><td>Heat Block</td><td>effendorf</td><td>22331</td><td>Thermomixer</td></tr><tr><td>Lysis/Running buffer</td><td>proteinsimple</td><td>R200</td><td></td></tr><tr><td>Matrigel Matrix (Grwoth Factor Reduced)</td><td>BD</td><td>354230</td><td>10ml</td></tr><tr><td>마이크로어레이 스캐너</td><td>PerkinElmer</td><td>ScanArray Gx</td><td></td></tr><tr><td>마이크로 원심분리기 튜브</td><td>Fisher Scientific</td><td>05-408-129</td><td></td></tr><tr><td>현미경</td><td>ThermoFisher</td><td>Evos fl</td><td></td></tr><tr><td>Milo</td><td>proteinsimple</td><td></td><td>단일 세포 웨스턴</td></tr><tr><td>니들</td><td>BD</td><td>305111</td><td>26 G</td></tr><tr><td>파라필름</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>프로빙 챔버</td><td>proteinsimple</td><td>035-020</td><td></td></tr><tr><td>재조합 마우스 CCL2/JE/MCP-1 단백질</td><td>R& D</td><td>479-JE-050</td><td></td></tr><tr><td>scWEST 칩</td><td>단백질단순</td><td>C300</td><td></td></tr><tr><td>셰이커</td><td>Bioexpress</td><td></td><td>유전자 메이트 궤도 셰이커</td></tr><tr><td>단세포 웨스턴 칩 캐니스터</td><td>단백질단순</td><td>035-118</td><td></td></tr><tr><td>슬라이드 스피너</td><td>Labnet</td><td>C1303-T</td><td></td></tr><tr><td>도데실황산나트륨(SDS)</td><td>피셔 사이언티픽</td><td>BP 166-500</td><td></td></tr><tr><td>주사기</td><td>BD</td><td>309602</td><td>1 mL</td></tr><tr><td>트리스-하이드로클로라이드</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP 153-500</td><td></td></tr><tr><td>핀셋</td><td>단백질단순</td><td>035-020</td><td></td></tr><tr><td>수조</td><td>ThermoFisher</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

생체 내에서 단핵구 화학 적 활동의 정량화 및 혈액 단핵구 유래 대식세포의 특성화

Quantification of Monocyte Chemotactic Activity In Vivo and Characterization of Blood Monocyte Derived Macrophages

조직 항상성 및 수리는 단핵구 유래 대식세포의 모집에 크게 의존한다. 단핵구 유래 대식세포의 언더-및 과잉 모집은 상처 치유를 손상시킬 수 있습니다. 우리는 고지방 과 고당 식이요법이 단핵구 프라이밍과 기능 장애를 촉진하여 건강한 혈액 단핵구를 이형성 된 활성화 프로필과 손상된 표현형으로 대식세포로 분화 할 태세를 갖춘 하이퍼 화학 적 표현형으로 변환하는 것으로 나타났습니다. 가 소성. 단핵구 유래 대식세포의 과잉 모집 및 이형성 된 활성화 프로파일을 가진 대식세포의 모집은 대사 장애와 관련된 만성 염증성 질환의 발달에 중요한 기여가 될 것으로 여겨진다, 동맥 경화증과 비만을 포함. 이 프로토콜의 목적은 단핵구 프라이밍 및 기능 장애를 위한 바이오마커로서 혈액 단핵구의 화학활성을 정량화하고 대식세포 표현형 혈액 단핵구를 특성화하는 것이 이들 마우스 모델에서 분화될 태세이다. 단세포 서쪽 얼룩 분석을 사용하여, 우리는 마우스로 주입된 MCP-1 로드된 지하 막 유래 젤 플러그로 모집된 세포의 24 시간 33% 후에 단핵구 및 대식세포이다는 것을 보여줍니다; 58% 후 3. 그러나 5일째에는 단핵구와 대식세포 수가 현저히 감소했습니다. 마지막으로, 우리는 이 분석이 또한 외과로 회수된 지하 막 파생젤 플러그에서 살아있는 대식세포의 격리를 허용한다는 것을 보여주고, 그 후에 단 세포 서쪽 얼룩 분석에 의하여 후속 특성화를 복종될 수 있습니다.

화학 물질에 혈액 단핵구의 응답성에 액세스하기 위해, 우리는 각 마우스의 왼쪽과 오른쪽 측면에 차량로드 및 MCP-1로드 지하 막 파생 솔루션을 주입. 지하막 유래 겔 플러그는 주사 후 1, 3 및 5일 후에 제거되었고, 각 플러그내로 모집된 용해 및 세포를 계수하였다(도1A). MCP-1 로드 플러그(closed bar)에서 차량 부하 플러그(open bar)에서 셀 수를 빼고, MCP-1에 반응하여 특별히 모집된 셀수를 얻었다(Δ 셀 번호, 도 1B). 우리는 5 일 기간 동안 세포의 가속된 MCP-1 특정 모집 그리고 축적을 관찰했습니다, 비율은 31,000 세포/일(1일)에서 78,000 세포/일 (3일) 및136,000 세포/일 (그림 1B)에서 증가했습니다.
지하 막 유래 젤 플러그에 들어간 세포 유형을 확인하기 위해 각 플러그에서 단일 세포 서부 얼룩 분석(scWB)으로 분리된 세포를 실시하여 CD45, CD11b 및 F4/80 식을 조사하여 단핵구(CD11b+F4/80)를 식별했습니다. -), 대식세포 (CD11b+F4/80+ + CD11b-F4/80+) 및 나머지 비단핵 백혈구 (CD45+CD11b-F4/80-그림2) scWB 칩은 각 겔의 총 세포 수를 확인하고 scWB 칩상에서 마이크로웰의 단일 세포 점유율을 확인하기 위해 비나쿨린을 조사했습니다. MCP-1-로드 지하 멤브레인 유래 겔 플러그 내 단핵구의 비율은 1일째, 20% 낮고, 3일째에는 47%로 정점을찍은 후 5일째에 14%로 떨어졌습니다(그림 2D). MCP-1로드 지하 멤브레인 유래 겔 플러그 내의 대식세포 수치는 1일째 13%에서 3일째 22%, 5일째 23%로 꾸준히 증가했습니다. MCP-1로드 플러그의 경우, 단핵구와 격리된 세포 집단 내의 대식세포의 비율이 3일째에 가장 높았으며, 차량 적재 플러그(그림3A)에서31%, MCP-1로드 플러그(그림3B)에서58%가 3일 후에 있음을 나타냅니다. MCP-1 의존성 화학요법에 의해 모집된 세포의 대다수는 단핵구 및 대식세포입니다. 단핵구와 대식세포의 총수는 3일째(도3C 및D)에 비해 5일째에 더 높았지만, 전체 세포 집단에서 단핵구와 대식세포의 비율이 현저히 높기 때문(도3A). B),3일째의 세포 수는 혈액 단핵구 화학요법과 모집을 보다 정확하게 반영한다. 따라서 동물을 희생하기 3일 전에 지하 막 유래 용액을 정기적으로 주입합니다. MCP-1에 의해 모집된 모든 대식세포가 인접한 조직에서 모집된 단일세포 유래 또는 상주 대식세포인지 여부는 결정되지 않았다.
여기에 도시된 데이터의 통계 분석은 분석 소프트웨어(예를 들어, SigmaPlot 14)로 수행하였다. ANOVA 다음에 Fischer LSD 시험을 사용하여 실험 군 간의 평균 값을 비교하였다. 모든 데이터는 적어도 3개의 독립적인 실험의 평균 ± SD로서 제시된다. 결과는 P&lt; 0.05 수준에서 통계적으로 유의한 것으로 간주되었다. 
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59706/59706fig1v2.jpg"> 그림 1 : 피하 지하 막 유래 젤 플러그로 모집 된 세포의 정량. (A) 차량 적재(오픈 바) 및 MCP-1 로드 지하 멤브레인 유래 겔 플러그(폐쇄형 막대)에 대한 절대 셀 번호. (B) MCP-1에 의해 지하 막 유래 겔 플러그로 모집된 셀의 수는 MCP-1 로드 플러그와 차량 적재 플러그 사이의 셀 수의 차이로 계산됩니다. 결과는 평균 ± SD (n = 4)로 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59706/59706fig1v2large.jpg" target="_blank">표시되어이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> 
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59706/59706fig2.jpg"> 그림 2 : 단세포 서쪽 얼룩 분석에 의하여 지하 막 파생된 젤 플러그로 모집된 세포 집단의 분석. (A+B) 대표적인 예는 주사 3일 후 마우스로부터 분리된차량-로드(Control) 및 MCP-1-리드 플러그(MCP-1)의 scWB 분석에 대해 도시된다. CD45, CD11b 및 F4/80에 대한 항체로 표지된 칩은 프로토콜에 기재된 바와 같이 형광 이차 항체에 의해 뒤따랐다. 각 개별 세포에 대한 표지된 밴드의 형광 강도는 피크 영역으로 도시된다. (C+D) 세포 집단은 단핵구 (CD11b+F4/80 <img alt="Image 1" src="/files/ftp_upload/59706/59706img01.jpg"> -, 대식세포)로 확인되었으며, 대식세포 (CD11b+F4/80+ + CD11b-F4/80+ <img alt="Image 2" src="/files/ftp_upload/59706/59706img02.jpg" style="font-size: 14px;"> +) 또는 비단핵백혈소종(CD45++ , <img alt="Image 3" src="/files/ftp_upload/59706/59706img03.jpg" style="font-size: 14px;">). 나머지 셀은 "기타"()로<img alt="Image 4" src="/files/ftp_upload/59706/59706img04.jpg" style="font-size: 14px;">표지되었다. 결과는 평균 ± SD(n=3)로 나타내었다. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59706/59706fig2large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> 
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59706/59706fig3.jpg"> 그림 3 : 지하 막 유래 젤 플러그의 단핵구 및 대식세포 함량. 1일, 3일 및 5일 사후 주입시 제거된 차량 적재 및 MCP-1 로드 플러그에서 모집된 단핵구 및 대식세포 함량의 정량적 분석. 값은 총 셀 모집단(A+B)의 백분율과 플러그당 절대 셀 수(C+D)로 표시됩니다. 결과는 평균 ± SD(n=3)로 나타내었다. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59706/59706fig3large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>

여기에서 우리는 마우스 모형에 있는 혈액 단핵구의 화학전술 활동을 정량화하고, 혈액 단핵구에 영양, 약리학 및 유전 내정간섭의 효력을 평가하고 혈액 단핵구 파생된 대식세포특성화하기 위하여 프로토콜을 제시합니다 단핵구 화학 유도제 단백질-1 (MCP-1)을 사용하여 마우스 모델 - 로드 지하 막 유래 젤 플러그.

Tissue homeostasis and repair are critically dependent on the recruitment of monocyte-derived macrophages. Both under- and over-recruitment of ...

이 방법론은 살아있는 동물에서 혈액 단세포의 화학 적 활성을 정량화하고 단세포 기능과 기본 메커니즘에 대한 가난한 식단의 효과를 연구 할 수 있게합니다. 단세포 유래 대식세포는 마우스 모델에서 혈액 단화 부위의 건강스냅샷을 제공하는 단일 세포 및 오믹스 기술을 포함한 다양한 접근법을 사용하여 분리 및 분석될 수 있다. 오늘의 절차는 내 실험실에서 조교수 안영주 박사와 내 실험실의 후의사 인 루시 왕 박사가 진행합니다.시술을 시작하기 전에 세포 배양 후드를 소독제로 청소하고 얼음에 대한 성장 인자 감소 지하 막 유래 용액을 완전히 해동합니다. 개별 멸균 1 밀리 리터 주사기를 26 게이지 바늘로 장착하고 바늘을 얼음위에 놓습니다. 용액이 해동되면, 각 밀리리터 주사기에 화학 요법 유인제의 유무에 보충 된 500 마이크로 리터의 용액을로드하기 전에 알코올 면봉으로 지하 막 유래 용액 유리병의 상단을 닦아.그런 다음 균일 한 플러그 형성을 보장하기 위해 지하 멤브레인 파생 솔루션로드 주사기에서 기포를 제거합니다. 발가락 핀치에 대한 반응의 부족을 확인한 후, MCP-1을 초당 약 100 마이크로 리터에 첨가하지 않고 지하 막 유래 용액의 전체 부피를 천천히 주입하여 마취 마우스의 오른쪽 측면에 피하한다. 그리고 전체 500 마이크로 리터의 지하 막 유래 용액은 동물의 왼쪽 측면에 MCP-1로 보충.주사기를 주입 후 20~30초 동안 제자리에 고정하여 용액의 누출을 방지하고 완전한 회복까지 모니터링할 때까지 워밍업 패드에 마우스를 놓기 전에 단일 매끄러운 젤 플러그가 형성되도록 합니다. 주입 후 3 일, 플러그인 주입 동물에서 등쪽 머리를 제거하고 아래 흉부와 상부 요추 척추 주위의 피부를 파악하기 위해 집게를 사용합니다. 피부에 2 밀리미터 길이의 절개를 하고 자궁 경부 척추에서 마우스 뒤쪽의 중간선을 따라 코들 척추 접합부의 1센티미터까지 잘라냅니다.피부를 근육 층과 분리하고 폴리스티렌 폼 플랫폼에서 피부를 고정하십시오. 다음으로, 해부 현미경의 밑에, 조심스럽게 지하 막 유래 젤 플러그를 포함하는 섬유질 캡슐을 잡고 섬유질 캡슐을 제거하기 위하여 미세한 집게를 이용합니다. 그런 다음 미세 가위를 사용하여 플러그를 청소하십시오.그런 다음 세척된 지하 멤브레인 유래 젤 플러그를 적절히 표지되고 무게가 1.5밀리리터 마이크로 원심분리기 튜브로 전달합니다. 튜브의 무게를 재측정하여 지하 멤브레인 유래 젤 플러그의 중량을 계산합니다. 지하 멤브레인 유래 젤 플러그 소화의 경우 깨끗한 미세 가위를 사용하여 각 마이크로 원심 분리기 튜브에 지하 멤브레인 유래 젤 플러그를 다진 다음 플러그에 800 마이크로 리터의 변위를 추가하십시오.10초 동안 최대 속도로 소용돌이가 플러그를 방해하고 마이크로 원심분리기 튜브를 분당 1400회전의 열믹서에 2시간 동안 섭씨 37도에 배치하여 지하 막 유래 젤 플러그를 완전히 녹입니다. 인큐베이션의 끝에서, 플러그 조각을 원심분리에 의해 두 번 퇴적시키고 PBS의 300 마이크로리터에서 펠릿을 재일시 중단한다. 각 세포 현탁액의 50 마이크로리터를 새로운 마이크로 원심분리튜브로 옮기고 0.5 마이크로리터의 칼신으로 새로운 튜브에 세포를 라벨을 붙입니다.이산화탄소 인큐베이터에서 섭씨 37도에서 10분 동안 배양한 후, 자동 세포 카운터에서 살아있는 녹색 형광세포의 수와 비형광세포의 수를 계산합니다. 단일 셀 웨스턴 블롯 해석의 경우 10센티미터 페트리 접시의 하단에 재수화 된 단일 셀 웨스턴 블롯 칩에 희석 된 단일 셀 서스펜션 1 밀리리터를 추가하십시오. 5-15 분 후, 밝은 필드 현미경 검사에서 칩을 검사합니다.마이크로 웰의 약 15~20%는 단일 세포에 의해 점유되어야 하며 우물의 2% 미만은 2개 이상의 세포를 포함해야 한다. 칩이 제대로 로드된 경우 접시를 45도 기울여 서스펜션 버퍼로 칩을 세 번 씻어 캡처되지 않은 셀을 제거합니다. 마지막 세척 후, 칩을 단일 셀 웨스턴 악기의 전기 전지 세포에 조심스럽게 로드하고 겔 측 위로, 용해 실행 버퍼로 전체 단일 셀 웨스턴 블롯 칩을 덮는다.셀 리시스를 시작하고 적절한 실험 매개 변수에 따라 계측기를 실행합니다. 실행이 끝나면 실온에서 세척당 신선한 세척 버퍼로 10 분 동안 세척 하는 두 개의 칩을 헹구는. 두 번째 세척 후, 항체 프로빙 챔버에 관심있는 1 차 항체 용액의 80 마이크로 리터를 추가하고 칩 겔 측을 아래로 낮추어 항체 용액이 칩을 가로 질러 심지 되도록합니다.실온에서 2 시간 후, 세척 버퍼에 칩을 세 번 세척하고 셰이커에 물에 한 번 세척. 빛으로부터 보호되는 실온에서 1시간 동안 적절한 이차 항체로 칩을 배양합니다. 인큐베이션이 끝나면 세척 버퍼로 칩을 세 번 씻고 슬라이드 스피너에 칩을 회전하여 남은 세척 버퍼를 제거합니다.단일 셀 웨스턴 블롯 칩을 제거하려면 랙 위에 1센티미터 높이의 물과 함께 섭씨 60도의 수조에 15 밀리리터 튜브 랙을 놓습니다. 연기 후드에 40 밀리리터의 스트리핑 버퍼와 320 마이크로리터의 베타 모셉타 에탄올을 캐니스터에 넣습니다. 칩을 10센티미터 페트리 접시에 캐니스터 안에 놓고 파라필름으로 캐니스터를 밀봉합니다.그런 다음 튜브 랙 안에 캐니스터를 수조에 놓습니다. 90분 후, 칩을 새로운 페트리 접시에 조심스럽게 옮기고 워시 버퍼로 칩을 한 번 간략하게 씻은 후 15 밀리리터의 신선한 세척 버퍼를 페트리 접시에 넣고 셰이커에서 15분간 세척합니다. 이 대표적인 실험에서, 각 플러그로 모집된 세포는 주입 후 1, 3, 5일 후에 계산되었다.MCP-1 로드 플러그의 셀 수로부터 차량 로드 플러그의 셀 수를 빼서 화학 요법 에 대한 응답으로 구체적으로 모집된 셀 수를 계산하였다. 가속 된 MCP-1 특이모집 및 세포의 축적은 5 일 동안 관찰되었으며, 주사 후 하루 에 31, 000 세포에서 하루 에 최대 136, 000 세포, 주사 후 5 일 동안 증가하였다. 단세포 서양 얼룩 분석은 관심있는 특정 면역 세포 마커의 표현에 따라 지하 막 유래 플러그에 모집된 상이한 세포 모형을 확인하기 위하여 그 때 이용되었다.예를 들어, MCP-1 장전 지하 멤브레인 겔 플러그 내의 단핵구 의 비율은 첫날에 낮았고 5일째에 다시 떨어지기 전에 3일째에 정점을 찍은 반면, 대식세포 수는 연구 기간 내내 꾸준히 증가하였다. MCP-1 장전 플러그의 경우, 격리된 세포 집단 내의 단핵구 와 대식세포의 비율이 3일째에 가장 높았으며, 이는 3일 후에 MCP-1 의존화학증에 의해 모집된 세포의 대다수가 단세포및 대식세포였다는 것을 나타낸다. 3일째에 비해 5일째에 총 모노사이클과 대식세포가 더 높지만, 3일째의 세포 수는 단핵혈소및 모집의 말초 혈액을 보다 정확하게 반영하므로 지하 막 직접 플러그 분석에 3일째가 권장됩니다.다운스트림 분석을 위한 단일 셀을 성공적으로 획득하는 것은 주입의 정확성과 플러그의 완전한 제거에 달려 있습니다. 유동 세포종법, 단세포 서양 블로팅, 벌크, 또는 단세포 RNA 시퀀싱 및 기타 omics 절차는 모집된 단세포 및 단세포 유래 대식세포의 특성및 표현형을 평가하는 데 사용될 수 있다.

quantification-monocyte-chemotactic-activity-vivo-characterization

Research

연구

JoVE Journal

Immunology and Infection

면역학 및 감염학

이 비디오는 일차 단핵구를 대식세포로 프라이밍하는 방법을 보여줍니다. 1차 인간 단핵구는 과립구-대식세포 집락자극인자(GM-CSF)를 사용하여 M1-like 전염증성 표현형으로 분리 및 분화할 수 있으며, 대식세포 집락자극인자(M-CSF)를 사용하여 M2-like 항염증성 표현형으로 분화할 수 있습니다.

In Vitro Culture and Differentiation of Primary Monocytes into Macrophages

단핵구 유래 대 식세포는 타고난 면역 시스템의 중요한 세포입니다. 여기, 우리는 사용하기 쉬운...

<em&gt; 체외</em인간 대식 세포의 분화와 양극화의 이질성을 연구&gt; 모델

우리는 인간 대 식세포의 세대를위한 간단하고 효율적인 프로토콜을 제시한다. 버피 코트는 이중 밀도 구배 원심 분리에 의해 처리되고 격리 된 단핵구는 테프론 코팅 된 세포 배양 가방에서 대 식세포로 분화된다. 이 대 식세포의 수율을 극대화하고 다음 실험을 위해 세포 수확을 용이하게한다.

인간의 두 그라데이션 원심 분리하여 단핵구와 테프론 코팅 세포 배양 가방에서 대 식세포로 분화의 분리

여기에서는 번역 응용을 위해 이질적인 골수에서 다량의 쥐 단핵구를 생성하는 프로토콜을 제시합니다. 다른 방법과 비교했을 때, 이 새로운 방법은 높은 구배 자기 세포 분리(MACS)와 같은 값비싼 방법을 피함으로써 희생되는 동물의 수를 줄이고 비용을 절감하는 데 도움이 됩니다.

분리 및 설치류 골수의 정맥 주사 유래 단핵구

대식세포 콜로니 자극 인자(M-CSF) 분화된 인간 단핵구 유래 대식세포의 세포 배양을 위한 프로토콜이 제시됩니다. 이 프로토콜은 대식세포로의 벌크 분화와 결합된 단핵구의 동결 보존을 활용합니다. 그런 다음 수확된 대식세포를 실험 수행에 필요한 세포 밀도의 배양 웰에 파종할 수 있습니다.

대 식세포 콜로니 자극 인자 차별화 된 인간 단핵구 유래 대 식세포의 문화

림프 구 chemotaxis 및 마이그레이션에 대 한 양적 평가 대 한 프로토콜은 면역학 연구를 위한 중요 한 도구입니다. 여기, 생체 외에서 프로토콜 허용 실시간, 다중화 세포 이동의 평가 뿐만 아니라 상호 보완적인 vivo에서 기술 활성화 추적 기본 셀의 비장에 설명 되어 있습니다.

인간 Monocyte Chemotaxis에서 생체 외에서 그리고 Vivo에서 인신 매매 Murine 림프 구 측정

우리 인간의 내 피 monolayers에 걸쳐 monocytes에 의해 환생 및 거품 세포로 그들의 후속 성숙 측정 프로토콜을 설명 합니다. 이 혈액이 경향이 향상 시킬 수 있는 요인을 평가 하 고 다른 질병 조건 가진 사람에서 격리 하는 monocytes의 atherogenic 속성을 평가 하기 위해 다양 한 메서드를 제공 합니다.

Monocyte 환생 및 개인 만성 염증 성 조건에서 거품 세포 형성의 정량화

여기, 우리가 특정 표면 마커 및 공초점 형광 현미경 검사 법을 사용 하 여 흐름 체 외에서 매매 하는 monocyte 부분 모집단을 측정 하는 통합된 프로토콜 제시. 이 프로토콜은 다른 특정 표면 마커를 사용 하 여 다른 백혈구 하위 프로로 뿐만 아니라 순차 모집 단계를 탐험 하 사용할 수 있습니다.

생체 외에서 흐름 아래 Monocyte 모집단의 채용의 동시 연구

여기에서 우리는 화학 전술 보완 C5a 구배를 이미지 마우스 상주 복막 대식세포에 시간 경과, 위상 대조 현미경 검사법을 사용하여 방법을 설명합니다. 프로토콜은 그밖 면역 세포로 확장될 수 있습니다.

마우스 대식세포 화학의 시간 경과 화상 진찰

단핵구와 대식세포는 건강과 질병에 중요한 매우 가소성 및 재프로그래밍 가능한 면역 세포입니다. 그들은 특정 분화 프로그램과 표현형을 채택하여 광범위한 자극을 감지하고 반응합니다. 당사는 대식세포 분극 및 재프로그래밍을 연구하기 위해 in-vitro 모델을 표준화하여 연구를 위한 유용한 도구를 제공합니다.

In-vitro assay를 위한 human monocyte-derived Macrophage의 재프로그래밍 모델

여기에서는 골수, 비장 및 경색된 심장에서 대식세포를 추출하고 이후에 살아있는 세포의 대사 플럭스를 평가하는 방법을 자세히 설명합니다.

비장 및 심장 대식세포와 골수 단핵구의 생체 외 대사 플럭스 분석

학습하세요 생체 내에서 단핵구 화학적 활동을 정량화하고 혈액 단핵구 유래 대식세포를 특성화하는 방법을 마우스 모델에서. 이 프로토콜은 영양 및 약리학적 개입이 단핵구 기능에 미치는 영향을 연구하는 데 활용됩니다.

생체 내에서 단핵구 화학 적 활동의 정량화 및 혈액 단핵구 유래 대식세포의 특성화

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