Name: 호산성 폐 염증을 조절하는 HDM 알레르겐의 면역원성 RNA 종의 식별 및 특성화 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2020-05-30T15:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 44 s
Description: 배우세요 집먼지진드기(HDM) 이중가닥 RNA의 면역원성을 식별하고 호산성 폐 염증을 조절하는 방법을 마우스 모델에서 연구하는 기법입니다. 이 프로토콜은 알레르기 천식 연구에 활용됩니다.

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카를라 고레나(Karla Gorena) 씨는 유동 세포측정에 대한 기술 지원을 해 주셔서 감사합니다. L.S.는 중국 장학위원회와 후난지방혁신재단(CX201713068)의 지원을 받고 있습니다. H.H.A.는 사우디아라비아 주 사카카 주 응용 의학 대학 임상 실험실 과학과의 지원을 받고 있습니다. X.D.L.은 UT 헬스 샌안토니오 의과 대학 스타트업 펀드와 맥스 및 미니시 보엘커 기금의 지원을 받고 있습니다.

여기에 설명 된 실험 절차는 텍사스 건강 샌 안토니오 대학의 기관 동물 관리 및 사용위원회에 의해 승인되었다.
1. HDM 총 RNA에서 dsRNA 구조의 존재를 보여주는 도트 블롯
<ol><li>알레르겐, 곤충 및 비 곤충 알레르겐으로부터의 총 RNA 절연<ol>
<li>HDM, 곤충 또는 비곤충 동물을 살아 있거나 상업적으로 50mL 튜브에 넣고 액체 N2로신속하게 동결하십시오. 그런 다음 후속 총 RNA 절연을 위해 -70 °C에 저장하십시오. 참고: 이 실험에서는 HDM, 곤충 및 곤충이 아닌 동물이 알레르겐의 일반적인 공급원으로 알려져 있기 때문에 선택되었습니다. 또한, 그들의 RNA의 면역 자극 기능은 불분명한 남아 있습니다.</li>
		<li>-70°C에 저장된 HDM, 곤충 또는 비곤충 동물의 적당량(부피 100 μL 이하)을 구슬(1.4mm 세라믹 구체)이 들어 있는 2mL 튜브로 옮은 다음 액체-N2 용기에 튜브를 10분 동안 동결한다.</li>
		<li>총 RNA 절연을 위해, 각 튜브에 구니디늄 티오야네이트 계 RNA 격리 시약24의 1mL를 추가한 다음, 곤충과 비곤충 소동물을 고에너지 세포 파괴기로 분해하고 얼음에 차가운. 이 단계를 두 번 반복합니다.</li>
		<li>1.1.3 단계에서 새로운 1.5mL 튜브로 용액을 옮기고 각 튜브및 소용돌이에 200 μL의 클로로폼을 추가합니다. 원심분리기 튜브는 4°C에서 14분 동안 14,000 x g의 원심분리기 튜브입니다.</li>
		<li>원심분리가 완료되면, 상수상(200 μL)을 RNA 펠릿침을 침전시키기 위해 이소프로판올 500 μL을 포함하는 새로운 1.5mL 튜브로 이송한다. 단계 간을 방해하지 마십시오. 상층 대 상층의 권장 물량 비율은 1:2.5 비율입니다.</li>
		<li>부드러운 소용돌이로 섞은 다음 원심분리기 튜브를 14,000 x g에서 14분 동안 4°C로 섞습니다.</li>
		<li>주체를 주의 깊게 흡인한 다음 RNA 펠릿을 75% 에탄올과 원심분리기의 500 μL로 4°C에서 10분 동안 7,500 x g로 세척합니다. 모든 액체를 조심스럽게 제거하고 펠릿을 공기 건조시키고 RNA 펠릿을 RNase 가 없는 H2O의 20-50 μL로 용해하십시오.</li>
		<li>다음 매개 변수를 사용하여 분광계로 RNA 농도를 측정합니다.<ol>
<li>관련 소프트웨어를 열고 측정할 핵산유형을 선택한다. 샘플 유형을 RNA로 변경합니다.</li>
			<li>RNase 가 없는 H2O. RNase 프리 H2O. 스 와이프의 1-2 μL로 빈 측정을 수행합니다. 이제 계측기는 측정할 준비가 되었습니다.</li>
			<li>RNA 시료의 1-2 μL을 적재하고 RNA 농도(μg/μL)를 측정합니다. 참고: ~2.0(1.9-2.2)에서 260 및 280 nm(A260/280)에서 흡광도의 비율은 일반적으로 RNA에 대해 "순수"로 받아들여진다. 즉시 처리되지 않으면 RNA 샘플을 -70°C에 저장하고 동결 해동 주기를 피하여 RNA를 그대로 유지하십시오.</li>
		</ol>
</li>
	</ol></li>
	<li>dsRNA 특이적 J2 항체를 사용하여 전체 RNA에서 dsRNA 구조의 검출<ol>
<li>RNA 샘플 20μL(200 ng/μL)를 준비합니다. 하나는 RNase-III 치료 (1 μg RNA에 대한 1 μL, 60 분 동안 37 °C에서 배양), 및 RNase-III 치료없이 다른 하나. 참고 : RNase III는 구체적으로 dsRNA를 저하하기 위해 여기에 사용되지만 단일 좌초 RNA(25)는아닙니다.</li>
		<li>연필을 사용하여 RNA 샘플이 멤브레인에 블랜츠되는 그리드를 그립니다.</li>
		<li>RNA 샘플의 200 ng/μL의 2 μL을 양전하 나일론 멤브레인에 반점한다.</li>
		<li>UV 크로스링커에서 1,200 마이크로줄 x 100에서 멤브레인에 샘플을 교차 연결합니다. 샘플 스팟 장소에서 1.2.3 및 1.2.4 단계를 두 번 더 반복합니다. 이로 인해 블롯당 총 0.8 μg가 발생합니다. 참고: 한 번에 멤브레인에 RNA 샘플의 2 μL 이상을 발견하지 마십시오.</li>
		<li>실온에서 흔들림으로 1h에 TBS-T에서 5%의 우유로 비특이적 결합을 차단합니다. 차단용액을 1.2.5단계에서 제거하고 1:1,000 희석에서 항dsRNA J2 항체를 TBS-T의 1% 우유에 추가하고 4°C에서 흔들림으로 하룻밤 동안 배양한다.</li>
		<li>5 분 동안 TBS-T로 멤브레인을 씻고이 단계를 3 번 반복하십시오. 이차 항체(알칼리성 인산염-공주 방지 마우스 IgG를 1% 우유 1:5,000으로 희석) 및 실온에서 셰이커에 1시간 동안 배양한다. 5 분 동안 TBS-T로 멤브레인을 씻고3 x에 대한이 단계를 반복합니다.</li>
		<li>기판(BCIP/NBT)을 추가하고 원하는 신호가 표시될 때까지 5-15분 동안 배양합니다.</li>
		<li>ddH2O로 멤브레인을 헹구어 반응을 중지합니다.</li>
		<li>조직 용지에 멤브레인을 건조하고 스마트 폰을 사용하여 사진을 찍습니다 (대표적인 결과는 도 1에표시됩니다).</li>
	</ol></li>
</ol>2. 폐 ISGs 발현을 자극하는 HDM 총 RNA의 능력을 측정하는 RT-qPCR
<ol><li>마우스 폐 조직에서 RNA 절연 참고: 마우스(여성, 8-12주, C57BL/6J)는 특정 병원균 없는 조건하에서 유지되었다.<ol>
<li>이소플루란으로 동물을 간략하게 마취하고 RNase III 유무에 관계없이 처리된 HDM RNA의 5 μg(80μL PBS에서 희석)로 장내 주입을 통해 관리한다.</li>
		<li>후 16-18 h 포스트 HDM RNA 치료 후, 몇 분 동안 CO2 흡입에 의해 마우스를 희생. 그런 다음, 플랫폼에 마우스를 놓고 바늘로 팔다리를 고정합니다.</li>
		<li>70% 에탄올로 마우스를 소독한 다음 살균된 가위로 복부에서 목까지 피부를 자른다.</li>
		<li>바늘로 피부를 고정하고 갈비뼈를 잘라 폐를 노출합니다. 전체 폐를 제거하고 차가운 PBS로 씻어. 폐를 조직 용지에 놓고 각 폐 로브의 작은 조각을 구슬이 들어 있는 2mL 튜브(부피 200-300 μL, 세라믹 구체 1.4mm)에 소비합니다. 참고: 세라믹 구슬을 사용하는 목적은 전체 폐 조직을 분쇄하는 것입니다.</li>
		<li>폐 샘플을 액체 N2 용기에 넣고 ~10 분 동안 동결하십시오.</li>
		<li>각 튜브에 500 μL의 구아니디늄 티오세네이트 계 RNA 절연 시약을 추가하고 각 단계 사이의 얼음에 45 s. 진정균제로 폐 조직을 깰. 이 단계를 두 번 반복합니다.</li>
		<li>폐 RNA 절연을 위한 단계 1.1.4- 1.1.7단계를 따르십시오.</li>
		<li>펠릿을 공기 건조시키고 적절한 양의 RNase 프리 H2O(~20-30 μL)로 RNA 펠릿을 용해합니다.</li>
		<li>단계 1.1.8에 설명된 바와 같이 RNA 농도를 측정한다.</li>
	</ol>
</li>
	<li>RT-qPCR은 폐 유전자 발현을 자극하는 HDM RNA의 능력을 결정한다.<ol>
<li>폐 조직에서 추출한 RNA의 100 ng/μL을 템플릿으로 사용하여, 참조된프로토콜(26)에따라 cDNA 합성을 수행한다.</li>
		<li>위에서 생성된 cDNA및 유전자 특이적 프라이머쌍(표 1 및 표 2)을사용하여 384웰 플레이트에 대해 10 μL/well에 RT-qPCR 반응을 설정한다.</li>
		<li>투명한 접착 필름으로 우물을 단단히 밀봉하고 30 s. 30 s에 대한 1,000 x g에서 플레이트를 회전하여 우물 바닥에 샘플을 수집합니다.</li>
		<li>플레이트를 RT-qPCR 기계에 로드하고 열 사이클러프로토콜(표 3)을사용하여 RT-qPCR 반응을 실행하기 시작합니다.</li>
		<li>결과를 스프레드시트 파일로 내보내거나 프로그램이 완료된 후 제조에서 제공하는 소프트웨어를 사용하여 데이터를 분석합니다(대표적인 결과는 도 2에도시됨).</li>
	</ol>
</li>
</ol>3. BAL 과 폐에서 호산구의 침투에 HDM RNA의 효과를 결정하는 FACS 분석
<ol><li>FACS 분석을 위한 BAL 유체 수집<ol>
<li>HDM 알레르겐 추출물(도 3B에도시된 실험 설계에 따라)으로 치료된 마우스(여성, 8-12주 전, C57BL/6J)를CO2 흡입에 의해 안락사하였다.</li>
		<li>플랫폼에 마우스를 놓고 바늘로 팔다리를 고정합니다.</li>
		<li>70%의 에탄올로 마우스를 소독합니다. 가위를 사용하여 복부의 상부 부위에서 목까지 피부를 자른다.</li>
		<li>부드럽게 침샘과 스테르노하이드 근육을 조심스럽게 떼어 내어 기관지를 노출시합니다. 집게를 사용하여 기관 아래에 나일론 끈(~10cm)을 놓습니다.</li>
		<li>캐뉼라를 삽입하기에 충분할 정도로 기관 (후두 아래 ~ 2mm)에 절개를합니다. 기관을 잘라하지 마십시오. 기관지와 캐뉼라 주위에 끈을 매듭.</li>
		<li>PBS+EDTA의 1mL로 주사기를 적재하고 캐뉼라 끝에 부착합니다. PBS+EDTA 1mL을 폐에 주입하고 용액을 완전히 흡인시합니다. 주사기를 캐뉼라에서 조심스럽게 분리하고 용액을 얼음 위에 15mL 튜브로 옮겨 넣습니다.</li>
		<li>신선한 PBS+EDTA로 주사기를 다시 로드하고 이 단계를 2배 반복합니다.</li>
		<li>4°C에서 7분 동안 500 x g에서 세포를 펠렛하는 3.1.7 단계에서 얻은 풀링된 BAL을 함유한 튜브원심분리기. BAL 유체의 부피를 기록한 다음 펠릿을 방해하지 않고 2개의 1.5mL 튜브로 상수체를 전송합니다. 참고: BAL의 상체는 미래 분석(예: ELISA)을 위해 -70°C에 저장할 수 있습니다.</li>
		<li>심한 폐 염증으로 인해 펠릿에 RBC가 존재하는 경우, 상복부을 제거 한 후 RBC 리시스 버퍼의 500 μL을 추가하고 재서스펜션에 의해 잘 섞는다. 4°C에서 500 x g의 속도로 7분 동안 새로운 1.5mL 튜브 및 원심분리기로 용액을 옮긴다.</li>
		<li>상체를 제거하고 FACS 버퍼의 150 μL에서 펠릿을 다시 분리합니다.</li>
		<li>재중단 된 샘플의 150 μL을 96 웰 플레이트로 옮기고 4 °C에서 500 x g의 속도로 7 분 동안 플레이트를 원심 분리합니다.</li>
		<li>신속하게, 우물의 바닥에 거주하는 세포를 수집하기 위해 조직 논문에 접시를 반전.</li>
		<li>2.4G2 차단 항체(2.5 μg/100 μL)의 존재시 FACS 완충제에서 항체를 가진 세포를 얼룩지게 한다. 어두운 곳에서 30 분 동안 실온에서 접시를 배양하십시오.</li>
		<li>염색 후, 원심분리판은 4°C에서 7분 동안 500 x g로 세포를 펠릿으로 한다.</li>
		<li>티슈 페이퍼의 플레이트를 반전시켜 염색 용액을 제거한 다음 FACS 버퍼 100μL로 다시 세척하여 세척합니다. 다음으로, 4°C에서 7분 동안 500 x g에서 플레이트를 다시 원심분리하고 티슈 페이퍼상에 플레이트를 반전시켜 FACS 버퍼를 제거한다.</li>
		<li>샘플을 150μL의 FACS 버퍼로 재일시 중단하고 샘플을 FACS 버퍼 350μL를 포함하는 FACS 튜브로 이송합니다. 각 샘플에 구슬 을 계산하는 25 μL을 추가합니다. 이제 샘플은 유동 세포 측정 분석을 위한 준비가 되었습니다. 참고: BAL 유체의 다양한 세포 유형은 표시된 바와 같이 항체로 표시되었다. SCS가 실행되기 전에 구슬 계산이 추가되었습니다. 유동 세포측정 데이터는 시판되는 소프트웨어를 사용하여 분석되었다. 게이팅 전략에 대한 그림 3 및 표 4를 참조하십시오.</li>
	</ol></li>
	<li>FACS 분석을 위한 폐 조직 소화<ol>
<li>3.1.1 - 3.1.3 단계를 따르십시오.</li>
		<li>살균 된 가위로 복부에서 목까지 피부를 잘라냅니다. 바늘로 피부를 고정하고 갈비뼈를 잘라 폐를 노출합니다.</li>
		<li>전체 폐를 제거하고 차가운 PBS로 씻어. 폐 소화 용액 의 50 μL을 포함하는 1.5 mL 튜브에 샘플을 놓습니다.</li>
		<li>폐 조직을 곡선 가위로 작은 조각으로 다진다. 폐 조직을 6웰 플레이트로 옮은 다음 폐 소화 용액 8mL를 추가합니다. 37°C 인큐베이터에 접시를 45분 동안 놓습니다.</li>
		<li>잠복 후, 폐 조직을 분쇄하기 위해 1.5 mL 튜브의 상단을 사용합니다. 새로운 6웰 플레이트에 70 μm 스트레이너를 놓고 0.22 μm 필터를 통해 샘플을 적용합니다.</li>
		<li>여과 된 용액을 15mL 튜브로 옮긴 다음 튜브를 500 x g에서 4 °C에서 7 분 동안 원심 분리합니다. 슈퍼네티를 흡인하고 RBC 용해 버퍼의 1mL에서 펠릿을 다시 중단하고 3 분 동안 얼음에 둡니다.</li>
		<li>샘플을 1.5mL 튜브및 원심분리기로 500 x g에서 4°C에서 7분 동안 옮긴다. 2배 반복</li>
		<li>폐 세포를 1mL FACS 버퍼로 2배 세척합니다. 슈퍼네티를 흡인하고 FACS 버퍼의 1mL에서 펠릿을 재연한 다음 샘플의 100 μL을 96 개의 웰 플레이트로 옮기십시오.</li>
		<li>4°C에서 500 x g의 속도로 7분 동안 플레이트원심분리기를 합니다. FACS 분석을 위한 BAL 유체 수집에 기재된 단계를 따르십시오(3.1.13 받는사람은 3.1.16) 소화된 폐 조직 샘플의 세포를 얼룩지게 한다. 참고: 폐에 있는 호산구는 표시된 대로 항체로 표시된 다음 추가 FACS 분석을 위해 구슬을 계산하는 것과 혼합되었습니다. 흐름 세포측정 데이터는 관련 소프트웨어를 사용하여 분석되었다. HDM RNA 유도 면역 반응을 평가하기 위한 도 3을 참조하십시오.</li>
	</ol></li>
</ol>4. 통계 분석
<ol><li>상용 소프트웨어를 사용하여 통계 분석을 수행합니다.</li>
	<li>두 그룹의 비교를 위해 쌍이 없는 두 꼬리 학생 t 테스트를 통해 p 값을 결정합니다.</li>
	<li>수식을 사용하여 참조 구슬(상단 패널)을 기반으로 호산구의 절대 수를 계산합니다.</li>
</ol><img alt="Equation 1" src="/files/ftp_upload/61183/61183equ01.jpg">
<ol start="4"><li>두 개 이상의 그룹을 비교하기 위해 양방향 ANOVA 및 Sidak의 여러 비교 테스트로 p 값을 결정합니다.</li>
	<li>0.05보다 작은 p 값을 통계적으로 유의하다고 생각해 보십시오. p 값은 플롯에 *p&amp;0.05, **p&amp;0.01, ***p&amp;0.001, ****p&amp;0.0001로 표시됩니다. 참고: 모든 버퍼 레시피는 표 5에제공됩니다.</li>
</ol>

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<li>Schuijs, M. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Farm+dust+and+endotoxin+protect+against+allergy+through+A20+induction+in+lung+epithelial+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Farm dust and endotoxin protect against allergy through A20 induction in lung epithelial cells.</a> Science. 349, 1106-1110 (2015).</li>
<li>Stein, M. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Innate+Immunity+and+Asthma+Risk+in+Amish+and+Hutterite+Farm+Children%5BTitle%5D)+AND+%22New+England+Journal+of+Medicine%22%5BJournal%5D)">Innate Immunity and Asthma Risk in Amish and Hutterite Farm Children.</a> New England Journal of Medicine. 375, 411-421 (2016).</li>
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</ol>

우리는 공개 할 것이 없습니다.

현재 프로토콜은 알레르기 성 천식의 마우스 모형에 있는 호산성 폐 염증의 발달에 알레르기성 관련 미생물 RNA의 면역 자극성 속성 및 그들의 충격을 평가하는 방법을 설명합니다. 긴 dsRNAs는 포유류 세포에 있는 인터페론 반응을 강력하게 활성화할 수 있는 많은 바이러스의 복제 중간체로 알려져 있더라도, HDM 알레르겐에 있는 그들의 존재는 우리의 최근 일15까지알려지지 않았습니다. 본 원고에 제시된 RNA 도트 블롯, RT-qPCR 및 FACS 분석의 조합은 알레르겐 유발 호산성 염증 조절에 비판적으로 관여하는 환경 알레르겐에서 dsRNA 종과 같은 선천적 성분을 해부하는 좋은 예를 제공할 수 있다.
이 프로토콜에서, RNA 도트 블롯은 서열에 관계없이 dsRNA(≥40bp)에 구체적으로 결합하는 마우스 단클론 항체 J2를 사용하여 천연 알레르겐에서 dsRNA 구조의 존재를 검출하기 위해 사용되었습니다. 이 방법은 J2 항체가 여전히 ...

스트라찬1이원래 제안한 위생 가설에 기초하여, 내독소와 같은 환경 미생물 인자에 대한 유아 노출은 알레르기 장애2,,3의발달로부터 보호 할 수 있습니다. 미생물 감염 중, 예를 들어, 바이러스 감염, 외국 핵산(RNA/DNA)의 선천적인 면역 검출은 호스트 방어 반응을4,,5,,6을유발한다. 그러나, 집먼지 진드기(HDM) 또는 다른 곤충 알레르겐에서 긴 이중 좌초 RNA(dsRNA) 종과 같은 면역원성 핵산의 존재 그리고 유병률은 알려지지 않은 채로 남아 있다. 이 프로토콜은 HDM 또는 곤충 및 비 곤충 알레르겐이 알레르기 성 천식의 마우스 모델에서 심각한 호산성 폐 염증의 발달을 중화하기 위해 보호 면역 반응을 활성화 할 수있는 긴 dsRNA 종을 포함 여부를 결정하기 위해 설계되었습니다. 여기서, 우리는 알레르겐 유도 호산성 폐 염증을 조절하는 데 필요한 HDM 총 RNA에서 구조적 결정요인을 평가하는 세 가지 간단하고 빠른 방법을 제공한다.
점막 면역 계통은 바디에서 가장 큰 면역 기관이고 미생물 감염 및 알레르기성 모욕 둘 다에 대하여 호스트 방어의 첫번째 선 역할을7,,8. 긴 dsRNA는, 많은 바이러스의 복제 중간체로서, 인터페론 자극 유전자(ISGs)9,,10,,,11,12,,13,14의발현을 유도하기 위해 수용체 3(TLR3)와 같은 톨을 통해 선천적 반응을 강력하게 자극하는 병원균 관련 분자 패턴(PAMP)으로 기능하는 것으로 알려져있다. 최근에는 HDM 총 RNA가 DSRNA 구조를 함유하고 있으며, 이는 ISGs의 발현을 조절하고 HDM 추출물에 의해 유도된 알레르기 성 천식의 뮤린 모델에서 내내 주입을 통해 투여될 때 심한 호산성 폐 염증을감소시켰다. 폐 염증의 중증도는 혈류,세포측정제16,,17,18,19,,20을통해 기관지알래 라베이지(BAL) 및 폐 조직에서 면역 세포 유형을 분석하여 결정된다.,
이 프로토콜은 3개의 분석서를 포함합니다: 1) 특이하게 dsRNA (≥40bp)에 서열 독립적인 방식으로 결합하는 마우스 단클론 항체 J2를 사용하여 RNA 도트 블롯을 가진 dsRNA 구조물의 신속한 검출; 2) RT-qPCR을 사용하여 ISGs의 유도를 측정하여 마우스 폐에서 면역 자극 RNA의 생체 내 효과에 대한 빠른 평가; 3) 혈류 세포측정 분석을 이용하여 HDM 유도 폐 염증의 맥락에서 BAL 및 폐에서 호산구의 정확한 정량화.
위의 에세이는 알레르기 성 폐 질환뿐만 아니라 호흡기 세균 및 바이러스 감염을 연구하는 데 사용할 수 있습니다. 예를 들어, dsRNA 특이적 J2 항체는 면역화성 크로마토그래피, 면역히스토케, 효소-연결된 면역소벤트 분석법(ELISA) 및 면역염색21,,22,,23과같은 다른 응용 분야에서도 사용될 수 있다. 또한, BAL 유체 수집의 하류에 여러 응용 분야는 ELISA를 사용하여 사이토카인 및 케모킨과 같은 용용성 함량을 정량화하고, 기도내 세포의 전사 프로파일링(예를 들어, 폐포 대식세포)에 활용될 수 있다. 폐 상태를 평가하기 위해 문헌에서 사용할 수있는 다양한 프로토콜이 있지만, 이러한 프로토콜의 대부분은 종종 대상 유효성 검사에 초점을 맞춥니다. 여기에 설명된 절차는 알레르기 성 질병의 발달을 조절하는 데 중요한 환경 알레르겐의 구성 요소를 식별하기 위해 적용 될 수 있습니다.

<table><tbody><tr><td>0.40 & 마이크로; m Falcon Cell Strainer</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>08-771-1</td><td></td></tr><tr><td>1 mL 주사기</td><td>Henke Sass Wolf</td><td>5010.200V0</td><td></td></tr><tr><td>15 mL 튜브</td><td>TH. 가이어</td><td>7696702</td><td></td></tr><tr><td>50 mL 튜브</td><td>TH. Geyer</td><td>7696705</td><td></td></tr><tr><td>70% 에탄올</td><td>Decon Labs</td><td>2701</td><td></td></tr><tr><td>절대 계수 구슬</td><td>Life Technologies Europe BV</td><td>C36950</td><td></td></tr><tr><td>ACK-RBC 용해 완충액</td><td>Lonza</td><td>10-548E</td><td></td></tr><tr><td>Amersham Hybond-N+ 멤브레인</td><td>GE 헬스케어</td><td>RPN203B</td><td></td></tr><tr><td>Ant</td><td>San Antonio</td><td>참고: 국부적으로 수집된</td><td></td></tr><tr><td>항체 희석 완충액</td><td></td><td>(레시피는 표 5 참조)</td><td></td></tr><tr><td>Anti-Mouse CD11b V450 Rat (clone M1/70)</td><td>BD Bioscience</td><td>560456</td><td>1 to 200 희석</td></tr><tr><td>Anti-Mouse CD11c PE-Cy7 (클론 N418)</td><td>BioLegend</td><td>117317</td><td>1-200 희석</td></tr><tr><td>Anti-Mouse CD19 Alexa Flour 647 (클론 1D3)</td><td>eBioscience</td><td>15-0193-81</td><td>1-200 희석</td></tr><tr><td>Anti-Mouse CD3e APC (클론 145-2C11)</td><td>Invitrogen</td><td>15-0031-81</td><td>1-200 희석</td></tr><tr><td>Anti-Mouse CD45 APC-Cy7 (클론 : 30-F11)</td><td>BioLegend</td><td>103130</td><td>1-200 희석</td></tr><tr><td>Anti-Mouse Fixable Viabillity Dye eFluor 506</td><td>Invitrogen</td><td>65-0866-14</td><td>1 to 200 dilution</td></tr><tr><td>Anti-Mouse IgG (H+L), AP Conjugate</td><td>Promega</td><td>S3721</td><td></td></tr><tr><td>Anti-Mouse Ly-6G FITC (clone RB6-8C5)</td><td>Invitrogen</td><td>11-5931-82</td><td>1 to 200 dilution</td></tr><tr><td>Anti-Mouse MHC II APC-eFluor 780 (clone M5/114.15.2)</td><td>eBioscience</td><td>47-5321-80</td><td>1 to 200 희석</td></tr><tr><td>Anti-Mouse Siglec-F PE (클론 E50-2440)</td><td>BD Pharmingen</td><td>552126</td><td>1 to 200 희석</td></tr><tr><td>BCIP/NBT 기질</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>PI34042</td><td></td></tr><tr><td>Blocking Buffer</td><td></td><td>(레시피는 표 5 참조)</td><td></td></tr><tr><td>캐뉼, 20G X 1.5"</td><td>CADENCE SCIENCE</td><td>9920</td><td></td></tr><tr><td>원심분리기</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>75004030</td><td></td></tr><tr><td>CFX384 터치 실시간 PCR 검출 시스템</td><td>Bio-Rad Laboratories</td><td>1855485</td><td></td></tr><tr><td>클로로포름</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>C298-500</td><td></td></tr><tr><td>바퀴벌레</td><td>Greer Laboratories</td><td>B26</td><td></td></tr><tr><td>카운팅 비드</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>01-1234-42</td><td></td></tr><tr><td>D. farinae</td><td>Greer Laboratories</td><td>B81</td><td></td></tr><tr><td>D. pteronyssinus</td><td>Greer Laboratories</td><td>B82</td><td></td></tr><tr><td>Denville Cell Culture Plates with lid, 96 well cell culture plate</td><td>Thomas Scientific</td><td>1156F03</td><td></td></tr><tr><td>디지털 드라이 배스 - Four Blocks</td><td>Universal Medical, Inc.</td><td></td><td></td>BSH1004</tr><tr><td>지렁</td>이 <td>샌안토니오</td><td>참고: 국부적으로 수집된</td><td></td></tr><tr><td>에틸렌디아민테트라아세트산(EDTA)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>E6511</td><td></td></tr><tr><td>FACS 완충액</td><td></td><td>(표 5의 레시피 참조)</td><td></td></tr><tr><td>Falcon Round-Bottom Polypropylene Tubes, 5 mL</td><td>STEMCELLTM TECHNOLOGIES</td><td>38056</td><td></td></tr><tr><td>유세포 분석기(BD FACS Celesta)</td><td>BD Biosciences</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Fly</td><td>Greer Laboratories</td><td>B8</td><td></td></tr><tr><td>집게</td><td>Roboz 수술 기구</td><td>RS-5135</td><td></td></tr><tr><td>혈구계</td><td>Hausser Scientific</td><td>3110</td><td></td></tr><tr><td>HT-DNA</td><td>시그마</td><td>D6898</td><td></td></tr><tr><td>In Vivo MAb 안티 마우스 CD16/CD32 (클론: 2.4G2)</td><td>Bio X Cell</td><td>BE0307</td><td></td></tr><tr><td>iScript cDNA 합성 키트</td>, <td>Bio-Rad Laboratories</td>, <td>1708891</td><td></td></tr><tr><td>Isoflurane</td>, <td>Abbott Labs,</td><td>sc-363629Rx</td>, <td></td></tr><tr><td>Isopropanol</td><td>, Thermo, Fisher Scientific</td><td>, BP2618500</td><td></td></tr><tr><td>J2, anti-dsRNA, monoclonal antibody</td>, <td>SCICONS</td><td>10010200</td><td></td></tr><tr><td>폐 소화 용액</td><td></td><td>(표 5의 레시피 참조)</td><td></td></tr><tr><td>lysing matrix, D</td><td>MP Biomedicals</td><td>116913050-CF</td><td></td></tr><tr><td>용해 매트릭스 D, 2 mL 튜브</td><td>MP Biomedicals</td><td>SKU:116913100</td><td></td></tr><tr><td>Mice (암컷, 8-12주령, C57BL/6J)</td><td>Jackson Laboratory</td><td>#000664</td><td></td></tr><tr><td>마이크로 원심분리기 튜브 1.5 mL</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>30120.094</td><td></td></tr><tr><td>현미경</td><td>Olympus</td><td>CK30</td><td></td></tr><tr><td>Mini-BeadBeater</td><td>Homogenizers</td><td>SKU:BS:607</td><td></td></tr><tr><td>Mini-Beadbeater-16</td><td>Biospec</td><td>607</td><td></td></tr><tr><td>Mosquito</td><td>Greer Laboratories</td><td>B55</td><td></td></tr><tr><td>NanoDrop 2000C</td><td>Thermo Scientific 분광 광도계 Medex 공급</td><td>TSCND2000C</td><td></td></tr><tr><td>바늘, 21 g x 1 1/2 in</td><td>BD Biosciences</td><td>305167</td><td></td></tr><tr><td>무지방 우유</td><td>Bio-Rad Laboratories</td><td>1706404</td><td></td></tr><tr><td>나일론 스트링</td><td>Dynarex</td><td>3243</td><td></td></tr><tr><td>인산염 완충 식염수(PBS)</td><td>Lonza</td><td>BE17-516F</td><td></td></tr><tr><td>RNase III</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>AM2290</td><td></td></tr><tr><td>RNase T1</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>AM2283</td><td></td></tr><tr><td>가위</td><td>Roboz 수술 기구</td><td>RS-6802</td><td></td></tr><tr><td>셰이커 또는 소형 실험실 믹서</td><td>Boekel Scientific</td><td>201100</td><td></td></tr><tr><td>SPHERO AccuCount 형광</td><td>Spherotech</td><td>ACFP-70-5</td><td>1-10 희석</td></tr><tr><td>스파이</td>더 <td>샌안토니오</td><td>참고: 현지에서 수집된</td><td></td></tr><tr><td>TBS</td><td></td><td>(표 5의 레시피 참조)</td><td></td></tr><tr><td>TBS-T</td><td></td><td>(표 5의 레시피 참조)</td>총 세포 배지(표 5의 레시피 참조)<td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>TRIzol 시약</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>15596018</td><td></td></tr><tr><td>트윈 20</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P9416</td><td></td></tr><tr><td>UV Stratalinker 2400 UV</td><td>LabX</td><td>20447</td><td></td></tr><tr><td>Wasp</td><td>San Antonio</td><td>참고: 현지 수집</td><td></td></tr></tbody></table>

호산성 폐 염증을 조절하는 hdm 알레르겐의 면역원성 rna 종의 식별 및 특성화

Identification and Characterization of Immunogenic RNA Species in HDM Allergens that Modulate Eosinophilic Lung Inflammation

집 먼지 진드기 (HDM)와 같은 환경 알레르겐은 종종 비정상적인 유형 2 반응을 구동하는 알레르기 성 단백질과 타고난 면역 반응을 유도하는 미생물 물질을 포함하는 복잡한 형태로 종종 있습니다. 이러한 알레르겐 관련 미생물 성분은 알레르기 성 천식과 같은 타입-2 염증 조건의 발달을 조절하는 데 중요한 역할을합니다. 그러나 기본 메커니즘은 크게 정의되지 않은 상태로 유지됩니다. 여기서 제시된 프로토콜은 알레르겐 관련 면역 자극RNA의 구조적 특성 및 생체 내 활성을 결정한다. 구체적으로, 일반적인 알레르겐은 폐에서 IFN 반응을 자극하고 HDM 유도 알레르기 천식의 마우스 모델에서 중증 폐 호산구의 발달을 억제할 수 있는 이중 좌초 RNA(dsRNA) 종의 존재를 검사한다. 여기서, 우리는 다음과 같은 세 가지 분석을 포함했다: HDM 종을 포함한 알레르겐으로부터 분리된 총 RNA에서 dsRNA 구조를 보여주는 도트 블롯, RT-qPCR은 마우스 폐및 FACS 분석에서 인터페론 자극 유전자(ISGs) 발현에서 HDM RNA의 활동을 측정하여 각각 BAL및 폐, 폐의 EOSinophils수에 대한 HDM RNA의 효과를 결정한다.

HDM, 곤충 및 비 곤충 작은 동물에서 긴 dsRNA 구조의 존재는 dsRNA 특이적 마우스 단일 클론 항체 J2 (≥ 40bp)를 사용하여 점 블롯에 의해 검사되었다. RNase III는 DsRNA를J2(도1)에 의해 검출할 수 없는 12-15 bp dsRNA 단편으로 소화하는 데 사용하였다.
HDM 총 RNA의 능력은 용량 의존적 방식으로 마우스 폐에서 선천적인 면역 반응을 자극하는 RT-qPCR(도2,상부)에 의해 분석되었다. RNase III 치료는 HDM 총 RNA의 면역 자극 활성을 폐지하여 HDM 총 RNA의 dsRNA 구조가 폐의 타고난 면역 활성에 필수적임을나타냅니다(도 2,하급).
중증형 2형 폐염증의 개발에 대한 HDM 총 RNA의 억제 효과는 FAC...

집 먼지 진드기 (HDM)와 같은 환경 알레르겐은 종종 알레르기 염증을 조절하기 위해 선천적 인 면역 반응을 활성화하는 미생물 물질을 함유하고 있습니다. 여기에 제시된 프로토콜은 HDM 알레르겐에서 dsRNA 종의 식별과 호산성 폐 염증을 조절하는 면역원성 활동의 특성화를 보여줍니다.

호산성 폐 염증을 조절하는 HDM 알레르겐의 면역원성 RNA 종의 식별 및 특성화

Environmental allergens such as house dust mites (HDM) are often in complex forms containing both allergic proteins that drive aberrant type 2 responses ...

이 프로토콜은 현재 미생물 물질과 환경 알레르겐이 알레르기 염증의 발달을 조절할 수있는 방법에 대한 매우 중요하고 해결되지 않은 문제를 해결하기 위해 설계되었습니다. 구체적으로, 여기에 제시된 방법은 집 먼지 진드기에 있는 이중 좌초 RNA 종이 생체내 면역원성이고 호산성 폐 염증을 조절할 수 있는지 여부를 대답하는 것을 도울 수 있습니다. 이러한 기술의 주요 장점은 간단하고 효율적이며 재현성이 뛰어나며 일반적으로 사용되는 도구와 장비를 사용하여 수행할 수 있다는 것입니다.이 방법은 또한 호흡기 바이러스성 감염에 기인한 폐 질병을 평가하기 위하여 이용될 수 있습니다. 내 실험실에서 대학원생 인 Li She는 절차를 시연하는 데 도움이 될 것입니다. 알레르겐, 곤충 및 비 곤충 알레르겐에서 총 RNA를 격리하는 것으로 시작합니다.적당한 양의 시편을 1.4밀리미터의 세라믹 구슬을 함유한 2밀리리터 튜브로 옮기고, 액체 질소 용기에 튜브를 약 10분 동안 동결한다. 각 튜브에 구안디늄 티오야네이트 계 RNA 격리 시약 1밀리리터를 추가합니다. 그런 다음 곤충과 곤충이 아닌 작은 동물을 고에너지 세포 파괴기로 45초 동안 최대 속도로 분해합니다.얼음에 샘플을 냉각하고 두 번이 과정을 반복합니다. 솔루션을 새로운 1.5 밀리리터 튜브로 전송합니다. 각 튜브에 200 마이크로리터를 추가하고 샘플을 소용돌이시다.14, 000배의 튜브를 섭씨 4도에서 14분간 원심분리합니다. 그런 다음 상부 수성 상을 500 마이크로리터의 이소프로판올을 포함하는 새로운 튜브로 옮길 수 있습니다. 샘플을 섞는다.그런 다음 원심 분리는 섭씨 4도에서 14 분 동안 14, 000 배 g에서 원심 분리합니다. 신중하게 슈퍼 나티를 흡인. 그런 다음 RNA 펠릿을 75%에탄올의 500 마이크로리터로 세척하고, 원심분리기는 섭씨 4도에서 10분 동안 7, 500회 g에서 씻어낸다.조심스럽게 모든 액체를 제거합니다. 펠릿을 공기 건조시키고 RNA가 없는 물 20~50마이크로리터로 RNA를 용해시키십시오. 총 RNA에서 이중 좌초 된 RNA 구조를 검출하기 위해, 양전하 나일론 멤브레인에 마이크로리터 당 200 나노 그램 RNA 샘플의 2 개의 마이크로 리터를 발견한다.UV 크로스링커에서 1, 200 마이크로줄에서 멤브레인에 샘플을 교차 연결합니다. 얼룩당 총 1.2 마이크로그램의 RNA가 생성되는 두 번 더 스포팅및 교차 연결을 반복합니다. 실온에서 흔들면서 1시간 동안 TBS-T에서 5%의 우유로 비특이적 결합을 차단합니다.그런 다음 차단 용액을 제거하고 TBS-T에서 1%의 우유에 1대 1, 000 희석에서 반이중 좌초 RNA J2 항체를 첨가한다. 하룻밤 사이에 막을 배양하고 섭씨 4도에서 흔들어 보임. 다음 날, 세척 당 5 분 동안 TBS-T로 멤브레인을 세 번 씻으시다.이차 항체를 추가하고 실온에서 1 시간 동안 멤브레인을 배양하십시오. 그런 다음 TBS-T로 세서를 반복합니다. 기판을 추가하고 원하는 신호가 보일 때까지 멤브레인을 5~15분 동안 배양합니다.이중 증류수로 멤브레인을 헹구어 반응을 멈춥시다. 폐 샘플을 수집하려면 폐를 조직 용지에 놓고 각 폐 엽의 작은 조각을 소비합니다. 각 조각을 구슬이 들어 있는 2밀리리터 튜브에 넣습니다.기관지 알롤라 라베이를 수집하려면 안락사 마우스를 70 %에탄올로 소독하고 가위를 사용하여 복부의 상부 영역에서 목으로 피부를 자른다. 침샘과 스테르노하이드 근육을 집게로 떼어 내어 기관지를 노출시합니다. 그런 다음 나일론 문자열을 아래에 놓습니다.캐뉼라를 삽입하기에 충분한 후두 아래 약 2 밀리리터의 기관장에 절개를 하고 기관지와 캐뉼라 주위에 끈을 매듭짓십시오. 주사기를 캐뉼라 끝에 부착하고 신선한 PBS-EDTA로 로드합니다. 그런 다음 용액의 1 밀리리터를 주입하고 폐에 흡입합니다.주사기를 캐뉼라에서 분리하고 용액을 15 밀리리터 튜브로 배출합니다. 이 과정을 반복하여 신선한 PBS-EDTA로 얼음을 만들고 라베를 풀수 있습니다. 4섭씨에서 7분간 500g의 원심분리기.그런 다음 볼륨을 기록하고 펠릿을 방해하지 않고 두 개의 1.5 밀리리터 튜브로 상수튜브를 전송합니다. 펠릿을 다시 중단한 후 150마이크로리터를 96웰 플레이트로 옮기고, 접시를 500배, 섭씨 4도에서 7분간 원심분리합니다. 그런 다음 티슈 페이퍼의 접시를 재빨리 반전하여 상체를 제거합니다.2.4G2 차단 항체의 존재에 FACS 버퍼에 항체를 가진 세포를 얼룩시키고, 어둠 속에서 30 분 동안 실온에서 플레이트를 배양한다. 염색 후, 원심분리판을 500배 g로 4°C에서 7분간 펠릿하게 한다. 티슈 페이퍼의 플레이트를 반전시켜 염색 용액을 제거합니다.FACS 버퍼 100마이크로리터를 추가하여 세포를 세척한 다음 원심 분리를 반복합니다. 150마이크로리터의 FACS 버퍼에서 샘플을 다시 중단한 다음 추가 350마이크로리터의 완충제가 포함된 FACS 튜브로 전송합니다. 각 샘플에 구슬 을 계산하는 25 마이크로 리터를 추가하고 유동 세포 분석으로 진행합니다.집 먼지 진드기, 곤충 및 비 곤충 작은 동물에 긴 이중 좌초 RNA 구조의 존재는 이중 좌초, RNA 특정 마우스 단일 클론 항체를 사용하여 점 블롯에 의해 검사되었다. RNase III는 J2에 의해 검출할 수 없는 12 15개의 염기 쌍 단편으로 이중 좌초 RNA를 소화하기 위하여 이용되었습니다. 마우스 폐에서 선천적인 면역 반응을 자극하는 집 먼지 진드기 총 RNA의 능력은 RT-qPCR에 의해 입증되었다. RNase III 치료는 집 먼지 진드기 총 RNA의 면역 자극 활성을 폐지, 이중 좌초 RNA 구조는 폐에서 타고난 면역 활동에 필수적임을 나타내는.중증형 2형 폐염증의 개발에 대한 집먼지 진드기 총 RNA의 억제 효과는 FACS 분석을 통해 평가하였다. 호산성 폐 염증은 RNase III의 유무에 관계없이 치료된 먼지 진드기 추출물에 의해 유도되었다. 긴 이중 좌초 RNA 종의 분해는 기관지 정맥포 라베이지 및 폐에서 증가 호산구 수에 의해 반영 된 심한 유형 2 폐 염증을 초래했다.특히, 먼지 진드기 총 RNA 처리 군에서 호산구의 수는 내인적으로 긴 이중 좌초 RNA 종을 포함하는 원래의 먼지 진드기 추출물로 처리된 그룹과 비교된다. 이 프로토콜을 시도할 때, 이 단계에서 폐에 어떤 손상이 최종 결과를 바꿀 수 있기 때문에 BAL 액체를 주입하고 회수할 때 매우 주의하십시오. 이 절차 이외에, ELISA와 같은 다른 방법은 BAL 유체에 존재하는 비세포 수용성 함량을 분석하기 위해 수행될 수 있다.개발 후, 이 기술은 알레르기 성 폐 염증의 발달을 조절할 수 있는 비 이중 좌초 RNA 요인과 같은 환경 알레르겐에 존재하는 그밖 미생물 물질을 탐구하는 연구원을 위한 도로를 포장했습니다.

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Research

연구

JoVE Journal

Immunology and Infection

면역학 및 감염학

쥐 호흡 생리학과기도 염증 세포의 샘플링의 반복 측정이 바람직하지만, 일반적으로 가능하지 않습니다. 여기 구두기도 염증 세포의기도 기능 항 진성과 샘플링의 반복 측정을 허용 쥐를 intubating에 대한 반복 방법을 설명합니다.

에어웨이 저항 측정 및 마우스에 Bronchoalveolar 세척 유체 샘플링에 대한 가역, 비침습 방법

알레르기 천식의 실험 마우스 모델은 질병 pathogenesis를 공부하고 새로운 치료제 개발에 새로운 가능성을 제공합니다. 이러한 모델은 잘 알레르기 면역 반응,기도 염증과 폐의 pathophysiology을 규제하는 측정 요소에 적합합니다.

알레르기 항원 유도 천식의 Murine 모델

우리는 ovalbumin 유도된 알레르기기도 염증의 설정에서 ovalbumin에 대한 응답으로 폐 돌기 세포의 성숙 및 마이 그 레이션을 모니터링하는 전략을 설명합니다. 이 전략은 감염의 설정에서 폐 돌기 세포의 이주를 평가하기 위해 수정할 수 있습니다.

알레르기기도 염증 동안 폐 돌기 세포 성숙과 마이 그 레이션 분석

이 동영상은 미세유체 카트리지 기반 화학발광 시스템을 사용하여 혈청 특이적 면역글로불린 E를 검출하는 프로토콜을 보여줍니다. 혈청 IgE는 카트리지의 반응 영역에 고정된 별개의 알레르겐과 상호 작용하며, 이후 과산화효소 접합 항-IgE 항체 및 화학발광 기질로 검출되어 여러 알레르겐 특이적 IgE를 동시에 검출할 수 있습니다.

알레르겐 특이적 면역글로불린 E를 위한 미세유체 카트리지 기반 검출 시스템

이 원고는 특정 올리고뉴클레오티드 유도 농축을 통해 진핵 세포에서 형성된 동족 RNP를 선별하는 방법을 설명합니다. DHX9/RNA 헬리카제 A로 구성된 레트로바이러스 5' 미번역 영역에 결합된 동족 RNP를 분리하여 이 접근법의 적용 가능성을 입증합니다.

올리고 뉴클레오티드 지시 용출을 사용하여 세포에서 동족 RNA 단백질 단지의 분리

후 성적인 요소는 유전자 발현을 조절 하 고 B 세포 기능을 조절 하는 유전자 프로그램으로 작용할 수 있습니다. 결합 하 여 체 외에서 B 세포 자극, qRT-PCR, 및 높은 처리량 예측에 관한 시퀀스 및 mRNA 순서 접근, 우리 B 세포에서 miRNA 및 유전자 표현의 epigenetic 변조를 분석할 수 있습니다.

MicroRNAs 받 클래스 스위치 DNA 재조합 및 플라즈마 세포 차별화에 B 세포 유도에서 mRNAs의 게놈 넓은 분석의 HDAC 억제제 중재 변조

여기 소개 된 프로토콜 vivo에서 염증 성 조건 하에서 기본 인간 림프 톨의 폐 유도 용량 특성을 수 있습니다. 알레르기 염증의 마우스 모델에서 adoptively 전송된 인간의 면역 세포의 폐 침투 몇 군데 하 고 화학적으로 허가 폐 조직의 빛 시트 형광 현미경 검사 법에 의해 측정할 수 있습니다.

고급 폐 유도 빛 시트 현미경 검사 법에 따라 알레르기 염증의 Vivo 모델에서 실험에서 인간 림프 톨의 이미징

여기서 우리는 인간 IgE 수용체에 감염된 쥐 배혈세포세포를 사용하여, 제1형 알레르기 반응에서 전형적으로 관찰되는 이펙터 세포의 분해를 시뮬레이션하기 위해 중재자 방출 분석체를 제시한다. 이 방법은 매우 민감하고 재현 가능하며 맞춤성 방식으로 알레르겐의 생물학적 활성을 조사합니다.

인간화된 중재자 릴리스 분석으로 알레르겐 효능에 대 한 읽기-아웃

이 연구에서, 우리는 뮤린 호흡기의 면역 집단을 분리하기위한 효과적이고 재현 가능한 프로토콜을 제시합니다. 우리는 또한 9 색 기반 유세포 측정 패널을 사용하여 건강한 마우스의 폐에 존재하는 모든 선천적 및 적응 면역 세포를 확인하는 방법을 제공합니다.

뮤린 폐의 선천적 및 적응성 면역 세포의 확인을 위한 유세포 분석

알레르겐 노출 챔버(AEC) 시설에서 챌린지를 수행하기 위한 프로토콜이 제시됩니다. AEC는 안정적인 입자 농도 및 환경 조건을 유지하는 능력으로 인해 알레르기 증상 유도 또는 알레르겐 면역 요법의 효능 테스트에서 종점으로서 안전하고 효과적인 도구임이 입증되었습니다.

알레르겐 노출 챔버를 이용한 알레르기성 비염 환자의 증상 평가

이 프로토콜은 알레르기 비염의 쥐 모델을 평가하기 위한 다색 면역형광 기법을 설명합니다.

Multicolor Immunoassay를 통한 알레르기 비염 쥐의 코 점막 조직 절편에서 면역형광 라벨링

배우세요 집먼지진드기(HDM) 이중가닥 RNA의 면역원성을 식별하고 호산성 폐 염증을 조절하는 방법을 마우스 모델에서 연구하는 기법입니다. 이 프로토콜은 알레르기 천식 연구에 활용됩니다.

호산성 폐 염증을 조절하는 HDM 알레르겐의 면역원성 RNA 종의 식별 및 특성화

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