Name: 시간 해결 된 극저온 전자 현미경 검사법을 위한 빠른 그리드 준비 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2021-11-06T13:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 5 s
Description: 배우세요 극저온 전자현미경을 위한 빠른 그리드 준비 방법을 사용하여 단백질 반응의 순간적인 중간 상태를 포착하는 기술입니다. 이 프로토콜은 고해상도 구조 생물학 연구에 활용됩니다.

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몰리 S.C. 그레이브트에게 유용한 토론과 ABSL 시설 직원에게 cryo-EM 데이터 수집에 도움을 주신 것에 감사드립니다. 데이비드 P. 클레블은 리즈 대학에 의해 투자 애스트베리 센터에서 웰컴 트러스트 4 년 박사 과정 프로그램에 박사 과정 학생입니다. FEI 티탄 크리오스 현미경은 리즈 대학 (UoL ABSL 상)과 웰컴 트러스트 (108466/ Z / 15 / Z)에 의해 투자되었다. 이 작품은 스티븐 P. Muench (BB / P026397/1)에 BBSRC 보조금에 의해 지원되었으며 미국 심장 협회 (AMR21-236078)와 하워드 D. 화이트와 미국 국립 보건 원 (171261)의 하워드 D. 화이트에 대한 연구 보조금에 의해 지원되었다.

1. 시스템 준비
참고: 다음 프로토콜에서는 단일 샘플의 그리드를 준비하는 방법을 설명합니다. 일반적으로 복제 그리드는 각 샘플 또는 조건에 대해 최소 2개의 복제 그리드가 준비됩니다. 빠른 플런지 속도(~ 20ms 시간 지연 미만)의 경우 일반적으로 3 또는 4개의 복제 그리드가 얇은 얼음 영역의 감소를 고려하여 준비됩니다.
<ol><li>단백질 샘플을 원하는 완충제의 목표 농도로 희석시. 일반적으로 최종 농도는 TED와 그리드 준비를 위해 2 mg/mL≥ 잘 작동합니다. 샘플은 10단계까지 얼음 위에 보관할 수 있으며, 10단계 부터 는 3-4 그리드를 준비하는 데 약 20분이 걸리므로 실온에서 상당한 시간을 보낼 수 있습니다.</li>
	<li>TED를 켭니다. 그런 다음 제어 PC를 켜고 제어 소프트웨어를 시작합니다.</li>
	<li>각 주사기 펌프의 이니셜화 버튼(아래 검정 버튼)을 눌러 모든 주사기 펌프를 초기화합니다.</li>
	<li>강력한 전원 공급 장치를 켜고 9V로 설정하고 오실로스코프 제어 소프트웨어를 시작합니다.</li>
	<li>N 2-실린더의레귤레이터 밸브가 닫혀 있는지 확인합니다. 실린더 밸브를 엽니다. 그런 다음, 분무 가스 압력(일반적으로 1-2 bar)에 대해 원하는 값으로 출구 압력을 설정하는 레귤레이터 밸브를 천천히 엽니다. 여기에 사용되는 PDMS 노즐의 경우 노즐의 손상을 피하기 위해 ~ 2.5 바보다 높은 압력을 사용하지 마십시오. 지속적으로 흐르는 가스는 액체가 노즐 팁에 떨어지고 축적되는 것을 방지하여 재현할 수 없는 살포로 이어질 수 있습니다.</li>
	<li>모든 주사기 펌프 밸브가 '부하' 위치에 있는지 확인합니다. 이 작업은 모든 밸브를 제어 소프트웨어의 '디스펜스' 위치로 전환한 다음 다시 '로드'로 전환하여 수행할 수 있습니다. 모든 밸브를 '로드'로 전환하십시오. 모든 주사기를 0으로 설정합니다.</li>
	<li>이 단계에서 시스템에 존재하는 기포를 제거합니다. 이렇게하려면 주사기가 미완성되어야 할 수도 있고, 거품을 수동으로 제거하고 주사기는 더 이상 거품을 포함하지 않을 때 다시 장착되어야 할 수 있습니다.</li>
	<li>액체 처리 구성 요소는 일반적으로 H2O에 저장됩니다. 시료 용액을 적재하기 전에 과도한 버퍼로 튜브를 세척하여 액체 시스템을 버퍼로 평형화합니다. 스프레이 노즐의 과압을 피하기 위해 적절한 최대 액체 유동량을 사용합니다. 액체 유량> 10 μL/s는 여기에 설명된 PDMS 노즐에 손상을 일으킬 수 있다.</li>
	<li>≥ 200 μL 버퍼가 들어 있는 1.5mL 튜브를 주사기 1에 놓습니다(상단은 튜브에 부착하려면 관통해야 합니다).<ol>
<li>밸브 1이 '로드' 위치에 있는지 확인합니다. 필요한 경우 제어 소프트웨어에서 전환합니다.</li>
		<li>제어 소프트웨어를 통해 주사기 1로 버퍼의 원하는 양(일반적으로 50-100 μL)을 흡인합니다.</li>
		<li>제어 소프트웨어를 통해 밸브 1을 '디스펜스' 위치로 전환합니다.</li>
		<li>제어 소프트웨어를 통해 주사기 1에 모든 액체를 분배합니다.</li>
		<li>밸브를 '로드'로 되돌리고, 프로그램의 주사기 위치를 '0'으로 재설정하고 주사기 1에 초기화를 눌러 다음 사이클을 위한 시스템을 준비합니다. 참고: 1.9.1 단계 - 1.9.5 단계는 일반적으로 튜브의 철저한 세척을 보장하기 위해 세 번 반복됩니다.</li>
	</ol></li>
	<li>플런징 암 클램프를 느슨하게 하고 핀셋을 클램프에 넣고 클램프를 조이면 EM 그리드(특정 유형에 대한 요구 사항 없음)를 장착한 핀셋을 로드합니다.</li>
	<li>그리드와 노즐이 동일한 높이('샘플 응용 프로그램' 위치)에 있도록 급락 하는 팔을 수동으로 이동합니다. 노즐과 그리드가 정렬되면 장시간 분사 한 후 그리드에 액체가 축적됩니다. 필요한 경우 노즐 위치를 조정합니다.</li>
	<li>장착된 핀셋으로 플런징 암을 최종 위치로 수동으로 이동하여 액체 에탄 컵의 위치를 조정합니다(에탄 컵에 도달). 올바르게 설정하면 핀셋에 의해 보유된 그리드가 액체 에탄 컵의 중심으로 약도달합니다.</li>
	<li>'실행 스크립트'가 원하는 유량, 볼륨 및 타이밍을 사용하는지 확인합니다. 자세한 내용은 위의 '실행 시퀀스' 섹션을 참조하십시오.</li>
	<li>플런저의 경로를 방해하지 않는 것이 없는지 확인합니다. 단일 실행에 필요한 버퍼 의 볼륨을 주사기 1로 흡인합니다. 이 작업은 제어 소프트웨어에서 수행되며 일반적인 설정 및 볼륨에 대한 섹션 '실행 시퀀스'를 참조하십시오. 그런 다음 밸브 1이 '디스펜스' 위치로 전환되었는지 확인합니다. 제어 소프트웨어에서 실행 스크립트를 눌러 테스트 실행을 수행합니다. 주의: 실행 시퀀스가 완료될 때까지 TED를 지워십시오. 부품을 움직이면 부상을 입을 수 있습니다!</li>
	<li>'실행 시퀀스'가 완료되면 급락하는 암의 압력을 원하는 값(일반적으로 1-2 bar)으로 설정합니다. 그런 다음 제어 소프트웨어에서 확인을 눌러 급락하는 팔에서 압력을 방출합니다. 급락하는 암에 대한 '실행 시퀀스' 또는 압력을 조정해야 하는 경우, 이러한 설정은 이 단계에서 변경될 수 있으며 1.13 - 1.15단계가 반복될 수 있다.</li>
</ol>2. 빠른 그리드 준비
<ol><li>액체 에탄/질소 용기를 먼저 액체 질소로 채웁니다. 충분히 춥고 액체 질소가 없는 경우 컵에 액체 에탄을 채웁니다. 액체 에탄의 응고를 피하십시오. 이 단계는 기존의 그리드 준비와 동일합니다. 참고: 에탄 오염을 최소화하기 위해 2.2- 2.13 단계가 가능한 한 빨리 수행되도록 하십시오. 주의: 액체 에탄은 저온기와 인화성입니다. 취급할 때는 주의해야 합니다.</li>
	<li>광방출을 위해 극저온-EM 그리드를 준비합니다. 우리는 일반적으로 0.1 mbar 기압과 10 mA에서 90 s에 대한 구멍 이탄소 그리드와 빛 방전을 사용합니다. 일반적으로 4개 이상의 그리드가 한 번에 배출되는 광선이 없습니다. 그리드는 광선 방출 후 30분 이내에 사용됩니다.</li>
	<li>샘플로 튜브를 상화합니다(다음 단계 1.9.1 - 1.9.5, 버퍼 대신 샘플을 사용). 사용 가능한 샘플 볼륨이 낮으면 튜브가 죽은 부피가 1개만 으로 평형화될 수 있습니다.</li>
	<li>제어 소프트웨어에서 주사기 1로 실행되는 데 필요한 샘플의 양을 흡인합니다(자세한 내용은 '실행 시퀀스' 섹션 참조). 그런 다음 밸브 1을 '디스펜스' 위치로 전환합니다.</li>
	<li>상대 습도가 원하는 값에 도달했는지 확인합니다(일반적으로 60% 상대 습도 이상으로 그리드를 준비합니다). 60%의 습도를 ≥ 되면 습도가 높은 유지를 위해 최소한의 시간 동안만 습도 챔버를 엽니다.</li>
	<li>핀셋을 공압 플런저에 빛 배출 그리드를 들고 고정합니다. 플런저를 시작 위치(맨 위)로 이동합니다.</li>
	<li>전위도계의 슬라이더가 플런저에 연락하기 위해 수동으로 이동하여 측정을 위한 준비된 시작 위치에 있는지 확인합니다. 오실로스코프 소프트웨어에서 발진기 스코프의 트리거를 설정합니다.</li>
	<li>액체 에탄/질소 용기를 놓습니다.</li>
	<li>제어 소프트웨어에서 실행 스크립트를 누릅니다. 메시지가 표시되면 제어 소프트웨어에서 확인을 클릭하여 실행을 시작합니다. 주의: 실행 시퀀스가 완료될 때까지 TED를 지워십시오. 부품을 움직이면 부상을 입을 수 있습니다!</li>
	<li>'실행 시퀀스'가 완료되면 제어 소프트웨어에서 확인을 클릭하여 공압 플런저에 대한 압력을 해제합니다.</li>
	<li>열린 습도 챔버는 핀셋을 다른 손으로 고정하면서 한 손으로 급락팔과 핀셋 사이의 연결을 느슨하게합니다. 핀셋이 없는 경우, 액체 에탄에 그리드를 유지하면서 급락 팔을 위로 이동합니다. 그런 다음 그리드를 주변 액체 N2의저장 공간으로 전송합니다. 동결 후 그리드는 항상 액체N2 온도에서 유지되어야 합니다.</li>
	<li>오실로스코프 측정을 저장합니다. 수동으로 후 전위 오차계 슬라이더와 플런저의 위치를 재설정합니다.</li>
	<li>복제 그리드를 준비하기 위해 2.4-2.12 단계를 반복합니다.</li>
	<li>그리드 클리핑 및 데이터 수집전까지 그리드를 장기 저장소로 전송합니다.</li>
	<li>단계 1.9.1 - 1.9.5에 따라 버퍼로 시스템을 세척하십시오. 그런 다음 1.9.1 - 1.9.5 단계에 따라 H2O로 시스템을 세척하십시오.</li>
	<li>주요 질소 가스 레귤레이터를 끄고 전원을 끕니다.</li>
	<li>에탄/질소 용기를 연기 후드에 넣고 따뜻하게 하고 액체 에탄과N2가 증발하게 합니다.</li>
</ol>3. 시간 해결 된 극저온 EM
참고: TED를 사용하여 시간 해결 실험을 수행하면 기본 설정 및 변수가 동일하게 유지되지만 고려해야 할 추가 측면이 있습니다. 여기에 두 개의 솔루션이 1:1 (v/v) 비율로 혼합되어 그리드에 증착되는 최종 혼합물을 생성한다고 가정합니다. '1에 설명된 프로토콜을 따릅니다. TED'를 통해 빠른 그리드 준비, 다음과 같은 변경 사항:
<ol><li>간단한 스프레이 실험보다 혼합 실험에 더 높은 재고 농도를 사용합니다. 1:1(v/v) 비율로 혼합하면 각 구성 요소가 2배 희석됩니다.</li>
	<li>빠른 혼합 실험을 위해, 단일 주사기가 아닌 세 개의 주사기를 모두 사용하십시오.<ol>
<li>주사기 펌프 2-3에 튜브를 부착합니다.</li>
		<li>주사기 펌프2-3에서 스프레이 노즐에 튜브를 부착합니다.</li>
		<li>버퍼및 샘플에서 세 개의 주사기를 모두 상량화합니다. 전형적으로, 주사기 1은 샘플 A로 채워지고 주사기 2-3은 샘플B(도 3)로채워져 있다.</li>
	</ol>
</li>
	<li>실행 시퀀스를 변경합니다. 빠른 혼합 실험에 대한 모든 3 개의 주사기를 사용하는 실행 시퀀스에 대한 예가 도 6에서주어진다. 자세한 내용은 '실행 시퀀스' 섹션도 참조하십시오.</li>
	<li>다른 시간 지연은 두 가지 방법으로 달성 될 수있다 :<ol>
<li>플런저 속도를 변경합니다. 플런저 속도를 조정함으로써 시간 지연은 상대적으로 좁은 범위에서 변경될 수 있습니다. 예를 들어, 스프레이/에탄 거리가 2cm인 플런저를 1m/s 또는 2m/s로 이동하여 각각 20ms 또는 10ms의 시간 지연을 줄 수 있습니다. 이 작업은 1.15 단계에서 설명된 대로 수행됩니다.</li>
		<li>스프레이 노즐의 (수직) 위치를 조정하여 스프레이/에탄 위치를 변경합니다. 노즐이 에탄 표면으로부터 5cm 거리에 위치하는 경우, 예를 들어, 1m/s의 급락 속도는 50ms의 시간 지연을 준다. 훨씬 긴 시간 지연을 달성하려면 설정을 추가로 수정해야 합니다. 참고: 노즐의 흐름 초점 영역의 라미나르 흐름으로 인해 노즐의 이 부분에서 상당한 혼합이 기대되지 않습니다. 대신, 우리는 혼합이 스프레이 생성 중에, 그리드로 가는 길에, 그리고 그리드에 퍼지는 물방울 중에 발생할 것으로 예상합니다. 스프레이 액적이 그리드에 도달하는 비행 시간은 1ms (≥ 10m / s의 물방울 속도와 1cm의 노즐 그리드 거리)≤ 추정됩니다. 따라서, 물방울 착륙과 유리화 사이의 시간만 '시간 지연'으로 간주됩니다.</li>
	</ol>
</li>
</ol>

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</ol>

이 작업의 프로토콜은 직접 분무 및 TrEM 실험을 통해 빠른 그리드 준비에 사용할 수 있습니다. 빠른 그리드 준비는 공기 물 인터페이스5와의입자 상호 작용을 줄이기 위해 사용될 수 있다. 주요 제한 사항은 그리드에서 사용 가능한 샘플 농도 및 얼음 두께입니다. 이러한 제한 내에서 샘플 품질이 양호하다면 프로토콜은 고해상도 저온-EM에 적합한 그리드를 생성합니다.
문제 해결 액체 유량 및 그리드 속도는 그리드에 증착된 액체의 양을 결정합니다. 위에 주어진 예제 설정(액체 유량 5 μL/s 및 플런지 속도 1-2 m/s)를 사용하면 방울이 있는 그리드의 좋은 커버리지가 예상됩니다. 노즐이 잘 정렬되지 않은 경우 (그래서 스프레이 방울이 그리드를 그리워), 냉동 그리드는 거의 또는 전혀 방울을 보여줍니다.
그리드의 오염은 완전히 피할 수 <strong cl...

배경 냉동 전자 현미경 검사법 (극저온-EM)의 최근 개발은 고해상도에서 점점 더 복잡해지는 시스템의 구조 연구를 가능하게했습니다. 몇 가지 예외를 제외하고, 이러한 연구는 평형1 또는 상대적으로 느린 반응2에서생물학적 거대 분자로 제한되었습니다. 생체 내 많은 프로세스는 더 빠른 시간 척도(밀리초)에서 발생하며 이러한 기간3에서시간 해결 된 저온 EM (TrEM)에 대한 관심이 증가하고 있습니다. 그러나, 블로팅 방법에 의한 종래의 극저온-EM 샘플 제제는 밀리초 TrEM에 비해 너무 느립니다.
블로팅 방법은 가난한 시간 해결 외에 다른 제한이 있습니다. 단백질 및 단백질 복합체는 그리드4에서데우레이션 또는 선호하는 방향으로 고통받을 수 있다. 시료 준비 중 공기-물 인터페이스에 대한 노출 시간을 줄이는 것은 바람직한 방향 및 단백질 탈약5,6을완화하는 것으로 나타났다. 따라서 빠른 그리드 준비는 밀리초 TrEM을 가능하게 할 뿐만 아니라 그리드 품질을 향상시킬 수 있습니다.
현재 자동화된 그리드 준비에는 세 가지 접근 방식이 있습니다. 첫 번째 방법은 소량의 샘플을 보유하는 핀 또는 모세관을 사용합니다. 액체와 그리드 표면 사이의 접촉을 설정한 후 샘플은 그리드7,8에'기록'된다. 샘플 응용 프로그램 프로세스는 비교적 느리고 몇 초 정도 걸립니다. 대체 접근법은 압전 디스펜서와 자기 위킹 그리드9에의해 제어 된 액적 생성을 사용합니다. 이렇게 하면 더 빠른 디스펜스가 시간을 동결할 수 있지만 여전히 액적 및 속지 속도(현재 54ms에 도달)에 의해 제한됩니다. 지금까지 가장 빠른 접근법은 시료가 분무 노즐로 분무되고 작은 (~ 10 - 20 μm) 및 크저온-EM 그리드와 접촉할 때 빠른 (&gt; 5m/s) 방울이 퍼지는 직접 스프레이 접근법입니다. 시료 분무는 에어블라스트 분무기, 표면 음향파 또는 초음파가습기(10,11,12,13)와같은 다양한 방법으로 생성될 수 있다. 우리의 경험에서, 직접 살포 접근 방식과 얼음 두께는 더 크지만 직접 살포는 분배가 10 ms&lt; 시간을 동결 할 수 있습니다.
이 프로토콜은 미세 유체 스프레이 노즐을 장착한 시간 해결 된 EM 장치 (TED)가 빠른 시간 척도14,15에서그리드를 준비하는 데 어떻게 사용될 수 있는지 단계별로 설명합니다. 이 장치는 샘플 응용 프로그램과 동결 사이에 최소 6ms의 지연 시간으로 그리드를 준비하고 두 개의 샘플을 빠르게 혼합하고 동결하는 데 사용되었습니다. TED의 디자인은 이전버전(16)을 기반으로 하며 다른 스프레이 기반 시간 해결 극저온-EM장치(17)와유사하다.
첫째, TED 설정의 네 가지 주요 부분이 설명된다. TED의 핵심은 샘플 포부 및 분배를 담당하는 액체 처리 장치입니다. 공압 플런저는 스프레이를 통해 그리드를 액체 에탄으로 이동합니다. 스프레이의 생성은 미세 유체 스프레이 노즐로 달성되고 동결은 액체 에탄 용기에서 수행되며, 이는 간략하게 설명된다. 마지막으로 그리드 환경, 특히 습도를 제어하는 추가 기능이 강조 표시됩니다. 그 다음에는 장치 작동 및 TrEM 실험을 수행하기 위한 자세한 프로토콜이 뒤따릅니다. 빠른 그리드 준비와 간단한 TrEM 실험을 위한 대표적인 결과가 제공됩니다.
실험 설정
액체 처리 장치 TED의 액체 처리 시스템은 3개의 주사기 구동 펌프('펌프 1 - 3')에 의해 형성되며, 각각 로터리밸브(그림 1)가장착되어 있습니다. 전원 공급 장치는 펌프 1 - 3, 24 V DC를 제공합니다. 제어 소프트웨어와의 통신(비주얼 베이직 및 C++로 작성)은 RS232 인터페이스를 통해 펌프 1을 제공합니다. 명령은 펌프 1에서 펌프 2-3까지 직렬 I/O 확장 포트를 통해 배포됩니다. 펌프 1-3에는 유리 주사기(주사기 1-3', 250 μL/제로 데드 볼륨 주사기를 사용)가 장착되어 있습니다. 각 밸브에는 '로드'와 '디스펜스'의 두 위치가 있습니다. '부하' 위치는 샘플을 주사기에 흡인하는 데 사용됩니다. 1/16의 짧은 조각 (~ 3 - 4cm) O.D., 0.01′′ I.D. FEP 튜브는 ETFE /ETFE flangeless 피팅을 통해 밸브 1-3의 '로드' 위치에 연결됩니다. 이 짧은 튜브 조각은 샘플 저장소(일반적으로 1.5mL 또는 0.5mL 플라스틱 튜브)에 도달합니다. '디스펜스' 위치는 스프레이 노즐로 이어집니다. '디스펜스' 콘센트와 스프레이 노즐 의 연결은 PE 튜빙(~ 20-30cm 길이, 0.043" O.D., 0.015" I.D.), 소매 튜브(~0.5cm) 및 ETFE/ETFE 플랑지 피팅으로 만들어집니다.
공압 플런저 TED는 공압 플런저를 사용하여 그리드를 가속화하고 샘플 스프레이를 통해 액체 에탄 용기로 이동합니다. 음압 핀셋은 그리드를 잡고, 듀얼 로드 공압 실린더(그림2A)에장착된 홈 내장 홀더에 나사로 고정됩니다.
압력은 다단계 레귤레이터 (0 - 10 bar, '주요 압력')가 장착 된 대형 질소 가스 실린더 (크기 W)에서 공급됩니다. 유연한 강화 PVC 튜브(12mm O.D.)는 레귤레이터를 12포트 매니폴드에 연결하여 가압 질소를 노즐과 공압 플런저로 전달합니다. 노즐을 통과하는 가스 흐름은 일정하며 질소 실린더(main pressure)에서 직접 조절됩니다. 노즐과의 연결은 PU 튜빙(4mm O.D., 2.5mm I.D.), PE 튜빙(~ 8cm 길이, 0.043" O.D., 0.015" I.D.) 및 적절한 커넥터로 만들어집니다. 공압 플런저에 대한 압력은 솔레노이드 밸브를 통해 제어됩니다. PU 튜빙(4mm O.D., 2.5mm I.D.)은 솔레노이드 밸브를 레귤레이터 및 공압 플런저와 연결하여 급락 압력(≤ 주 압력)을 줄입니다. 솔레노이드 밸브는 컴퓨터 제어됩니다. 설정에 대한 회로도 개요는 그림 2B에제공됩니다.
이 설정을 사용하면 급락 압력은 항상 분무 가스 압력(주 압력)보다 동일하거나 작습니다. 그러나, 낮은 스프레이 가스 압력에서 더 높은 플런지 속도를 허용하기 위해 스프레이 노즐의 두 번째 레귤레이터 상류를 통합하여 설정을 쉽게 변경할 수 있습니다. 고압(&gt;&gt; 2bar)은 PDMS 스프레이 노즐을 손상시킬 수 있습니다.
주의: 이것은 가압 시스템이며 '주요 압력'은 항상 7 bar&lt;되어야합니다.
압력0.5와 2 바 사이의 압력은 일반적으로 공압 플런저에 사용되며 압력과 속도 사이의 대략 선형 관계를 표시합니다(스프레이의 수직 위치에서). 플런지 속도는 오실로스코프로 측정되며, 슬라이드 전위도(10kΩ)에 따라 2kΩ 저항기(그림2C)와병행하여 연결됩니다. 전원 공급 장치는 9 V DC와 함께 전위요계를 제공합니다. 대략적인 플런지 속도는 플런지 압력을 설정하여 실험 전에 설정되지만, 전위전도계는 실험 후 속도를 정확하게 판독합니다.
스프레이 노즐과 액체 에탄 용기 스프레이 기반 시료 전달을 위한 가스 동적 가상 노즐의 제조 및 작동은 다른 곳에서 자세히설명되어 있다(15). 전술한 바와 같이, 밸브 1-3의 '디스펜싱' 출구는 노즐(도3A)의액체 입구에 연결된다. 가압 된 스프레이 가스는 노즐의 가스 입구에 연결되어 있습니다. PDMS 스프레이 노즐의 입구는 0.043" O.D. PE 튜빙이 피팅 없이 직접 사용할 수 있도록 합니다. 당사의 노즐 설계에는 심판18에설명된 장치와 유사한 두 개의 샘플을 혼합하기 위한 '제트 인 제트' 지오메트리가 포함되어 있습니다. 설계의 회로도는 도 3B에도시되며, 노즐의 현미경 이미지는 도 3C에도시된다. 미세 유체 장치의 레이아웃은 두 개의 샘플을 혼합하기 위해 세 개의 주사기를 사용해야합니다. 스프레이 노즐은 일반적으로 그리드에서 1-1.5cm 거리(샘플 응용 프로그램 중)에 배치됩니다.
우리는 표준 블로팅 방법에 사용되는 액체 에탄 /질소 용기에서 극저온으로 액체 에탄을 사용합니다. 실험실 리프팅 플랫폼으로 액체 에탄 컵의 수직 위치 지정이 달성됩니다.
스프레이 및 그리드 환경 제어 플런저 및 스프레이 노즐은 이중도어(그림 4A)가있는 맞춤형 내장 PMMA(아크릴 유리) 상자에 포함되어 있습니다. 상자 내부의 높은 상대 습도는TED(도 4B)의뒷면의 공기 가습 시스템에 의해 달성된다. 공기는 펌프에 의해 공급되고 처음 10"캐니스터로 공급됩니다 (일반적으로 싱크대 수정화에 사용됨). 캐니스터는 낮은 (~ 5-10cm) 수준의 물로 채워지며 가습기 유닛도 있습니다. 가습기에 대한 주전원은 디지털 습도/온도 컨트롤러와 아크릴 유리 상자 내부에 있는 습도/온도 센서에 의해 제어됩니다. 상대 습도가 90%≥ 도달하면 컨트롤러가 펌프를 끄도록 설정됩니다. 첫 번째 캐니스터에서 가습 된 공기는 디퓨저를 통해 펌핑되어 10 인치 캐니스터에 물에 담근 다음 아크릴 유리 상자에 들어갑니다.
주의: 시료가 분무 노즐에서 에어로졸화되기 때문에 유해 생물학적 또는 화학 적 시편은 시료로 적합하지 않습니다.
실행 시퀀스 제어 소프트웨어의 실행 스크립트 버튼은 실행 시퀀스를 시작합니다. 이 명령 시퀀스는 스크립트 파일에서 미리 정의되고 소프트웨어를 통해 변경할 수 있습니다. 가장 중요한 변수는 다음과 같습니다.
스프레이 속도: 스프레이 속도는 주사기 펌프에서 사용하는 액체 유동량을 결정합니다. 유량은 다음과 같이 계산할 수 있습니다: 여기에 사용되는 주사기 펌프 모터는 고정 된 단계 크기를 가지고 있습니다. 펌프의 전체 범위는 48,000 단계로 나뉩니다. 두 번째 중요한 요소는 주사기 볼륨입니다. 우리는 일반적으로 250 μL 주사기를 사용합니다. 제어 소프트웨어의 스프레이 속도는 단계/초 수로 설정됩니다. 1000 걸음/초의 스프레이 속도는 다음에 해당합니다.
<img alt="Equation 1" src="/files/ftp_upload/62199/62199eq01.jpg">
스프레이 볼륨: 스프레이 볼륨은 분사할 총 부피를 결정합니다. 따라서, 또한 스프레이의 지속 시간을 결정한다. 제어 소프트웨어의 분무 볼륨은 여러 단계로 설정됩니다. 1000걸음/초의 스프레이 속도로 2,000단계의 스프레이 볼륨은 2s의 스프레이 지속 시간과 총 10.4 μL의 부피를 이끕킵니다.
사전 분무 시간: 이 변수는 스프레이와 플런지의 개시 시간을 정의합니다. 그리드를 급락하기 전에 스프레이가 안정화할 충분한 시간이 있도록 지연 시간을 선택하는 것이 중요합니다. 일반적으로, 스프레이는 그리드가 급락하기 전에 안정화하기 위해 1.5 - 4 s가 주어집니다. 그리드가 통과될 때까지 스프레이가 유지됩니다. 일반적으로, 액체 흐름(및 따라서 스프레이)은 그리드가 급락한 후 0.5~1s로 정지된다. 1000 걸음/s의 스프레이 속도와 2000단계의 스프레이 볼륨을 사용하여 일반적인 사전 스프레이 시간은 1.5초입니다.
명령의 예시적인 시퀀스는 도 5A에도시되고, 시간이 지남에 따라 그리드 위치는 도 5B에도시된다.

<table><tbody><tr><td><강>시간 분해 장치</강></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>아크릴 유리 상자</td><td>미국 과학적인</td><td></td><td></td></tr><tr><td>디지털 습도/온도 컨트롤러</td><td>THE20 디지털 습도/온도 컨트롤러</td><td></td><td></td></tr><tr><td>듀얼로드 공압 실린더</td><td>듀얼로드 공압 실린더 TN 10x70</td><td></td><td></td></tr><tr><td>FEP 튜빙</td><td>업처치 사이언티픽 1/16" O.D., 0.01'' I.D. FEP 튜빙</td><td></td><td></td></tr><tr><td>플랜지리스 피팅</td><td>Upchurch Scientific ETFE/ETFE 플랜지 리스 피팅</td><td></td><td></td></tr><tr><td>유연한 강화 PVC 튜빙</td><td>12mm OD. 유연한 강화 PVC 튜빙</td><td></td><td></td></tr><tr><td>유리 주사기</td><td>Kloehn 250 &micro; L 제로 데드 볼륨</td><td></td><td></td></tr><tr><td>가습기 펌프</td> Thermo/FEI의 <td>Aqua Air AP3</td><td></td><td></td></tr><tr><td>액체 에탄 용기</td><td>해석 VitrobotTM Mark IV</td><td></td><td></td></tr><tr><td>다단 레귤레이터</td><td>GASARC 클래스 3 다단 레귤레이터</td><td></td><td></td></tr><tr><td>음압 핀셋</td><td>Dumont N5 Inox B 음압 핀셋</td><td></td><td></td></tr><tr><td>오실로스코프</td><td>Hantek 6022BE 오실로스코프</td><td></td><td></td></tr><tr><td>PE 튜빙</td><td>Scientific Commodities Inc. 0.043" 외경, 0.015" I.D. PE 튜빙</td><td></td><td></td></tr><tr><td>전원 공급 장치</td><td>Mean Well GSM160A24-R7B</td><td></td><td></td></tr><tr><td>전원 공급 장치</td><td>Wanptek KPS305D 전원 공급 장치</td><td></td><td></td></tr><tr><td>PU 튜빙</td><td>SMC TU0425 4mm O.D., 2.5mm I.D. PU 튜빙</td><td></td><td></td></tr><tr><td>레귤레이터</td><td>Norgren R72G-2GK-RMN</td><td></td><td></td></tr><tr><td>슬라이드 전위차계</td><td>PS100 슬라이드 전위차계</td><td></td><td></td></tr><tr><td>솔레노이드 밸브</td><td>SMC NVJ314M 솔레노이드 밸브</td><td></td><td></td></tr><tr><td>주사기 구동 펌프</td><td>Kloehn V6 48K 모델</td><td></td><td></td></tr><tr><td><강력한>시약 & 재료</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>apoferritin from equine spleen</td><td>Sigma-Aldrich, A3660</td><td></td><td></td></tr><tr><td>ATP</td><td>Sigma-Aldrich, A2383</td><td></td><td></td></tr><tr><td>cryo-EM grids</td><td>Quantifoil 300 mesh Cu, R 1.2/1.3</td><td></td><td></td></tr><tr><td>EGTA</td><td>Sigma Aldrich E3889</td><td></td><td></td></tr><tr><td>F-actin</td><td>H.D. White 제공(준비 절차는 ref. < 참조) sup>1)</td><td></td><td></td></tr><tr><td>글로우 디스와</td>저-디스와저 <td>Cressington 208 탄소 코팅기, 글로우 방전 유닛</td><td></td><td></td></tr><tr><td>HEPES</td><td>Sigma-Aldrich, H7006</td><td></td><td></td></tr><tr><td>KAc</td><td>Sigma-Aldrich, P1190</td><td></td><td></td></tr><tr><td>MgCl2</td><td>Sigma-Aldrich, M8266</td><td></td><td></td></tr><tr><td>MOPS</td><td>Sigma-Aldrich, M1254</td><td></td><td></td></tr><tr><td>NaCl</td><td>Sigma-Aldrich, S9888</td><td></td><td></td></tr><tr><td>골격근 미오신 S1</td><td>H.D. White 제공 (준비 절차는 참조 2 참조)</td><td></td><td></td></tr><tr><td>참조 1</td><td>Spudich, J. A. & 와트, S. 토끼 골격근 수축의 조절 I. 트로포미오신 - 트로 포닌 복합체와 액틴 및 미오신 단백질 분해 단편의 상호 작용에 대한 생화학 적 연구. 생물 화학 저널 246, 4866-4871 (1971).</td><td></td><td></td></tr><tr><td>참조 2</td><td>White, H. & Taylor, E. actomyosin adenosine triphosphatase의 에너지 및 메커니즘. Biochemistry 15, 5818-5826 (1976).</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

시간 해결 된 극저온 전자 현미경 검사법을 위한 빠른 그리드 준비

Fast Grid Preparation for Time-Resolved Cryo-Electron Microscopy

저온 전자 현미경 검사법(cryo-EM) 분야는 새로운 하드웨어 및 처리 알고리즘으로 빠르게 발전하여 더 까다로운 시스템에 대한 고해상도 구조와 정보를 생성하고 있습니다. 저온-EM에 대한 샘플 준비는 기존의 블로팅 시스템을 대체하기 위해 새로운 접근 방식이 개발되면서 유사한 혁명을 겪고 있습니다. 여기에는 압전 전기 디스펜서, 핀 인쇄 및 직접 살포의 사용이 포함됩니다. 이러한 발전의 결과로 그리드 준비 속도는 초에서 밀리초로 이동하여 특히 단백질과 기판이 급락하기 전에 빠르게 혼합될 수 있는 시간 해결 된 냉동 고극 EM 분야에서 짧은 수명 중간 상태를 트래핑하는 새로운 기회를 제공합니다. 여기에서는 표준 빠른 그리드 준비와 시간 해결 실험을 위해 사내 시간 해결 EM 장치에서 그리드를 만들기 위한 표준 프로토콜을 자세히 설명합니다. 이 프로토콜은 4개의 그리드의 제조를 위해 ≥ 2 mg/mL의 농도에서 약 50 μL 샘플을 요구합니다. 샘플 응용 프로그램과 동결 사이의 지연은 10 ms만큼 낮을 수 있습니다. 한 가지 제한은 더 빠른 속도로 얼음 두께가 증가하고 블로팅 방법에 비해 증가한다는 것입니다. 이 프로토콜이 다른 사람들이 자신의 그리드 제작 장치와 시간 해결 된 실험을 설계하는 데 도움이되기를 바랍니다.

TED와의 빠른 그리드 준비 빠른 그리드 준비를 위한 시험 표본으로서, 우리는 30mHEPES, 150 mM MM NaCl, pH 7.5에서 20 μM에서 말 비장에서 아포페리틴을 사용했습니다. 3.5 Å 해상도에서 의재건은심판15(도 7A)에기재된 690개의 현미경으로부터 수득하였다. 디포커스 범위는 원시이미지(도 7B)에서입자를 쉽게 식별할 수 있도록 선택되었다. 10-40 ms의 시간 지연으로 제조된 일반적인 그리드는 &gt; 1000개의 현미경 으로 수집할 수 있도록 얇은얼음(도 7C)의충분한 영역을 나타낸다. 결과 분해능은 얼음 두께에 의해 제한될 가능성이 높으며, 다수의 상이한 그리드의 지형 분석에 따르면 96± 33nm 얼음 두께6을나타냈...

여기에서는 빠른 그리드 제작과 시간 해결 실험을 수행하기 위해 빠른 혼합 및 동결을 위한 신속한 그리드 제작 장치를 사용하기 위한 자세한 프로토콜을 제공합니다.

The field of cryo-electron microscopy (cryo-EM) is rapidly developing with new hardware and processing algorithms, producing higher resolution structures ...

안녕하세요,이 JoVE"비디오에 오신 것을 환영합니다. 리즈에서 개발 중인 시간 해결 연구인 빠른 그리드 제작을 위해 여기에 있는 설정을 소개하고 싶습니다. 이것은 표준 시스템이 아니라는 점에 유의하십시오, 그러나 우리는 당신에게 우리가하는 모든 일과 매개 변수에 대한 자세한 설명을 제공함으로써, 당신은 당신의 자신의 실험실에서 유사한 시스템을 개발할 수 있기를 바랍니다.장치에 대한 자세한 설명은 리치몬드 프로토콜에 제공됩니다. 여기에서빠른 그리드 준비 및 시간 해결 EM을 위한 단계별 가이드를 제공할 것입니다. 우리의 경험에서, 단백질 농도 밀리 리터 당 2 밀리 그램 이상 이어야 한다. 이 프로토콜에는 최소 50마이크로리터가 필요합니다.장치를 켭니다. 그런 다음 제어 PC를 켜고 제어 소프트웨어를 시작합니다. 각 주사기 펌프의 초기화 버튼을 눌러 모든 주사기 펌프를 초기화합니다.강력한 전원 공급 장치를 켜고 9볼트로 설정하고 오실로스코프 제어 소프트웨어를 시작합니다. 가압 질소 가스는 스프레이를 생성하기 위해 필요합니다. 질소 실린더를 열고 압력을 2 막대로 설정합니다.모든 주사기 펌프 밸브가 부하 위치에 있는지 확인합니다. 이렇게 하려면 모든 밸브를 전환하여 제어 소프트웨어에서 디스펜스한 다음 다시 로드합니다. 모든 주사기를 0으로 설정합니다.시스템에 존재하는 모든 기포는이 단계에서 제거해야합니다. 이렇게하려면 주사기는 나사를 풀고 거품을 수동으로 제거하고 주사기가 더 이상 거품을 포함하지 않을 때 다시 장착되어야 할 수 있습니다. 액체 처리 시스템은 일반적으로 물에 저장됩니다.샘플을 로드하기 전에 시스템은 버퍼로 평형화됩니다. 이것은 버퍼의 초과와 튜브를 세척하여 이루어집니다. 적어도 200 마이크로리터의 버퍼가 포함된 튜브를 주사기 에 놓습니다.튜브 의 상단을 부착하려면 관통해야합니다. 제어 소프트웨어를 사용하여 주사기로 50~100마이크로리터 사이의 적절한 양의 버퍼를 흡인합니다. 밸브 를 전환하여 분배합니다.모든 액체를 주사기에 분배합니다. 밸브를 하중 위치로 반환하고 주사기의 초기화 버튼을 눌러 다음 세척 주기를 위한 시스템을 준비합니다. 이 단계는 일반적으로 튜브의 철저한 세척을 보장하기 위해 세 번 반복됩니다.다음으로 스프레이 노즐이 배치됩니다. 급락하는 팔에 EM 그리드를 놓습니다. 스프레이 노즐 앞에 그리드를 배치합니다.제어 소프트웨어를 사용하여 버퍼를 분배합니다. 노즐과 그리드가 정렬되면 장시간 분사 한 후 액체가 축적되어야합니다. 필요한 경우 노즐 위치를 조정한 다음 그리드에 액체가 축적되는 위치를 다시 확인합니다.다음으로, 에탄 컵의 위치를 조정합니다. 핀셋의 끝은 에탄 컵의 중앙에 대략 도달해야합니다. 모든 설정이 올바른지 확인하기 위해 테스트 실행을 수행합니다.습도 챔버를 닫습니다. 플런저경로가 명확한지 확인합니다. 단일 실행에 필요한 버퍼 의 볼륨을 주사기 로 흡인합니다.밸브 를 전환하여 분배합니다. 제어 소프트웨어에서 run'in을 눌러 실행을 시작합니다. 주사기 펌프 하나가 이동하고 이 경우 2초 동안 그리드가 적절한 지연 후 1.5초 후에 급락하는지 확인합니다.실행이 완료되면 플런저 암의 압력을 원하는 값으로 설정합니다. 제어 소프트웨어를 눌러 급락하는 팔에서 압력을 해제합니다. 이제 에탄 컵은 시원하고 액체 에탄으로 채워져 있습니다.사용하기 전에 그리드를 글로우 방전합니다. 일반적인 광선 배출은 0.1 밀리바 공기에서 10 밀리암페어에서 90초입니다. 그런 다음 튜빙을 샘플로 평가합니다.사용 가능한 샘플 볼륨이 낮으면 튜브가 하나의 데드 볼륨으로 만 평형화 될 수 있습니다. 흡인 샘플. 일반적으로 죽은 부피는 약 30 마이크로 리터입니다.밸브 를 전환하여 분배합니다. 튜빙과 노즐을 통해 샘플을 분배합니다. 그런 다음 단일 실행에 필요한 샘플의 양을 흡인합니다.밸브 를 전환하여 분배합니다. 상대 습도가 원하는 값에 도달했는지 확인합니다. 우리는 일반적으로 60 % 이상에서 그리드를 준비합니다.이 시간은 몇 분 정도 걸릴 수 있습니다. 핀셋을 급락하는 팔에 빛 배출 그리드를 들고 놓습니다. 전위요미터 슬라이드를 시작 위치에 배치하여 속도 측정을 준비합니다.오실로스코프 소프트웨어에서 속도 측정을 위한 트리거를 설정합니다. 액체 에탄 컵을 놓고 습도 챔버에 가깝습니다. 플런저경로가 명확한지 확인합니다.제어 소프트웨어에서 실행을 시작합니다. 실행이 완료되면 제어 소프트웨어OK'in을 눌러 급락하는 팔에서 압력을 방출합니다. 습도 챔버를 열고 급락 팔과 핀셋 사이의 연결을 느슨하게.액체 에탄에 그리드를 유지하면서 급락 팔을 위로 이동합니다. 그런 다음 그리드를 액체 질소로 전송하고 저장합니다. 오실로스코프 측정을 저장합니다.수동으로 전위오미터 슬라이더와 플런저의 위치를 재설정합니다. 프로토콜을 반복하여 복제 그리드를 준비합니다. 시간 해결 된 실험은 비슷한 방식으로 수행됩니다.혼합 단계에서 희석으로 인해 시간 해결 실험에 더 높은 재고 농도가 필요합니다. 시간 해결 된 실험의 경우 세 주사기를 모두 사용하십시오. 튜빙은 주사기 펌프와 스프레이 노즐에 부착되어 있습니다.여기에 사용되는 미세 유체 스프레이 노즐에는 혼합 요소가 포함되어 있습니다. 더 긴 튜브는 더 큰 데드 볼륨을 제공하고 평형 단계를 세척하려면 더 많은 버퍼와 샘플이 필요합니다. 버퍼와 샘플을 별도로 모든 주사기를 상화합니다.일반적으로 주사기 1개는 샘플 A'와 주사기 2개 및 3개 샘플 B'에 사용되며, 튜빙이 평형화된 후, 샘플 A를 주사기 1개에 로드하고 B를 주사기 2개와 3개로 채점한다. 그런 다음 밸브를 1~3번 전환하여 분배합니다. 제어 소프트웨어에서 실행을 시작합니다.시간 해결 된 실험에 다른 실행 스크립트가 필요합니다. 다른 시간 지연은 두 가지 방법으로 달성 될 수있다. 플런저 속도를 조정함으로써 혼합에서 동결까지의 시간 지연을 변경할 수 있습니다.빠른 급락 속도는 더 짧은 시간 지연으로 이어질 것입니다. 또는 스프레이 노즐의 수직 위치를 조정하여 스프레이 에탄 거리가 변경됩니다. 거리를 늘리면 시간이 길어집니다.낮은 배율에서 전자 현미경에서, 전형적인 그리드는 이렇게 보입니다. 표시된 대로 얇은 얼음 영역은 데이터 수집에 적합합니다. 배율이 높을 때 파티클은 명확하게 표시되어야 합니다.아포페리틴과 같은 테스트 시편을 사용하면 단일 그리드에서 비교적 작은 데이터 집합이 3~4개의 협스트롬 해상도로 재구성하기에 충분합니다. 시간 해결 실험의 경우 서로 다른 시간 포인트 또는 그리드에서 데이터 집합을 수집합니다. 3D 분류를 위해 데이터를 결합한 다음 파티클을 시간점으로 다시 추적하는 것이 유용합니다.이렇게 하면 데이터가 반응 역학에 대한 구조적 정보와 정보를 제공할 수 있습니다. 결론적으로, 우리는 당신이 비디오를 즐겼으면 좋겠다. 우리는 비디오와 함께 JoVE 논문의 자세한 설명과 함께, 당신은 돌연변이에서 문제의 일부를 완화하거나 공기 물 인터페이스에서 상호 작용을 돕기 위해 보여 진 빠른 그리드 제작을 통해 자신의 실험을 수행 할 수 있기를 바랍니다, 당신이 시도하고 그 비 평형 상태의 일부를 트랩하기 위해 자신의 시간 해결 연구를 수행하는 데 필요한 모든.그래서, 행복 그리드 만들기.

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연구

JoVE Journal

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우리는 분자 기계 구조의 동일계에서 높은 해상도를 결정하기 위해 높은 처리량 극저온 전자 단층을 활용하는 방법에 대한 프로토콜을 제시한다. 프로토콜은 일반적인 병목 현상을 회피, 대용량의 데이터가 처리 될 수있게하고, 사용자가 중요한 생물학적 질문에 집중할 수 있도록 자원 중단 시간을 감소시킨다.

Tomoauto 사용 : 프로토콜 높은 처리량 자동화 된 곳을 알아내는 - 전자 단층 촬영을 위해

악기 및 전송 전자 현미경 검사 법에 대 한 nanoliter 크기의 샘플 볼륨의 준비를 위한 방법 제공 됩니다. 아무 종이 blotting 단계 필요, 따라서이 단백질, 크게 샘플 손실을 감소 시키고 단일 세포 lysate 시각적 proteomics에 대 한 분석을 사용에 대 한 가질 수 해로운 결과 피하는.

전송 전자 현미경 검사 법에 대 한 소형된 샘플 준비

여기에 제시된 프로토콜은 새로운 로봇 시스템인 Spotiton의 사용을 설명하며, 액체 저온기에서 진동하기 전에 최소 90ms를 혼합하는 나노 와이어 그리드에 관심 있는 두 샘플을 전달합니다.

새로운 로봇 시스템, 스포티폰을 사용하여 시간 해결 연구를 위한 극저온 전자 현미경 그리드 준비

극저온을 이용한 거대 분자 복합체의 구조 결정은 단백질과 복합체의 특정 클래스에 대한 일상이되었습니다. 여기서이 파이프 라인은 요약 (샘플 준비, 스크리닝, 데이터 수집 및 처리) 독자는 더 어려운 표본의 경우 변경 될 수있는 추가 상세한 자원과 변수를 향해 지시된다.

단일 입자 저온 전자 현미경 검사법: 샘플에서 구조로

이 백서는 Cryo-EM 실험을 위한 플런지 동결 전에 70°C의 높은 온도에서 샘플 그리드를 준비하기 위한 자세한 프로토콜을 제공합니다.

Cryo-EM용 고온 시료 그리드 준비

여기에서는 초저온 전자 단층 촬영을 위한 세포 샘플 준비를 안내하는 3D 상관 집속 이온 빔 밀링을 위한 파이프라인을 제시합니다. 형광 태그가 부착된 관심 단백질의 3D 위치는 먼저 극저온 형광 현미경으로 측정한 다음 밀링을 대상으로 합니다. 이 프로토콜은 포유류, 효모 및 박테리아 세포에 적합합니다.

고분해능 극저온 전자 단층촬영을 위한 3D-Correlative Focused Ion Beam Milling을 이용한 시료 전처리

이 프로토콜의 목표는 극저온 전자 현미경 검사법을 위한 그리드의 표적 영역에 세포 접착 및 성장을 지시하는 것입니다. 이는 세포 종자 전에 패턴화된 영역에서 세포외 매트릭스 단백질의 증착에 따라 사용자 지정 패턴에서 절제되는 항 파울링 층을 적용함으로써 달성된다.

전세포 극저온-전자 단층 촬영 워크플로우 내의 직접 세포 위치지정에 마이크로패턴 전송 전자 현미경 검사기 그리드

거대분자의 고분해능 cryo-EM 맵은 또한 200kV TEM 현미경을 사용하여 달성할 수 있다. 이 프로토콜은 200kV TEM을 사용하여 고해상도 데이터 세트를 성공적으로 수집하는 데 필수적인 정확한 광학 정렬, 데이터 수집 체계 및 이미징 영역 선택을 설정하는 모범 사례를 보여줍니다.

200KV 투과 전자 현미경을 사용한 고해상도 cryo-EM 데이터 세트의 일상적인 수집

여기에서 우리는 특정 미세소관 변형 효소가 부족하거나 포함할 수 있는 포유류 세포에서 내인성 튜불린을 추출하여 특정 변형을 위해 풍부한 미세소관을 얻는 프로토콜을 설명합니다. 그런 다음 추출된 미세소관을 정제된 미세소관 결합 단백질로 장식하여 초저온 전자 현미경을 위한 그리드를 준비하는 방법을 설명합니다.

초저온 전자 현미경으로 미세소관-단백질 복합체를 연구하기 위해 포유류 세포에서 변형된 미세소관 추출

이 방법은 in situ 세포 cryotomography 및 correlative light and electron microscopy(CLEM)를 위한 전자 현미경(EM) 그리드 준비를 위한 접근 가능하고 유연한 프로토콜을 제공합니다.

포유류 세포의 In Situ Cryotomography를 위한 시료 전처리

배우세요 극저온 전자현미경을 위한 빠른 그리드 준비 방법을 사용하여 단백질 반응의 순간적인 중간 상태를 포착하는 기술입니다. 이 프로토콜은 고해상도 구조 생물학 연구에 활용됩니다.

시간 해결 된 극저온 전자 현미경 검사법을 위한 빠른 그리드 준비

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