Name: 매트릭스 보조 레이저 탈착/이온화 비행 시간 질량 분광법 분석에 의한 우라실-DNA 글리코실라제 분석 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2022-04-22T14:00:00.000+00:00
Duration: 12 min 19 s
Description: 배우세요 MALDI-TOF 질량 분석법을 이용한 우라실-DNA 글리코실라제 활성 측정법을. 라벨 없이 AP 부위를 직접 검출하여 DNA 복구 연구에 활용할 수 있는 신속하고 특이적인 효소 분석 방법입니다.

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NCFPB Integrated Core Facility for Functional Genomics (대만 타이페이)와 NRPB Pharmacogenomics Lab (대만 타이페이)의 기술 지원에 감사드립니다. 이 작업은 대만 R.O..C 과학 기술부에서 지원했습니다. [허가 번호 MOST109-2314-B-002 -186 to K.-Y.S., MOST 107-2320-B-002-016-MY3 to S.-Y.C., MOST 110-2320-B-002-043 to W.-h.F.]. H.-L.C.는 국립 대만 대학에서 박사 학위 펠로우십을 받았습니다. 오픈 액세스 요금에 대한 자금 조달 : 과학 기술부, R.O.C.

1. 기판/템플릿 준비
<ol><li>듀플렉스 영역에 대해 ~50 ± 10%의 균형 잡힌 G+C 함량과 50°C의 최소 용융 온도로 우라실 기판/템플릿 듀플렉스를 설계하십시오. 참고: 18 nt 기질과 19 nt 주형(표 1 및 그림 1) 사이의 한 뉴클레오티드 차이는 MS 신호 해석 및 적절한 어닐링을 개선하는 데 도움이 됩니다. 주형 가닥은 A-U 또는 G-U 미스매치를 생성하는 상보적 DNA로서 기능하지만(표 1), MS 측정에서 기준 신호로서 사용될 수도 있다. HPLC-정제된 합성 올리고뉴클레오티드의 사용은 본 연구에 만족한다.</li>
	<li>DNA를 스톡으로서 100 μmol/L의 농도로 1 mM EDTA 및 10 mM Tris-HCl (25°C에서 pH 8.0) (TE)에 용해시키고 -20°C에서 저장한다. 이 20μL 스톡을 TE로 희석하여 최종 부피 800μL(4μmol/L로 25배 희석)로 희석합니다. λ = 260 nm의 UV 가시 분광 광도계에서 DNA 용액의 흡광도를 측정하여 제조업체가 할당 한 농도를 확인하십시오. 예: U+9의 4μmol/L에 대해 A260 = 0.204, T1의 4μmol/L에 대해 A260 = 0.192입니다(표 1).</li>
	<li>지정된 m/z 값에서 고유한 피크 신호를 검사하고 신호 대 잡음비가 >100인지 확인하여 올리고뉴클레오티드 품질 관리에 대한 MALDI-TOF MS 분석(섹션 4-6)을 수행합니다(그림 1B 및 그림 1D).</li>
</ol>2. DNA 글리코실라제 분석
<ol><li>글리코실라제 반응을 위해 T1/U+9 듀플렉스(표 1 및 도 1A)의 G:U 기질을 사용하여, 예를 들어, 1.5 mL 멸균 마이크로원심분리 튜브에서, 70 μL의 H2O, 10 μL의 10x UDG 반응 완충액, 5 μL의 T1 스톡, 및 5 μL의 U+9 스톡을 첨가한다(단계 1.2.). 참고: 올바른 유형의 마이크로피펫을 선택하고 제조업체의 지침에 따라 필요한 볼륨을 처리하십시오. 예를 들어, 2 μL 피펫을 사용하여 0.1-2 μL의 액체를 분배하고, 10 μL 피펫을 사용하여 2-10 μL의 액체를 분주하고, 100 μL 피펫을 사용하여 20-100 μL의 액체를 분주하여 결과의 정확성과 정밀도를 보장하십시오. 시약 믹스의 기재된 부피는 10개의 검정을 위한 것이고; 원하는 수의 반응에 대해 부피를 조절한다. 1x UDG 반응 완충액은 1 mM EDTA, 1 mM 디티오트레이톨 및 20 mM 트리스-HCl (25°C에서 pH 8.0)을 함유한다. 10x UDG 반응 완충액의 공급원에 대한 물질의 표를 참조한다.</li>
	<li>튜브를 단단히 닫으십시오. 수조에서 65°C에서 30분, 37°C에서 30분 동안 배양한 다음, 마지막으로 3분 동안 얼음 위에서 배양하여 기판/템플릿 듀플렉스의 적절한 어닐링을 보장한다.</li>
	<li>1.5mL 멸균 마이크로원심분리 튜브에 빙냉 1x UDG 반응 버퍼 49μL와 UDG 1μL(5,000 units/mL, 재료 표 참조)를 0.1 unit/μL로 희석합니다. 1x UDG 버퍼로 연속 희석액을 0.05, 0.02 또는 0.01 units/μL의 원하는 효소 농도로 만듭니다. 희석된 UDG는 항상 얼음 위에 보관하십시오. 참고: 10 μL 반응에서, UDG의 0.1 유닛은 3분 안에 T1/U+9 듀플렉스로부터 30 pmol 이상의 우라실을 절단할 수 있다.</li>
	<li>1.5 mL 멸균 마이크로원심분리 튜브에서, 단계 2.2로부터 9.0 μL의 기질 믹스를 첨가하고, 튜브를 37°C로 예열한다. 단계 2.3으로부터 희석된 UDG 1.0 μL를 첨가한다. 타이머를 사용하여 반응 시간을 정하고 튜브를 휙 휙 돌려 내용물을 혼합하십시오. 참고: 단위 정의 분석의 경우, 인큐베이션 시간은 30분입니다. 운동 분석의 경우, 0.5, 1, 2, 3, 5분의 시간-코스 분석을 사용하여 초기 속도를 구한다. UGI 억제 분석의 경우, 15분 동안 반응할 때이다.</li>
	<li>반응 혼합물로 튜브를 주변 온도에서 3,200 × g 에서 3-5 s 동안 원심분리한다. 이어서, 반응물을 즉시 37°C로 옮긴다.</li>
	<li>반응 종결
	<ol>
<li>0.25 M HCl 및 0.23 M 트리스 염기의 용액을 준비한다. 15 mL 시험관에서, 1x UDG 반응 완충액을 모방하기 위해 1 mM EDTA 및 20 mM Tris-HCl (25°C에서 pH 8.0)의 용액 10 mL를 첨가한다. 1 mL의 0.25 M HCl로 산성화하고 pH 측정기로 확인하여 pH가 ∼2 ± 0.5인지 확인하십시오. 1 mL의 0.23 M 트리스 염기로 중화시키고 최종 pH가 6.5 ± 0.5인지 pH 측정기로 확인한다. 참고: pH 테스트 스트립을 사용하는 것은 시약 혼합물의 pH 수준을 재확인하는 빠르고 쉬운 방법입니다.</li>
		<li>1 μL의 0.25 M HCl을 첨가하여 10 μL 반응 혼합물을 산성화시켜 효소를 불활성화시키고 6분 동안 얼음 위에 놓는다. 1 μL의 0.23 M 트리스 염기를 첨가하여 DNA 생성물을 중화시켜 산에 장기간 노출시킴으로써 AP 부위 파손을 방지한다. 매트릭스 칩 전달을 위해 생성물 혼합물의 부피를 증가시키기 위해 13 μL TE를 첨가한 다음, 이를 얼음 위에 놓는다. 참고: AP 제품은 화학적으로 불안정하므로 2일 이내에 MALDI-TOF MS에 의해 분석되어야 합니다. 일주일 이상 장기간 보관 한 후, AP 제품의 β / δ 제거 반응으로 인해 가닥 파단의 상당 부분이 축적됩니다 (그림 1D-G).</li>
	</ol></li>
	<li>모든 25 μL UDG 반응 생성물을 마이크로원심분리 튜브로부터 384-웰 마이크로타이터 플레이트로 옮긴다. 참고: 완충액의 나트륨 또는 칼륨과 같은 고농도의 양이온은 MALDI-TOF MS 분석에서 간섭을 발생하므로 탈염이 필요합니다. 대장균 UDG 반응 완충액에는 매우 낮은 농도의 양이온이 포함되어 있으므로 탈염이 필요하지 않습니다. 그러나, 앞서 기술된 바와 같이 탈염이 필요한 금속 양이온을 함유하는 다른 DNA 글리코실라제 반응을 측정하기 위해 이 프로토콜을 수정한다35.</li>
</ol>3. UDG 반응 생성물을 매트릭스 칩으로 전송
<ol><li>나노리터 디스펜서의 도어를 열고( 재료 표 참조) 2.7단계의 384웰 마이크로타이터 플레이트를 데크의 플레이트 홀더에 로드합니다.</li>
	<li>매트릭스 칩 어레이를 해당 스카우트 플레이트 위치에 삽입합니다. 적재 된 스카우트 플레이트를 나노 리터 디스펜서의 처리 데크에 놓고 문을 닫으십시오.</li>
	<li>전사 스크린의 실행 버튼을 터치하고 계측기가 384-웰 마이크로타이터 플레이트에서 매트릭스 칩으로 샘플을 분배하기 시작할 때까지 기다립니다.</li>
	<li>Vision 탭 옵션을 사용하여 분배 중 칩의 이미지와 각 지점의 분배 볼륨을 표시합니다. 칩의 적층된 부피가 5-10 nL 범위에 있는지 확인하십시오.</li>
</ol>4. 질량 분석기에 분석 파라미터 설정
<ol><li>응용 프로그램( 자료 표 참조)을 사용하여 가져오기를 위해 예측된 신호 m/z 값이 포함된 .xlsx 파일을 준비합니다. 참고: FILE I.xlsx (표 2)의 설정은 섹션 2의 G:U 기질의 UDG 분석에 대한 예제 설정입니다.</li>
	<li>애플리케이션 프로그램을 사용하여 디자이너 형식 옵션에서 어세이 그룹 가져오기 옵션을 마우스 오른쪽 버튼으로 클릭하고 드롭다운 목록에서 .xlsx 파일(예: 4.1단계 의 FILE I.xlsx)을 선택하여 새 UDG 어세이를 작성하고 정의합니다.</li>
	<li>고객:프로젝트:플레이트 버튼을 마우스 오른쪽 단추로 클릭하고 드롭다운 옵션 트리의 상단을 클릭하여 새 분석 플레이트를 설정합니다. 대화 상자에서 파일 이름(예: 랩 코드 및 분석 날짜의 경우 CTT20210620)을 입력하고 플레이트 유형 드롭다운에서 384웰 플레이트 유형을 선택하고 OK를 누릅니다. 화면 오른쪽에 나타날 빈 플레이트를 찾습니다.</li>
	<li>분석 옵션을 클릭합니다. 드롭 다운 목록에서 분석법 (예 : FILE I.xlsx)을 선택하십시오.</li>
	<li>선택된 분석법(예: FILE I.xlsx)을 플레이트 상의 각 샘플 스폿 위치에 할당하려면 커서를 빈 플레이트의 각 위치로 이동하고 웰을 클릭하여 강조 표시한 다음 마우스 오른쪽 버튼을 클릭하여 플렉스 추가를 선택합니다.</li>
	<li>데스크탑 또는 랩탑 컴퓨터를 사용하여 2.7단계에서 칩 상의 모든 샘플에 대해 헤더가 없는 .xlsx 포맷(예: 표 3의 0620.xlsx)으로 작업 목록을 준비합니다. 새 샘플 프로젝트 추가 단추를 클릭합니다. 드롭다운 목록에서 파일(예: 0620.xlsx)을 선택하여 작업 목록을 가져옵니다.</li>
	<li>화면 왼쪽의 작업 목록(예: 0620.xlsx부터)에서 모든 테스트 샘플 코드를 찾습니다. 작업 목록에서 샘플 코드를 클릭하고 플레이트의 해당 위치를 마우스 오른쪽 버튼으로 클릭하여 테스트를 각 위치에 연결합니다.</li>
</ol>5. 질량 분광계 작동
<ol><li>응용 프로그램을 사용하여 질량 분광계 ( 재료 표 참조)를 분석 할 샘플 칩 (섹션 3에서)에 연결하십시오.</li>
	<li> 기본 설정을 클릭합니다. 대화 상자에서 단계 4.3의 파일 이름(예: CTT20210620)을 입력합니다. 실험 이름에 칩 바코드에 칩 ID를 입력하고 설정을 저장합니다.</li>
	<li>질량 분광계 제어 프로그램을 시작하십시오 ( 재료 표 참조).</li>
	<li>질량 분광계의 In/Out 버튼을 누르고 데크를 확장시킵니다. 칩 홀더를 꺼내 3.4단계의 샘플 칩을 칩 홀더에 삽입합니다. 로드된 칩 홀더를 확장 데크에 놓고 샘플 칩이 계측기에 들어갈 수 있도록 In/Out 버튼을 누릅니다.</li>
	<li>응용 프로그램의 가져오기 아이콘을 두 번 클릭합니다. 획득 창에서 자동 실행 탭을 클릭하여 계측기를 시작하고 칩의 샘플에서 질량 스펙트럼을 획득합니다.</li>
</ol>6. 질량 스펙트럼보기 및 데이터 분석
<ol><li>데이터 분석 프로그램을 실행 하십시오 (재료 표 참조).</li>
	<li>데이터베이스 트리를 찾아보고 5.2단계에서 칩 ID를 선택합니다. 칩에서 타겟을 강조 표시하려면 클릭하고 스펙트럼 아이콘을 클릭하여 질량 스펙트럼을 표시합니다.</li>
	<li>마우스 오른쪽 단추를 클릭하여 사용자 지정 대화 상자를 선택하여 새 창에서 특정 범위의 스펙트럼을 자릅니다. X축 을 클릭하여 m/z의 상한과 하한을 입력하고 OK 를 눌러 관심 신호를 포함하여 지정된 범위 스펙트럼을 표시합니다. 참고: DNA의 양은 각 m/z 값 단위에서의 피크 강도에 비례합니다.</li>
	<li>U 기판, AP 제품 및 템플릿에 해당하는 신호의 m/z 값의 피크 높이를 측정합니다. 피크를 클릭하고 화면의 왼쪽 상단 모서리에있는 피크 높이를 봅니다. 참고: 1,600 폭/1,200 단위의 스펙트럼은 컴퓨터 화면에서의 검사 및 기록 보관을 위한 합리적인 차원입니다.</li>
	<li>기록 보관을 위해 스펙트럼을 저장하려면 내보내기 를 마우스 오른쪽 단추로 클릭하고 드롭다운 목록에서 JPEG 파일 형식을 선택합니다. 대상 및 디스크 찾아보기를 클릭하여 드롭다운 목록에서 저장 장치 (예: 플래시 디스크 E:)를 선택합니다. 파일 이름 (예: 0620_1-2.jpg)을 입력하고 내보내기를 클릭합니다.</li>
	<li>필요한 경우 내보낸 JPEG 파일을 인쇄하고 눈금자를 사용하여 수동으로 피크 높이를 측정합니다.</li>
</ol>

저자는 공개 할 이해 상충이 없습니다.

이 논문은 UDG MALDI-TOF MS 분석 방법을 사용하여 AP 함유 DNA 생성물을 직접 검출하기 위한 상세한 절차를 제공한다. 이 방법의 주요 장점은 우라실 함유 기판이 라벨이 없고 확장 가능하며 작업하기 쉽고 기판 설계에 더 큰 유연성을 제공한다는 것입니다.
UDG 공급업체가 권장하는 페놀/클로로포름 추출은 효소의 불활성화를 가능하게 하여 생성물 DNA의 분해를 방지합니다. 그러나 페놀 추출 프로토콜은 유해 화학 물질의 지루한 상 분리를 포함합니다. 반응 pH를 2 내지 0.5로 낮추기 위해 HCl을 사용하는 대안적인 산 종결 방법도 UDG±를 효과적으로 불활성화시켰다. 트리스 염기를 사용한 후속 중화는 DNA 손상을 예방할 수 있었다. AP 생성물이 30시간 이내에 MS 분석을 실시했을 때, 질량 스펙트럼에서 염기 손실 또는 변형의 징후는 없었다(도 1E). 반응에서 트리스 완충제를 상용 UDG와 함께 제공하였다. ...

우라실은 RNA에서 정상적인 염기이지만, 게놈 DNA에서 흔하고 고도로 돌연변이 유발 병변입니다. 우라실은 데옥시시티딘의 자발적/효소적 가수분해 탈아민화로부터 발생할 수 있다. 각 살아있는 세포에서,이 탈아민화는 생리 학적 조건 하에서 하루에 100-500 번 발생합니다1,2. 이러한 변화가 복구되지 않으면 DNA 서열 조성에 변화가 생겨 돌연변이를 일으킬 수 있습니다. DNA의 우라실이 복제 중에 dATP와 쌍을 이루는 것을 선호하기 때문에, 시토신이 우라실로 deaminates되면, 두 개의 복제 이벤트에서, 자손 DNA3의 절반에서 새로운 G:C에서 A:T 전이 돌연변이가 있을 것이다.
유전 적 안정성을 유지하기위한 세포 전략 중 염기 절제 복구 (BER)는 DNA4에서 우라실과 같은 손상된 염기를 복구하는 필수 메커니즘입니다. BER은 고도로 진화적으로 보존된 과정이다. 두 개의 일반적인 BER 경로가 있습니다 : 단일 뉴클레오티드의 복구 관으로 이어지는 짧은 패치 경로와 적어도 두 뉴클레오티드의 복구 관을 생성하는 긴 패치 경로5. BER은 여러 단계에서 발생하는 조정된 메커니즘입니다. BER의 첫 번째 단계는 아푸린산/아피리미딘(AP) 중간체 부위6를 생성하기 위해 손상 특이적 DNA 글리코실라제에 의해 손상된 뉴클레오티드 염기를 효소적으로 가수분해하는 것이다. 이것은 엔도뉴클레아제에 의한 AP 부위에서의 당-포스페이트 골격의 절단, 분해효소에 의한 DNA 말단의 정리, DNA 중합효소에 의한 갭-필링, 및 리가아제5에 의해 최종 닉을 밀봉하는 것에 뒤따른다.
우라실-DNA 글리코실라제 (UDG)는 대장균에서 BER에 대한 우라실 함유 DNA로부터 우라실을 가수분해한다. 다양한 분리 기술 6,7,8,9,10,11,12,13을 포함하는 방사성 표지 DNA를 사용하는 기존의 UDG 분석은 일반적으로 비용이 많이 드는 라벨링 시약, 복잡한 절차, 방사성 물질에 대한 노출 위험을 줄이기 위해 집중적 인 교육 및 실습이 필요한 시간이 많이 걸리고 노동 집약적입니다. 플루오로메트릭 올리고뉴클레오티드 분석은 분자 비콘 및 Förster 공명 에너지 전달 기술15,16,17,18,19,20 이외에 방사성 동 위원소 표지14의 대체물로서 개발되었다. 그러나, 특정 라벨링은 전술한 모든 방법에 대해 요구된다. 최근 라벨이 없는 바이오센서 분석법21,22,23 및 G-quadruplex24,25,26의 형성에 기초한 비색법이 개발되었다. 그러나 프로브에서 여러 A:U 쌍 또는 특별히 설계된 서열은 효소 단위 정의를 복잡하게 만듭니다.
MALDI-TOF MS는 DNA 분석에 큰 도움이 될 수 있는 기술입니다. 개발된 응용분야에는 단일 뉴클레오티드 다형성 유전자형27,28, 변형된 뉴클레오티드 분석29, 및 DNA 복구 중간체 동정30,31,32,33,34가 포함된다. MALDI-TOF MS는 AP 부위 함유 DNA 생성물을 검출하기 위해 DNA 글리코실라제 분석에 쉽게 채택되어야 한다. 그러나, DNA 내의 AP-부위는 많은 실험 조건 하에서 가닥이 부서지기 쉽다33. UDG 분석은 MALDI-TOF MS를 사용하여 상당한 가닥 파단 잡음 없이 AP 사이트 생산을 직접 측정하기 위해 여기에 제시됩니다. 이 라벨 프리 방법은 작업하기 쉽고 DNA 글리코실라제 억제제 스크리닝의 제약 적용에 대한 높은 잠재력을 가지고 있습니다.

<table><tbody><tr><td>2-Amino-2-hydroxymethyl-propane-1,3-diol (Tris base)</td><td>J.T Baker</td><td></td><td>Protocol 1,2</td></tr><tr><td>오토클레이브 탈이온수</td><td>MILLIPORE</td><td></td><td>프로토콜 1,2</td></tr><tr><td>EDTA</td><td>J.T Baker</td><td></td><td>프로토콜 1,2</td></tr><tr><td>장갑</td><td>AQUAGLOVE</td><td></td><td>프로토콜 1,2,3</td></tr><tr><td>염산(HCl)</td><td>SIGMA</td><td></td><td>프로토콜 1,2</td></tr><tr><td>얼음 양동이</td><td>Taiwan.Inc</td><td></td><td>프로토콜 2</td></tr><tr><td>저 보유 피펫 팁 (0.5-10 &micro; L)</td><td>extra gene</td><td></td><td>Protocol 1,2</td></tr><tr><td>Low retention 피펫 팁(1,250 &micro; L)</td> <td>국가 과학 공급 공동, Inc.</td><td></td><td>프로토콜 1,2</td></tr><tr><td>Low retention 피펫 팁(200 &micro; L)</td> <td>국가 과학 공급 공동, Inc.</td><td></td><td>프로토콜 1,2</td></tr><tr><td>MassARRAY&</td><td>nbsp; Agena Bioscience, CA</td><td></td><td>Protocol 4, 5 질량 분석 제어 프로그램에는 Typer Chip Linker, SpectroACQUIRE 및 Start RT Process가 포함됩니다.</td></tr><tr><td>MassARRAY 나노 디스펜서</td><td>AAT Bioquest, Inc.</td><td>RS1000</td><td>프로토콜 3</td></tr><tr><td>마이크로 원심분리기</td><td>Kubota</td><td></td><td>프로토콜 2</td></tr><tr><td>마이크로 원심분리기</td><td>Clubio</td><td></td><td>프로토콜 2</td></tr><tr><td>마이크로 원심분리기 튜브(1.5 mL)</td><td>National scientific supply co, Inc.</td><td></td><td>프로토콜 2</td></tr><tr><td>마이크로 원심분리기 튜브 랙</td><td>Taiwan.Inc</td><td></td><td>프로토콜 1,2</td></tr><tr><td>마이크로피펫&nbsp; (P1000)</td><td>Gilson</td><td></td><td>프로토콜 1,2</td></tr><tr><td>마이크로피펫&nbsp; (2쪽)</td><td>Gilson</td><td></td><td>프로토콜 1,2</td></tr><tr><td>마이크로피펫(P10)</td><td>Gilson</td><td></td><td>프로토콜 1,2</td></tr><tr><td>마이크로피펫(P100)</td><td>Gilson</td><td></td><td>프로토콜 1,2</td></tr><tr><td>마이크로피펫(P200)</td><td>Gilson</td><td></td><td>프로토콜 1,2</td></tr><tr><td>마이크로피펫(SL2)</td><td>Rainin</td><td></td><td>프로토콜 1,2</td></tr><tr><td>올리고뉴클레오티드</td><td>통합 DNA 기술(싱가포르)</td><td></td><td>프로토콜 1,2</td></tr><tr><td>퀘스트 그래프 IC50 계산기 (v.1)</td><td>AAT Bioquest, Inc.</td><td></td><td>그림 4 https://www.aatbio.com/tools/ic50-calculator-v1</td></tr><tr><td>수산화나트륨(NaOH)</td><td>WAKO</td><td></td><td>프로토콜 2</td></tr><tr><td>SpectroCHIP 어레이</td><td>&nbsp; Agena Bioscience, CA</td><td>#01509</td><td>프로토콜 3, 5</td></tr><tr><td>타이머</td><td>Taiwan.Inc</td><td></td><td>프로토콜 2</td></tr><tr><td>Typer 4.0 소프트웨어</td><td>&nbsp; Agena Bioscience, CA</td><td>#10145</td><td>프로토콜 6 Typer 4.0은 Assay Designer, Assay Editor, Plate Editor 및 Typer Analyzer의 4가지 프로그램으로 구성되어 있습니다.</td></tr><tr><td>UDG 반응 완충액 (10x)</td><td>New England Biolabs, MA</td><td>B0280S</td><td>프로토콜 2</td></tr><tr><td>우라실 글리코실라제 억제제</td><td>New England Biolabs, MA</td><td>M0281S</td><td>프로토콜 2</td></tr><tr><td>Uracil-DNA Glycosylase</td><td>New England Biolabs, MA</td><td>M0280L</td><td>프로토콜 2</td></tr><tr><td>UV-VISBLE 분광 광도계 UV-1601</td><td>SHIMADZU</td><td></td><td>프로토콜 1</td></tr><tr><td>수조</td><td>ZETA ZC-4000 ( Taiwan.Inc)</td><td></td><td>프로토콜 2</td></tr></tbody></table>

매트릭스 보조 레이저 탈착/이온화 비행 시간 질량 분광법 분석에 의한 우라실-dna 글리코실라제 분석

Uracil-DNA Glycosylase Assay by Matrix-assisted Laser Desorption/Ionization Time-of-flight Mass Spectrometry Analysis

우라실-DNA 글리코실라제 (UDG)는 시토신의 가수분해 탈아민화로부터 형성된 우라실의 교정을 위한 염기 절제 복구 경로의 핵심 성분이다. 따라서 게놈 무결성 유지에 중요합니다. UDG 활성을 측정하기 위해 매우 특이적이고 라벨링되지 않은 비방사성 동위원소 방법이 개발되었다. 부위 특이적 우라실을 함유하는 합성 DNA 듀플렉스를 UDG에 의해 절단한 다음, 매트릭스-보조 레이저 탈착/이온화 비행 시간 질량 분광분석법(MALDI-TOF MS) 분석을 실시하였다. 가닥 파괴 없이 DNA에서 아푸린산/아피리미딘 부위(AP) 생성물을 보존하기 위한 프로토콜이 확립되었다. 기질에서 생성물로의 m/z 값의 변화는 UDG에 의한 우라실 가수분해를 평가하기 위해 사용되었다. UDG 동역학 분석에 G:U 기질을 사용하여 Km = 50 nM, Vmax = 0.98 nM/s 및 Kcat = 9.31 s-1을 산출하였다. 이 방법을 우라실 글리코실라제 억제제 (UGI) 분석법에 적용하면 7.6 pM의 IC50 값이 산출되었다. 단일 가닥 및 이중 가닥 DNA 기질 내의 다양한 위치에서 우라실을 사용한 UDG 특이성은 상이한 절단 효율을 입증하였다. 따라서, 이러한 간단하고, 신속하고, 다재다능한 MALDI-TOF MS 방법은 다양한 단기능 DNA 글리코실라제에 대한 우수한 참조 방법이 될 수 있었다. 또한 DNA 글리코실라제 억제제 스크리닝을 위한 도구로서의 잠재력을 갖는다.

템플릿 및 기판 예를 들어 G 주형과 짝을 이룬 중앙(U+9)에 U를 갖는 합성 올리고뉴클레오티드를 취하면(그림 1A), 등몰량의 주형 및 우라실 함유 기질의 블랭크 조절을 사용하여 합성 올리고뉴클레오티드 순도의 품질 관리를 할 수 있습니다(그림 1B; 신호는 지정된 m/z 및 낮은 배경 잡음과 일치합니다). MS 데이터 분석을 위해, 피크 높이를 측정하였다(도 2). 19 nt 주형 DNA는 글리코실라제 가수분해 후에 변하지 않은 채로 남아있을 것으로 예상되었다; 따라서, 신호는 AP-생성물의 정량화를 위한 기준 역할을 할 수 있다(그림 1C).
반응 조건 및 질량 스펙트럼 이러한 DNA 글리코실...

우라실-DNA 글리코실라제 활성을 분석하기 위한 비표지, 비-방사성-동위원소 방법은 직접 아푸린산/아피리미딘 부위 함유 생성물 분석을 위해 MALDI-TOF 질량 분광법을 사용하여 개발되었다. 이 분석은 DNA 글리코실라제 측정에 매우 간단하고, 구체적이며, 빠르고, 사용하기 쉬운 것으로 판명되었습니다.

매트릭스 보조 레이저 탈착/이온화 비행 시간 질량 분광법 분석에 의한 우라실-DNA 글리코실라제 분석

Uracil-DNA glycosylase (UDG) is a key component in the base excision repair pathway for the correction of uracil formed from hydrolytic deamination of ...

DNA 복구 메커니즘은 모든 살아있는 유기체에서 게놈 무결성을 유지하는 데 매우 중요합니다. 우라실-DNA 글리코실라제는 기본 조직 복구 경로에서 중요한 DNA 복구 단백질입니다. MALDI-TOF 질량 분광법을 사용하여 효소 활성 분석을 위해 AP 제품을 직접 검출 할 수 있습니다.통상적인 글리코실라제 분석은 기질 노동을 필요로 한다. 이 방법은 라벨이 없으며 우라실 기질에서 AP 제품으로의 질량 변화를 직접 감지합니다. 다른 장점으로는 높은 특이성, 다양성, 확장성, 신속성 및 수행하기 쉬운 기능이 있습니다.우리는 E.coli 우라실-DNA 글리코실라제를 예로 들어 사용했다. 이러한 방법은 다른 DNA 글리코실라제 검정을 위해 용이하게 변형될 수 있다. 정확한 피펫팅 및 희석 기술을 갖춘 잘 훈련 된 실험실 인력은 필수적입니다.갓 준비된 시약과 저염 버퍼는 더 나은 신호와 적은 배경 소음을 위해 사용되어야합니다. 절차를 시연하는 것은 내 실험실의 박사 과정 학생 인 Hui-Lan Chang이 될 것입니다. T1 U+9 듀플렉스의 구아닌-우라실 염기 함유 기질을 사용하는 DNA 글리코실라제 분석의 경우, 70 마이크로리터의 물, 10 마이크로리터의 10X 우라실-DNA 글리코실라제 또는 UDG 반응 완충액 10 마이크로리터, 5마이크로리터의 T1 스톡, 5마이크로리터의 U+9 스톡을 1.5 밀리리터 멸균 마이크로원심분리 튜브에 첨가한다.튜브를 65도에서 30분 동안 수조에서 인큐베이션하기 전에 닫고, 섭씨 37도에서 30분간, 마지막으로 3분 동안 얼음 위에서 3분 동안 배양하여 기판 템플릿 듀플렉스의 적절한 어닐링을 보장한다. 다음으로, 새로운 1.5 밀리리터 튜브에 49 마이크로리터의 얼음처럼 차가운 UDG 반응 버퍼와 1 마이크로리터의 희석된 UDG를 첨가한 다음, 원하는 효소 농도에 대해 UDG 버퍼로 연속 희석물을 준비하고 희석된 UDG를 얼음 위에 놓는다. 다음으로, 다른 1.5 밀리리터 튜브에서 준비된 기판 믹스 9 마이크로 리터를 넣고 섭씨 37도에서 예열 한 다음 희석 된 UDG 1 마이크로 리터를 추가하고 튜브를 플릭하여 내용물을 혼합하십시오.반응 혼합물을 간단히 원심분리하고, 튜브를 즉시 섭씨 37도에서 인큐베이션하기 위해 놓는다. 타이머를 사용하여 반응 시간을 정합니다. 반응 종결을 위해, 0.25 몰 염산 및 0.23 몰 트리스 염기 용액을 준비한다.반응 종결 단계를 작동시키기 전에 시

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Research

연구

JoVE Journal

Biochemistry

생화학

중간 metabolites의 GC / MS 분석을위한 샘플 준비 urease 방법은 그 발명가에 의해 제공됩니다. 방법은 허용 한 단계 모두 단일 프로세스에서 quantifying 탄수화물, 유기 및 아미노산의 탠덤 질량 분광법에 의해 타고난 오류에 대한 신생아 선별의 후속.

한 단계 Metabolomics : 탄수화물, 단일 절차 계량 유기 및 아미노산

싱크로트론에서 조정할 진공 자외선의 photoionization 질량 분석기에 연결된 분자 빔 절연 가스 상태의 분자와 클러스터의 전자 구조를 탐색 할 수있는 편리한 도구를 제공합니다. DNA베이스 dimers의 양자 전송 메커니즘이 기법으로 elucidated했다.

조정할 수있는 진공 자외선 (VUV) 싱크로트론 방사선으로 분자 빔 질량 분광법

이 기사는 C2'- O 위치에서 변형 된 RNA의 dodecamer의 고체상 합성, 정제 및 특성화에 대한 자세한 절차를 제공합니다. UV-vis 및 원 편광 이색 광도 분석을 사용하여 구조적 측면, 즉 단일 가닥 또는 이중 가닥을 정량화하고 특성을 분석합니다.

2&#39;- 포스 핀 올리고 뉴클레오타이드를 함유하는 올리고머의 고상 합성을위한 프로토콜<em&gt; O</em&gt; 원형 이색 성을 통한 - 티오 페닐 메틸 변형 및 특성 분석

여기, 우리는 활성 태그 인간의 효율적인 단일 단계 정화에 대 한 프로토콜 10-11 전 2 (TET2) 제시 5-methylcytosine dioxygenase 이온-교환 크로마토그래피와 액체 크로마토그래피 탠덤 질량을 사용 하 여 그 분석 결과 사용 하 여 분석 (LC-MS/MS)-기반 접근.

효율적인 정화와 10-11 전-2 5-Methylcytosine Dioxygenase에 대 한 LC-MS/MS 기반 분석 결과 개발

교정 하는 DNA 중 합 효소와 DNA 수리 분석 결과 대 한 비 표시, 라디오 동위-방법 고해상도 TOF MALDI 질량 분석 및 단일 뉴클레오티드 확장 전략을 사용 하 여 개발 되었다. 분석 결과 매우 특정, 간단 하, 빠른, 고 교정에 대 한 수행 하 여 복구 패치 9-뉴클레오티드 보다 짧은 입증 했다.

교정 및 DNA 복구 분석 결과 단일 뉴클레오티드 확장 및 TOF MALDI 질량 분석 분석을 사용 하 여

여기에서 우리는 RNA의 DNAzyme 의존적인 절단을 위한 프로토콜을 제시합니다. 이를 통해 RNA 2'-O-메틸화의 신속하고 현장 의존적인 분석을 가능하게 합니다. 이러한 접근법은 스노RNA 활성의 예비 또는 주요 평가를 위해 사용될 수 있다.

RRNA 2'-O-메틸화의 DNAzyme 의존분석

우리는 병 변의 민감하고 정확한 정량화를 위한 방법을 여기에 설명 합니다. 8-옥 소-7, 8 디 하이드로 deoxyguanosine),1n6조-2-deoxyadenosine 및1, n6조-2dado deoxyguanosine (1,n2-dguo) DNA에. 이 방법은 노출 된 A/J 마우스의 조직 (폐, 간 및 신장)에서 주변 미세 미 립 자 물질 (PM2.5)의 영향에 대 한 평가에 적용 되었다.

질량 분 광 법에 의해 3 개의 DNA 병 변의 정량화 및 주변 미세 입자 상 물질에 노출 된 마우스의 조직에서 그들의 수준에 대 한 평가

여기서 우리는 병변 유도 후 DNA를 복제하는 데있어 단일 가닥 DNA 갭을 조사하기 위해 DNA 섬유 분석의 두 가지 변형을 설명합니다. S1 섬유 분석은 ssDNA 특이적 S1 엔도뉴클레아제를 사용하여 복제 후 갭을 검출할 수 있게 하며, 갭 채우기 분석은 갭 복구의 시각화 및 정량화를 가능하게 합니다.

DNA 섬유 분석을 이용한 인간 세포에서의 복제 후 갭 축적 및 복구 검출

MALDI-TOF는 산화된 RNA와 엑소리보뉴클레아제 Xrn-1 사이의 반응성으로부터 수득된 단편을 특성화하는데 사용되었다. 본 프로토콜은 RNA 및/또는 DNA를 포함하는 다른 공정에 적용될 수 있는 방법론을 기술한다.

MALDI-TOF 질량 분광법을 이용한 효소적 분해로 인한 RNA 단편의 확인

여기에서는 뮤신에서 O-글리칸을 방출하고 MALDI-TOF 질량 분석법을 사용한 후속 탈염, 과메틸화 및 분석에 대한 자세한 프로토콜을 제시합니다.

Profiling of Permethylated Mucin O-glycans Using Matrix-assisted Laser Desorption/Ionization Time-of-Flight 질량 분석기

배우세요 MALDI-TOF 질량 분석법을 이용한 우라실-DNA 글리코실라제 활성 측정법을. 라벨 없이 AP 부위를 직접 검출하여 DNA 복구 연구에 활용할 수 있는 신속하고 특이적인 효소 분석 방법입니다.

매트릭스 보조 레이저 탈착/이온화 비행 시간 질량 분광법 분석에 의한 우라실-DNA 글리코실라제 분석

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