Name: 미생물 화학 및 단백질 생산을 위한 광 조절 발효 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2022-03-22T14:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 37 s
Description: 배우세요 광유전학적 발효 조절을 통해 미생물 대사를 동적으로 제어하고 화학물질 및 단백질 생산을 극대화하는 방법을. Saccharomyces cerevisiae에서 파란빛 기반 제어를 활용한 고효율 생산 프로토콜입니다.

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이 연구는 미국 에너지부, 과학 사무소, 생물 및 환경 연구 사무소 상 번호 DE-SC0019363, NSF CAREER Award CBET-1751840, 퓨 자선 신탁 및 카밀 드레퓌스 교사 - 학자 상이 지원했습니다.

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저자는이 기사에서 설명 된 광유전학 회로 및 방법에 대한 여러 특허를 신청했습니다.

동적 조절은 대사 공학 및 재조합 단백질 생산을 위한 수율을 향상시키기 위해 오랫동안 적용되어 왔다4. 효소 발현의 이동은 가장 일반적으로 IPTG21, 갈락토오스22 및 테트라사이클린23과 같은 화학 유도제를 사용하여 구현되지만 온도 및 pH와 같은 공정 조건을 사용하여 매개되었습니다. 유전자 발현의 광유전학적 조절은 발효 파라미터 또는 배지 조성에 대한 변경의 필요성을 제거하여, 전통적인 유도 전략에 쉽게 적용할 수 있는 대안이 된다. 빛을 켜거나 끌 수있는 용이성은 유전자 복용량의 신속하고 가역적 인 조정과 같은 새로운 기능을 제공합니다. 또한, 이러한 프로토콜은 청색광 반응 시스템에 초점을 맞추는 반면, 기존의 광 반응24을 반전시키거나 다른 파장의 빛25,26,27,28,29</...

광유전학은 광반응 단백질로 생물학적 과정을 제어하며, 화학 및 단백질 생산을 위한 미생물 발효를 동적으로 제어하는 새로운 전략을 제공합니다1,2. 조작된 대사 경로의 부담과 일부 중간체 및 제품의 독성은 종종 세포 성장을 손상시킵니다3. 이러한 스트레스는 바이오매스 축적을 저하시키고 생산성을 저하시킬 수 있습니다3. 이 과제는 발효를 일시적으로 성장 및 생산 단계로 나눠서 해결할 수 있으며, 이는 각각 바이오 매스 축적 또는 제품 합성에 대사 자원을 바칩니다4. 우리는 최근에이 두 단계 발효에서 성장에서 생산으로의 전환이 조명 조건의 변화에 따라 유도 될 수 있음을 보여주었습니다5,6,7. 광 입력의 높은 튜닝성, 가역성 및 직교성8은 기존의 2상 발효의 동적 제어에 사용되는 화학 유도제와 복제하기가 어렵거나 불가능한 광 제어 발효에 고유한 이점을 제공합니다4,9,10,11.
Erythrobacter litoralis에서 유래 한 청색광 반응 EL222 단백질은 Saccharomyces cerevisiae5,7,12,13에서 대사 공학을위한 여러 광유전학 회로를 개발하는 데 사용되었습니다. EL222는 청색광 활성화(465nm)시 형태적 이동을 겪는 광산소-전압 센서(LOV) 도메인을 함유하고 있으며, 이를 통해 동족 DNA 서열(C120)13에 결합할 수 있습니다. EL222를 바이러스 VP16 활성화 도메인 (VP16-EL222)에 융합시키는 것은 합성 프로모터 PC120으로부터 S. cerevisiae7 및 다른 유기체14에서 유전자 발현을 가역적으로 활성화시킬 수 있는 청색광 반응성 전사 인자를 초래한다. EL222에 기초한 몇몇 회로가 개발되어 PC120으로부터 관심있는 유전자가 직접 발현되는 기본 광활성화 OptoEXP 시스템7과 같은 S. cerevisiae의 화학 생산에 사용되었다(도 1A). 그러나 발효의 생산 단계에서 일반적으로 발생하는 높은 세포 밀도에서의 광 침투에 대한 우려는 OptoINVRT 및 OptoQ-INVRT 회로와 같은 어둠 속에서 유도되는 반전 회로를 개발하도록 동기를 부여했습니다 (그림 1B) 5,7,13. 이들 시스템은 각각 S. cerevisiae 및 N. crassa로부터의 갈락토오스 (GAL) 또는 퀸산 (Q) 조절을 이용하여, VP16-EL222로 그들의 상응하는 억제기 (GAL80 및 QS)를 제어하여, 빛에서 유전자 발현을 억제하고 어둠 속에서 강하게 유도한다. OptoEXP와 OptoINVRT 회로를 결합하면 유전자 발현의 양방향 제어가 가능하여 성장 단계가 청색광으로 유도되는 2 상 발효가 가능하고 어둠이있는 생산 단계 (그림 2A)5,7.
생산 단계에서 유전자 발현을 유도하기 위해 어둠 대신 빛을 사용하는 것은 광유전학적 조절의 능력을 크게 확장시킬 것이지만, 또한 발효의 이 단계에서 전형적으로 직면하는 높은 세포 밀도의 광 침투 한계를 극복할 필요가 있을 것이다. 이를 위해 우리는 청색광 자극에 대한 전사 반응을 증폭시키는 OptoAMP 및 OptoQ-AMP로 알려진 회로를 개발했습니다. 이들 회로는 VP16-EL222의 야생형 또는 과민성 돌연변이체를 사용하여 각각 GAL 또는 Q 레귤론의 전사 활성화제 Gal4p 또는 QF2의 생산을 조절하여, light12,13으로 향상된 감도와 더 강한 유전자 발현을 달성한다(도 1C). OptoAMP 회로는 광학 밀도(600nm에서 측정; OD600) 값은 조명의 ~0.35%만을 갖는 적어도 40의 값(벌크 표면의 ~7%에서만 5% 광량). 이는 100%에 가까운 조명이 필요한 OptoEXP에 비해 더 높은 수준의 감도를 보여줍니다12. 높은 세포 밀도에서 빛으로 유전자 발현을 효과적으로 유도하는 능력은 발효의 역동적 인 조절을위한 새로운 기회를 열어줍니다. 여기에는 화학 생산을 최적화하기 위해 고유한 조명 일정으로 성장, 유도 및 생산 단계가 설정되는 삼상 발효와 같은 두 개 이상의 시간적 단계에서 발효를 운영하는 것이 포함됩니다(그림 2B)12.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/63269/63269fig1v2.jpg"> 그림 1 : S. cerevisiae의 동적 제어를위한 광유전학 회로. OptoEXP, OptoINVRT 및 OptoAMP 회로는 빛에 민감한 VP16-EL222 시스템을 기반으로 합니다. (A) OptoEXP 회로에서, 청색광에 노출되면 VP16-EL222의 형태적 변화 및 이량체화가 일어나며, 이는 DNA 결합 도메인을 노출시키고 PC120으로부터의 전사를 허용한다. 그림은 Zhao et al.7에서 수정되었습니다. (b) OptoINVRT 회로는 어둠 속에서 발현을 유도하기 위해 GAL (도시) 또는 Q 레귤론을 이용한다. GAL 기반 회로에서 VP16-EL222 및 GAL4는 구성적으로 발현되는 반면, PC120은 GAL80 리프레서의 발현을 구동합니다 (Q 기반 회로에서는 GAL4 및 GAL80이 각각 QF2 및 QS 로 대체되고 GAL 프로모터 대신 합성 QUAS 함유 프로모터가 사용됩니다). 빛에서, Gal80p는 PGAL1로부터 관심있는 유전자의 활성화를 방지한다. 어둠 속에서, GAL80은 발현되지 않고 Gal4p에 의한 PGAL1의 활성화를 허용하는 구성적 데그론 도메인 (작은 갈색 도메인)에 융합함으로써 빠르게 분해된다. 그림은 Zhao et al.5에서 수정되었습니다. (C) OptoAMP 회로는 또한 VP16-EL222를 사용하여 GAL (그림) 또는 Q 레귤론을 제어합니다. 이 회로에서 GAL80 리프레서 (또는 QS)는 구성적으로 표현되고 감광성 데그론 (작은 파란색 도메인)에 융합되어 어둠 속에서 엄격한 억압을 보장합니다. PC120 및 과민성 VP16-EL222 돌연변이체는 빛과 함께 GAL4 (또는 QF2)의 발현을 조절하며, 이는 광에서 PGAL1 (또는 QUAS 함유 프로모터)을 강하게 활성화시킨다. GAL에서 유래한 회로는 활성이 증가한 PGAL1-M 또는 PGAL1-S와 같은 조작된 형태의 PGAL1뿐만 아니라 GAL 레귤론(PGAL1, PGAL10, PGAL2, PGAL7)에 의해 조절되는 야생형 프로모터를 사용할 수 있다. 그림은 Zhao et al.12에서 수정되었습니다.<a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/63269/63269fig1v2large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/63269/63269fig02.jpg"> 그림 2: 시간에 따른 2상 및 삼상 발효. (A) 거꾸로 된 회로로 작동하는 2상 발효는 광구동 성장 단계와 어두운 생산 단계로 구성됩니다. 성장 단계에서 바이오 매스는 생산 경로가 억압 된 상태로 유지됨에 따라 축적됩니다. 원하는 OD600에 도달하면, 세포는 생산 단계를 위해 신선한 배지에 재현탁되기 전에 대사적으로 조정하기 위해 어둠으로 이동된다. (B) 삼상 공정에서 성장, 배양 및 생산 단계는 어두운 성장 기간, 펄스 인큐베이션 및 완전히 조명 된 생산 단계로 구성 될 수있는 고유 한 광 일정에 의해 정의됩니다. 바이오렌더로 만든 그림입니다. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/63269/63269fig02large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>
광유전학 회로는 또한 대장균에서 화학 및 단백질 생산의 동적 제어를 위해 개발되었다. OptoLAC 회로는 YF1/FixJ 두 구성 요소 시스템6을 기반으로 하는 광 반응 pDawn 회로를 사용하여 박테리아 LacI 리프레저를 제어합니다(그림 3). OptoINVRT5와 유사하게, OptoLAC 회로는 빛에서 유전자 발현을 억제하고 어둠 속에서 유도하도록 설계되었습니다. OptoLAC 회로를 사용하는 발현 수준은 표준 이소프로필 β-d-1-티오갈락토피라노사이드(IPTG) 유도로 달성된 수준과 일치하거나 초과할 수 있으므로 화학적 유도의 강도를 유지하면서 향상된 튜닝성 및 가역성을 제공합니다6. 따라서, OptoLAC 회로는 대장균에서 대사 공학을 위한 효과적인 광유전학적 조절을 가능하게 한다.
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/63269/63269fig03.jpg"> 그림 3: 대장균의 동적 제어를 위한 OptoLAC 회로. OptoLAC 회로는 pDawn 시스템과 lac 오페론을 조정하여 어둠 속에서의 활성화와 빛에서의 억압을 달성합니다. 어둠 속에서, YF1은 FixJ를 인산화시키고, 이는 pFixK2 프로모터를 활성화시켜 cI 리프레서를 발현시킨다. cI 리프레서는 PR 프로모터로부터의 lacI 리프레서의 발현을 방지하며, 이는 lacO 함유 프로모터로부터 관심있는 유전자의 전사를 허용한다. 반대로, 청색광은 YF1 순 키나제 활성을 감소시키고, FixJ 인산화 및 따라서 cI 발현을 역전시키고, 이는 lacI의 발현을 억제하고 lacO 함유 프로모터로부터의 발현을 방지한다. 이 그림은 Lalwani et al.6에서 수정되었습니다. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/63269/63269fig03large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>
우리는 화학 또는 단백질 생산을위한 S. cerevisiae 및 대장균 의 광 조절 발효를위한 기본 프로토콜을 여기에서 설명합니다. 효모와 박테리아 모두를 위해, 우리는 먼저 OptoINVRT 및 OptoLAC 회로에 의해 활성화 된 빛 구동 성장 단계와 어둠으로 인한 생산 단계를 가진 발효에 중점을 둡니다. 이어서, 우리는 OptoAMP 회로에 의해 활성화된 삼상(성장, 유도, 생산) 광 제어 발효를 위한 프로토콜을 설명한다. 또한, 우리는 광유전학적으로 제어된 발효물을 마이크로플레이트에서 실험실 규모의 생물반응기로 확장하는 방법을 설명합니다. 이 프로토콜을 통해 우리는 화학 또는 단백질 생산을위한 광 제어 발효를 수행하기위한 완전하고 쉽게 재현 할 수있는 가이드를 제공하는 것을 목표로합니다.

<table><tbody><tr><td>S. cerevisiae</td>24-well 배양 플레이트를 사용한 <td></td><td></td><td></td>Light-controlled Chemical Production</tr> <tr><td></td><td>USA Scientific</td><td>CC7672-7524</td><td></td></tr><tr><td>Agar powder</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>303991049</td><td></td></tr><tr><td>Aluminum foil</td><td>Reynolds</td><td>B004NG90YO</td><td></td></tr><tr><td>BioSpectrometer with &mu; 큐벳</td><td>Eppendorf</td><td>6135000923</td><td></td></tr><tr><td>파란색 LED 패널</td><td>HQRP</td><td>884667106091218</td><td></td></tr><tr><td>EZ-L439 OptoINVRT7 플라스미드</td><td>해당 없음</td><td></td><td>참고 문헌 1</td></tr><tr><td>참조 Glucose</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>501879892 (G8270-5KG)</td><td></td></tr><tr><td>Microcentrifuge</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>75002403</td><td></td></tr><tr><td>Microcentrifuge tubes</td><td>USA Scientific</td><td>1615-5510</td><td></td></tr><tr><td>오비탈 셰이커</td><td>야마토 사이언티픽 아메리카</td><td>SOU-300</td><td></td></tr><tr><td>페트리 접시</td><td>Celltreat</td><td>229656</td><td></td></tr><tr><td>PmeI</td><td>New England Biolabs</td><td>R0560L</td><td></td></tr><tr><td>양자 미터</td><td>Apogee Instruments</td><td>MQ-510</td><td></td></tr><tr><td>복제 도금 장치</td><td>Thomas Scientific</td><td>F37848-0000</td><td></td></tr><tr><td>복제 도금 패드</td><td>Sunrise Science Products</td><td>3005-012</td><td></td></tr><tr><td>SC-His 분말</td><td>Sunrise Science Products</td><td>1303-030</td><td></td></tr><tr><td>SC 완전 분말</td><td>Sunrise Science Products</td><td>1459-100</td><td></td></tr><tr><td>멸균 밀봉 필름</td><td>Excel Scientific</td><td>STR-SEAL-PLT</td><td></td></tr><tr><td>YPD 한천 플레이트</td><td>VWR</td><td>100217-054</td><td></td></tr><tr><td><Zeocin</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>R25005</td><td></td></tr><tr><td>>e. coli</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>6X SDS Sample Buffer</td><td>Cepham Life Sciences</td><td>10502</td><td></td></tr><tr><td>12% 아크릴아미드 단백질 겔</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>NP0341BOX</td><td></td></tr><tr><td>24웰 배양 플레이트</td><td>USA Scientific</td><td>CC7672-7524</td><td></td></tr><tr><td>알루미늄 호일</td><td>Reynolds</td><td>B004NG90YO</td><td></td></tr><tr><td>BioSpectrometer with &mu; 큐벳</td><td>Eppendorf</td><td>6135000923</td><td></td></tr><tr><td>블루 LED 패널</td><td>HQRP</td><td>884667106091218</td><td></td></tr><tr><td>Coomassie Brilliant Blue G-250</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>20279</td><td></td></tr><tr><td>전기영동 셀</td><td>Bio-Rad</td><td>1658004</td><td></td></tr><tr><td>전기영동 전원 공급 장치</td><td>Bio-Rad</td><td>1645050</td><td></td></tr><tr><td>LB broth (Miller)</td><td>Fisher Scientific</td><td></td><td></td>BP97235</tr><tr><td>마이크로 원심분리기</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>75002403</td><td></td></tr><tr><td>마이크로 원심분리기 튜브</td><td>USA Scientific</td><td>1615-5510</td><td></td></tr><tr><td>NaCl</td><td>Thomas Scientific</td><td>SX0425-1</td><td></td></tr><tr><td>OptoLAC 플라스미드</td><td>해당 없음</td><td></td><td>참고 문헌 2</td></tr><tr><td>참조 Orbital Shaker</td><td>Yamato Scientific America</td><td>SOU-300</td><td></td></tr><tr><td>페트리 접시</td><td>Celltreat</td><td>229656</td><td></td></tr><tr><td>양자 측정기</td><td>Apogee Instruments</td><td>MQ-510</td><td></td></tr><tr><td>SOC 매체</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>15544034</td><td></td></tr><tr><td>Thermomixer</td><td>Eppendorf</td><td>5382000015</td><td></td></tr><tr><td>Tris base</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP1521</td><td></td></tr><tr><td>S를 사용한 삼상 발효. cerevisiae</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>"S. cerevisiae를 이용한 광 제어 화학 물질 생산" 프로토콜과 동일한 재료 및 다음 사항 추가:</td><td></td><td></td><td></td></tr> <tr><td>EZ-L580 OptoAMP4 플라스미드</td><td>해당 없음</td><td></td><td>참고 자료 10 참조</td></tr><tr><td>: 10광 제어 생물 반응기에서의 화학 생산</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>알루미늄 호일</td><td>Reynolds</td><td>B004NG90YO</td><td></td></tr><tr><td>Antifoam</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A8311</td><td></td></tr><tr><td>Bioreactor with control station</td><td>Eppendorf</td><td>B120110001</td><td></td></tr><tr><td>BioSpectrometer with &mu; 큐벳</td><td>Eppendorf</td><td>6135000923</td><td></td></tr><tr><td>표백제</td><td>VWR Scientific</td><td>89501-620 (CS)</td><td></td></tr><tr><td>파란색 LED 패널</td><td>HQRP</td><td>884667106091218</td><td></td></tr><tr><td>BPT 튜빙</td><td>Fisher Scientific</td><td>14-170-15</td><td></td></tr><tr><td>포도</td>당 <td>열 Fisher Scientific</td><td>501879892 (G8270-5KG)</td><td></td></tr><tr><td>염산(HCl)</td><td>Fisher Scientific</td><td>7647-01-0</td><td></td></tr><tr><td>M9 최소 염</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>A1374401</td><td></td></tr><tr><td>마이크로 원심분리기</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>75002403</td><td></td></tr><tr><td>마이크로 원심분리기 튜브</td><td>USA Scientific</td><td>1615-5510</td><td></td></tr><tr><td>NH4OH 솔루션</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>I0503-1VL</td><td></td></tr><tr><td>오비탈 셰이커</td><td>Yamato Scientific America</td><td>SOU-300</td><td></td></tr><tr><td>양자 미터</td><td>Apogee Instruments</td><td>MQ-510</td><td></td></tr><tr><td>SC Complete powder</td><td>Sunrise Science Products</td><td>1459-100</td><td></td></tr></tbody></table>

미생물 화학 및 단백질 생산을 위한 광 조절 발효

Light-Controlled Fermentations for Microbial Chemical and Protein Production

미생물 세포 공장은 재생 가능한 공급 원료에서 화학 물질 및 재조합 단백질을 생산하기위한 지속 가능한 대안을 제공합니다. 그러나 유전자 변형으로 미생물에게 과도한 부담을 주면 숙주 적합성과 생산성이 떨어질 수 있습니다. 이 문제는 동적 조절을 사용하여 극복 할 수 있습니다 : 효소 및 경로의 유도 가능한 발현, 일반적으로 화학 물질 또는 영양소 기반 첨가제를 사용하여 세포 성장과 생산의 균형을 유지합니다. 광유전학은 유전자 발현을 동적으로 조절하는 비침습적이고, 고도로 조정가능하며, 가역적인 방법을 제공한다. 여기에서는 화학 물질 또는 재조합 단백질 생산을 위해 조작 된 에스케리치아 콜리 및 사카로 마이스 세레 비시아 (Saccharomyces cerevisiae )의 광 조절 발효를 설정하는 방법을 설명합니다. 우리는 발효 제어 및 생산성 향상을 위해 미생물 성장과 생산을 분리하기 위해 선택된 시간과 복용량에 빛을 적용하는 방법과 최상의 결과를 위한 주요 최적화 고려 사항에 대해 논의합니다. 또한, 우리는 실험실 규모의 생물 반응기 실험을위한 조명 제어를 구현하는 방법을 설명합니다. 이러한 프로토콜은 향상된 발효 성능을 위해 조작된 미생물에서 광유전학적 제어의 채택을 용이하게 합니다.

미생물 대사의 광유전학적 조절은 바이오 연료, 벌크 화학물질, 단백질 및 천연물을 포함한 다양한 제품을 생산하기 위해 성공적으로 구현되었습니다5,6,7,12,13. 이러한 과정의 대부분은 세포 성장이 빛에서 일어나도록 설계되어 있으며(낮은 세포 밀도가 빛 침투로 최소한의 도전을 야기할 때), 세포가 성장하면 어둠에 의해 유도되는 생산을 위해 설계되었다. 이 접근법을 사용하여 효모로부터 생산 된 다양한 화학 물질, 젖산, 귀중한 고분자 전구체 및 식품 첨가물뿐만 아니라 차세대 바이오 연료 인 아이소 부탄올을 포함합니다. 두 화학 물질 모두에 대해 공통적 인 도전은 관심있는 생성물이 아닌 에탄올 생산으로 포도당을 대사하려는 S. cer...

미생물 대사의 광유전학적 조절은 발효 과정에 대한 유연한 동적 제어를 제공합니다. 여기의 프로토콜은 다양한 부피 규모에서 화학 및 단백질 생산을위한 청색광 조절 발효를 설정하는 방법을 보여줍니다.

Microbial cell factories offer a sustainable alternative for producing chemicals and recombinant proteins from renewable feedstocks. However, ...

광유전학은 전형적인 유도제에 비해 여러 화학물질 및 단백질의 더 높은 역가를 달성하기 위해 사용되어 왔다. 이 프로토콜을 사용하면 다른 사람들이 광 기반 제어로 자신의 프로세스를 향상시킬 수 있습니다. 광유전학 조절은 비침습적이며, 고도로 조정가능하며, 가역적이다.이러한 특성은 미생물 공정의 간소화 된 최적화를 허용하고 삼상 발효 및 다색 제어와 같은 독특한 기회를 열어줍니다. 새로운 화학 물질의 경우 최적의 조명 조건이 다릅니다. 따라서이 프로토콜의 매개 변수를 사용하여 낮은 생산이 관찰되면 다른 조명 조건을 테스트해야합니다.먼저 OptoINVRT 플라스미드에 필요한 마커인 HIS3 옥시트로피를 갖는 사카로마이세스 세레비시아 균주를 수득한다. Saccharomyces cerevisiae에 자생하는 유전자를 조절하려는 경우, 진행하기 전에 유전자의 내인성 사본이 삭제되었는지 확인하십시오. 균주 구성을 시작하기 위해, EZL439와 같은 OptoINVRT7 회로를 포함하는 플라스미드를 선형화한다.PIGA를 광에서 하나의 프로모터를 억누르고, 어둠 속에서 활성화시키는 성분을 포함하는 EZL439를 사용하는 경우, Pme1 제한 부위에서 선형화한다. 표준 리튬 아세테이트 형질전환 방법을 사용하여, 플라스미드를 HIS3 영양영양 균주에 통합시킨다. 형질전환 후, 세포를 1분 동안 150 G's에서 원심분리한다.세포를 200 마이크로리터의 신선한 SC-HIS 배지에 부드럽게 재현탁시킨다. 전체 세포 부피를 SC-HIS 한천 플레이트 상에 플레이트하고, 콜로니가 나타날 때까지 이틀에서 3일 동안 섭씨 30도에서 배양한다. 표준 리튬 아세테이트 변환 프로토콜을 사용하여 유능한 세포를 준비하십시오.PIGA1M 또는 PIGA1S 프로모터의 하류를 광유전학적으로 조절하고자 하는 유전자를 함유하는 플라스미드로 세포를 형질전환시킨다. 형질전환 후, 배양물을 1분 동안 150 G's에서 원심분리하고, 세포 펠릿을 200 마이크로리터의 신선한 SC 드롭아웃 배지에 부드럽게 재현탁시켰다. 전체 세포 부피를 효모 추출물 펩톤 덱스트로스 한천 플레이트 상에 플레이트하고, 델타 부위 또는 SC 드롭아웃 플레이트 내로 통합시키면 선택 마커를 함유하는 플라스미드로 형질전환시킨다.세포를 일정한 청색광 하에서 섭씨 30도에서 16시간 동안 배양하여 광유전학적으로 조절된 유전자를 억제된 상태로 유지한다. 465 나노 미터 파장의 광원을 사용하고 LED 패널을 플레이트 위에 약 40 센티미터 위에 배치하여 광도가 초당 평방 미터 당 약 80 ~ 110 마이크로 몰이되도록하십시오. 양자 미터를 사용하여 강도를 측정하십시오.델타 부위에 통합되는 경우, 플레이트를 밀리리터당 400 마이크로그램과 밀리리터 당 1, 200 마이크로그램 사이의 제오신 농도의 범위를 함유하는 효모 추출물 펩톤 덱스트로스 플레이트 상에 복제하여 다양한 통합 카피 수를 선택한다. 복제 플레이트를 콜로니가 나타날 때까지 이틀에서 3일 동안 일정한 또는 펄스된 청색광 하에서 섭씨 30도에서 배양한다. 예비 스크리닝을 수행하려면 각 플레이트에서 8개의 콜로니를 선택하고 이를 사용하여 24웰 플레이트의 개별 웰에 2% 글루코오스가 보충된 SC-HIS 배지 1밀리리터를 접종합니다.일정한 청색광 조명 하에서 분당 200 회전으로 흔들리는 섭씨 30도에서 하룻밤 사이에 세포를 성장시킵니다. 다음날, 각 배양물을 신선한 SC-HIS 배지에 2%글루코스로 희석하여 600나노미터에서 0.01 내지 0.3 범위의 광학 밀도 값을 얻고, 광학 밀도가 2~9개 사이에 도달할 때까지 섭씨 30도에서 일정한 또는 펄스 빛 하에서 분당 200회 회전속도로 진탕 조건에서 배양물을 성장시킨다. 그런 다음 플레이트를 알루미늄 호일로 감싸고 라이트 패널을 끄고 분당 200 회전으로 섭씨 30도에서 네 시간 동안 어둠 속에서 플레이트를 인큐베이션하십시오.배양물을 234 G's의 24 웰 플레이트에서 5분 동안 원심분리하고, 세포를 2% 글루코스로 한 밀리리터의 신선한 합성 완전 드롭아웃 배지에 재현탁시킨다. 멸균 마이크로플레이트 밀봉 테이프를 사용하여 원하는 제품의 증발을 방지하기 위해 플레이트를 밀봉하십시오. 밀봉된 플레이트를 분당 200회전으로 흔들리는 섭씨 30도에서 48시간 동안 어둠 속에서 발효시킨다.발효물을 수확하기 위해, 플레이트를 234 G's에서 5분 동안 원심분리하고, 상층액 800 마이크로리터를 1.5 밀리리터 마이크로원심분리 튜브로 옮긴다. 관심있는 화학 물질에 따라 고성능 액체 크로마토그래피, 가스 크로마토그래피 질량 분광법 또는 사용 된 장비에 가장 적합한 샘플 준비 기술을 사용하는 다른 분석 방법을 사용하여 분석하십시오. 각 플레이트에서 여덟 개의 콜로니를 선택하고 이를 사용하여 24웰 플레이트의 개별 웰에 2% 글루코오스를 가진 SC-HIS 배지 한 밀리리터를 접종합니다.섭씨 30도에서 어둠 속에서 밤새 세포를 성장시키고 분당 200 회전을 흔들어 라. 다음날 아침, 각 배양물을 신선한 SC-HIS 배지에서 2% 글루코스로 희석하여 0.1 광학 밀도로 희석한다. 빛에 노출되지 않도록 플레이트를 알루미늄 호일로 감싸고 섭씨 30도에서 어둠 속에서 배양물을 분당 200 회전으로 흔들어 광학 밀도 3에 도달 할 때까지 성장시킵니다.이어서, 플레이트를 섭씨 30도에서 12시간 동안 펄스된 광 하에서 분당 200회 진탕으로 인큐베이션한다. 배양물을 234 G's에서 5분 동안 원심분리하고, 2% 글루코스로 신선한 SC-HIS 배지에 재현탁시킨다. 멸균 마이크로플레이트 밀봉 테이프를 사용하여 원하는 제품의 증발을 방지하기 위해 플레이트를 밀봉하십시오.밀봉 된 플레이트를 섭씨 30도에서 48 시간 동안 빛으로 발효시켜 분당 200 회전으로 흔들어줍니다. 광유전학적 발효를 수행한 후, 화학적 생산은 두 개의 회로로 유도시에 세포 밀도의 범위에서 시험되었다. OptoINVRT7 회로는 OptoINVRT1 및 2 회로에 비해 유도 값 7.0 및 8.75의 최적 세포 밀도를 갖는 젖산 및 아이소부탄올의 높은 역가를 입증했습니다.OptoAMP 회로를 사용한 발효는 서로 다른 광 듀티 사이클에 의해 정의된 세 단계로 연구되었다. 젖산 생산은 펄스 성장 단계와 완전히 조명 된 유도 및 생산 단계를 사용하여 최적화 될 수 있습니다. 아이소부탄올 생산은 펄스 성장 단계, 완전 조명 유도 단계, 및 펄스 생산 단계를 사용하여 최적화되었다.반면 나링게닌 생합성은 펄스 성장을 완전히 조명한 유도 및 어두운 생산 단계를 사용하여 가장 최적화되었습니다. OptoLAC 시스템은 E.Coli에서 IPDG를 사용한 화학적 유도를 사용하여 달성된 것과 비슷하거나 그 이상의 역가에서 전사 인자 FDER를 생산하는데 사용되어 왔습니다. OptoLAC 회로는 메발로네이트를 생산하기 위해 적용되었으며 생산은 IPDG 유도를 사용하여 달성 된 역가를 초과합니다.생물반응기 수준에서의 메발로네이트 생산은 마이크로플레이트 수준을 넘어 박테리아에서 화학 및 단백질 생산을 위한 광유전학적 조절의 확장성과 조정성을 입증한다. 조명 단계에 대해 빛의 세기가 적절한 범위에 있고 어둠이 필요한 단계의 경우 빛의 오염을 피하는 것이 중요합니다. 이 기술은 효모에서 아이소부탄올의 기록적인 역가를 달성하고, 빛으로 컨소시엄 집단을 안정화시키고, 합성 광 조절 소기관을 사용하여 대사 플럭스를 조절하는 방법을 열었습니다.

light-controlled-fermentations-for-microbial-chemical-protein

Research

연구

JoVE Journal

Bioengineering

생명공학

출처: 헤머리히 J. 외 자동화된 미생물반응기 기술을 이용한 이종 단백질 생산 최적화 프로토콜. J. Vis. 경험 (2017).이 영상은 다양한 배지 제형에 반응하여 박테리아 성장과 형광 단백질 분비를 모니터링하기 위해 자동화된 미생물 반응기를 사용하는 방법을 시연합니다. 분비성 형광 단백질을 발현하는 유전자 변형 박테리아는 항생제 선별 하에 배양되어 영양분이 다양한 웰에 접종됩니다. 세포 밀도와 형광의 실시간 광학 측정은 다양한 성장 조건에서 단백질 생산을 비교 분석할 수 있게 합니다.

자동화된 미생물반응기를 이용한 다양한 배지 제형에서 박테리아 성장 모니터링

우리는 거꾸로 현미경으로 유출 물에 미생물의 문화와 정기적으로 이미지 세포를 조명하기 optogenetic 시스템과 함께 사용 연속 배양 장치를 설계했다. 조명 동적 응답은 며칠에 걸쳐 측정 될 수 있도록 배양 샘플링, 촬상 한 화상 분석이 완전 자동화된다.

미생물 Optogenetic 애플리케이션을위한 설계 및 자동화 일루미, 배양 및 샘플링 시스템의 구현

이 원고는 미생물 배양 미디어의 맞춤형 디자인에 대 한 일반적인 접근 방식을 설명합니다. Kriging 기반 실험 설계 및 microbioreactor 기술을 결합 충분 한 재배 처리량, 안정성 및 액체 미디어 처리 속도 높이기 위해 연구소 로봇에 의해 지원 되는 워크플로 반복 하 여 사용이 준비입니다.

자동화 된 Microbioreactor 기술을 사용 하 여 분리 단백질 생산의 최적화를 위한 일반 프로토콜

의무 혐기성 유기체는 산소 노출시 성장할 수 없기 때문에 혐기성 배양 기술의 사용은 필수적입니다. 여기서, 우리는 배지 제제로부터 가스 및 휘발성 지방산 정량화에 이르기까지 바이오가스 플랜트로부터 유래된 혼합 배양을 배양하는 간단하고 효과적인 방법을 입증한다.

엄격하게 혐기성 /안산 조건하에서 미생물의 재배를위한 중간 준비

이 프로토콜은 생물 발광 리포터를 사용하여 Saccharomyces eubayanus 의 전사 활성을 측정하여 포도당에서 맥아당으로의 전이를 모니터링함으로써 대사 적응의 실시간 분석을 가능하게 하고 다양한 조건에서 산업 발효를 위한 균주 최적화를 지원합니다.

생체 내 Monitoring of transcriptional activity during metabolic transition using a bioluminescent reporter in yeast(효모의 생물발광 리포터를 사용한 대사 전이 중 전사 활동 모니터링)

이 프로토콜은 효소 생산을 향상시키기 위해 회전식 고체 발효 시스템에서 밀기울을 사용합니다. 키틴질과 같은 유도제로 보충된 기질은 통제된 조건에서 곰팡이 성장을 지원합니다. 결과는 수중 발효에 비해 효소 수율이 4-6배 더 높다는 것을 보여주며, 이는 다양한 생명 공학 응용 분야에 대한 방법의 적응성과 효과를 보여줍니다.

사상균에 의한 고분자 가수분해 세포외 효소 생산을 위한 고체 발효 시스템 설계

이 프로토콜은 산업 미생물을 위한 표준 고처리량 스크리닝 워크플로우를 제공합니다. 이 과정은 ARTP 돌연변이 유발을 통해 돌연변이 라이브러리를 구축하고, 자동화된 마이크로플루이딕스를 이용한 양성 액상 스크리닝을 수행하며, 이후 결과를 검증하는 과정을 포함합니다. 이 워크플로우의 신뢰성은 고수율 B. coagulans 균주를 스크리닝하여 검증되었습니다.

자동 액상 마이크로플루이딕 플랫폼을 이용한 L-락산을 과생산하는 바실루스 응고 체 돌연변이체의 고처리량 스크리닝

그들은 kHz에서 속도 저렴 picoliter, 자기들에게만 혈관을 생성할 수 있기 때문에 비말 기반 microfluidic 플랫폼은 높은 처리량 실험을위한 유망한 후보자 있습니다. 빠르고, 민감하고 고해상도 형광 spectroscopic 방법과의 통합을 통해 이러한 시스템 내에서 발생하는 정보의 다량은 효율적으로 추출 무력화하고 이용하실 수 있습니다.

microfluidic 비말 플랫폼 형광 검출 방법

이 방법은 생분해 성 polyanhydride 필름과 nanoparticle 라이브러리의 조합 합성과 이러한 라이브러리의 단백질 릴리스의 높은 처리량 감지 기능을 설명합니다.

조합의 합성과 고분자 필름과 Nanoparticle 도서관에서 높은 처리량 단백질 출시

우리는 분할 테인 - 매개 단백질 겔의 합성을 제시한다. 이러한 하이드로 겔의 빌딩 블록은 각각 분할 테인의 가교제 및 ​​반 역할 삼량 단백질의 서브 유닛을 포함하는 단백질이 공중 합체이다. 두 단백질 공중 합체의 혼합은 하이드로 겔로 자기 조립 폴리펩티드 단위를 산출 테인 트랜스 - 스 플라이 싱 반응을 트리거합니다. 하이드로 겔은 높은 산도와 온도 안정, 유기 솔벤트와 함께, 쉽게 기능을 구형 단백질을 포함하고 있습니다.

테인 매개 인공 단백질 히드로 겔의 합성

배우세요 광유전학적 발효 조절을 통해 미생물 대사를 동적으로 제어하고 화학물질 및 단백질 생산을 극대화하는 방법을. Saccharomyces cerevisiae에서 파란빛 기반 제어를 활용한 고효율 생산 프로토콜입니다.

미생물 화학 및 단백질 생산을 위한 광 조절 발효

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