Name: 고해상도 호흡 측정법에 의한 좌골 신경의 미토콘드리아 기능 평가 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2022-05-05T14:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 19 s
Description: 학습하세요 고해상도 호흡 측정법을 이용하여 좌골 신경의 미토콘드리아 기능을 평가하는 방법을 배우세요. 산소 소비와 ROS 생성을 동시에 측정하여 신경 병증의 질병 기전을 연구할 수 있습니다.

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이 연구는 Instituto Serrapilheira, Fundação de Amparo à Pesquisa do Estado do Rio de Janeiro (FAPERJ), Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico (CNPq) 및 Coordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superior-Brasil (CAPES)에 의해 자금을 지원받았다. 우리는 안토니오 갈리나 필로 박사, 모니카 몬테로 로멜리 박사와 클라우디오 마수다 박사에게 실험실 시설에 대한 지원과 마사 소렌슨 박사에게 기사 개선에 친절하고 가치있는 의견을 주신 것에 감사드립니다.

본 프로토콜은 연구에서 동물 사용에 관한 윤리위원회, CCS/UFRJ (CEUA-101/19) 및 실험 동물의 관리 및 사용에 대한 국립 보건원 지침에 의해 승인되었습니다. 좌골 신경은 4 개월 된 수컷 C57BL / 6 마우스에서 분리되며, 기관 지침에 따라 자궁 경부 탈구에 의해 안락사됩니다. 프로토콜 단계는 미토콘드리아 악화를 피하기 위해 최적화되어 있습니다. 따라서, 이 프로토콜에서, 편광 산소 센서의 교정은 마우스 좌골 신경 조직 해부 및 투과화 이전에 수행되었다.
1. 시약의 제조
<ol><li>조직 보존 버퍼(TP 버퍼)를 준비합니다.<ol>
<li>초순수 용액에서 다음 시약을 준비한다: 0.1 μM의 유리 칼슘을 갖는 10 mM의 Ca-EGTA 완충액, 20 mM의 이미다졸, 20 mM의 타우린, 50 mM의 K-MES, 0.5 mM의 DTT, 6.56 mM의MgCl2, 5.77 mM의 ATP, 15 mM의 포스포크레아틴( 물질표 참조), pH 7.1. -20°C에서 보관하십시오.</li>
	</ol>
</li>
	<li>미토콘드리아 호흡 완충액(MR 완충액)을 준비한다.<ol>
<li>초순수 용액에서 다음 시약을 준비한다: 0.5 mM의 K2 EGTA, 3 mM의MgCl2, 60 mM의 MES, 20 mM의 타우린, 10 mM의 KH2PO4, 20 mM의 HEPES, 110 mM의 D-수크로스, 1 mg/mL의 BSA (무지방산) (물질 표 참조), pH 7.4. -20°C에서 보관한다.</li>
	</ol>
</li>
	<li>사포닌 5mg( 물질표 참조)을 TP 버퍼 1mL에 용해시켜 사포닌 원액을 준비하고(단계 1.1) 얼음 위에 보관한다. 사포닌은 신선하게 준비됩니다.</li>
	<li>Amplex Red 분말( 표 참조)을 DMSO로 재현탁시켜 2 mM의 스톡 농도를 얻고 빛으로부터 보호된 바이알에 -20°C에서 보관하여 제조한다. 참고: 동결 및 해동으로 프로브가 마모되지 않도록 하려면6개월 이상 보관하기 위한 작은 분취량을 25개월 이상 만들지 마십시오.</li>
</ol>2. 고해상도 호흡 측정(HRR)을 위한 편광 산소 센서의 교정
<ol><li>기기와 주사기의 HRR 챔버를 청소 하십시오 (재료 표 참조).<ol>
<li>HRR 챔버를 열고 상단까지 증류수로 채우고 5 분 동안 3x를 저어줍니다. 에탄올로 반복 한 다음 다시 물로 반복하십시오. 마개와 주사기를 물 / 에탄올 / 물로 각각 3 배로 씻으십시오.</li>
	</ol>
</li>
	<li>HRR 소프트웨어에 다음 교정 설정을 적용 합니다(자료 표 참조).<ol>
<li>HRR 소프트웨어 제어에서 실험 온도(37°C), 산소 센서(게인, 2; 분극 전압, 800mV) 및 앰페로메트릭 센서(게인, 1000; 분극 전압, 100mV)에 대한 파라미터를 추가합니다.</li>
	</ol>
</li>
	<li>산소 센서를 보정합니다.<ol>
<li>2.1 mL의 MR 버퍼(단계 1.2)를 각 챔버에 피펫한다. 마개로 닫고 거품이 형성 될 때까지 챔버로 공기를 끌어들입니다. 질량당 산소 플럭스가 안정될 때까지 교정 모드에서 37°C에서 1시간 동안 저어준다.</li>
		<li>제조업체의 프로토콜24에 따라 소프트웨어에서 편광 산소 센서의 공기 교정을 수행합니다. 참고: 교정 단계는 실험 전에 한 번만 수행됩니다. 동일한 호흡 매체 및 온도에서 추가적인 실험은 단지 챔버 세척 후에 수행될 수 있다(단계 2.1).</li>
	</ol>
</li>
</ol>3. 좌골 신경의 해부와 투과
<ol><li>아래 단계에 따라 좌골 신경을 제거하십시오.<ol>
<li>새장에서 제거한 후 자궁 경부 탈구로 동물을 안락사시키고 벤치에서 휴식을 취하도록 부드럽게 억제하십시오.</li>
		<li>안락사 된 동물에서는 척추 근처에서 시작하여 허벅지를 발쪽으로 진행하면서 허리에 가위로 절개하십시오. 신경에 붙어있는 피부와 근육을 제거한 다음 좌골 신경 전체를 잘라내어 제거하십시오.</li>
		<li>조직을 즉시 계량하고 차가운 TB 버퍼 (4°C)로 채워진 바이알에 넣습니다. 얼음 위에서 3.2-3.3단계를 수행합니다. 참고: 젖은 조직 무게는 다음 단계에서 산소 소비 및 ROS 생산 흐름을 정상화하는 데 사용됩니다. 조직을 즉시 칭량할 수 없는 경우 차가운 TB 버퍼에 보관하십시오. 이 절차는 신선한 조직에서 수행되며 미토콘드리아 손상을 피하기 위해 냉동해서는 안됩니다.</li>
	</ol>
</li>
	<li>조직 준비를 위해, 좌골 신경을 충분한 TP 버퍼가 있는 페트리 접시에 넣어 덮으십시오. 포셉으로 신경의 한쪽 끝을 잡고 다른 포셉으로 신경 번들을 수평으로 당겨 내십시오. 참고 :이 절차는 조직 악화를 피하기 위해 10 분 이내에 수행해야합니다. 조직은 이전의 흰색 불투명 조직과 반대되는 투명한 안개 층으로 시각화 될 수있을 때 준비됩니다 (그림 1).</li>
	<li>먼저, 재생 된 조직을 조직 투과를 위해 TP 버퍼 1 mL가 들어있는 작은 접시에 옮깁니다. 투과를 시작하려면, 포셉으로 조직을 TP 버퍼 1mL와 사포닌 10μL를 함유하는 접시로 옮긴다(원액으로부터, 단계 1.3).<ol>
<li>마이크로플레이트 쉐이커에서 30분 동안 부드럽게 흔들고, 포셉으로 조직을 MR 버퍼(1mL)가 들어있는 신선한 접시로 옮기고 10분 동안 부드럽게 흔들어 준다. 포셉으로 조직을 교정된 HRR 챔버로 옮깁니다.</li>
	</ol>
</li>
</ol>4. 산소 소비 및 ROS 생산 결정
<ol><li>HRR 챔버를 2.1mL의 MR 버퍼로 채우고, Amplex Red(단계 1.4)를 최종 농도 5μM에, 퍼옥시다제를 2U/mL로 추가하고, 투과화된 좌골 신경을 추가합니다(단계 3).<ol>
<li>계측기의 형광 센서를 부착하고 소프트웨어의 제어 부분에 있는 조명을 끄고 연결을 눌러 산소 촬영에 연결합니다. 소프트웨어의 "편집 프로토콜"에서 3.1.3 단계에서 측정 된 조직 무게를 삽입하십시오.</li>
	</ol></li>
	<li>"레이아웃"으로 이동하여 "단위 샘플 당 특정 플럭스"옵션을 선택하고 플롯을 선택하여 산소 소비 판독 값에 동시에 액세스하고 원하는 경우H2O2생산에 액세스하십시오. ~ 10 분 정도 기다리십시오. 참고 :이 시간은 추가 된 기질 (기저)없이 산소 소비의 기저 흐름을 안정화시키는 데 필요합니다. 추가 주사 전에 산소 흐름이 안정화되었는지 확인하십시오.</li>
	<li>H2O2의 두 펄스를 각각260 μM의 최종 농도로 주입하여 챔버에서 나중에 교정하십시오.</li>
	<li>미토콘드리아 복합체 II 기질인 숙시네이트 20μL( 표 참조)를 주입하여 미토콘드리아 전자 수송 시스템을 활성화시킨다. 참고: 이 시점에서 다른 미토콘드리아 기질을 추가하여 다른 복합체에 의한 미토콘드리아 기능을 평가할 수 있습니다. 미토콘드리아 복합체 I 및 II에 대해 다양한 기질을 사용한 대표적인 결과는 도 2 및 도 3에 나타내었다. 이 시점에서, O2 소비와 H2O2 생산의 증가는 동시에 도 3에서 관찰된다.</li>
	<li>20μL의 아데노신 디포스페이트(ADP)를 첨가하여 아데노신 트리포스페이트(ATP) 합성을 활성화시킨다. 참고: ADP는 ATP 합성을 자극하고 막 전위를 감소시킵니다. O2 소비의 증가 및H2O2의 생산의 감소는26,27로 관찰될 것으로 예상된다.</li>
	<li>순차적으로, 막 완전성의 지표로서 5 μL의 시토크롬 c ( 물질의 표 참조)를 첨가한다. 참고: 조직이 잘 준비되고 투과되면 시토크롬 c는 산소 소비를 15% 이상 증가시키지 않아야 합니다. 이 경우 문제 해결 섹션에서 권장 사항을 확인하십시오.</li>
	<li>O2 소비의 더 이상의 감소가 관찰되지 않을 때까지 0.2 μg/mL의 올리고마이신 분취량으로 적정한다(물질 표 참조). 참고: 올리고마이신은 ATP 합성을 억제하여O2 유동의 감소와 높은 막 전위26,27에 의해 선호되는H2O2 형성의 향상으로 이어짐으로써 작용한다.</li>
	<li>0.5 μmol/L의 카보닐 시아나이드 4-(트리플루오로메톡시)페닐히드라존(FCCP)의 분취량으로 적정하고, 미토콘드리아 언커플러는,O2 소비의 더 이상의 증가를 관찰할 수 없을 때까지이다. 실험을 끝내기 위해, 2 μl의 안티마이신 A를 최종 농도 5 μM로 주입하고 유동 안정화를 기다린다. 참고:H2O2생산의 감소는 FCCP 주입 후 막 전위 소산으로 인해 관찰됩니다. 안티마이신 A는 콤플렉스 III을 억제하여, 전자의 흐름을 방지한다. 따라서, 미토콘드리아 의존성 O2 소비가 손상되어, 질량당 산소 플럭스가 감소하고 전자 누출이 자극되어,H2O2생산량이 26,27 증가한다.</li>
	<li>명령 모음으로 이동하여 소프트웨어에서 "다중 감각"을 검색하고 제어 > 파일 저장 및 연결 끊기를 클릭하십시오. 참고 : 다른 기질과 억제제의 첨가는 연구중인 질문에 따라 수행 할 수 있습니다. 대표적인 결과에 예가 설명되어 있습니다. H2O2 캘리브레이션은 제조자의 프로토콜28에 따라 실험을 마친 후에 수행된다.</li>
	<li>저장된 파일을 열고 "질량당 산소 플럭스" 추적을 선택하여 실험적 산소 소비 결과를 얻습니다. Shift + 마우스 왼쪽 버튼을 눌러 주사 사이의 창을 수동으로 선택합니다.<ol>
<li>마크 > 통계로 이동하여 기질/억제제/결합되지 않은 프로토콜의 각 주입에 대한 결과를 시각화합니다. H2O2생산의 경우 "Amp-Slope" 트레이스와 동일한 절차를 수행하십시오. 참고: 창을 선택할 때 산소(또는H2O2)가 더 안정적이고 일정한 창을 선택하여 볼륨 주입의 아티팩트를 피하십시오. 선택한 창의 예는 대표적인 결과에서 검은색 중괄호로 표시됩니다(그림 2 및 그림 3).</li>
	</ol></li>
</ol>

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신경 병증을 동반하는 여러 질병 또는 상태는 위험 인자로서 미토콘드리아 기능 장애를 갖는다. 말초 신경에서 미토콘드리아 기능의 평가는 미토콘드리아가 이러한 신경 퇴행성 조건에서 어떻게 작용하는지 밝히는 데 필수적입니다. 미토콘드리아 기능의 평가는 분리 방법의 어려움과 물질의 부족으로 인해 힘들다. 따라서, 미토콘드리아의 단리를 필요로 하지 않는 조직 투과화 기술의 개발이 필수적이다.
투과 조직에서 미토콘드리아 기능을 평가하려면 세포 호흡을 방해하지 않고 세포 원형질막을 투과시킬 수있는 화학 물질을 선택하는 것이 중요합니다. 좌골 신경과 같은 말초 신경에서, 미엘린 조성물은 약 70 %의 지질이며, 그 중 대부분은 콜레스테롤33,34입니다. 콜레스테롤 분자와 상호작용하는 사포닌 및 디지토닌과 같은 투과화제의 선택은 다른 세포 구획을 방해하지 않으면서 미토콘드리아 기계에 기질이 ...

미토콘드리아는 세포 생존력을 유지하고 에너지 대사 (포도당, 아미노산, 지질 및 뉴클레오티드 대사 경로)와 같은 수많은 세포 기능을 수행하는 데 필수적입니다. 반응성 산소 종 (ROS) 생산의 주요 부위로서, 미토콘드리아는 아폽토시스와 같은 여러 세포 신호 전달 과정에서 중심이며 철 - 황 (Fe-S) 클러스터의 합성, 미토콘드리아 단백질 수입 및 성숙, 게놈 및 리보솜 1,2,3의 유지에 참여합니다. 미토콘드리아 막 역학 네트워크는 융합 및 분열 과정에 의해 제어되며, 품질 관리 및 미토파지 4,5,6 용 기계도 갖추고 있습니다.
미토콘드리아 기능 장애는 암, 당뇨병 및 비만과 같은 여러 병리학 적 상태의 출현과 관련이 있습니다7. 미토콘드리아 기능의 교란은 알츠하이머 병 8,9, 파킨슨 병10,11, 근위축성 측삭 경화증 12,13 및 헌팅턴 병 14,15에서와 같이 중추 신경계에 영향을 미치는 신경 퇴행성 장애에서 발견됩니다. . 말초 신경계에서, 축색돌기에서의 미토콘드리아 기능의 상실은 길랑-바레 증후군16,17과 같은 면역 신경병증에서 관찰되고, 축색돌기에서의 높은 미토콘드리아 ROS 생산과 관련하여, 이러한 사건은 슈완 세포18에서 MAP 키나제 활성화를 유도한다. 이것은 미토콘드리아 생리학이 부위 특이적 세포뿐만 아니라 전체 조직에 필수적 일 수 있음을 보여줍니다. HIV-관련 원위 감각 다발성 신경병증 (HIV-DSP)에서, 미토콘드리아는 전사의 트랜스-활성화제 (HIV-TAT) 단백질이 HIV가 효율적으로 복제할 수 있게 하는 기작에서 역할을 할 뿐만 아니라, HIV 감염 병인에서 몇 가지 다른 역할도한다 19,20.
좌골 신경 미토콘드리아 생리학의 평가는 신경병증 7,21,22를 조사하기 위한 필수적인 표적으로서 등장하였다. 당뇨병성 신경병증에서, 프로테오믹 및 대사체 분석은 당뇨병의 대부분의 분자 변화가 좌골 신경 미토콘드리아 산화 인산화 및 지질 대사에 영향을 미친다는 것을 시사한다7. 이러한 변화는 또한 비만으로 인한 당뇨병21의 초기 징후 인 것으로 보입니다. 화학요법-유도된 통증성 신경병증의 마우스 모델에서, 좌골 신경의 미토콘드리아 손상은 산화적 인산화(22)의 감소, 및 미토콘드리아 복합체 활성, 막 전위, 및 ATP 함량(23)의 감소로서 검출된다. 그러나 여러 그룹이 신경 병증에서 미토콘드리아 기능 장애를 언급했지만, 이러한 연구는 미토콘드리아 막의 보존이없는 미토콘드리아 복합체에서의 활성 측정으로 제한되며, 미토콘드리아 무결성에 대한 평가가 부족하거나 미토콘드리아 ATP 생산을위한 매개 변수로서 ATP 함량의 측정이 부족합니다. 일반적으로 미토콘드리아 산소 소비량과 ROS 생산에 대한 적절한 평가는 퍼콜/수크로오스 구배에서 차등 원심분리에 의한 미토콘드리아의 분리를 필요로 합니다. 미토콘드리아의 분리는 또한 다량의 조직이 필요하고 미토콘드리아의 손실 및 파괴로 인해 좌골 신경 조직에 대한 제한 요소가 될 수 있습니다.
본 연구는 좌골 신경에서 미토콘드리아 산소 소비 및 ROS 생산으로 미토콘드리아 생리학을 측정하여 미토콘드리아 막을 보존하고 미토콘드리아를 분리 할 필요없이 미토콘드리아 생리학을 측정하는 프로토콜을 제공하는 것을 목표로합니다. 이 프로토콜은 고분해능 호흡측정법(HRR)에 의해 투과된 근섬유(24 )에서의 산소 소비 측정으로부터 적응된다. 이 절차의 장점은 좌골 신경과 같은 소량의 조직에서 미토콘드리아를 평가하고 현장에서 미토콘드 리아 매개 변수를 평가하여 미토콘드리아 환경, 구조 및 생물 에너지 프로파일을 보존하여 생리적으로 신뢰할 수있는 결과를 얻을 수 있다는 것입니다. 미토콘드리아 호흡 상태는 좌골 신경 투과 후 기질 및 억제제로 결정되어 미토콘드리아 막 완전성에 대한 미토콘드리아 생물 에너지 및 시토크롬 c 계수를 적절하게 평가하여 미토콘드리아 전자 수송 시스템 (ETS) 평가 및 필수 매개 변수 계산의 단계에 대한 가이드를 제공했습니다. 이 연구는 좌골 신경 대사가 수반되는 병리 생리학 적 메커니즘의 질문에 대답하기위한 도구를 제공 할 수 있습니다 (예 : 말초 신경 병증).

<table><tbody><tr><td>아데노신 5' 트리포스페이트 디소듐 염 수화물</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A26209</td><td></td></tr><tr><td>아데노신 5&프라임;-디포스페이트 나트륨 염</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A2754</td><td></td></tr><tr><td>Amplex Red 시약</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>A12222</td><td>Amplex Red는 제품 데이터시트</td></tr><tr><td>Antimycin A(Streptomyces sp.에서)</td>에 따라 DMSO에서 제조됩니다.<td>시그마-알드리치</td><td>A8674</td><td></td></tr><tr><td>소 혈청 알부민</td><td>시그마-알드리치</td><td>A7030</td><td>열 쇼크 분율, 프로테아제 프리, 지방산 프리, 본질적으로 글로불린 프리, pH 7, &ge; 98%</td></tr><tr><td>탄산칼슘</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>C6763</td><td></td></tr><tr><td>카르보닐 시안화물 4-(트리플루오로메톡시)페닐히드라존(FCCP)</td><td>시그마-알드리치</td><td>C2920</td><td></td></tr><tr><td>사이토크롬 c</td><td>시그마-알드리치</td><td>C7752</td><td>(말 심장에서, 작은 반단백질)</td></tr><tr><td>DataLab 버전 5.1.1.91</td><td>OROBOROS INSTRUMENTS, Austria</td><td></td><td>Copyright (c) 2002 - 13 by Dr. Erich Gnaiger</td></tr><tr><td>디지털 오비탈 마이크로플레이트 쉐이커 120V</td><td>Thermo Fisher scientific</td><td>88882005</td><td></td></tr><tr><td>DL-Dithiothreitol</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>43819</td><td></td></tr><tr><td>EGTA 나트륨 염</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>E8145</td><td></td></tr><tr><td>Hamilton 주사기</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>HAM80075</td><td>10 uL, 25 uL 및 50 uL</td></tr><tr><td>HEPES</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>H3375</td><td></td></tr><tr><td>수소 과산화물 용액 30 % W / W</td><td>Merck</td><td>H1009</td><td></td></tr><tr><td>Imidazole</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>I2399</td><td></td></tr><tr><td>L- (&마이너스;)-말산</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>M7397</td><td></td></tr><tr><td>염화마그네슘 육수화물</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>M2393</td><td></td></tr><tr><td>MES 나트륨 염</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>M3885</td><td></td></tr><tr><td>미세 해부 겸자, 곡선형</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>F4142</td><td></td></tr><tr><td>미세 해부 집게, 직선</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>F4017</td><td></td></tr><tr><td>O2K - 필터 세트 Amplex Red</td><td>OROBOROS INSTRUMENTS, Austria</td><td>44321-01</td><td>Fasching M, Sumbalova Z, Gnaiger E (2013) O2K-Fluorometry: HRR 및 H2O2 생산 마우스 뇌 미토콘드리아. Mitochondr Physiol 네트워크 17.17.</td></tr><tr><td>O2K - 형광 LED2 - 모듈 구성 요소 형광 센서 녹색</td><td>OROBOROS INSTRUMENTS, 오스트리아</td><td>44210-01</td><td></td></tr><tr><td>올리고마이신</td><td>시그마-알드리치</td><td>O4876</td><td>(스트렙토마이세스 디아스타토크로모진에서, 올리고마이신 A, B 및 C의 혼합물</td></tr><tr><td>OROBOROS Oxygraph-2k</td><td>OROBOROS INSTRUMENTS, 오스트리아</td><td>http://www.oroboros.at</td><td></td></tr><tr><td>팔미토일카르니틴(Palmitoyl-DL-carnitine-HCl)</td><td>시그마-알드리치</td><td>P4509</td><td></td></tr><tr><td>양고추냉이의 과산화효소</td><td>시그마-알드리치</td><td>P8375</td><td></td></tr><tr><td>페트리 접시, 폴리스티렌</td><td>MERCK</td><td>P5606</td><td></td></tr><tr><td>포스포크레아틴 다이소듐 염 수화물</td><td>시그마-알드리치</td><td>P7936</td><td></td></tr><tr><td>인산이수소 칼륨 일염기</td><td>성 시그마-알드리치</td><td>PHR1330</td><td></td></tr><tr><td>수산화</td><td>칼륨시그마-알드리치</td><td>221473</td><td></td></tr><tr><td>로테논</td><td>시그마-알드리치</td><td>R8875</td><td></td></tr><tr><td>사포닌</td><td>시그마-알드리치</td><td>SAE0073</td><td></td></tr><tr><td>피루브산 나트륨</td><td>시그마-알드리치</td><td>P5280</td><td></td></tr><tr><td>숙시네이트 이염기성 육수화물</td><td>시그마-알드리치</td><td>S2378</td><td></td></tr><tr><td>자당</td><td>시그마-알드리치</td><td>S9378</td><td></td></tr><tr><td>타우린</td><td>시그마-알드리치</td><td>T0625</td><td></td></tr></tbody></table>

고해상도 호흡 측정법에 의한 좌골 신경의 미토콘드리아 기능 평가

Assessing Mitochondrial Function in Sciatic Nerve by High-Resolution Respirometry

말초 신경의 미토콘드리아 기능 장애는 말초 신경 병증과 관련된 여러 질병을 동반하며,자가 면역 질환, 당뇨병, 감염, 유전 장애 및 종양을 포함한 여러 원인에 의해 유발 될 수 있습니다. 마우스 말초 신경에서 미토콘드리아 기능을 평가하는 것은 작은 표본 크기, 조직에 존재하는 제한된 수의 미토콘드리아, 및 미엘린 외피의 존재로 인해 어려울 수 있습니다. 이 연구에 설명 된 기술은 근육 섬유에 사용되는 것으로부터 적응 된 독특한 투과 프로토콜을 사용하여 미토콘드리아를 조직으로부터 분리하는 대신 좌골 신경 미토콘드리아 기능을 평가함으로써 이러한 도전을 최소화합니다. Amplex Red/Peroxidase로 플루오르 반응성 종 생산을 측정하고 사포닌 투과 신경에서 다른 미토콘드리아 기질과 억제제를 비교함으로써 미토콘드리아 호흡 상태, 반응성 산소 종 (ROS) 및 미토콘드리아 복합체의 활성을 동시에 감지 할 수있었습니다. 따라서, 여기에 제시된 방법은 다른 기술에 의한 미토콘드리아 기능의 평가와 비교하여 이점을 제공한다.

투과된 좌골 신경에 의한 미토콘드리아 산소 소비량은 도 2에 나타내었다. 적색 트레이스는 단위 질량당O2 플럭스를 pmol/s.mg로 나타낸다. 내인성 기질로 기저 산소 소비를 기록한 후(일상적인 호흡), 숙시네이트(SUCC)는 콤플렉스 II(숙시네이트 데하이드로게나제)-구동 호흡을 기록하기 위해 주입되어, 산소 소모율의 증가를 초래한다. 순차적으로, ADP의 포화 농도가 첨가되어, ATP 신타제를 활성화시키고 산화적 인산화를 유도한다. 이것은 미토콘드리아 호흡의 인산 상태를 초래합니다. 인산 상태 호흡은 ATP 합성효소가 ATP26을 생성하는 양성자-동기력으로서 양성자 구배에 의해 형성된 막 전위를 사용하여 ADP+Pi(무기 포스페이트)로부터 ATP를 생성할 수 있음을 의미한다. ATP 신타제 활성에 의해 촉진되는 막 전위의 감소로 인해 산소 소비가 가속화되고 산소 흐름의 증가가 관찰됩니다. 외인성 시토크롬 c ...

형광 센서에 결합된 고분해능 호흡법은 미토콘드리아 산소 소비량과 반응성 산소 종(ROS) 생성을 결정합니다. 본 프로토콜은 투과화된 좌골 신경에서 미토콘드리아 호흡률 및 ROS 생산을 평가하는 기술을 기술한다.

Mitochondrial dysfunction in peripheral nerves accompanies several diseases associated with peripheral neuropathy, which can be triggered by multiple ...

이 프로토콜은 제한된 수의 미토콘드리아를 포함하는 작은 조직에서 까다로운 절차인 분리된 미토콘드리아의 파셀레이션에 의해 신경 내부의 미토콘드리아 기능을 평가할 수 있게 해줍니다. 이 기술은 현장에서 보존 된 미토콘드리아에서 산소 소비 및 ROS 생산과 같은 미토콘드리아 기능을 동시에 분석 할 수있는 가능성을 제공합니다. 여러 기판, 억제제 및 언커플러 설계 프로토콜이 있습니다.몇몇 질병은 미토콘드리아 기능, 특히 두 가지 당뇨병 또는 화학요법에 의해 유도되는 신경병증을 공유한다. 이러한 질병에서 미토콘드리아 산화 인산화의 손상은 질병 발생을 지시하는 유일한 신호입니다. 이 방법은 미토콘드리아 질병 메커니즘의 조사, 미토콘드리아 부스터 또는 개선 된 신경 병증 성 통증과 같은 치료법 검색을 통해 신경 생물학, 생화학 및 약리학에 대한 통찰력을 제공합니다.시작하려면 2.1 밀리리터의 MR 버퍼를 각 챔버에 피펫팅하여 산소 센서를 교정하십시오. 마개로 닫고 거품이 형성 될 때까지 챔버로 공기를 끌어들입니다. 질량당 산소 플럭스가 안정화될 때까지 교정 모드에서 섭씨 37도에서 한 시간 동안 저어줍니다.HRR 소프트웨어를 사용하여 제조업체의 지침에 따라 편광 산소 센서의 공기 교정을 수행합니다. 조직 준비를 위해, 좌골 신경을 TP 완충액이 충분한 페트리 접시에 넣어 덮으십시오. 포셉으로 신경의 한쪽 끝을 잡고 다른 포셉으로 신경 번들을 수평으로 당깁니다.먼저, 표시된 조직을 조직 투과를 위해 하나의 밀리리터 TP 버퍼가 들어있는 작은 접시로 옮깁니다. 투과를 시작하려면 포셉으로 조직을 사포닌 밀리리터 당 50 마이크로 그램의 TP 버퍼가 들어있는 다른 접시로 옮깁니다. 플레이트를 마이크로플레이트 진탕기에 넣고 30분 동안 부드럽게 저어준다.그런 다음 포셉으로 조직을 1 밀리리터 MR 버퍼가 들어있는 신선한 접시에 옮기고 10 분 동안 부드럽게 저어줍니다. 포셉으로 조직을 교정된 HRR 챔버로 옮깁니다. HRR 챔버를 2.1 밀리리터의 MR 버퍼로 채 웁니다.Amplex Red와 peroxidase를 각각 다섯 마이크로 몰의 최종 농도와 밀리리터 당 두 단위로 첨가하십시오. 그런 다음 투과성 좌골 신경을 추가하십시오. 기기의 형광 센서를 부착합니다.그런 다음 소프트웨어의 제어 섹션에서 조명을 끄고 소프트웨어에서 옥시 그래프에 연결"프로토콜 편집으로 이동"을 클릭하고 조직 무게를 삽입하십시오. 레이아웃으로 이동하여 단위 샘플 당 특정 플럭스 "옵션을 선택하십시오. 그런 다음 플롯을 선택하여 산소 소비량 판독값에 동시에 액세스하고, 필요한 경우 과산화수소 생산에 액세스합니다.약 10분 정도 기다립니다. 챔버의 교정을 위해 두 개의 펄스의 과산화수소를 주입하고, 각각 260 마이크로 몰의 최종 농도로 주입하십시오. 미토콘드리아 콤플렉스 II 기질인 숙시네이트 20마이크로리터를 주입하여 미토콘드리아 전자 수송 시스템을 활성화시킨다.ATP 합성을 활성화하기 위해 20 마이크로 리터의 ADP를 추가하십시오. 순차적으로, 막 완전성의 지표로서 다섯 마이크로리터의 시토크롬 c를 첨가한다. 산소 소비의 더 이상의 감소가 관찰되지 않을 때까지 올리고마이신 밀리리터 당 0.2 마이크로그램의 분취량으로 적정한다.산소 소비의 더 이상의 증가가 관찰되지 않을 때까지 리터 FCCP 당 0.5 마이크로몰의 분취량으로 적정하고, 미토콘드리아 언커플러. 실험을 끝내려면 두 마이크로 리터의 안티마이신 A를 주입하고 다섯 밀리몰의 최종 농도를 수행하고 흐름이 안정화 될 때까지 기다리십시오. 명령 모음으로 이동합니다.소프트웨어에서 다중 감각 검색". 컨트롤을 클릭하십시오"그런 다음 파일 저장을 누르고 연결을 끊습니다. 저장된 파일을 열고 질량 트레이당 산소 플럭스를 선택하여 실험적 산소 소비 결과를 얻습니다.Shift + 마우스 왼쪽 버튼을 눌러 주사 사이의 창을 수동으로 선택합니다. 마크로 이동하여 통계를 선택하여 기질, 억제제 및 언커플러 프로토콜의 각 주입에 대한 결과를 시각화합니다. 과산화수소 생산을 위해 앰프 기울기 트레이스와 동일한 절차를 수행하십시오.ATP 시타제 활성에 의해 촉진된 막 전위의 감소는 산소 소비를 가속화시켰다. 외인성 시토크롬 C의 첨가는 호흡의 최소한의 자극만을 촉진하여, 이 준비에 대한 미토콘드리아 외막 완전성을 인증하였다. 절대 산소 흐름이 기록되었고 호흡에서 6.3 % 증가 만 관찰되어 조직 준비의 양질을 나타냅니다.산소 소비 및 ROS 생산은 전자 수송 시스템에 연료를 제공하는 상이한 기판의 존재 하에 동시에 측정되었다. 미토콘드리아 복합체에 대한 피루베이트와 말레이트의 첨가는 호흡을 증가시켰다. 콤플렉스 II에 대한 숙시네이트의 추가의 첨가는 또한 산소 소비를 증가시킨다.따라서 다른 기판을 테스트 할 수 있습니다. ROS 생산도 증가하여 전자 수송 시스템에서 산소가 누출되었음을 나타냅니다. 포화 농도에서 아데노신 디포스페이트의 첨가는 ATP 형성을 유도하는 산소 소비를 증가시키고, ROS 생산을 감소시켰다.대조적으로, 올리고 적정은 산소 소비를 감소시키고 ROS 생산을 증가시켰다. 이것은 permeablized 좌골 신경이 미토콘드리아 생리학에서 표준 관계를 복제 할 수 있음을 시사했다. 예상되는 산소 플럭스 변화에 부합하는 FCCP 및 레티논의 첨가는 미토콘드리아 생리학 및 생체 에너지 프로파일이 투과 된 좌골 신경에서 보존되었음을 확인합니다.가장 중요한 단계는 조직 섹션을 부드럽게 준비하고 모든 챔버 개구부가 제대로 청소되었는지 확인하는 것입니다. 미토콘드리아 기능의 변화는 기능 장애 또는 낮은 미토콘드리아 수 때문일 수 있습니다. 따라서 인용 된 합성 효소 활성 및 PCR에 의한 미토콘드리아 DNA 함량 확인이 권장됩니다.

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Biochemistry

생화학

광근의 lateralis의 조직 검사, 정제 미토콘드리아의 준비, 호흡계 프로파일 링하는 방법이 설명되어 있습니다. 작은 부피의 근육 사용은 임상 연구 애플리케이션이 기술에 적합하다.

경피적 바늘 생검에 의해 획득 골격근 조직에서 고립 된 미토콘드리아의 준비 및 호흡계 평가

제시된 방법은 최소한의 마우스 골격근에서 분리된 미토콘드리아를 사용하여 마이크로플레이트 기반 호흡 측정 분석 모음의 수행을 위한 단계별 지침을 제공합니다. 이러한 분석은 일반적으로 사용되는 동물 모델에서 미토콘드리아 산소 소비량의 기계론적 변화/적응을 측정할 수 있습니다.

높은 처리량 마이크로 호흡 측정을위한 마우스 골격근의 최소 수량에서 미토콘드리아 격리 사용

고해상도 호흡율은 미토콘드리아의 산소 소비를 결정하는 데 사용된다. 이것은 미토콘드리아 호흡 사슬 복합체 '(I-IV) 호흡 속도, 최대 미토콘드리아 전자 전달계 용량 및 미토콘드리아 외막 무결성을 결정하기위한 간단한 기술이다.

고해상도 호흡율은 투과성이 그대로 세포에서 미토콘드리아 기능을 평가하는

고분해능 호흡계를 사용하여 산화 인산화를 평가하는 것은 미토콘드리아와 세포 에너지 대사의 기능 분석의 필수적인 부분이되었습니다. 여기에서는 챔버 및 마이크로 플레이트 기반 고해상도 호흡계를 사용하여 세포 에너지 대사를 분석하기위한 프로토콜을 제시하고 각 장치의 주요 이점에 대해 논의합니다.

챔버 및 플레이트 기반 호흡계를 사용하여 세포 및 조직의 생물 에너지를 평가하기위한 고해상도 호흡 측정법

여기에서는 마우스 골격근으로부터의 미토콘드리아를 분리하는 상세한 방법과 마이크로플레이트 기반 호흡 측정법을 사용하여 산소 소모율(OCR)에 의한 호흡의 후속 분석을 설명한다. 이 파이프 라인은 미토콘드리아 대사에 대한 여러 환경 또는 유전 적 개입의 효과를 연구하는 데 적용될 수 있습니다.

호흡 측정을 위한 마우스 골격근으로부터 미토콘드리아의 분리

말은 뛰어난 유산소 운동 능력을 가지고 있어 말 골격근을 말 운동 생리학 연구와 포유류 미토콘드리아 생리학 연구 모두에 중요한 조직으로 만듭니다. 이 기사에서는 말 골격근의 미토콘드리아 기능을 종합적으로 평가하는 기술을 설명합니다.

말 골격근의 고분해능 불소 호흡 측정

고분해능 호흡 측정법에 의한 정자 미토콘드리아 기능 분석은 밀폐 챔버 시스템에서 자유롭게 움직이는 정자의 산소 소비량을 측정할 수 있습니다. 이 기술은 정자 미토콘드리아 특성 및 무결성에 대한 정보를 제공하는 인간 정자의 호흡을 측정하는 데 적용할 수 있습니다.

인간 정자의 미토콘드리아 기능을 평가하기 위한 고분해능 호흡 측정법

여기에서는 인간 또는 생쥐 근육의 신선한 투과화된 골격근 섬유에서 미토콘드리아 산화 인산화를 측정하는 포괄적인 방법을 설명합니다. 이 방법을 사용하면 미토콘드리아 호흡을 실시간으로 정량화하고 연료 선호도 및 대사 유연성을 평가하는 동시에 기존 미토콘드리아 네트워크와 멤브레인 무결성을 유지할 수 있습니다.

고분해능 호흡 측정법을 통한 인간 및 생쥐 골격근 섬유의 미토콘드리아 호흡 측정

면역 세포에서 생리학적으로 관련된 기질 농도 하에서 미토콘드리아 생체 에너지학을 연구하는 방법은 제한적입니다. 당사는 고분해능 폐활량 측정법을 사용하여 인간 T 세포, 단핵구 및 말초 단핵 세포의 에너지 수요에 대한 미토콘드리아 막 전위의 반응 변화를 평가하는 상세한 프로토콜을 제공합니다.

인간 면역 세포에서 미토콘드리아 막 전위의 동적 변화를 평가하기 위한 고분해능 폐활량 측정법

미토콘드리아 염료 표지 말단 미토콘드리아의 국소 주입 시 생 체 내 공초점 현미경 검사. 이 방법은 건강한 근육을 가진 쥐와 병든 쥐의 골격근 조직에서 입증된 개념 증명을 활용하여 고해상도 미토콘드리아 시각화를 제공합니다.

마우스의 근육 및 말단 슈반 세포에서 미토콘드리아 형태의 현장 정량화 방법

학습하세요 고해상도 호흡 측정법을 이용하여 좌골 신경의 미토콘드리아 기능을 평가하는 방법을 배우세요. 산소 소비와 ROS 생성을 동시에 측정하여 신경 병증의 질병 기전을 연구할 수 있습니다.

고해상도 호흡 측정법에 의한 좌골 신경의 미토콘드리아 기능 평가

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