Name: 인간 탯줄 조직에서 중간엽 줄기 세포의 생성과 골격근 계보로의 분화 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2022-08-31T13:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 27 s
Description: 배우세요 인간 탯줄 조직에서 중간엽 줄기 세포를 분리하고 골격근 계보로 분화시키는 방법을. 고세포 생존율과 내피세포 오염 최소화를 실현하는 이 기술은 재생의학 연구에 활용됩니다.

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촬영 및 비디오 제작에 도움을 주신 Ojas Tikoo 씨에게 감사드립니다. 우리는 또한 GARBH-Ini (Advanced Research and Birth Outcome-DBT India)의 직원, 간호사 및 Gurugram Civil Hospital의 선임 연구원 및 Pallavi Kshetrapal 박사로부터 물류에 대한 도움을받은 도움을 인정합니다. 이 작업은 인도 생명 공학부의 Suchitra Gopinath에게 수여 된 보조금으로 지원되었습니다 (BT / 09 / IYBA / 2015; BT / PR29599 / PFN / 20 / 1393 / 2018).

이 연구에서 탯줄 조직의 사용은 줄기 세포 연구 기관위원회 (IC-SCR), 기관 윤리위원회, 번역 건강 과학 기술 연구소 (IEC-THSTI), 민간 병원의 기관 윤리위원회, Gurugram, Haryana 및 기관 생물 안전위원회, THSTI에 의해 승인되었습니다. 인간 탯줄 조직 샘플은 출생시의 용어 전달로부터 수확되었다. 피험자로부터 정보에 입각한 서면 동의를 얻었다. 모든 방법은 관련 지침 및 규정에 따라 수행되었습니다.
1. 탯줄 조직으로부터 MSC의 분리
<ol><li>분만시, 탯줄 5cm 이상, 바람직하게는 태반에 더 가깝게 자르고 70 % 에탄올로 외부 표면을 면도하여 코드를 살균하십시오. 탯줄 조직 조각을 인산염 완충 식염수(PBS)를 함유하는 하나의 50 mL 수집 튜브로부터 이를 함유하는 다른 50 mL 수집 튜브로 순차적으로 옮긴다. 얼음 위에 피사체의 이름이 새겨진 수집 튜브를 1 시간 이내에 실험실로 운반하십시오. 참고: 더 큰 연구의 경우, 연구 전반에 걸쳐 샘플을 추적할 수 있도록 바코드를 작성하는 것이 유용할 수 있습니다. 중요한 것은 인간 조직을 다루는 모든 인원에게 B 형 간염 백신의 완전한 처방을 제공해야한다는 것입니다.</li>
	<li>실험실에서는 사용하기 전에 BSL-2 후드에서 25분 동안 UV를 켜서 오토클레이브 기기와 피펫을 멸균합니다.</li>
	<li>탯줄 조직 조각을 수집 튜브에서 5 g/L 글루코스, 50 μg/mL 겐타마이신,2.5 μg/mL 암포테리신 B, 100 U/mL 페니실린 및 100 μg/mL 스트렙토마이신이 풍부한 PBS를 함유하는 10 cm2 조직 배양 처리 접시로 옮깁니다( 그림 1의 개략도).</li>
	<li>메스를 사용하여 탯줄 조직을 세로 축을 따라 수직으로 슬라이스하여 두 개의 반 원통형 조각을 얻습니다. 코드 비틀림과 점액 표면으로 인해 다른 손에 한 쌍의 포셉으로 조직을 고정하십시오.</li>
	<li>이 시점에서 탯줄 동맥과 정맥을 관찰하고 메스를 사용하여 혈관을 제거하여 표면에서 한 방향으로 긁어냅니다. 탯줄 조직을 PBS로 다시 한번 헹구어 조직과 관련된 모든 잔류 혈액을 제거한다. 혈관을 둘러싸고 있는 WJ에서 세포의 무결성을 보존하기 위해 스크래핑이 부드럽도록 하십시오.</li>
	<li>탯줄 조직의 각 절반을 0.5cm3 크기의 조각으로 다듬고 발광 표면이 접시 위에 아래로 향하게하는 조각을 놓습니다. 접시를 5%CO2를 함유하는 37°C 가습된 챔버에서 10분 동안 간략하게 인큐베이션한다.</li>
	<li>인큐베이션 후, 탯줄 조직 조각이 들어있는 접시에 L-글루타민, 리보 및 데옥시리보뉴클레오시드가 없는 MEM 알파 변형, 15% 소 태아 혈청(열 불활성화되지 않음) 및 50μg/mL 겐타마이신이 포함된 배지 20mL를 플러시합니다. 조직 외식편이 그들의 배향에서 벗어나는 것을 방지하기 위해 측면을 따라 부드럽게 성장 배지를 첨가하십시오. 인큐베이션 동안 조직 외식편에 의해 흡수될 분획을 설명하기 위해 과량의 배지를 첨가한다.</li>
	<li>배양 3일 후, 배양물에 신선한 배지를 첨가한다. 접시를 다루는 동안 문화가 충격과 외식의 움직임으로부터 보호되도록하십시오.</li>
	<li>1 주 후, 멸균 포셉을 사용하여 조직 파편을 개별적으로 제거하고 폐기를 위해 적절한 생체 위험 백을 사용하여 폐기하십시오. 기존 배지를 유지하고 10mL의 신선한 성장 배지를 첨가한다. 개별 콜로니가 70%의 합류점에 도달할 때까지 4일마다 성장 배지를 교체한다. 참고 : 시간이 지남에 따라 합류를 모니터링해야하는 개별 증식 콜로니가있을 것이므로 세포가 접시 전체에 균일하게 분포되지 않을 가능성이 큽니다. 일반적으로 한 달 안에 10cm2 접시는 별도의 접시로 분할하기에 충분한 세포를 생성합니다.</li>
	<li>트립신 / EDTA 용액 (행크스 밸런스 솔트 솔루션 [HBSS]의 1x 0.25 % 트립신 및 0.02 % EDTA)을 사용하여 부착성 세포를 수확하십시오. 세포 현탁액을 470 × g 에서 25°C에서 5분 동안 원심분리하고, 세포 펠릿을 성장 배지에 재현탁시킨다.</li>
</ol>2. uMSCS의 면역 표현 및 전파
<ol><li>부착 세포가 50 % -60 % 합류에 도달하고 잘 퍼지면 면역 표현형으로 진행하십시오. 완전히 합류한 배양물에 대해 MSC 마커 분석을 수행하지 마십시오, 이는 주요 MSC 마커의 하향조절을 야기하는 경향이 있기 때문입니다.</li>
	<li>트립신화 후, FACS 튜브 (1 × 105 세포 / 튜브)에 1 × 106 세포 / mL의 세포 현탁액을 분배하고 적절한 형광단 결합 항체 (모든 1:50 희석)로 염색하십시오 : 염색되지 않은; CD105+CD90; CD105+CD73; CD105; CD90; CD73; CD34+ CD45 (일반적인 형광단); 각 형광단에 대한 이소타입 조절. 추가 분석을 위해 유세포 분석기에 적어도 10,000 건의 총 사건 수를 기록하십시오. 참고: 셀은 각 표면 마커에 대해 개별적으로 분석되므로 셀 하위 집합에 대한 게이팅이 필요하지 않습니다.</li>
	<li>상기 마커 이외에, 개별 탯줄 조직 샘플로부터 생성된 uMSC 라인에서 양성 및 음성 표면 마커의 존재를 확인하였다(표 1).</li>
	<li>유세포 분석기에 의해 표지된 세포를 분석하고 CD105+CD90+ 및 CD105+CD73+ 세포의 백분율을 결정한다. CD105+ 및 CD34-CD45- 세포를 개별적으로 분석한다.</li>
</ol>3. uMSC를 골격근으로 분화
<ol><li>PBS 중 0.01% 콜라겐 및 20 μg/mL 라미닌으로 조직 배양 플레이트를 코팅합니다. 이 플레이트를 실온에서 최소 4 시간 동안 코팅하십시오.</li>
	<li>성장 배지에서 10,000 세포/cm2 의 밀도로 uMSCs를 플레이트화한다.</li>
	<li>세포가 70% 합류하면, 성장 배지를 흡인하고 배양물을 PBS로 2x 헹구었다. uMSCs에 DMEM + 5% 말 혈청 + 0.1 μM 덱사메타손 + 50 μM 하이드로코르티손을 포함하는 근인성 분화 배지 (M1)를 첨가한다. 근인성 진행의 동역학을 결정하기 위해, 배양물에 격일로 M1 배지를 첨가하십시오.</li>
	<li>근인성 진행의 동역학을 결정하기 위해, 각각 2일, 4-5일, 6-7일 및 10-14일에서 Pax7, MyoD, Myogenin 및 MyHC 발현에 대한 uMSCs를 분석한다.</li>
</ol>

<ol><li>Kuroda, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Unique+multipotent+cells+in+adult+human+mesenchymal+cell+populations%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">Unique multipotent cells in adult human mesenchymal cell populations.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 107 (19), 8639-8643 (2010).</li>
<li>Troyer, D. L., Weiss, M. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Wharton%27s+jelly-derived+cells+are+a+primitive+stromal+cell+population%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cells%22%5BJournal%5D)">Wharton's jelly-derived cells are a primitive stromal cell population.</a> Stem Cells. 26 (3), 591-599 (2008).</li>
<li>Karahuseyinoglu, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Biology+of+stem+cells+in+human+umbilical+cord+stroma%3A+In+situ+and+in+vitro+surveys%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cells%22%5BJournal%5D)">Biology of stem cells in human umbilical cord stroma: In situ and in vitro surveys.</a> Stem Cells. 25 (2), 319-331 (2007).</li>
<li>Kita, K., Gauglitz, G. G., Phan, T. T., Herndon, D. N., Jeschke, M. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+and+characterization+of+mesenchymal+stem+cells+from+the+sub-amniotic+human+umbilical+cord+lining+membrane%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cells+and+Development%22%5BJournal%5D)">Isolation and characterization of mesenchymal stem cells from the sub-amniotic human umbilical cord lining membrane.</a> Stem Cells and Development. 19 (4), 491-502 (2010).</li>
<li>Sarugaser, R., Lickorish, D., Baksh, D., Hosseini, M. M., Davies, J. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Human+umbilical+cord+perivascular+%28HUCPV%29+cells%3A+A+source+of+mesenchymal+progenitors%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cells%22%5BJournal%5D)">Human umbilical cord perivascular (HUCPV) cells: A source of mesenchymal progenitors.</a> Stem Cells. 23 (2), 220-229 (2005).</li>
<li>Mishra, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Umbilical+cord+tissue+is+a+robust+source+for+mesenchymal+stem+cells+with+enhanced+myogenic+differentiation+potential+compared+to+cord+blood%5BTitle%5D)+AND+%22Scientific+Reports%22%5BJournal%5D)">Umbilical cord tissue is a robust source for mesenchymal stem cells with enhanced myogenic differentiation potential compared to cord blood.</a> Scientific Reports. 10 (1), 18978(2020).</li>
<li>Lu, L. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+and+characterization+of+human+umbilical+cord+mesenchymal+stem+cells+with+hematopoiesis-supportive+function+and+other+potentials%5BTitle%5D)+AND+%22Haematologica%22%5BJournal%5D)">Isolation and characterization of human umbilical cord mesenchymal stem cells with hematopoiesis-supportive function and other potentials.</a> Haematologica. 91 (8), 1017-1026 (2006).</li>
<li>Seshareddy, K., Troyer, D., Weiss, M. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Method+to+isolate+mesenchymal-like+cells+from+Wharton%27s+Jelly+of+umbilical+cord%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+in+Cell+Biology%22%5BJournal%5D)">Method to isolate mesenchymal-like cells from Wharton's Jelly of umbilical cord.</a> Methods in Cell Biology. 86, 101-119 (2008).</li>
<li>Sotiropoulou, P. A., Perez, S. A., Salagianni, M., Baxevanis, C. N., Papamichail, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterization+of+the+optimal+culture+conditions+for+clinical+scale+production+of+human+mesenchymal+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cells%22%5BJournal%5D)">Characterization of the optimal culture conditions for clinical scale production of human mesenchymal stem cells.</a> Stem Cells. 24 (2), 462-471 (2006).</li>
<li>Yoon, J. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+explant-derived+and+enzymatic+digestion-derived+MSCs+and+the+growth+factors+from+Wharton%27s+jelly%5BTitle%5D)+AND+%22BioMed+Research+International%22%5BJournal%5D)">Comparison of explant-derived and enzymatic digestion-derived MSCs and the growth factors from Wharton's jelly.</a> BioMed Research International. 2013, 428726(2013).</li>
<li>Ishige, I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+mesenchymal+stem+cells+derived+from+arterial%2C+venous%2C+and+Wharton%27s+jelly+explants+of+human+umbilical+cord%5BTitle%5D)+AND+%22International+Journal+of+Hematology%22%5BJournal%5D)">Comparison of mesenchymal stem cells derived from arterial, venous, and Wharton's jelly explants of human umbilical cord.</a> International Journal of Hematology. 90 (2), 261-269 (2009).</li>
<li>Chal, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differentiation+of+pluripotent+stem+cells+to+muscle+fiber+to+model+Duchenne+muscular+dystrophy%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Biotechnology%22%5BJournal%5D)">Differentiation of pluripotent stem cells to muscle fiber to model Duchenne muscular dystrophy.</a> Nature Biotechnology. 33 (9), 962-969 (2015).</li>
</ol>

저자는 경쟁 이익이 없다고 선언합니다.

중요한 단계 이 프로토콜의 중요한 단계는 전달 시점부터 멸균 배양물의 유지에 이르기까지 전파의 전체 기간 동안 무균 조건 하에서 조직을 수집하는 것입니다. 코드 수집 중에 탯줄은 살균되지 않은 표면에 닿지 않고 항생제가 보충 된 PBS가 함유 된 튜브에 수집하기 전에 70 % 에탄올로 외부에서 면도하는 것이 중요합니다. uMSC 단리를 위한 탯줄 수집과 조직의 처리 사이의 시간을 제한하는 것이 중요하다. 수집 장소에서 실험실로 조직을 운반 할 필요가있는 경우, 항생제 함유 완충액으로 조직을 유지하고 얼음 위에 보관하도록주의해야합니다.
방법의 수정 및 문제 해결 uMSCs의 myogenic 분화를 유도하기 위해이 프로토콜의 주요 변형은 0.01 % 유형 1 콜라겐과 20 μg / mL 라미닌으로 접시를 코팅하는 것입니다. 우리는 M1 배지의 존재하에 uMSCs에서의 근인성 진행이 접착 조건이 또한 변조 될 때 ...

인간 탯줄은 강력한 증식 및 분화 속도, 면역 조절 특성 및 세 배아층 모두에서 세포를 생성하는 능력으로 인해 재생 요법을 위해 현재 탐구되고있는 중간엽 줄기 세포의 견고한 저장소를 보유하고있는 것으로 인정 받고 있습니다1. 탯줄 조직은 탯줄 혈, 탯줄 정맥 내피 및 와튼 젤리 (WJ)와 같은 여러 구획으로 구성되며, 그 자체로 혈관 주위 영역, 혈관 간 영역 및 양막 하부 또는 코드 라이닝 (CL)2의 세 가지 불분명 한 영역을 포함합니다. uMSCs가 이러한 모든 상이한 영역으로부터 단리되고 주요 MSC 마커를 광범위하게 발현할 수 있지만, 이들 구획이 uMSCs의 동일한 집단을 포함하는지 또는 그들의 분화 효능에서 차이를 나타내는지에 대한 명확성은 없다3. 따라서 uMSC의 분리를 위한 프로토콜은 격리 모드 및 영역에서 더 높은 정밀도, 차별화 전위의 강력한 특성화, 그리고 마지막으로 코드의 다른 구획으로부터의 비교 분석이 필요합니다. 
이러한 맥락에서, 탯줄의 다른 부분 사이의 uMSC 증식 및 분화 잠재력의 차이를 입증 한 연구는 거의 없습니다. 이들 중, CL 및 WJ 영역으로부터 분리된 uMSCs 사이의 비교 분석은 CL 유래 uMSCs 3,4에서 더 큰 증식 가능성을 나타냈다. 별도의 연구에서, WJ 유래 uMSCs는 혈관주위 세포 (HUCPV)5에 비해 증식 분석에서 더 잘 수행되었다. 혈관 오염이 없는 제대혈 유래 uMSCs와 탯줄 조직 유래 uMSCs 사이의 차이를 조사함에 있어서, 주요 MSC 마커의 차등적 발현은 두 구획 사이에서 보고되었고, 탯줄 조직 유래 uMSCs6에서 증식 속도 증가가 보고되었다.
uMSCs의 분화 가능성을 주로 골형성, 지방형성 및 연골 혈통과 같은 중배엽 혈통의 조직으로 조사하는 여러 연구 중 극소수만이 근인성 분화 및 후속 특성화에 대한 상세한 프로토콜뿐만 아니라 다양한 탯줄 구획 간의 비교 분석을 제공했습니다. 이러한 맥락에서, 우리는 강력한 근육 분화 프로토콜을 개발하여 탯줄 조직 유래 uMSC가 제대혈6에 비해 우수한 근형성 분화 능력을 나타낸다는 것을 관찰했다. 여기서, 단계적 프로토콜은 혈관구조와 관련된 세포가 결여된 전체 탯줄 조직으로부터 uMSCs의 단리, 이들의 특성화, 및 근인성 계보로의 이들의 분화에 대해 상세히 기술되어 있다.

<table><tbody><tr><td>4',6-디아미디노-2-페닐린돌(DAPI)</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>D1306</td><td></td></tr><tr><td>암포테리신 B</td><td>시그마 알드리치</td><td>A2411</td><td></td></tr><tr><td>항생제 용액 100x 액체, 내독소 테스트(0.9% 생리식염수 내 10,000 U 페니실린 및 10mg 스트렙토마이신/mL)</td><td>HiMedia</td><td>A001A-50mL</td><td></td></tr><tr><td>Anti-GAPDH 항체</td><td>시그마 알드리치</td><td>G8795</td><td></td></tr><tr><td>Anti-MyHC 항체 (My32)</td><td>Novus Biologicals</td><td>NBP2-50401AF647</td><td></td></tr><tr><td>Anti-MyoD 항체 (5.8A)</td><td>Novus Biologicals</td><td>NB100-56511</td><td></td></tr><tr><td>Anti-Myogenin 항체 (Clone F5D)</td><td>Novus Biologicals</td><td>NBP2-34616AF594</td><td></td></tr><tr><td>Anti-Pax7 항체</td><td>DSHB</td><td>DSHB-C1-576</td><td></td></tr><tr><td>APC Mouse anti-human CD90 clone 5E10</td><td>BD Biosciences</td><td>559869</td><td></td></tr><tr><td>콜라겐 유형 1</td><td>Merck</td><td>C8919</td><td></td></tr><tr><td>D (+) 포도</td>당 <td>시그마 Aldrich</td><td>G7021</td><td></td></tr><tr><td>덱사메타손</td><td>SIGMA</td><td>D4902</td><td></td></tr><tr><td>FACSCanto II 또는 FACSAria III</td><td>BD Biosciences</td><td></td><td></td></tr><tr><td>태아 소 혈청, 자격을 갖춘 브라질</td><td>GIBCO</td><td>10270106</td><td>열 비활성화되지 않음</td></tr><tr><td>FITC 마우스 안티 휴먼 CD106 클론 51-10C9</td><td>BD Biosciences</td><td>551146</td><td></td></tr><tr><td>FITC 마우스 anti-human CD14 클론 M5E2</td><td>BD Biosciences</td><td>557153</td><td></td></tr><tr><td>FITC 마우스 anti-human CD31 클론 WM59</td><td>BD Biosciences</td><td>557508</td><td></td></tr><tr><td>FITC 마우스 anti-human CD34 클론 581</td><td>BD Biosciences</td><td>555821</td><td></td></tr><tr><td>FITC Mouse anti-human CD45 클론 HI30</td><td>BD Biosciences</td><td>555482</td><td></td></tr><tr><td>FITC 마우스 안티 휴먼 CD49D 클론 9F10</td><td>BD Biosciences</td><td>560840</td><td></td></tr><tr><td>FITC 마우스 안티 휴먼 CD90 클론 5E10</td><td>BD Biosciences</td><td>555595</td><td></td></tr><tr><td>FITC 마우스 안티 휴먼 HLA-A, B, C 클론 G46-2.6</td><td>BD Biosciences</td><td>557348</td><td></td></tr><tr><td>FITC 마우스 안티 휴먼 IgG 클론 G18-145</td><td>BD Biosciences</td><td>555786</td><td></td></tr><tr><td>FlowJo 소프트웨어</td><td>BD Biosciences</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Gentamicin</td><td>Sigma Aldrich</td><td>G1264</td><td></td></tr><tr><td>호스 세럼</td><td>HiMedia</td><td>RM1239</td><td></td></tr><tr><td>하이드로코르티손</td><td>Merck</td><td>H4001</td><td></td></tr><tr><td>Laminin</td><td>Merck</td><td>L2020</td><td></td></tr><tr><td>MEM 알파 변형 L-글루타민, 리보- 및 디옥시리보뉴클레오시드</td><td>Hyclone</td><td>SH30568. FS</td><td>기초 배지 uMSC</td></tr><tr><td>PE 마우스 항 인간 CD105 클론 266</td><td>BD Biosciences</td><td>560839</td><td></td></tr><tr><td>PE 마우스 안티 휴먼 CD44 클론 515</td><td>BD Biosciences</td><td>550989</td><td></td></tr><tr><td>PE 마우스 안티 휴먼 CD49E 클론 llA1</td><td>BD Biosciences</td><td>555617</td><td></td></tr><tr><td>PE 마우스 안티 휴먼 IgG 클론 G18-145</td><td>BD Biosciences</td><td>555787</td><td></td></tr><tr><td>PE-Cy7 마우스 안티 휴먼 CD73 클론 AD2</td><td>BD Biosciences</td><td>561258</td><td></td></tr><tr><td>인산염 완충 식염수(PBS), pH=7.4</td><td>HiMedia</td><td>M1866</td><td></td></tr><tr><td>트립신/EDTA 용액(Hanks Balanced Salt Solution(HBSS)에서 1x 0.25% 트립신 및 0.02% EDTA)</td><td>HiMedia</td><td>TCL049-100mL</td><td></td></tr></tbody></table>

인간 탯줄 조직에서 중간엽 줄기 세포의 생성과 골격근 계보로의 분화

Generation of Mesenchymal Stem Cells from Human Umbilical Cord Tissue and their Differentiation into the Skeletal Muscle Lineage

중간엽 줄기 세포의 치료 잠재력을 탐구하는 것은 분리의 용이성, 분화에 대한 효능 및 공급원의 신뢰성과 견고성에 달려 있습니다. 우리는 인간 탯줄 조직 (uMSCs)으로부터 중간엽 줄기 세포의 단리, 그들의 면역 표현형, 및 여러 계대에 걸쳐 그러한 배양물의 전파를 위한 단계적 프로토콜을 여기에서 설명한다. 이 절차에서 uMSCs의 생존력은 효소 소화가 없기 때문에 높습니다. 또한, 탯줄 동맥과 정맥을 포함한 혈관을 제거하면 내피 기원의 세포가 오염되지 않도록합니다. 유세포 분석기를 사용하여, 단리시 uMSC는 CD45-CD34-이며, 이는 조혈 혈통으로부터 세포의 부재를 나타낸다. 중요하게도, 이들은 키 표면 마커, CD105, CD90 및 CD73을 발현한다. 배양물의 확립시, 이 논문은 이들 uMSCs에서 골격근 계통으로의 분화를 유도하는 효율적인 방법을 기술한다. 분화된 uMSCs에서의 근인성 진행에 대한 상세한 분석은 uMSCs가 분화의 초기 단계에서 근인성 선조에 대한 마커인 Pax7을 발현하고, 이어서 MyoD 및 Myf5의 발현, 그리고 마지막으로 말단 분화 마커인 미오신 중쇄(MyHC)를 발현한다는 것을 밝혀낸다.

탯줄 조직에서 uMSCs의 분리의 성공은 전체 제대혈에서 성공의 가난한 비율과 달리 &gt;95 %입니다. uMSCs의 성공적인 단리시, FACS 분석은 모든 세포가 CD34-CD45-CD105+CD90+임을 밝혀내었다. 그러나, 비교 분석에서, 제대혈로부터 분리된 uMSCs는 이종 집단을 표시하며, 여기서 세포의 비율은 CD34+CD45+CD105+(~15%)를 나타낸다. 추가적으로, 이중 양성 CD105+CD90+는 수가 적다(~5%)(보충 그림 S1). 이것은 제대혈로부터 uMSC들 사이에서 감소된 수준의 근인성 분화를 초래하는데, 이는 CD105 및 CD90 발현 둘 모두가 근형성의 유도를 위해 요구되기 때문이다. uMSCs는 또한 표 1에 열거된 마커의 발현을 표시한다. 제대혈 유래 u...

우리는 인간 탯줄 조직으로부터 중간엽 줄기 세포를 분리하고 골격근 혈통으로의 분화를 위한 프로토콜을 기술한다.

Exploring the therapeutic potential of mesenchymal stem cells is contingent upon the ease of isolation, potency toward differentiation, and the ...

우리는 인간 탯줄 조직에서 중간엽 줄기 세포를 분리하는 우리의 프로토콜과 골격근 혈통으로 분화시키는 강력한 방법을 설명합니다. 이 기술을 통해 우리는 내피 기원의 세포의 오염이 거의 없거나 전혀없는 높은 생존력과 열을 가진 중간엽 줄기 세포를 분리하고 이러한 질병에서 효율적으로 근형성 분화를 유도 할 수 있습니다. 코드 비틀림과 점액 일관성으로 인해 코드를 다루기가 어렵습니다.우리는 코드를 처리하고, 와튼의 젤리를 긁지 않고, 내피 세포를 개체군에서 배제하는 방법을 보여줍니다. 전달 시간에 탯줄 조직을 수집한 후, 수집 튜브로부터 탯줄 조직 조각을 10 평방 센티미터 조직 배양 처리 접시로 옮기고, 신선한 PBS로 조직을 철저히 세척한다. 코드 비틀림과 점액 표면을 관리하려면 한 손에 한 쌍의 포셉으로 조직을 고정하십시오.메스를 사용하여 탯줄 조직을 세로 접근을 따라 수직으로 슬라이스하여 두 개의 반 원통형 조각을 얻습니다. 이 시점에서 탯줄 동맥과 정맥을 관찰하십시오. 메스를 사용하여, 표면으로부터 일방향으로 이들을 긁어내어 혈관을 제거하고 PBS로 탯줄 조직을 헹구어 조직과 관련된 잔류 혈액을 모두 제거하였다.탯줄 조직의 각 절반을 0.5 입방 센티미터 크기의 조각으로 다듬는다. 발광 표면이 아래를 향하게하는 파편을 접시에 놓고 접시를 10 분 동안 잠깐 배양하십시오. 인큐베이션이 끝날 때, MEM 알파 변형을 함유하는 배지 20 밀리리터를 탯줄 조직을 함유하는 접시의 측면을 따라 부드럽게 첨가한다.외식편이 그들의 배향에서 벗어나지 않도록하고 조직 외식편이 배양 중에 흡수 될 분율을 설명하기 위해 과도한 배지를 추가하십시오. 그런 다음 접시를 사흘 동안 인큐베이터에 놓습니다. 배양이 끝나면 배양물에 신선한 배지를 첨가하고 접시를 취급하는 동안 배양물이 외식재의 충격과 움직임으로부터 보호되도록하십시오.일주일 후, 멸균 포셉을 사용하여 조직 파편을 개별적으로 제거하고 폐기를 위해 적절한 생물학적 위험 백을 사용하여 폐기하십시오. 기존 배지를 유지하고 10 밀리리터의 신선한 성장 배지를 첨가하십시오. 개별 콜로니가 70%의 합류점에 도달할 때까지 나흘마다 성장 배지를 교체하고, 원고에 기재된 바와 같이 세포를 염색한 후, 표지된 세포를 유세포 분석기로 분석하고, CD105 CD90 양성 및 CD105 CD73 양성 세포의 백분율을 결정한다.CD105 양성 및 CD34 CD45 음성 세포를 별도로 분석한다. 조직 배양 플레이트를 PBS 중 밀리리터 당 0.01% 콜라겐 및 20 마이크로그램의 라미닌으로 코팅하고 실온에서 최소 네 시간 동안 로커 상에 놓는다. 인큐베이션 후, 콜라겐을 제거하고 플레이트를 PBS로 세척한 다음, 성장 배지에서 평방 센티미터 밀도 당 10, 000 세포 밀도에서 uMSCs를 플레이트화하였다.일단 세포가 70% 컨플루언시를 달성하면, 성장 배지를 흡인하고, 배양 플레이트를 PBS로 두 번 헹구었다. 근인성 진행의 동역학을 결정하기 위해, 배양물에 격일로 M1 배지를 첨가하고, 각각 이틀, 사흘 내지 5일, 육 내지 7일, 및 10 내지 10일 내지 10일에 pax7, MyoD, 미오게닌 및 미오신 중쇄의 발현에 대한 uMSCs를 분석한다. uMSCs는 CD105 및 CD90의 발현을 표시하고, 조혈 마커 CD34 및 CD45를 발현하지 않는다.uMSCs는 또한 uMSCs 마커 CD73의 발현에 대해 양성이었고, 이는 uMSCs가 다수의 키 마커를 발현한다는 것을 나타낸다. uMSCs는 M1의 첨가 후 처음 이틀 이내에 pax7의 발현을 나타냈고, 이어서 M1 첨가의 처음 나흘 이내에 MyoD 발현이 나타났다. 세포는 분화 6일에 미오게닌 단백질을 발현하고, 이어서 분화 유도 후 10일에서 14일 사이에 미오신 중쇄를 발현한다.970개의 유전자는 미분화된 uMSCs와 비교하여 근인성 분화의 유도에 반응하여 상향조절되었다. 더 많은 근인성 유전자는 제대혈 유래 uMSCs에 비해 제대혈 유래 uMSCs에서 상향조절되었다. 제대혈 조직과 제대혈 모두 액틴 결합 및 사르코머 조립과 관련된 세포골격 단백질, 수축 기능과 관련된 수송체, 근육량 유지, 칼슘 신호 전달 및 효소 기능과 관련된 유전자의 상향 조절을 보였다.조직을 무균 조건 하에서 수집하고 멸균 배양을 유지하십시오. 코드는 외부에서 70 % 에탄올로 스윕하고 가능한 한 빨리 처리해야합니다. 많은 재생 요법은 초기 계대에서 많은 수의 세포를 필요로합니다.또한 전체 건조 환경을 모방하고 산후 신진 대사를 반영하는 모델로 사용할 수 있습니다.

generation-mesenchymal-stem-cells-from-human-umbilical-cord-tissue

Research

연구

JoVE Journal

Developmental Biology

발생생물학

이 프로토콜은 실험 이식을 위해 autologous 쌍을 생성하는 동물의 혈청을 사용하지 않고 고립과 mesenchymal stromal 세포와 내피 세포의 콜로니 형성 이후의 확장을 설명합니다.

인간 탯줄의 분리 및 동물 혈청 무료 확장 Mesenchymal Stromal 세포 (MSCS)와 내피 콜로니 형성 전구 세포 (ECFCs)을 유래

플라스크에 세포의 준수 속도에 따라 musculoskeletal 부드러운 조직에서 분리 성인 줄기 세포.

소프트 Musculoskeletal 조직에서 줄기 세포를 분리

재생 애플리케이션에 이상적이다 인간의 골격 근육 항구 여러 멀티 혈통 전구체 집단 내에서 혈관. 내막 근육 조직에서 혈관 내피 세포, 혈관 주위 세포 매체 및 외막 세포 외막에서이 분리 방법은 혈관의 세 층 구조에서 각각 세 능성 전구 세포 집단의 동시 정제를 허용한다.

인간의 골격 근육에서 혈관 유래 다 능성 전구체의 분리

여기서, 우리는 인간의 생물학적 기능을 다시 요약 관대 배양 조건 하에서 수축성 근섬유 (myospheres)의 입체 클러스터를 형성하는 골격 근육 원종의 균질 한 집단을 생성 향해 인간 배아 줄기 세포 (인간 배아 줄기 세포)의 후생 유전 학적 리 프로그래밍을 기반 프로토콜을 설명 골격 근육.

성적인 프로그램을 다시 만들에 의해 인간 배아 줄기 세포에서 Myospheres의 생성

여기서, 우리는 인간 탯줄 (UC)와 코드에 태아 태반 샘플 분리 용 (CL), 왓슨의 젤리 (WJ), 코드 - 태반 접합부 (CPJ) 태아 태반 (FP) 라이닝 박리를위한 프로토콜을 제시 상기 이식편 배양 기술을 이용하여 중간 엽 간질 세포 (MSC들)의 특성화.

인간 제대혈 및 태아 태반에서 중간 엽 기질 세포의 분리 및 특성

여기, 우리는 기능, 계약, cardiomyocyte 같은 세포를 생성 하기 위해서는 인간 중간 엽 줄기 세포의 젊은 소스의 심장 감 별 법 잠재력을 효율적으로 활용 하는 방법을 제시 생체 외에서.

생체 외에서 기능 Cardiomyocyte-같은 세포로 인간 중간 엽 줄기 세포의 분화

여기, 우리는 제대혈 단핵 세포 유래 인간 유도 pluripotent 줄기 세포에서 연골 분화에 대한 프로토콜을 제안합니다.

제대혈 유래 다 능성 줄기 세포로부터 연골 형성 펠렛 형성

인간의 탯 (UC) preterm, 용어, 결과로 perinatal 기간 동안 얻을 수 있습니다 하 고 postterm 배달. 이 프로토콜에서 우리 기술 분리와 UC 유래 중간 엽 줄기 세포 (UC-MSCs)의 태아/유아에서 임신 19-40 주.

절연 및 인간의 탯 유래 중간 엽 줄기 세포 Preterm와 기간 유아에서의 특성화

우리는 이러한 keratinocytes 및 섬유 아 세포를 사용 하 여 유도 만능 줄기 세포 유래 keratinocytes 및 섬유 아 세포 분화 및 3D 피부 organoid, 생성 하는 방법을 보여 주는 프로토콜을 제안 합니다. 이 프로토콜 humanized 마우스 모델을 생성 하는 추가 단계를 포함 합니다. 여기에 제시 된 기술 피부과 연구를 향상 됩니다.

코드 혈액 파생에서 3D 피부 Organoid의 생성 유도 만능 줄기 세포

이 프로토콜은 hiPSC를 중간엽 기질 세포(MSC)로 분화하기 위한 두 가지 대표적인 방법을 설명하고 비교합니다. 단층 방법은 비용이 저렴하고 작동이 간단하며 골형성 분화가 더 쉬운 것이 특징입니다. 배아체(EB) 방법은 시간 소비가 적은 것이 특징입니다.

인간 유도만능줄기세포(Human Induced Pluripotent Stem Cells)를 중간엽 기질세포(Mesenchymal Stromal Cell)로 분화하기 위한 두 가지 대표적인 방법의 비교

배우세요 인간 탯줄 조직에서 중간엽 줄기 세포를 분리하고 골격근 계보로 분화시키는 방법을. 고세포 생존율과 내피세포 오염 최소화를 실현하는 이 기술은 재생의학 연구에 활용됩니다.

인간 탯줄 조직에서 중간엽 줄기 세포의 생성과 골격근 계보로의 분화

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