Name: 장기간의 순환 정지 후 체외 심폐 소생술의 소아 동물 모델 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2023-05-26T12:55:00.000+00:00
Duration: 4 min 55 s
Description: 학습하세요 체외 심폐 소생술을 이용한 신생아 돼지 모델로 심장 수술 후 뇌 손상을 연구하는 방법을. 이 프로토콜은 선천성 심장 질환 합병증 예방 연구에 활용됩니다.

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이 프로젝트는 보조금 계약 101017113 없음에 따라 유럽 연합의 Horizon 2020 연구 및 혁신 프로그램, Instituto de Salud Carlos III(PI20/00298), Beca Carmen de Torres(Fundació Sant Joan de Déu) 및 Vanderbilt Medical Scholars Program에서 자금을 지원받았습니다. Jordi Grifols, María del Mar Arevalo, Juan Ricardo Gonzalez, Sara Capdevila, Josep Puig, Gemma Cristina Monte Rubi를 포함한 CMCiB의 모든 직원에게 감사드립니다. 또한 해부학 도면에 도움을 주신 Abril Culell Camprubí와 Dr. Sergi Cesar Díaz에게도 특별한 감사를 드립니다.

본 절차는 카탈로니아 비교 의학 및 생체 이미지 센터(CEEA-CMCiB)의 동물 실험 윤리 위원회(CEEA)의 승인을 받았습니다. 카탈루냐 정부는 또한 실험 프로토콜(번호 11652), 파일 식별 번호 FUE-2022-02381434 및 ID QBXQ3RY3J를 승인했습니다. 감독과 도움을 제공하는 공인 수의사를 포함하여 경험 많은 실무자들이 모든 실험을 수행했습니다. 본 연구에는 생후 4-6일, 체중 2.5-3.5kg의 새끼 돼지(Sus scrofa domestica)가 사용되었습니다. 관련 편향을 피하기 위해 성별 분포의 균형을 맞추려는 시도가 이루어졌습니다.
1. 진정, 삽관 및 접근
<ol><li>근육 주사 케타민(20mg/kg), 덱스메데토미딘(0.02mg/kg) 및 미다졸람(0.3mg/kg)으로 진정 및 진통을 시작합니다. 동물이 깊이 진정되면(사전 약물 투여 후 5분 후) 마스크(2L/min)를 통해 100% O2 로 산소를 공급합니다. 다음으로 IV 프로포폴(0.5mg/kg)로 마취를 유도합니다( 재료 표 참조).</li>
	<li>새끼 돼지를 등쪽 누운 위치에 놓습니다. 기관을 직접 시각화하여 2.5mm 커프가 있는 기관내관( 재료 표 참조)을 사용하여 구기관 삽관을 수행합니다.<ol><li>폐 기저부의 직접 청진을 통해 적절한 기관내관 배치를 확인합니다.</li>
	</ol></li>
	<li>분당 30회의 호흡수, 8-12mL/kg의 일회 호흡량, 4cmH2O의 호기말 압력을 제공하도록 기계 환기를 설정합니다.</li>
	<li>프로토콜 중에 심박수(HR), 혈압(BP) 및 산소 포화도(spO2)를 통해 마취 깊이를 지속적으로 모니터링합니다. 필요에 따라 인공호흡기 및 진정 매개변수를 조정합니다. 알림: 바이탈의 이상적인 값은 HR 130-160bpm, BP 75-95/60-70, spO2 > 85입니다.</li>
	<li>1.5% 세보플루란과 펜타닐(25-200 μg/kg/min)로 진정을 유지합니다( 재료 표 참조).</li>
	<li>직접 시각화를 사용하여 대퇴 동맥(3 Fr)과 정맥(4 Fr)에 카테터를 배치합니다( 재료 표 참조). 참고: 이 카테터는 약물 투여 및 검체 채취에 사용됩니다. 따라서 액세스를 유지하는 것이 중요합니다.</li>
</ol>2. CPB 회로 설정 및 프라이밍
<ol><li>아래 단계에 따라 CPB 회로를 사용자 정의하고 설정합니다(그림 3).<ol><li>튜브를 가능한 한 줄이면서 기계에서 동물이 도달할 수 있는 충분한 거리를 유지하십시오.</li>
		<li>멤브레인 산소화기( 재료 표 참조)의 유출을 펌프로의 유입과 연결하는 튜브 브리지를 만들고 부착합니다. 알림: 브리지는 동물의 CA가 수행되는 동안 혈액이 기계를 통해 계속 순환할 수 있도록 하는 데 중요합니다.</li>
	</ol></li>
	<li>모든 연결 지점이 밀봉되면 300mL의 헤파린-식염수(1,000UI의 헤파린을 1L의 식염수에 혼합)와 300mL의 신선한 기증자 돼지 혈액으로 회로를 프라이밍한 다음 3.5mEq 중탄산나트륨, 헤파린 350UI 및 450mg의 글루콘산칼슘을 넣습니다( 재료 표 참조).<ol><li>혈액, 헤파린-식염수, 중탄산나트륨 및 글루콘산칼슘 혼합물을 2L/min의 속도로 0.3분 동안 전체 회로를 통과시켜 회로를 "스윕"합니다.</li>
	</ol></li>
</ol>3. 수술 및 CPB 시작
참고: 보충 그림 1 은 캐뉼라 배치에 필요한 수술 재료를 보여줍니다.
<ol><li>캐뉼레이션을 준비하기 위해 좌측 내경정맥과 우측 경동맥을 노출시킵니다(그림 4).</li>
	<li>캐뉼레이션의 경우 Seldinger 또는 "over-the-wire" 기술21을 사용하십시오.<ol><li>먼저 좌측 내경정맥에 바늘 카테터를 삽입합니다. 섬광하는 피가 보이면 가이드 와이어를 혈관에 조심스럽게 삽입하고 바늘을 제거하여 와이어가 제자리에 고정되도록 합니다.</li>
		<li>확장기를 와이어 위로 용기에 끼운 다음 확장기를 제거합니다.</li>
		<li>와이어가 제자리에 있는 상태에서 8 Fr 정맥 캐뉼라를 끼우고 혈관에 ~4cm 천천히 전진시킵니다. 캐뉼라가 제자리에 유지되도록 와이어를 조심스럽게 제거합니다.</li>
		<li>팽창과 함께 Seldinger 와이어 기술을 반복하여 6 Fr 소아 동맥 캐뉼라( 재료 표 참조)를 오른쪽 경동맥에 배치합니다.</li>
		<li>동맥 캐뉼라 삽입 시 새로 배치된 동맥 캐뉼라를 통해 헤파린 정맥 주사(50IU/kg) 볼루스를 투여합니다.</li>
	</ol></li>
	<li>접근이 완료되면 부주의한 제거를 방지하기 위해 3-0 폴리 흡수성 봉합사와 테이프를 사용하여 두 캐뉼라를 동물에 단단히 고정합니다(그림 5).</li>
	<li>캐뉼라를 CPB 회로에 연결하고 회로의 공기를 방지하기 위해 헤파린이 함유된 식염수가 연결 지점에 추가되도록 합니다.</li>
	<li>초기 유속을 80-85mL/kg/min으로 설정하고 최종 유속인 150mL/kg/min까지 천천히 증가시킵니다. 참고: 동물은 실험에 필요한 한 CPB에 남아 있을 수 있습니다. 1-3단계의 스키마는 보충 그림 2에 설명되어 있습니다.</li>
</ol>4. 순환 및 심장 마비 (CA)
<ol><li>CA를 유도하려면 9mEq의 KCl을 투여합니다. 바이탈을 사용하여 완전 정지를 평가하고 심장 초음파로 확인합니다. 필요에 따라 추가 KCl을 관리합니다.</li>
	<li>심장이 멈추면 동물을 회로에서 격리시켜 순환 정지를 유도합니다.</li>
	<li>앞서 설명한 브리지(3.5rpm에서 순환하는 1,500단계)를 사용하여 CPB 회로 흐름을 유지합니다.</li>
</ol>5. 체외 심폐 소생술(eCPR)
<ol><li>적절한 CA 상태(0분, 30분 또는 60분)에 도달하면 eCPR 소생술을 시작합니다.</li>
	<li>새끼 돼지를 CPB 회로에 다시 연결합니다.</li>
	<li>말초 동맥 접근을 통해 글루콘산칼슘 3mL(2.25mmol/10mL, 1:2 희석) 및 중탄산나트륨(1M, 1:2 희석) 6mL를 투여하고 필요에 따라 용량을 추가합니다. 참고: 필요한 경우 심장율동전환 또는 수축성 약물(아드레날린 또는 도파민)을 사용할 수 있습니다.</li>
</ol>6. 수술 후 관리
<ol><li>소생되면 안정성을 보장하기 위해 15분 동안 바이탈을 모니터링합니다. 참고: 집중 치료실 기간의 이상적인 매개변수는 HR 100-150bpm, BP 75-95/60-70, spO2 > 85입니다.</li>
	<li>자기 공명 영상(MRI)을 위해 동물을 옮깁니다. 참고: 이미징 후 동물은 회복되지 않았고 조직학적 분석을 위한 뇌 샘플을 얻기 위해 펜토바르비탈 나트륨의 정맥 투여를 통해 마취 상태에서 안락사되었습니다. 샘플 수집 전략을 포함한 절차의 실험 부분의 타임라인은 보충 그림 3에서 볼 수 있습니다.</li>
</ol>

Extracorporeal Cardiopulmonary Resuscitation in Animal Model After Cardiac Arrest

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</ol>

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심폐 우회술은 성인, 어린이 및 신생아의 심장 수술 중에 일반적으로 사용됩니다. 그것은 혈액에 산소를 공급하고 폐 및 심장 안정화를 제공하기 위해 함께 작동하는 전동식 체외 회로와 막 산소 공급기에 의존합니다. 이전 연구에 따르면 CPB는 아픈 환자와 이전에 건강했던 환자 모두에서 많은 장기 시스템(신장, 대뇌, 폐, 심장, 위장)에 부정적인 영향을 미칠 수 있습니다 22,23,24. 이는 동맥 맥압의 손실, 혈액 세포가 이물질에 노출되는 것, 및/또는 캐뉼레이션에 이차적인 국소 저관류를 포함한 다양한 요인에 의해 유발될 수 있다25.
쥐, 생쥐, 토끼, 염소, 개 및 돼지를 포함한 CPB의 여러 동물 모델이 제안되었습니다 26,27,28,29.<sup class="xre...

선천성 심장 질환(CHD)은 가장 흔한 선천성 기형으로, 전 세계적으로 매년 약 100만 명의 출산이 영향을 받습니다1. 현대의 흉부외과(CTS)와 집중 치료 기술의 발전으로 사망률이 개선되었지만, 동반 질환은 여전히 매우 흔하다 2,3,4,5. 인지 및 운동 장애와 학습 장애를 포함한 신경 발달 이상은 이러한 환자의 약 25%-50%에서 보고됩니다 6,7,8. 생후 첫 며칠 동안의 수술, 특히 순환 정지 및 심정지(CA)가 필요한 수술은 이환율을 증가시키는 것으로 입증되었다9. 수술 중 혈역학적 변화는 취약한 신생아 뇌 발달에 중요한 영향을 미칠 수 있습니다. 실험 모델은 이러한 비정상의 원인을 더 잘 이해하고 이러한 환자의 예후를 개선하기 위한 신경 보호 전략을 조사하는 데 필수적입니다.
이 개체군을 연구하기 위해 동물 모델을 사용하는 것은 널리 문서화되어 있습니다 5,10,11,12,13,14. 특히, 새끼 돼지는 심장 해부학(그림 1), 게놈 및 생리학에서 가까운 근사치를 고려할 뿐만 아니라 다른 동물 모델에 비해 상대적으로 큰 크기를 감안할 때 탁월한 옵션을 제공합니다15(그림 2). 심폐 우회술(CPB)과 CA의 효과를 연구하기 위해 새끼 돼지 모델을 사용하는 방법은 이전에 설명되었습니다. 이러한 실험 동물 모델은 혈역학적 변화 및 관련 말단 조직 장기 합병증을 연구하는 데 유용합니다 14,16,17,18,19,20. 이러한 모델은 연구원들이 다양한 실험 조건에 대한 유연성을 가지고 통제된 환경에서 인간 조건을 연구할 수 있도록 개발되었습니다. 대부분의 연구는 고급 수술 기술을 요구하고, 더 높은 자원 활용을 요구하며, 장기 생존을 보장하기 어렵게 만드는 기술인 중앙 캐뉼레이션의 사용을 보고합니다. 이전 연구에서 CPB12,15를 연구하는 데 새끼 돼지를 사용하는 것을 문서화했지만 말초 캐뉼레이션 기술을 제안한 사람은 거의 없습니다.
이 새로운 말초 캐뉼레이션 기법은 발표된 다른 연구와 비교할 때 더 쉽고, 덜 공격적이며, 더 실현 가능하다19. 더욱이, 신생아 및 소동물에서 이 기술을 검증하는 것은 새로운 일이며, CHD 및 그와 관련된 동반 질환을 연구하기 위해 동물 모델을 사용하는 데 관심이 있는 모든 연구자가 사용을 고려해야 합니다. 동물 모델 실험을 수행한 경험이 있는 물품, 자원 및 인력을 갖춘 실험실에 접근할 수 있는 개인에게 특히 적합합니다.
요약하면, 이 연구의 주요 목적은 CA가 있는 CPB의 신생아 자돈 모델을 설명하고 검증하는 것입니다. 이 프로토콜은 다양한 실험 조건의 통제된 환경에서 CPB 수술의 심각한 뇌 손상 및 기타 가능한 합병증을 연구하는 것을 목표로 합니다. 이 방법은 일반화할 수 있고 신뢰할 수 있으며 고품질의 모델을 제공하여 다양한 실험 프로토콜에 사용할 수 있습니다.

<table><tbody><tr><td>1.5% sevofluorane</td><td>Zoetis</td><td>20070289</td><td></td></tr><tr><td>2.5 mm 기관내관</td><td>Henry Schein</td><td>988-1782</td><td></td></tr><tr><td>말초 동맥 접근을 위한 3 Fr 카테터</td><td>Prodimed</td><td>3872.1</td><td></td></tr><tr><td>말초 정맥 접근을 위한 4 Fr 카테터</td><td>Prodimed</td><td>3872.13</td><td></td></tr><tr><td>6 프랑스 ECMO 소아 동맥 캐뉼라&nbsp;</td><td>메드트로닉&nbsp;</td><td>77206</td><td></td></tr><tr><td>8 프랑스어 ECMO 소아 정맥 캐뉼라&nbsp;</td><td>메드트로닉&nbsp;</td><td>68112</td><td></td></tr><tr><td>아드레날린</td><td>B 브라운</td><td>469801-1119</td><td></td></tr><tr><td>Adson 펜치</td><td>Allgaier 기구</td><td>08-030-130</td><td>어떤 브랜드든지 BP 커프로 대체될 수 있습니다</td></tr><tr><td>&nbsp;</td><td>마인드레이</td><td></td><td></td></tr><tr><td>부프레노르핀(0.01mg/kg)</td><td>Richter Pharma</td><td>#9004114000537</td><td></td></tr><tr><td>글루콘산칼슘(2.25mmol/10mL)</td><td>B 브라운</td><td>570-12606194-1119</td><td></td></tr><tr><td>덱스메데토미딘(0.5-2.0 &마이크로; g/kg/min)</td><td>오리온 파마</td><td>GTN 064321000017253</td><td></td></tr><tr><td>돌레톨</td><td>베토퀴놀</td><td>#3605870004904</td><td></td></tr><tr><td>도파민</td><td>히크마</td><td>A044098010</td><td></td></tr><tr><td>펜타닐(25-200 &마이크로; g/kg/min)</td><td>Kern Pharma</td><td>756650.2H</td><td></td></tr><tr><td>신선한 기증자 돼지 혈액 O형</td><td>Any&nbsp;</td><td></td><td></td></tr><tr><td>열교환기</td><td>Maquet Gmbh & Co</td><td>MCP70107.2130</td><td></td></tr><tr><td>Heparin (1350 UI)</td><td>ROVI</td><td>641641.1</td><td></td></tr><tr><td>Irwin retractor</td><td>Aesculap</td><td>BV104R</td><td>모든 브랜드로 대체 가능</td></tr><tr><td>케타민 (20 mg/kg)</td><td>Richter Pharma</td><td>#9004114000452</td><td></td></tr><tr><td>윤활제</td><td>모든 오로트라칠 윤활제</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Midazolam (0.3 mg/kg)</td><td>Serra Pamies</td><td>619627.4</td><td></td></tr><tr><td>모기 집게</td><td>Aesculap</td><td>BH109R</td><td>어떤 브랜드든 대체될 수 있습니다</td></tr><tr><td>바늘 집게</td><td>Aesculap</td><td>BM016R</td><td>어떤 브랜드도 대체될 수</td></tr><tr><td>있습니다 Normal&nbsp; 식염수 (0.9%)</td><td>B Braun Fisiovet</td><td>5/469827/0610</td><td>어떤 브랜드든 대체될 수</td></tr><tr><td>있습니다. 튜브용 플라스틱 클램프</td><td>Achim Schulz-Lauterbach</td><td>DBGM</td><td>어떤 브랜드도 대체될 수 있습니다.</td></tr><tr><td>염화칼륨 (9 mEq)</td><td>B Braun</td><td></td> 3545156 <td></td></tr><tr><td>프로포폴 (0.5 mg/kg)</td><td>Zoetis</td><td>579742.7</td><td></td></tr><tr><td>Quadrox Membrane Oxygenator&nbsp;</td><td>마케 Gmbh & Co</td><td>BE-HMOSD 300000</td><td></td></tr><tr><td>직장 온도계</td><td>모든</td><td></td><td></td></tr><tr><td>RotaFlow 콘솔 ECMO 시스템&nbsp;</td><td>마케 Gmbh & Co</td><td>MCP00703177</td><td>신생아 ECMO 시스템</td></tr><tr><td>메스</td><td>Aesculap</td><td>BB074R</td><td>모든 브랜드로 대체될 수 있습니다:</td></tr><tr><td>Sodium bicarbonate (1 M)</td><td>Fresenius Kabi</td><td>634477.4 OH</td><td></td></tr><tr><td>Surgical scissors</td><td>Talmed Inox</td><td>112</td><td>모든 브랜드로 대체될 수 있습니다.</td></tr><tr><td>봉합사 (3/0 poly absorbable)</td><td>B Braun Novosyn (R)</td><td>0068030N1</td><td>모든 브랜드로 대체될 수 있습니다.</td></tr></tbody></table>

장기간의 순환 정지 후 체외 심폐 소생술의 소아 동물 모델

Pediatric Animal Model of Extracorporeal Cardiopulmonary Resuscitation After Prolonged Circulatory Arrest

선천성 심장 질환(CHD)은 가장 흔한 선천성 기형으로, 전 세계적으로 매년 약 100만 명의 출산이 영향을 받습니다. 이 질병에 대한 포괄적인 연구는 적절하고 검증된 동물 모델을 필요로 합니다. 새끼 돼지는 유사한 해부학 및 생리학으로 인해 중개 연구에 일반적으로 사용됩니다. 이 연구는 심장 수술의 심각한 뇌 손상 및 기타 합병증을 연구하기 위한 도구로서 순환 및 심장 마비(CA)를 동반한 심폐 우회술(CPB)의 신생아 자돈 모델을 설명하고 검증하는 것을 목표로 했습니다. 자료 목록을 포함하는 것 외에도 이 작업은 다른 조사관이 이 프로토콜을 계획하고 실행할 수 있는 로드맵을 제공합니다. 경험 많은 실무자가 여러 번의 시험을 수행한 후, 모델의 대표적인 결과는 92%의 성공률을 보였으며 실패는 작은 자돈 크기와 변형된 혈관 해부학적 구조에 기인했습니다. 또한 이 모델을 통해 실무자는 CA의 다양한 시간, 온도 변화 및 약리학적 중재를 포함한 다양한 실험 조건 중에서 선택할 수 있었습니다. 요약하면, 이 방법은 대부분의 병원 환경에서 쉽게 구할 수 있는 재료를 사용하고, 신뢰할 수 있고 재현성이 높으며, 심장 수술을 받는 어린이의 중개 연구를 향상시키는 데 널리 사용될 수 있습니다.

6개월 동안 소아 중환자 치료 의사, 소아 심장 전문의, 수의사 및 기술자로 구성된 학제 간 팀이 전체 프로토콜을 12회 수행했습니다(보충 그림 2 및 보충 그림 3).
그림 1과 그림 2 는 이 프로토콜에 사용된 동물의 예상 해부학적 구조를 보여줍니다. 포함된 새끼 돼지는 평균 생후 4.8일(4-6일)이었고 평균 무게는 2,814g(2,400-3,140g)이었습니다. 총 42%가 여성이었습니다. 그들 모두는 성공적으로 진정제를 투여하고 삽관을 하였다. 진정제에서 캐뉼레이션까지의 평균 시간은 3.2시간(1.75-3.72시간)이었다. CA를 사용한 용기 캐뉼레이션 및 CPB는 실험의 92%에서 성공적으로 달성되었습니다. 한 번의 실패는 캐뉼레이션 중에 발생했으며, 이는 작은 자돈 크기와 변형 혈관 해부학적 구조에 의...

이 프로토콜은 심폐 우회술(CPB)의 신생아 돼지 모델을 설명하며, 순환 정지 및 심장 정지를 CPB에 이차적인 심각한 뇌 손상 및 기타 합병증을 연구하기 위한 도구로 사용합니다.

Congenital heart disease (CHD) is the most prevalent congenital malformation, with about one million births impacted worldwide per year. Comprehensive ...

선천성 심장 결함이 있는 어린이의 사망률은 심장 수술의 개선으로 최근 몇 년 동안 크게 개선되었습니다. 그러나 동반 질환은 여전히 매우 흔하며, 이것이 우리 실험실의 목표입니다. 우리는 이러한 동반 질환을 조사하고, 근본적인 원인을 발견하고, 예방 조치를 개발하는 것을 목표로 합니다.현재 우리는 심장 수술 후 발생하는 신경 이상을 연구하고 있습니다. 이 프로토콜은 소아 심장 수술을 시뮬레이션하는 실현 가능하고 재현 가능한 동물 모델을 제공합니다. 이를 통해 연구자들은 다양한 실험 조건과 기타 다양한 가설을 테스트하기 위한 기반으로 사용할 수 있습니다.우리 모델에서 돼지 심폐 우회술을 위한 말초 캐뉼레이션 기술은 실용적이고 비용 효율적입니다. 또한, 기존의 중앙 캐뉼레이션 기술보다 수술 후 결과를 평가하는 더 신뢰할 수 있는 방법을 허용합니다. 우리 모델의 유연성은 선천성 심장 질환 및 동반 질환 연구에 대한 향후 연구를 장려합니다.예를 들어, 우리 연구실은 현재 이 모델을 확장하여 산소 공급 상태 및 대뇌 혈류와 같은 대뇌 매개변수의 실시간 모니터링을 연구할 계획입니다.

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Research

연구

JoVE Journal

Medicine

의학

perioperative 그리고 중요한 치료 관련 급성 신장 손상에 대한 강력한 모델이 제공됩니다. 그것이 거의 임상 아키의 histologic 및 기능 변경 내용을 복제할 수 있습니다 심장 마비에 의해 유도 온 몸이 hypoperfusion을 사용합니다.

Normothermic 심장 마비와 심폐 소생술의 : 국소 빈혈 - Reperfusion 상해의 마우스 모델

이 논문은 갑작스런 심정지와 기존의 심폐 소생술을 시뮬레이션하는 흉부 압박, 인공호흡 및 전기 충격에 의한 전기적으로 유도된 심실세동 및 소생술의 쥐 모델을 설명합니다. 이 모델을 통해 심정지의 병태생리학에 대한 통찰력을 수집하고 새로운 소생술 전략을 탐색할 수 있습니다.

기존의 폐쇄 가슴 기술에 의해 쥐의 심실 세동의 모델 및 소생

이 문서에서는 마우스에 심폐 바이패스를 수행 하는 방법을 설명 합니다. 이 새로운 모델은 장기 손상에 관여 하는 분자 메커니즘의 조사를 촉진할 것 이다.

마우스 모델에서 심폐 바이패스: 새로운 접근

여기, 선물이 수혈 또는 쥐 inotropic 에이전트 없이 단순 복구 심폐 바이패스 모델을 설명 하는 프로토콜. 이 모델의 장기 연구 심폐 바이패스의 여러 기관 sequelae 수 있습니다.

수혈 또는 쥐 Inotropic 에이전트 없이 복구 심폐 바이패스 모델

여기, 선물이 tachycardia 유발 심근 돼지에서 생산 하는 프로토콜. 이 모델은 진보적인 만성 심장 마비의 hemodynamics 및 적용 된 치료의 효과 공부 하는 강력한 방법을 나타냅니다.

돼지에서 만성 심장 마비 모델로 tachycardia 유발 심근

이 프로토콜은 순환기 죽음 후에 심장 기증의 타당성을 증가시키기 위하여 새로운 컨디셔닝 에이전트 또는 전략의 평가를 위한 간단하고 유연한 접근을 보여줍니다.

순환사망 후 심장 기증 전 임상 모델

심폐 소생술과 제세동은 심실 세동으로 인한 심정지 시 유일하게 효과적인 치료 옵션입니다. 이 모형은 돼지 모형에 있는 이 생리적인 상태를 유도하고, 평가하고, 취급하기 위하여 표준화한 식이요법을 제출합니다, 따라서 데이터 수집 및 분석을 위한 각종 기회를 가진 임상 접근을 제공합니다.

돼지의 심실 세동 및 고급 심장 생명 지원의 표준화 모델

이 프로토콜은 순환기 사망 후 기증의 대형 동물(돼지) 모델을 설명하고, 심장 이식의 임상 시나리오를 면밀히 시뮬레이션하고 치료 연구 및 전략을 촉진할 가능성이 있는 흉복부 정상 체온 국소 관류를 설명합니다.

순환기 사망 후 기증의 대형 동물 모델 및 심장 평가를 위한 정상 국소 관류

이 새끼 돼지 모델에는 수술 기구, 심정지까지 질식, 소생술 및 소생술 후 관찰이 포함됩니다. 이 모델은 동물당 다중 샘플링을 허용하고 지속적인 침습적 동맥 혈압, ECG 및 비침습적 심박출량 모니터링을 사용하여 주산기 질식 및 신생아 심폐소생술에서 혈역학 및 심장 병태생리학에 대한 지식을 제공합니다.

심정지, 소생술 및 자발순환 회복 후 심장 손상 및 혈역학을 연구하기 위한 새끼돼지 주산기 질식 모델

이 프로토콜은 이식형 심장 제세동기(ICD)를 사용하여 신뢰할 수 있게 심실 부정맥을 유도하고, 내부 심전전을 수행하며, 돼지 모델에서 심내 심전도 기록을 얻는 방법을 시연합니다.

이식형 제세동기를 이용한 돼지 심정지 모델

학습하세요 체외 심폐 소생술을 이용한 신생아 돼지 모델로 심장 수술 후 뇌 손상을 연구하는 방법을. 이 프로토콜은 선천성 심장 질환 합병증 예방 연구에 활용됩니다.

장기간의 순환 정지 후 체외 심폐 소생술의 소아 동물 모델

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