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Ex Vivo (체외 주행) 간질의 초파리 모델을 위한 칼슘 영상
Ex Vivo (체외 주행) 간질의 초파리 모델을 위한 칼슘 영상
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JoVE Journal Neuroscience
Ex Vivo Calcium Imaging for Drosophila Model of Epilepsy

Ex Vivo (체외 주행) 간질의 초파리 모델을 위한 칼슘 영상

Full Text
2,265 Views
04:41 min
October 13, 2023

DOI: 10.3791/65825-v

Ming-Feng He1, Chu-Qiao Liu2, Xi-Xing Zhang2, Yong-Miao Lin2, Yu-Ling Mao3,4, Jing-Da Qiao1

1Department of Neurology, Institute of Neuroscience, Key Laboratory of Neurogenetics and Channelopathies of Guangdong Province and the Ministry of Education of China,the Second Affiliated Hospital, Guangzhou Medical University, 2The Second Clinical Medicine School of Guangzhou Medical University, 3Department of Obstetrics and Gynecology, Center for Reproductive Medicine, Guangdong Provincial Key Laboratory of Major Obstetric Diseases,The Third Affiliated Hospital of Guangzhou Medical University, 4Key Laboratory for Reproductive Medicine of Guangdong Province,The Third Affiliated Hospital of Guangzhou Medical University

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Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This study presents a protocol for ex vivo calcium imaging in GCaMP6-expressing adult Drosophila to investigate epileptiform activities. The method aims to monitor ictal events in Drosophila, providing insights into the cellular mechanisms underlying epilepsy.

Key Study Components

Area of Science

  • Neuroscience
  • Epilepsy Research
  • Calcium Imaging

Background

  • Epilepsy candidate genes require validation through animal models.
  • Ex vivo techniques retain intact neural networks, crucial for studying epilepsy.
  • Calcium imaging offers superior signal quality compared to in vivo approaches.
  • Drosophila serves as a relevant model organism for neuroactivity studies.

Purpose of Study

  • To develop ex vivo calcium imaging techniques in Drosophila.
  • To screen epilepsy-associated genes and investigate underlying neural mechanisms.
  • To measure seizure-like behaviors quantitatively.

Methods Used

  • The main platform used is ex vivo calcium imaging with intact Drosophila brain tissues.
  • The biological model consists of GCaMP6-expressing adult Drosophila.
  • Detailed protocols for brain dissection, imaging setup, and data analysis are provided.
  • Behavioral assays to assess seizure-like activity were employed.
  • Quantitative measures such as fluorescence intensities were analyzed using ImageJ.

Main Results

  • Calcium signals were observed in mushroom body neurons, with specific attention to differences between knockdown and wild-type flies.
  • Cac knockdown flies exhibited significantly more seizure-like activity and altered recovery times.
  • Fluorescence data indicate increased large spikes in the knockdown group, offering mechanistic insights into epilepsy.

Conclusions

  • This protocol enables researchers to study seizure mechanisms in Drosophila, facilitating gene validation in epilepsy research.
  • Understanding calcium signaling patterns provides insights into neuronal excitability and potential therapeutic targets.
  • The findings enhance the knowledge of epilepsy mechanisms through a robust imaging approach.

Frequently Asked Questions

What are the advantages of using Drosophila for epilepsy studies?
Drosophila offers a genetically tractable model for studying complex behaviors like seizures while allowing for high-resolution imaging of neural activity.
How is ex vivo calcium imaging implemented in this study?
Brains are isolated from adult Drosophila and placed in a recording dish to capture calcium signals using confocal microscopy techniques.
What types of data are obtained from the calcium imaging?
Data includes fluorescence intensities and spike rates of neuronal activity, aiding in the understanding of calcium dynamics associated with epilepsy.
How can the method be adapted for other models?
The ex vivo calcium imaging technique can be adjusted for various model organisms by modifying the tissue preparation and imaging setup based on specific neural circuits of interest.
What are key considerations for interpreting the results?
It's important to consider the genetic background of the fly lines used and the potential impact of knockdown mutations on normal neuronal function.

여기에서는 간질 활동을 모니터링하기 위해 GCaMP6 발현 성인 초파리의 생체 외 칼슘 이미징 프로토콜을 제시합니다. 이 프로토콜은 생체 외 칼슘 이미징을 통해 성인 초파리의 ictal 사건을 조사하는 데 유용한 도구를 제공하여 세포 수준에서 간질의 잠재적 메커니즘을 탐구할 수 있도록 합니다.

최근에는 유전자 검사와 동물 실험에서 많은 뇌전증 후보 유전자가 발견되고 있습니다. 우리는 전체 세포 기록, 유발 EPSP 기록 및 여기에서 소개할 새로운 기술인 생체 외 칼슘 이미징을 포함하여 간질 관련 신경 활동을 연구하기 위한 일련의 기술을 제공합니다. 뇌와 신경망의 무결성은 세포 배양이나 뇌 절편에서 완전히 복제될 수 없기 때문에 현재 실험의 주요 이점은 신경망을 손상으로부터 보호하면서 온전한 뇌 조직을 얻는 것입니다.

우리는 간질 관련 유전자를 효율적으로 스크리닝하고 세포 수준에서 간질의 근본적인 메커니즘을 탐구하기 위해 밴드 민감성 발작 유사 행동 분석법과 함께 생체 외 칼슘 이미징 기술을 확립했습니다. 칼슘 이미징을 위해 분리된 온전한 초파리 뇌 조직을 구현하여 복잡한 수술 기법을 피하고 신경망의 무결성을 보존할 수 있습니다. 또한 생체 외 접근 방식은 생체 내 이미징 기술과 비교할 때 우수한 신호 대 잡음비를 산출할 수 있습니다.

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생체 외 칼슘 영상 초파리 모델 간질 신경 장애 재발성 발작 유전적 기원 이미징 기술 유전자 인코딩 칼슘 지표 GCaMP6 뇌 전체 해상도 단일 세포 해상도 분자 유전학 행동 분석 프로토콜 성인 초파리 간질 활성 컨포칼 현미경 신경 활성 강타에 민감한 발작 유사 행동 분석 Cac 유전자 녹다운 파리 비정상적인 칼슘 활성 병원성 유전자 스크리닝

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