2024년 2월 9일
아데노 관련 바이러스는 현탁 세포 배양에서 생성되며 이중 요오드화놀 밀도 구배 원심분리로 정제됩니다. 총 바이러스 수율을 높이고, 바이러스 침전의 위험을 줄이고, 최종 바이러스 산물을 더욱 농축하기 위한 단계가 포함되어 있습니다. 예상되는 최종 역가는10,12 바이러스 입자/mL에 도달하며 전임상 in vivo 사용에 적합합니다.
우리는 표적 인간 세포 유형에 대해 더 높은 tropism을 가진 아데노 관련 바이러스 capit를 식별하기 위해 유도 진화 접근법을 사용합니다. 본 연구를 통해 유전자 치료 분야에서 표적 세포 transduction 및 임상적 관련성이 향상된 재조합 아데노 관련 바이러스 벡터를 생산하는 것을 목표로 합니다. 우리 그룹은 최근 자연적으로 감소된 간 영양성을 가진 AAV 혈청형에 원래 캡시드 잔기를 통합하여 간에서 여러 AAV 혈청형을 탈표적화했습니다.
추가 혈청형으로 성공적으로 확장될 경우, 말초 주사를 통해 필요한 RAAV 임상 용량을 줄이고 부작용 환자 결과를 줄일 수 있는 토대를 마련할 수 있습니다. IODIXanol 정제 방법은 비용 효율적이지만 확장이 어렵습니다. 또한 다운스트림 응용 분야에서는 동물 모델 또는 시험관 내에서 유도 진화 접근법이 수행됩니다.
따라서 유도 진화에 의해 분리된 캡시드는 전임상 모델에서와 동일한 정도로 인간에서 생체 내 표적을 transduction하지 않을 수 있습니다. 이 프로토콜은 저렴하고 소규모 실험실에서 사용할 수 있습니다. 또한 이 방법은 다운스트림 전임상 in vivo 응용 분야에 사용할 수 있는 고순도 재조합 아데노 관련 바이러스를 생성합니다.
본 연구는 특정 인간 세포 유형에 대한 친화성을 높이기 위해 아데노 부속 바이러스(AAV) 캡시드의 지향성 진화에 초점을 맞춥니다. 이 연구의 목적은 유전자 치료 응용에 매우 중요한 표적 세포 형질전환 효율을 개선하는 재조합 AAV 벡터를 개발하는 것입니다.
rAAV의 부유 배양 생산 및 iodixanol 밀도 구배 정제는 전임상 in vivo 연구를 위한 고순도 벡터 공급을 가능하게 하여 유전자 치료 파이프라인의 발전을 지원합니다. 이 혈청형 무관 프로토콜은 친화성(tropism) 변경을 위해 설계된 캡사이드를 포함하여 다양한 AAV 캡사이드의 생성을 용이하게 하며, 중개 벡터 개발을 위한 재현 가능한 기반을 제공합니다. 본 방법의 접근성과 수율 일관성은 초기 단계의 벡터 최적화 및 포트폴리오 선별에 매우 중요합니다.
본 프로토콜은 기전 연구와 중개 연구 모두에 사용 가능한 고품질 rAAV를 제공함으로써 초기 발견 단계와 전임상 검증 단계를 연결합니다. 이는 벡터 엔지니어링, 스크리닝 및 in vivo 개념 증명 워크플로우를 위한 핵심 역량으로 설정되었습니다.