Name: 고급 당화 최종 산물은 인간의 감각과 유사한 뉴런 세포를 캡사이신에 의한 칼슘 유입에 민감하게 만듭니다. (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2025-05-02T14:10:00.000+00:00
Duration: 6 min 5 s
Description: 배우세요 당화된 콜라겐이 감각 유사 뉴런의 TRPV1 채널을 통해 캡사이신 유발 칼슘 유입을 증가시키는 메커니즘을. 이 연구는 노화 및 퇴행성 질환에서 통증 감수성을 이해하는 데 중요한 통찰을 제공합니다.

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1. SH-SY5Y 배양 및 감각 유사 뉴런 세포로의 분화
참고 1: 이 섹션에 있는 모든 단계는 층류 후드 아래에서 수행되어야 하며, 모든 용액과 소모품은 멸균되어야 합니다.
<ol><li>먼저 배양 배지 5mL를 첨가하여 배양 플라스크(25cm2)를 준비합니다. 참고: 이 세포 유형의 해동, 확장 및 유지를 위해 배양 배지를 혼합하여 사용하십시오: Dulbecco Modified Eagle's 및 Ham's Medium F12(DMEM/F12)에 10% 열 비활성화 소 태아 혈청과 1% 페니실린-스트렙토마이신이 보충됩니다.</li>
	<li>그런 다음 액체 질소에서 SH-SY5Y 세포가 들어 있는 극저온 튜브를 제거하고 얼음 위에 보관하십시오. 37°C의 수조에서 2분 동안 셀을 해동합니다.</li>
	<li>1mL의 완전 배양 배지를 cryovial에 추가하고, 세포를 15mL 튜브로 옮기고, 3mL의 완전 배양 배지(10% 열 비활성화 소 태아 혈청이 보충된 DMEM/F12)를 추가하고, 피펫을 사용하여 튜브에 반복적으로 추출하고 다시 분주하여 혼합합니다.</li>
	<li>세포를 15mL 튜브에 피펫으로 넣고 290g의 속도로 원심분리합니다. 상등액을 버리고 세포가 동결되는 동안 얼음 결정 형성을 방지하는 데 사용되는 동결 보호제인 DMSO(Dimethyl sulfoxide)를 제거합니다.</li>
	<li>세포 펠렛에 배양 배지 1mL를 첨가하고 피펫을 사용하여 잘 혼합한 후 25cm2 배양 플라스크에 넣어 세포를 확장시킵니다. 세포를 37 ° C에서 5 % CO2 의 가습 된 분위기의 인큐베이터에 놓습니다. 참고: 세포는 약 80% 합류점에 도달할 때 사용할 수 있습니다. 신경 세포 분화를 위해 세포 통로 20까지 SH-SY5Y 세포를 사용하는 것이 좋습니다.</li>
	<li>쥐꼬리 I형 콜라겐을 멸균 PBS에 희석하여 세포외 콜라겐 매트릭스(100μg/mL)를 준비하고 이 용액 1mL를 페트리 접시(35/10mm)에 붓고 코팅합니다.</li>
	<li>이것을 5% CO2 의 가습 분위기의 인큐베이터에서 약 1시간 동안 배양합니다.</li>
	<li>이 기간이 지나면 멸균 PBS로 플레이트를 두 번 세척한 다음 Neubauer 챔버를 사용하여 세포를 계수합니다.</li>
	<li>세포 계수를 위해서는 먼저 세포가 들어있는25cm2 배양 플라스크를 5mL의 멸균 PBS로 세척하여 모든 배양 배지를 제거합니다. 그런 다음 멸균된 PBS를 제거하고 세포에 0.05% 트립신 3mL를 첨가한 후 37°C 및 5%CO2 의 인큐베이터에 약 3-5분 동안 넣어 세포 분리를 완료합니다.</li>
	<li>그 후, 인큐베이터에서 세포를 제거하고 배양 플라스크에 6mL의 배양 배지를 첨가한 다음 이 용액을 15mL 튜브로 옮깁니다. 290g에서 5분 동안 원 심분리기</li>
	<li>상등액을 제거하고 1mL의 완전한 배양 배지에 세포를 잘 재현탁시킵니다.</li>
	<li>마지막으로, Neubauer 계수 챔버를 사용하여 세포를 계수합니다. 20μL의 세포와 20μL의 트리판 블루를 혼합하고 이 혼합물 10μL를 Neubauer 챔버에 추가합니다. 파란색으로 염색되지 않는 살아있는 세포를 세십시오.</li>
	<li>플레이트 5 × 104 cells/mL 세포를 앞서 설명한 것과 동일한 배양 배지에 페트리 접시(35/10 mm)에 넣습니다. 플레이트당 총 부피 1mL를 사용합니다.</li>
	<li>그런 다음 24시간 동안 기다렸다가 신경 분화 프로토콜을 시작합니다. 이를 위해 배양 배지를 제거하고 2% 열 비활성화 소 태아 혈청, 1% 페니실린-스트렙토마이신 및 10μM 올-트랜스 레티노산(RA 10μM)이 보충된 1mL의 DMEM/F12로 교체합니다.</li>
	<li>48시간 동안 기다렸다가 3일 동안 매일 배양 배지를 교체하십시오. 세포를 37 ° C에서 5 % CO2 의 가습 된 분위기의 인큐베이터에 놓습니다.</li>
	<li>5일째에 세포에서 배지를 제거하고 각 플레이트에 인간 뇌 유래 신경 영양 인자(BDNF 50ng/mL)가 보충된 무혈청 배양 배지 1mL를 추가합니다. 참고: 다른 회사의 BDNF(재료 표 참조)가 테스트되었습니다. 그들은 모두 같은 방식으로 일했습니다.</li>
	<li>분화 7일째에 멸균 PBS로 세포를 한 번 세척하고 감각과 유사한 뉴런 세포를 사용하여 실험합니다. 이러한 세포를 실험에 즉시 사용할 수 없는 경우 무혈청 배양 배지를 추가하여 사용할 때까지 살아 있게 하십시오. 참고: 신경 분화가 끝나면 멸균 PBS로 세포를 세척하여 남아 있는 BDNF를 제거하여 세포 독성을 피해야 합니다.</li>
</ol>2. 당화콜라겐과 당화작용 과정
알림: 이 섹션의 모든 단계는 층류 후드 아래에서 수행해야 하며 모든 용액과 소모품은 멸균되어야 합니다.
<ol><li>쥐꼬리 섬유소 상태(3.89 mg/mL)의 콜라겐 I형을 4°C에서 7일 동안 4°C에서 200mM D-리보오스, 160mM D-글루코스 및 200mM D-트레오스로 배양하여 콜라겐 당화를 준비합니다. 참고: 당화 콜라겐을 준비하려면 분자량에 따라 당의 무게를 측정하고 쥐꼬리 섬유소 상태의 콜라겐 유형 I(3.89mg/mL)과 혼합합니다.</li>
	<li>혈청 및 항생제 보충 없이 DMEM/F12 배양 배지에서 준비된 당화 콜라겐 세포외 기질(ECM-GC, 100 μg/mL) 또는 정상 콜라겐 세포외 기질(ECM-NC, 100 μg/mL)을 사용하여 24시간 동안 감각 유사 뉴런 세포 배양을 배양합니다.</li>
</ol>3. 칼슘 유입 분석
<ol><li>칼슘 유입의 경우 칼슘 플럭스 분석 키트를 사용하고 아래 표시된 대로 제조업체의 지침에 따라 용액을 준비하십시오.</li>
	<li>초기에는 998μL의 1x 분석 완충액(HBSS 완충액과 10x Pluronic F127 Plus의 혼합)에 2μL의 Fluo-8 원액을 첨가하여 1mL의 Fluo-8 염료 로딩을 준비합니다. 알림: 이 작업 솔루션은 실온(RT)에서 최소 2시간 동안 안정적입니다.</li>
	<li>나중에, 37°C에서 5%CO2 의 가습 분위기에서 30분 동안 ECM-NC 또는 ECM-GC로 분화 및 처리한 감각 유사 뉴런 세포의 각 플레이트형 접시에 이 용액 250μL를 배양합니다. 그런 다음 인큐베이터에서 접시를 꺼내 30분 동안 RT(어둠 속)로 유지합니다. 참고 : 이 용액은 2 h 배양이 외삽되면 세포 독성이됩니다. 배양 기간 동안 캡사이신 용액을 준비합니다.</li>
</ol>4. 캡사이신 유도
참고: TRPV1 작용제인 캡사이신(Capsaicin)은 세포의 칼슘 유입을 유도하는 데 사용되었습니다.
<ol><li>캡사이신을 칭량하여 1% 에탄올과 초순수에 희석합니다. 그런 다음, 역시 초순수에 희석한 2μM 농도의 용액을 준비한다. 참고: 캡사이신 용액은 사용 당일에 만들어야 합니다. 캡사이신을 먼저 에탄올에 희석한 다음 물에 희석하십시오. 그렇지 않으면 침전됩니다.</li>
	<li>최종 농도가 1μM가 되도록 각 35/10mm 페트리 접시에 250μL의 2μM 캡사이신 용액을 추가합니다. 참고: 캡사이신의 원액 농도는 2μM로 더 나은 분산을 보장하고 고립된 형광 피크를 피할 수 있었습니다.</li>
</ol>5. 칼슘 유입 이미징 및 컨포칼 현미경 분석
참고: 이미징은 20x/0.75NA 대물렌즈와 488nm 여기 레이저(0.5% 강도)가 장착된 컨포칼 현미경에서 수행되었습니다. 방출은 520nm에서 감지되었습니다. 셀은 600Hz의 속도(t)로 시간(t)에 따라 xy축(512 x 512 픽셀)에서 433ms의 획득 간격과 5분의 총 획득 시간으로 스캔되었습니다. 이미징은 현미경 소프트웨어를 사용하여 세포의 생리적 상태를 유지하기 위해 37°C에서 수행되었습니다.
<ol><li>250 μL의 2 μM 캡사이신 용액(플레이트의 최종 농도는 1 μM)이 포함된 주사기를 준비하고 두피 정맥 세트(Butterfly type 23 GA sterile)에 연결합니다. 실험실 스탠드와 cl을 사용하여 주사기를 고정합니다.amp.</li>
	<li>페트리 접시를 현미경 스테이지에 올려 놓고 각별한 주의로 두피 바늘을 페트리 접시에 넣고 바닥과의 접촉을 피하고 바늘 끝이 액체에 잠기지 않도록 합니다. 알림: 접착 테이프를 사용하여 두피 위치를 고정할 수 있습니다.</li>
	<li>적절한 수의 셀(20개 이상)이 있는 필드를 찾고 명시야 조명을 사용하여 초점을 조정합니다.</li>
	<li>488nm 레이저로 라이브 모드를 시작하고 초점 및 조명 매개변수를 조정합니다.</li>
	<li>획득 기록을 시작하고 기준선 기간(t = 0 - t = 60초) 후에 2μL 2μM 캡사이신을 250μL에 바르고 실린지 플런저를 부드럽게 밀어 세포로의 칼슘 유입을 자극합니다. 참고: 최종 기록 획득 시간은 플레이트당 약 300초였습니다.</li>
</ol>6. 후처리/데이터 분석
<ol><li>정량화 모드에서 현미경 소프트웨어를 사용하여 세포 분석을 수행합니다. 먼저 캡사이신 자극 전후의 형광 스파이크 세포를 분석합니다.</li>
	<li>각 반응성 세포, 즉 캡사이신 후 형광 스파이크를 표시하는 세포에 관심 영역(ROI)을 생성합니다. 위와 같이 전체 셀 영역에서 ROI를 그려야 합니다(그림 1).</li>
	<li>후속 분석을 위해 CSV(쉼표로 구분된 값) 파일로 데이터를 내보냅니다.</li>
	<li>또는 무료로 제공되는 소프트웨어 FIJI7 (https://fiji.sc)을 사용하여 분석을 수행합니다.<ol><li>이미지 파일을 열려면 File &gt; Import &gt; Bio-Formats로 이동하여 파일을 선택하여 Bio-Formats 플러그인을 사용합니다.</li>
	</ol></li>
	<li>그런 다음 돋보기 도구를 사용하여 확대하고 자유형 선택 도구를 사용하여 반응형 셀 주위에 ROI(관심 영역)를 그립니다.</li>
	<li>각 ROI를 그린 후 T 키를 눌러 ROI Manager에 추가합니다. 관심 있는 모든 셀에 대해 이 과정을 반복합니다(그림 2).</li>
	<li>모든 ROI가 추가되면 ROI Manager 창으로 이동하여 모든 ROI를 선택한 다음 메인 메뉴에서 Analyze &gt; Set Measurements 로 이동합니다.</li>
	<li>그런 다음 ROI Manager로 돌아가서 More &gt; Multi Measure 를 선택하여 모든 프레임의 강도를 측정합니다. 결과가 새 창에 나타납니다. File (파일) &gt; Save As(다른 이름으로 저장)로 이동하여 CSV 파일로 내보냅니다. 참고: CSV 파일은 Excel, Google 스프레드시트 및 GraphPad 소프트웨어에서 분석할 수 있습니다. 방정식 ΔF/F0 = (F(t) - F0)/F0 을 사용하여 Fluo-8 Calcium Flux Assay Kit로 얻은 형광 강도 값을 칼슘 유입 변화의 상대적 측정값으로 변환합니다. 여기서,F0 는 캡사이신으로 자극하기 전에 t = 0초부터 t = 60초까지 캡처된 이미지의 평균 강도로 계산된 기준선 형광을 나타냅니다. F(t)는 자극 후 관찰된 최대 형광 강도의 값으로, 이를 통해 최대 칼슘 유입량을 평가할 수 있습니다. 이 접근법은 기준선에 비해 형광이 증가한다는 것을 강조하며, ΔF/F0 의 상승은 세포 내 칼슘 수치가 상승했음을 나타냅니다.</li>
</ol><img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/68036/68036fig01v2.jpg"> 그림 1: LAS X 소프트웨어에서 칼슘 유입 분석을 위해 선택한 세포의 ROI 예. (A) 정량화 모드의 LAS X 인터페이스. 분홍색 사각형은 수량화 탭을 나타냅니다. 노란색 사각형은 폴리라인 그리기 도구를 나타내고 청록색 사각형은 축소 및 확대 도구를 나타냅니다. (B) 캡처된 시야(FOV). (C) FOV를 확대하여 전체 셀에서 ROI를 쉽게 그릴 수 있습니다. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/68036/68036fig01large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/68036/68036fig2v5.jpg"> 그림 2: FIJI 소프트웨어에서 칼슘 유입 분석을 위해 선택한 세포의 ROI 예. (A) 메인 메뉴와 도구를 보여주는 FIJI 인터페이스. 빨간색 사각형은 돋보기 도구를 나타내고 녹색 사각형은 자유형 선택 영역을 나타냅니다. (B) 확대 및 그려진 ROI로 캡처된 시야(FOV). (C) ROI 관리자 창. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/68036/68036fig2v5large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>
7. 문제 해결
<ol><li>이미지의 초점이 맞지 않으면 다음을 시도해 보십시오.<ol><li>테이프의 접착력을 확인하십시오. 느슨해지면 바늘이 이동하여 초점에 영향을 줄 수 있습니다.</li>
		<li>안정성을 높이기 위해 추가 테이프로 바늘을 다시 부착합니다.</li>
		<li>표준 바늘 교체. 미리 구부러진 치과 바늘 끝을 사용하여 플레이트의 정렬을 개선합니다.</li>
	</ol></li>
	<li>셀에서 포화 신호가 나타나면 다음 단계를 시도해 보십시오.<ol><li>레이저 강도 및 게인 설정을 줄입니다.</li>
		<li>시약 배양 시간을 확인합니다. 제조업체의 권장 사항을 초과하면 신호 포화로 이어져 칼슘 유입 감지가 복잡해질 수 있습니다.</li>
	</ol></li>
	<li>문제 해결을 위한 다음 추가 제안 사항을 따르십시오.<ol><li>정기 보정: 초점 및 신호 감지 품질을 유지하기 위해 이미징 장비를 정기적으로 보정해야 합니다.</li>
		<li>변경 사항 문서화: 나중에 참조하고 문제 해결을 용이하게 하기 위해 프로토콜에 대한 모든 조정 사항을 로그로 보관합니다.</li>
		<li>반응적 조정: 문제가 지속되면 다른 시약 농도 또는 대체 신호 검출 방법으로 테스트하는 것이 좋습니다.</li>
	</ol></li>
</ol>

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</ol>

<table><tbody><tr><td>올 트랜스 레티노산</td><td>토크리스</td><td>695</td><td></td></tr><tr><td>BDNF</td><td>토크리스</td><td>TOCR-2837</td><td></td></tr><tr><td>BDNF</td><td>시그마 알드리치</td><td>B3795</td><td></td></tr><tr><td>버터플라이 타입 23 GA 멸균 벡</td><td>톤 디킨슨 아셉토</td><td>38833814</td><td>두피 정맥 세트</td></tr><tr><td>캡사이신</td><td>시그마 알드리치</td><td>M2028</td><td></td></tr><tr><td>D-포도당</td><td>시그마 알드리치</td><td>G5767</td><td></td></tr><tr><td>DMEM/F12</td><td>Gibco</td><td>12500062</td><td>기초 배지</td></tr><tr><td>D-리보스</td><td>시그마-알드리치</td><td>R7500</td><td></td></tr><tr><td>D-트레오스</td><td>시그마-알드리치</td><td>T7392</td><td></td></tr><tr><td>플루오-8 칼슘 플럭스 분석 키트</td><td>Abcam</td><td>ab112129</td><td>세척 없음</td></tr> 열 <tr><td>비활성화 소 태아 혈청</td><td>Gibco</td><td>A5670801</td><td></td></tr><tr><td>고함량 상영&nbsp;</td><td>분자 장치</td><td></td><td></td></tr><tr><td>LASX 소프트웨어</td><td>라이카 마이크로시스템</td><td></td>즈 <td>현미경 소프트웨어</td></tr><tr><td>라이카 TCS SP8</td><td>라이카 마이크로시스템</td>즈 <td>라이카 TCS SP8</td><td>공초점 현미경</td></tr><tr><td>페니실린-스트렙토마이신</td><td>Gibco</td><td>15140130</td><td></td></tr><tr><td>페트리 접시(35/10 mm)</td><td>Greiner bio-one</td><td>627965</td><td></td></tr><tr><td>쥐 꼬리 I 형 콜라겐</td><td>Corning</td><td>354236</td><td></td></tr><tr><td>SH-SY5Y</td><td>Merck</td><td>94030304-1VL</td><td>신경모세포종 세포주</td></tr></tbody></table>

고급 당화 최종 산물은 인간의 감각과 유사한 뉴런 세포를 캡사이신에 의한 칼슘 유입에 민감하게 만듭니다.

Advanced Glycation End-Products Sensitize Human Sensory-Like Neuron Cells to Capsaicin-Induced Calcium Influx

SH-SY5Y 세포가 감각 유사 뉴런으로 분화 High-Content 스크리닝 이미지는 신경 분화 프로토콜이 SH-SY5Y 세포 형태를 변화시킨다는 것을 보여줍니다. 감각과 유사한 뉴런 세포(분화된 세포)는 광범위한 신경 필라멘트 네트워크를 투영하는 둥근 세포체를 나타냅니다. 그들은 주변 뉴런을 연결하는 더 길쭉한 신경돌기 돌기의 가지를 형성하며, 이는 성숙한 뉴런 특징과 일치합니다(그림 3)4. 중요한 것은 이러한 세포가 미분화 SH-SY5Y 세포와 비교할 때 TRPV1 수치가 증가했다는 것입니다(그림 4).
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/680...

Increased collagen-derived advanced glycation end products (AGEs) are consistently linked to painful diseases, including osteoarthritis, diabetic ...

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Research

연구

JoVE Journal

Neuroscience

신경과학

Cold Plantar Assay(CPA)는 30°C에서 5°C 사이의 추위 반응성을 측정하고 추위 적응도 측정할 수 있습니다. 이 프로토콜은 CPA를 사용하여 마우스의 추위 과민증, 진통 및 적응을 측정하는 방법을 설명합니다.

마우스에 콜드 민감도 및 적응을 결정하기위한 간단하고 저렴한 방법

이 원고는 패치 클램프 기록을 위해 온전한 등쪽 뿌리 신경절을 준비하는 방법을 설명합니다. 이 제제는 뉴런과 위성 신경교세포의 미세환경을 유지하여 해리된 DRG 뉴런에서 볼 수 있는 표현형 및 기능적 변화를 방지합니다.

성인 쥐에서 본래 등쪽 뿌리 신경절에 패치 클램프 녹음

이 연구는 resiniferatoxin (RTX)와 순수한 작은 섬유 신경 병의 실험 모델을 설정합니다. RTX의 독특한 복용량 (50 µ g/k g)은 환자 특성을 모방 하는 작은 섬유 신경 모델을 개발 하기 위한 최적의 neuropathic 고통을 기본 nociceptive 분자 의미를 조사 하는 것을 도울 수 있었다.

일시적인 수용 체 잠재력 Vanilloid 타입-1의 Ultrapotent 주 작동 근의 순수한 작은 섬유 신경 병 마우스 모델 수립

여기에서 우리는 살아있는, 마취 실험실 마우스의 조야성 신경절 신경절을 드러내는 방법과 각성제를 맛보기 위하여 이 뉴런의 앙상블의 반응을 측정하기 위하여 칼슘 화상 진찰을 사용하는 방법을 제시합니다, 다른 각성제를 가진 다중 예심을 허용하. 이것은 어떤 신경 세포가 어떤 tastants에 반응하는지의 깊이 비교를 허용합니다.

마우스 의 생체 칼슘 이미징에서 맛 자극에 신경절 신경 반응

본 프로토콜은 생체 외 칼시토닌 유전자 관련 펩타이드 (CGRP) 방출 모델 및 설치류의 삼차 혈관계에서 방출되는 CGRP의 양에 대한 약리학 적 제제의 효과를 정량화하는 전략을 설명합니다.

생체 외 설치류의 삼차 혈관 시스템에서 칼시토닌 유전자 관련 펩타이드의 방출

이 프로토콜은 후근 신경절(DRG)에 이어 GCaMP3(유전적으로 인코딩된Ca2+ 지표; 녹색 형광 단백질-칼모듈린-M13 단백질 3) 동측 뒷발에 다양한 자극을 가하면서 Pirt-GCaMP3 마우스를 사용하여 신경 앙상블의Ca2+ 이미징.

생체 내 온전한 등근 신경절에 있는 일차 감각 뉴런 네트워크에서 뉴런 앙상블의 칼슘 이미징

유전적으로 인코딩된 칼슘 지표(GECI)는 감각 뉴런 신호에 대한 강력한 집단 수준 분석을 가능하게 합니다. 여기에서 우리는 쥐의 삼차신경절 뉴런 활동의 생체 내 GECI 시각화를 가능하게 하는 새로운 접근 방식을 개발했습니다.

생체 내 쥐 삼차신경절(Rat Trigeminal Ganglion)의 감각 뉴런의 칼슘 이미징

이 연구는 동기식 ECG 기록과 함께 생체 내 칼슘 이미징을 위해 마취된 마우스의 T-DRG를 노출시키는 외과적 조작을 제시합니다. 이 방법은 말초 전기 신경 자극 및 흉부 내장 기관 입력뿐만 아니라 1차 감각 수준에서의 상호 작용을 연구하기 위한 최첨단 도구입니다.

말초 신경 자극 연구를 위한 생체 내 흉부 등근 신경절(DRG) 칼슘 영상 및 ECG 기록

이 논문에서는 Fura-2/AM 염료를 사용한 단일 세포 Ca2+ 이미징을 사용하여 세포 내 칼슘 이온(Ca2+) 농도를 실시간으로 정량적으로 모니터링하는 방법을 제시합니다. 이 기술은 효율적인 염료 로딩과 형광 강도 비율을 통한 Ca2+ 수준의 정확한 계산을 가능하게 하여 연구 응용 분야를 위한 간단하고 빠른 접근 방식을 제공합니다.

칼슘 이온 채널의 활성화를 연구하기 위한 Single-cell Calcium Imaging

이 프로토콜은 온전한 삼차신경절(TG) 뉴런의 생체 내 GCaMP 칼슘 이미징을 설명합니다. 이 설명에는 TG 노출 수술, TG 뉴런의 생체 내 공초점 현미경 이미징, TG 뉴런 현미경 이미징 중 체세포 자극 적용 및 생체 내 GCaMP 칼슘 이미징 데이터 분석이 포함됩니다.

생체 내 온전한 삼차신경절의 일차 감각 뉴런 네트워크에서 신경 앙상블의 칼슘 이미징

배우세요 당화된 콜라겐이 감각 유사 뉴런의 TRPV1 채널을 통해 캡사이신 유발 칼슘 유입을 증가시키는 메커니즘을. 이 연구는 노화 및 퇴행성 질환에서 통증 감수성을 이해하는 데 중요한 통찰을 제공합니다.

고급 당화 최종 산물은 인간의 감각과 유사한 뉴런 세포를 캡사이신에 의한 칼슘 유입에 민감하게 만듭니다.

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