Name: 유형 I 및 유형 II FLT3 억제제에 노출된 후 FLT3 돌연변이 발현 32D 세포에서 DNA 손상을 정량화하기 위한 혜성 분석 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2025-10-17T13:20:00.000+00:00
Duration: 4 min 36 s
Description: 학습하세요 혜성 분석을 통해 FLT3 억제제에 노출된 FLT3 돌연변이 32D 세포의 DNA 손상을 정량화하는 방법을. AC220이 Gilteritinib보다 더 심각한 DNA 손상을 유발함을 확인하고 급성 골수성 백혈병 치료 전략을 최적화하는 데 활용하세요.

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1. FLT3-ITD 돌연변이가 있는 32D 세포에서 DNA 손상 모델 구축 18
<ol>
	<li>세포 회수<ol>
		<li>집게를 사용하여 냉동 보존된 FLT3-ITD 돌연변이 32D 세포(-80°C에서 보관)를 빠르게 옮깁니다. 집게를 사용하여 냉동 바이알을 회수하고 즉시 온도 조절 수조(37°C ± 0.5°C)에 정확히 60초 동안 담가 제어된 해동을 완료합니다. 알림: 해동하는 동안 균일한 가열을 보장하기 위해 수조에서 냉동 바이알을 간헐적으로 흔듭니다.</li>
		<li>동결 보존된 샘플을 150 × g 에서 25 °C ± 1 °C에서 5 분 동안 원심 분리합니다. 세포 펠릿을 유지하면서 멸균 혈청학적 피펫을 사용하여 상청액을 조심스럽게 흡인합니다.</li>
		<li>완전 성장 배지 1mL(RPMI 1640 + 10% 소 태아 혈청 + 1% 페니실린/스트렙토마이신)를 냉동 보존 튜브에 추가합니다. 완전한 재현탁을 보장하기 위해 10회의 순차적 피펫팅 주기(1mL 부피)를 통해 부드러운 분쇄를 수행합니다. 세포 현탁액을 100mm 세포 배양 접시로 옮기고 7mL의 완전 배지를 첨가하여 최종 부피 8mL를 달성합니다.</li>
		<li>5번의 수평 및 5번의 회전 운동으로 배양 용기를 부드럽게 교반합니다. 5% CO2 및 95% 습도에서 37.0°C ± 0.2°C의 가습 인큐베이터에서 세포를 유지합니다. 실험 처리 전에 24시간 동안 배양합니다.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>세포 생존력 평가<ol>
		<li>실험을 위해 양호한 세포 상태를 가진 로그 성장 단계의 FLT3-ITD 돌연변이 32D 세포를 선택합니다. 참고: 로그 성장 단계의 세포는 일반적으로 분열 주기가 짧고 세포 분열 빈도가 높습니다.<ol>
			<li>FLT3-ITD 돌연변이 32D 세포의 형태와 성장 상태를 전자현미경으로 관찰한다. 세포 증식 역치에 대한 기준이 충족되는지 확인: 가장자리가 매끄럽고, 분산이 균일하며, 응집체가 적고, 세포 크기가 균일하고, 원형질막 무결성이 온전하고, 세포 파편이 5%&lt; 단일 소구 형태의 che 세포를 찾습니다.</li>
		</ol>
		</li>
		<li>세포 계수기를 사용하여 세포 현탁액의 농도를 결정합니다. 참고: 세포 현탁액을 혼합합니다(최대 피펫 속도 50%에서 1mL 멸균 팁을 사용하여 10회 순차적 피펫팅 주기).</li>
		<li>반복적 희석을 사용하여 완전 성장 배지에서 세포 현탁액을 2.0 × 105 cells/mL로 표준화합니다. 피펫을 사용하여 50μL 분취량을 96웰 평평한 바닥 플레이트의 중앙 웰(B2-G7)에 분배합니다. 주변 웰(A1-H12)에 100μL의 멸균 PBS를 채워 습도를 유지하고 가장자리 증발 효과를 최소화합니다.</li>
		<li>FLT3 억제제 함유 배지 준비: 12웰 세포 배양 플레이트에서 9개의 웰을 선택하고 FLT3 억제제 농도 사다리(0, 3.90625, 7.8125, 15.625, 31.25, 62.5, 125, 250, 500 및 1000nM)에 따라 라벨링합니다. 10.0μM로 표지된 웰에 400μL의 완전 배지를 추가하고 나머지 웰에 200μL의 완전 배지를 추가합니다.<ol>
			<li>길테리티닙 희석액: 피펫 건을 사용하여 1000nM로 표지된 각 웰에 100μM 길테리티닙 시약(디메틸 설폭사이드의 길테리티닙) 4μL를 첨가하고 용액을 완전히 혼합합니다. 200μL의 1000nM 길테리티닙을 500nM으로 표지된 웰에 피펫팅하고 혼합합니다. 그런 다음 200μL의 500nM 길테리티닙을 250nM으로 표지된 웰에 피펫팅하고 혼합합니다. 매번 이전 희석액 200μL를 다음 웰에 넣고 원하는 농도를 얻을 수 있도록 혼합합니다.</li>
			<li>AC220 희석: 피펫 건을 사용하여 1000nM으로 표지된 각 웰에 100μM AC220 시약 4μL(디메틸 설폭사이드의 AC220)를 추가합니다. 다른 우물에 대해서는 1.2.4.1단계를 따릅니다. 참고: 잔류 용액을 방지하기 위해 피펫의 FLT3 억제제 원액이 웰로 완전히 옮겨졌는지 확인하십시오. 희석을 진행하기 전에 용액이 잘 혼합되었는지 확인하십시오.</li>
		</ol>
		</li>
		<li>배양: 피펫을 사용하여 FLT3 억제제 함유 배지를 지정된 웰(50μL/웰)에 분배합니다. 96웰 플레이트를 생리학적 배양 조건(37.0°C ± 0.2°C, 5% CO2, 95% 습도)에서 정확히 72시간 ± 15분 동안 유지합니다.</li>
		<li>피펫을 사용하여 CCK-8 시약 10μL를 모든 실험 및 블랭크 대조군 웰에 분취합니다. 플레이트를 빛으로부터 보호하고 정상 산소 조건(37°C, 5% CO2)에서 2.0시간 ± 10분 동안 배양합니다. 참고: 기포 형성을 최소화하기 위해 팁 침지 깊이가 2mm인 낮은 피펫 속도로 시약을 분배합니다. OD 판독값과의 간섭을 방지하기 위해 샘플을 추가하는 동안 기포를 피하십시오.</li>
		<li>인큐베이터에서 96웰 플레이트를 제거하고 마이크로플레이트 리더를 사용하여 450nm에서 흡광도를 측정합니다. 결과를 기록합니다.</li>
		<li>IC50 계산 공식에 따라 % 억제를 계산합니다. 억제(%) = <img alt="Equation 1" src="/files/ftp_upload/68469/68469eq1.jpg" style="margin: auto;"> × 100% 약물 실험 우물은 약물로 처리된 세포 우물을 나타냅니다. 세포 제어 우물은 약물로 처리되지 않은 세포 우물을 나타냅니다. 빈 대조군 웰은 세포가 없는 배지만 나타냅니다.</li>
		<li>4개의 매개변수 로지스틱 모델을 사용하여 비선형 회귀를 통해 정규화된 용량-반응 데이터를 분석합니다. 커브 피팅을 위해 피팅 커브 버튼을 클릭합니다. 모델 수렴(R2 &gt; 0.98, 잔차 제곱합 &lt; 0.15)에서 절반 최대 억제 농도(IC50)를 도출하고 1000회 반복 부트스트랩 리샘플링을 통해 95% 신뢰 구간을 계산합니다.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>FLT3 억제제에 의해 유도된 FLT3-ITD 돌연변이가 있는 32D 세포의 DNA 손상 실험<ol>
		<li>DNA 손상 평가를 위해 성장 급증(집단 배가 시간 &lt; 24시간)을 나타내는 FLT3-ITD 돌연변이 32D 세포를 선택합니다.</li>
		<li>셀 수를 계산합니다(자세한 내용은 1.2.2단계 참조).</li>
		<li>세포 파종: 직경 6cm의 접시와 접시당 4mL의 세포 현탁액을 사용하여 세포 현탁액의 밀도를 접시당 1 × 106 세포로 조정합니다.</li>
		<li>각 억제제 농도에 대해 3회 반복실험을 준비합니다: 55 nM 길테리티닙: 배지 4 mL + 100 μM 스톡 2.2 μL, AC220 0.15 nM AC220: 배지 4 mL + 100 nM 스톡 6 μL. 용액을 소용돌이-혼합하고 37°C에서 15분 동안 평형을 유지합니다. 적절한 혼합을 위해 튜브를 부드럽게 흔듭니다. 원래 배지를 흡인하고 멸균 혈청학적 피펫을 사용하여 새로 준비된 억제제 함유 배지 4mL/접시로 교체합니다.</li>
		<li>처리된 세포를 생리학적 조건(37°C, 5% CO2, 95% 습도)에서 정의된 간격(0, 2, 4, 6H) 동안 배양합니다. 기본 DNA 손상 평가를 위해 즉시 시간 제로 제어를 처리합니다.</li>
		<li>트리판 블루 배제 분석<ol>
			<li>수집된 세포를 150× g 에서 1분 동안 원심분리합니다. 상청액을 버리고 1mL의 배양 배지로 세포를 재현탁합니다.</li>
			<li>재현탁된 세포 100μL를 플라스틱 원심분리기 튜브에 피펫팅하고 트리판 블루 염색 염색 100μL(2x)을 첨가하고 부드럽게 혼합한 다음 3분 동안 염색합니다.</li>
			<li>셀 수를 계산합니다(자세한 내용은 1.2.2단계 참조).</li>
			<li>다음과 같이 세포 생존력을 계산합니다. % 세포 생존율 = <img alt="Equation 2" src="/files/ftp_upload/68469/68469eq2.jpg" style="margin: auto;"> × 100% 참고: 생존율이 ≥90%인 샘플만 혜성 분석을 위해 처리되었습니다.</li>
		</ol>
		</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
2. 시약 준비 및 세포 샘플 준비
<ol>
	<li>용해 용액(2.5M NaCl, 100mM EDTA, 10mM Tris, pH 10, 1% Triton X-100, 10% DMSO 포함)을 냉장고를 사용하여 4°C ± 0.5°C에서 30분 동안 평형을 이룹니다.</li>
	<li>저융점 아가로스(LMA)를 95°C에서 15분 동안 녹인 다음 응고를 방지하기 위해 37°C의 수조에 보관합니다.</li>
	<li>전자 저울을 사용하여 NaOH 12g의 무게를 측정하고 500mM EDTA 용액 2mL를 피펫팅한 다음ddH2O를 첨가하여 최대 1L의 완충액을 만들어 알칼리성 전기영동 완충액(300mM NaOH, 1mM EDTA, pH &gt;13)을 준비합니다.</li>
	<li>세포 수확<ol>
		<li>세포 현탁액을 15mL 원심분리기 튜브에 수집합니다. 세포 현탁액을 800 × g 에서 5분 동안 원심분리합니다. 진공 여과를 사용하여 상청액을 흡인합니다.<ol>
			<li>와이드 보어 1mL 피펫 팁을 사용하여 세포를 1mL의 완전 배지에 부드럽게 재현탁한 다음 10회 수직 반전시킵니다.</li>
			<li>1.2단계와 같이 셀을 계산합니다.</li>
			<li>세포 현탁액을 15mL 원심분리 튜브에서 150 × g 에서 5분 동안 원심분리하여 완전한 배지를 제거합니다. 세척된 세포를 칼슘이 없는 PBS에서 ~5.0 × 105 cells/mL로 재현탁합니다.</li>
		</ol>
		</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
3. 혜성 분석 절차
<ol>
	<li>혜성 분석 슬라이드와 세포 샘플을 미리 준비하십시오. 피펫을 사용하여 1.5mL 튜브에 LMA 아가로스와 세포 현탁액(5 × 105 cells/mL)의 10:1(v/v) 혼합물을 준비하고 부드럽게 혼합합니다. 슬라이드 표면에서 2mm 거리를 유지하면서 45° 각도로 고정된 피펫을 사용하여 아가로스-세포 혼합물의 55μL 분취량을 혜성 슬라이드에 분배합니다. 혼합물로 코팅된 슬라이드를 빛을 피하기 위해 4°C에서 30분 동안 놓습니다. 참고: 혜성 분석 슬라이드에 LMA 및 세포 혼합물을 첨가하는 동안 현탁액을 천천히 고르게 분배하여 기포 형성을 방지하고 균질한 겔 분포를 보장합니다.</li>
	<li>응고된 슬라이드를 예냉된 용해 용액(2.5M NaCl, 100mM EDTA, 10mM Tris, pH 10, 1% Triton X-100, 10% DMSO 포함)에 담그고 빛 보호 조건에서 4°C에서 ≥1시간 동안 용해를 수행합니다.</li>
	<li>용해 후 용해물에서 슬라이드를 제거하고 피펫 건을 사용하여 패들 주변의 액체를 최대한 빨아들입니다. 그런 다음 슬라이드를 알칼리성 전기영동 완충액(300mM NaOH, 1mM EDTA, pH &gt;13)에 넣고 빛을 피하도록 주의하면서 4°C에서 1시간 동안 사전 평형화합니다.</li>
	<li>전기영동: 슬라이드를 전기영동 챔버에 넣고 슬라이드를 담그기 위해 충분한 알칼리성 전기영동 용액을 추가합니다. DNA 손상을 최소화하기 위해 사전 평형화된 완충액(4°C)을 사용하여 정전류(300mA)로 30분 동안 24V(0.74V/cm에 해당)에서 전기영동을 수행합니다.</li>
	<li>중화: 전기영동 후 피펫건을 사용하여 슬라이드에서 알칼리성 전기영동 용액을 흡인하고 슬라이드를 dH2O에 2 x 5분 동안 담근 다음 70% 에탄올에 5분 동안 담급니다. 슬라이드를 인큐베이터에서 37°C에서 15분 동안 건조시킵니다.</li>
	<li>염색: 웰당 1x YeaRed 핵산 염색의 100 μL 분취량을 도포하고 빛 보호 조건에서 주변 온도에서 30분 동안 배양합니다. 부드러운 수성 헹굼 후 37°C에서 열 건조하여 과도한 얼룩을 제거합니다.</li>
	<li>이미징: 4x 대물렌즈가 장착된 형광 현미경을 사용하여 형광 시각화를 수행하고 표준화된 노출 조건에서 디지털 이미지 획득을 수행합니다.</li>
</ol>
4. 데이터 처리
<ol>
	<li>정량적 이미지 분석을 수행하여 꼬리 DNA(%), 올리브 꼬리 모멘트 및 꼬리 길이(μm)를 포함한 표준 혜성 매개변수를 결정합니다.<ol>
		<li>소프트웨어의 인터페이스를 엽니다(그림 5).</li>
		<li>이미지를 소프트웨어로 가져오고 파일을 클릭한 다음 파일 선택 을 클릭하여 분석하려는 이미지를 소프트웨어로 가져옵니다. 그런 다음 마우스 버튼을 누른 상태에서 파란색 상자가 나타날 때까지 드래그합니다. 파란색 상자를 드래그하여 분석하려는 셀이 상자 안에 포함되도록 합니다. 그림의 조정 옵션을 사용하여 전체 셀을 포함하도록 프레임의 위치를 조정할 수 있습니다(그림 5).</li>
		<li>분석을 시작하기 전에 시작을 클릭한 다음 분석을 클릭합니다. 단일 셀 분석 결과는 오른쪽의 '프로필' 아래에 표시됩니다. 각 셀을 분석한 후 저장을 클릭합니다. 감지할 수 있는 파라미터는 '프로필' 오른쪽에 표시되며, 하단에는 다양한 파라미터의 수치가 표시됩니다. 마지막으로 파일 | 결과를 내보냅니다. 얻은 결과에는 HeadArea, TailArea, HeadDNA, TailDNA, HeadDNA%, TailDNA%, HeadRadius, TailLength, CometLength, HeadMeanX, TailMeanX, TailMoment 및 OliveTailMoment가 포함됩니다.</li>
	</ol>
	</li>
</ol>

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<li>Kumar, S., Yedjou, C. G., Tchounwou, P. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Arsenic+trioxide+induces+oxidative+stress%2C+DNA+damage%2C+and+mitochondrial+pathway+of+apoptosis+in+human+leukemia+%28hl-60%29+cells%5BTitle%5D)+AND+%22J+Exp+Clin+Cancer+Res%22%5BJournal%5D)">Arsenic trioxide induces oxidative stress, DNA damage, and mitochondrial pathway of apoptosis in human leukemia (hl-60) cells.</a> J Exp Clin Cancer Res. 33 (1), 42(2014).</li>
</ol>

<table><tbody><tr><td>0.5M EDTA</td><td>비요타임</td><td>ST066</td><td></td></tr><tr><td>1x YeaRed 핵산 염색</td><td>예센</td><td>10202ES</td><td></td></tr><tr><td>32D 셀</td><td>코비오에</td><td>CBP60995</td><td></td></tr><tr><td>AC220</td><td>타겟몰</td><td>T2066</td><td></td></tr><tr><td>세포 계수 키트-8</td><td>도진도</td><td>CK04</td><td></td></tr><tr><td>세포 계수 플레이트</td><td>치우징</td><td>XB-K-25</td><td></td></tr><tr><td>CO2 인큐베이터</td><td>열</td><td>51032872</td><td></td></tr><tr><td>혜성 분석 소프트웨어 프로젝트(CASP)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>CometAssay 키트&nbsp;</td><td>트레비겐</td><td>4250-050-K</td><td></td></tr><tr><td>세포 분석 5</td><td>바이오텍</td><td>16280004</td><td></td></tr><tr><td>FBS</td><td>팬</td><td>ST30-3302</td><td></td></tr><tr><td>길테리티닙</td><td>타겟몰</td><td>티4409</td><td></td></tr><tr><td>그래프패드 프리즘 9.0</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>고속 원심분리기</td><td>열</td><td>&nbsp; 9AQ2861</td><td></td></tr><tr><td>L-1000XLS+ 피펫</td><td>레인인</td><td>17014382</td><td></td></tr><tr><td>L-20XLS+ 피펫</td><td>레인인</td><td>17014392</td><td></td></tr><tr><td>액체 질소 탱크</td><td>Mvecryoge</td><td>YDS-175-216</td><td></td></tr><tr><td>Multiskan FC 마이크로플레이트 광도계</td><td>열</td><td>1410101</td><td></td></tr><tr><td>Na2OH</td><td>다마오</td><td>1588</td><td></td></tr><tr><td>PBS</td><td>솔라바이오</td><td>P1020</td><td></td></tr><tr><td>페니실린-스트렙토마이신 용액, 100x</td><td>비요타임</td><td>C0222</td><td></td></tr><tr><td>RPMI 1640 중간</td><td>깁코</td><td>C22400500BT</td><td></td></tr><tr><td>삼안 생세포 현미경</td><td>모틱</td><td>1.1001E+12</td><td></td></tr><tr><td>초저온 냉동고</td><td>헤어</td><td>V118574</td><td></td></tr></tbody></table>

유형 i 및 유형 ii flt3 억제제에 노출된 후 flt3 돌연변이 발현 32d 세포에서 dna 손상을 정량화하기 위한 혜성 분석

Comet Assay to Quantify DNA Damage in FLT3 Mutant-expressing 32D Cells after Exposure to Type I and Type II FLT3 Inhibitors

혜성 분석은 FLT3 돌연변이 세포주에서 길테리티닙과 AC220에 의해 유도된 차등 DNA 손상 프로파일을 정량화하기 위해 체계적으로 사용되었습니다. 분석 결과 길테리티닙과 AC220으로 처리되지 않은 세포 집단 간의 DNA 손상 차이는 통계적으로 유의하지 않은 것으로 나타났습니다(P &gt; 0.05). 꼬리 DNA(%) 및 올리브 모멘트 꼬리(OMT) 값의 용량 의존적 증가는 2-6시간 노출 후 통계적 유의성(P &lt; 0.05)을 달성했습니다. OMT는 꼬리의 % DNA와 '머리-꼬리 형광의 무게 중심 사이의 거리'의 곱을 나타냅니다. 꼬리 DNA(%) 및 올리브 모멘트 꼬리(OMT) 차이는 AC220이 길테리티닙보다 세포에 더 많은 DNA 손상을 유발한다는 것을 나타냅니다(그림 3 및 그림 4). 결론적으로, 이 실험 패러다임은 혜성 분석이 돌연변이 세포 모델에서 FLT3 억제제의 D...

유형 I 및 유형 II FLT3 억제제에 노출된 후 FLT3 돌연변이 발현 32D 세포에서 DNA 손상을 정량화하기 위한 혜성 분석

FMS-like tyrosine kinase 3 (FLT3), a class III receptor tyrosine kinase, exhibits a mutation frequency of approximately 30% in acute myeloid leukemia ...

comet-assay-to-quantify-dna-damage-flt3-mutant-expressing-32d-cells

Research

연구

JoVE Journal

Biology

생물학

이 비디오는 유해 물질에 노출된 후 DNA 손상을 감지하기 위한 혜성 분석을 보여줍니다. 알칼리성 조건에서는 DNA가 풀리고 변성되며, 전기영동에 따라 손상되지 않은 DNA와 손상된 DNA가 아가로스 겔에서 다르게 이동하여 혜성 모양의 구조를 형성합니다. 천천히 이동하는 손상되지 않은 DNA는 원형 혜성 머리를 형성하고, 빠르게 이동하는 손상된 DNA 조각은 길쭉한 혜성 꼬리를 형성합니다.

세포의 DNA 손상 감지를 위한 Comet Assay

혜성 분석은 알칼리 불안정한 사이트와 hippocampal 뉴런을 포함한 모든 세포의 DNA에 DNA-DNA/DNA-protein 상호 링크 등 단일 및 이중 가닥 휴식을 검출 효율적인 방법입니다. 방법은 DNA 손상의 양의 차이로 인해 전기 분야에서 DNA의 차동 마이그레이션을 활용합니다.

혜성 분석을 사용하여 Hippocampal 뉴런의 DNA 손상을 시금

여기서 전례 처리량 DNA 손상 혜성 분석 검출 할 수있는 플랫폼을 설명한다. 장치 패턴 마이크로 어레이에 포유 동물 세포와는 96 샘플의 병렬 처리를 할 수 있습니다. 접근법은 기본 레벨 DNA 손상, 노출 유도 DNA 손상 및 DNA 수선의 동력학 분석을 용이하게한다.

CometChip : Microarrayed 인간의 세포에서 DNA 손상을 측정하기위한 높은 처리량 96 글쎄 플랫폼

혜성 분석 결과 단일과 이중 가닥 DNA를 포함 하 여 DNA 손상 나누기를 검색 하는 효율적인 방법입니다. 알칼리와 중립 혜성 분석 실험 화학 요법의 치료 효과 평가 하기 위해 암 세포의 DNA 손상을 측정을 설명 합니다.

DNA 손상 생체 외에서 혜성 분석 결과 사용 하 여 평가

이 프로토콜은 DNA 손상을 평가하기 위해 혜성 분석실험에 사용하기 위해 부검 시 고품질 냉동 조직 샘플을 준비하기 위한 몇 가지 절차를 설명합니다: 1) 다진 조직, 2) 위장관에서 긁힌 상피 세포, 3) 큐브 조직 조직 다진 장치를 사용하여 균질화를 요구하는 샘플.

DNA 손상의 평가를 위한 혜성 분석에서 냉동 조직의 사용

혜성 분석은 DNA 손상을 감지하는 널리 사용되는 수단입니다. 이 연구는 혜성 분석의 대표적인 변형에서 슬라이드를 실행하는 접근 방식을 설명합니다. 이 접근 방식은 샘플 수를 크게 늘리는 동시에 분석 실행 시간, 슬라이드 조작 횟수 및 젤 손상 위험을 줄였습니다.

세포 DNA 손상 평가를 위한 고처리량 혜성 분석 접근법

지연 유형 과민성 (DTH)는 CCR7 - 효과기 기억 T의 lymphocytes로 인한 염증 반응이다. 여기 루이스 쥐에 적극적으로 DTH를 유발하고 염증 반응을 모니터링하는 방법을 보여줍니다.

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규제 T 세포 : 이식 거부와 유형 나는 당뇨병 치료를위한 치료 가능성

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이미징 불일치 복구 및 DNA의 손상 세포 응답 바실러스 subtilis</em

학습하세요 혜성 분석을 통해 FLT3 억제제에 노출된 FLT3 돌연변이 32D 세포의 DNA 손상을 정량화하는 방법을. AC220이 Gilteritinib보다 더 심각한 DNA 손상을 유발함을 확인하고 급성 골수성 백혈병 치료 전략을 최적화하는 데 활용하세요.

유형 I 및 유형 II FLT3 억제제에 노출된 후 FLT3 돌연변이 발현 32D 세포에서 DNA 손상을 정량화하기 위한 혜성 분석

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