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	<li>Murray, P. J. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Macrophage+polarization.">Macrophage polarization.</a> Annu Rev Physiol. 79, 541-566 (2017).</li><li>Xue, J., et al. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Transcriptome-based+network+analysis+reveals+a+spectrum+model+of+human+macrophage+activation.">Transcriptome-based network analysis reveals a spectrum model of human macrophage activation.</a> Immunity. 40 (2), 274-288 (2014).</li><li>Italiani, P., Boraschi, D. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=From+monocytes+to+M1/M2+macrophages:+phenotypical+vs.+functional+differentiation.">From monocytes to M1/M2 macrophages: phenotypical vs. functional differentiation.</a> Front Immunol. 5, 514 (2014).</li><li>Locati, M., Curtale, G., Mantovani, A. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Diversity,+mechanisms,+and+significance+of+macrophage+plasticity.">Diversity, mechanisms, and significance of macrophage plasticity.</a> Annu Rev Pathol. 15, 123-147 (2020).</li><li>Luo, M., Zhao, F., Cheng, H., Su, M., Wang, Y. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Macrophage+polarization:+an+important+role+in+inflammatory+diseases.">Macrophage polarization: an important role in inflammatory diseases.</a> Front Immunol. 15, 1352946 (2024).</li><li>Cossarizza, A., et al. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Guidelines+for+the+use+of+flow+cytometry+and+cell+sorting+in+immunological+studies+(third+edition).">Guidelines for the use of flow cytometry and cell sorting in immunological studies (third edition).</a> Eur J Immunol. 51 (12), 2708-3145 (2021).</li><li>Unuvar Purcu, D., et al. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effect+of+stimulation+time+on+the+expression+of+human+macrophage+polarization+markers.">Effect of stimulation time on the expression of human macrophage polarization markers.</a> PLoS One. 17 (3), e0265196 (2022).</li><li>Icha, J., Weber, M., Waters, J. C., Norden, C. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Phototoxicity+in+live+fluorescence+microscopy,+and+how+to+avoid+it.">Phototoxicity in live fluorescence microscopy, and how to avoid it.</a> BioEssays. 39 (8), 1700003 (2017).</li><li>Laissue, P. P., Alghamdi, R. A., Tomancak, P., Reynaud, E. G., Shroff, H. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Assessing+phototoxicity+in+live+fluorescence+imaging.">Assessing phototoxicity in live fluorescence imaging.</a> Nat Methods. 14 (7), 657-661 (2017).</li><li>Park, Y., Depeursinge, C., Popescu, G. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Quantitative+phase+imaging+in+biomedicine.">Quantitative phase imaging in biomedicine.</a> Nat Photonics. 12, 578-589 (2018).</li><li>Dong, D., et al. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Super-resolution+fluorescence-assisted+diffraction+computational+tomography+reveals+the+three-dimensional+landscape+of+the+cellular+organelle+interactome.">Super-resolution fluorescence-assisted diffraction computational tomography reveals the three-dimensional landscape of the cellular organelle interactome.</a> Light Sci Appl. 9, 11 (2020).</li><li>Kim, K., et al. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Optical+diffraction+tomography+techniques+for+the+study+of+cell+pathophysiology.">Optical diffraction tomography techniques for the study of cell pathophysiology.</a> J Biomed Photonics Eng. 2 (2), 020201 (2016).</li><li>Falk, T., et al. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=U-Net:+deep+learning+for+cell+counting,+detection,+and+morphometry.">U-Net: deep learning for cell counting, detection, and morphometry.</a> Nat Methods. 16 (1), 67-70 (2019).</li><li>Jaqaman, K., et al. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Robust+single-particle+tracking+in+live-cell+time-lapse+sequences.">Robust single-particle tracking in live-cell time-lapse sequences.</a> Nat Methods. 5, 695-702 (2008).</li></ol>

<table><tbody><tr><td>ODT 이미징 시스템</td><td>Pellucid Optics</td><td>MH-PanoView</td><td>라벨 없는 생체 세포 이미징에 사용됨</td></tr><tr><td>획득 소프트웨어</td><td>Pellucid Optics&nbsp;</td><td>Lucida-Pano v2.1.0</td><td>이미지 획득에 사용됨</td></tr><tr><td>분석 소프트웨어</td><td>Pellucid Optics&nbsp;</td><td>Intellyseg v2.1.0</td><td>이미지 재구성, 분할 및 추적에 사용됨</td></tr><tr><td>RAW264.7</td><td>우한 지산 바이오테크놀로지&nbsp;</td><td>STCC20020P</td><td>인체 대식세포 라인, 체외 분극 및 이미징 실험에 사용됨.</td></tr><tr><td>바이칼린 (BAI)</td><td>상하이 위안예&nbsp;</td><td>JB246114</td><td>세포 전처리에 사용됨</td></tr><tr><td>리포폴리사카라이드 (LPS)</td><td>Solarbio</td><td>L8880</td><td>대식세포 자극에 사용됨</td></tr><tr><td>DMEM 배지</td><td>Gibco</td><td>C11995500BT</td><td>세포 배양 배지</td></tr><tr><td>태아 우 혈청</td><td>Procell</td><td>164210</td><td>세포 배양 보충</td></tr><tr><td>페니실린&ndash;스트렙토마이신 (100x)</td><td>Procell</td><td>PB180120</td><td>세포 배양용 항생제</td></tr><tr><td>60 mm 배양 접시</td><td>Corning</td><td>CLS430166</td><td>세포 배양에 사용됨</td></tr><tr><td>35 mm 유리 바닥 접시</td><td>Cellvis</td><td>D35-10-1.5-N</td><td>ODT 이미징에 사용됨</td></tr><tr><td>역전 현미경</td><td>OLYMPUS</td><td>CKX53</td><td>일상적인 세포 관찰 및 배양 중 모니터링에 사용됨.</td></tr><tr><td>세포 카운터</td><td>RWD 생명과학</td><td>C100</td><td>세포 밀도 결정에 사용됨</td></tr></tbody></table>

광학 회절 단층촬영을 이용한 실시간 라벨 없는 영상화 및 대식세포 형태역학의 정량적 분석

Real-Time Label-Free Imaging and Quantitative Analysis of Macrophage Morphodynamics Using Optical Diffraction Tomography

This study establishes a label-free optical diffraction tomography (ODT)-based workflow for live-cell imaging and analysis to observe time-dependent ...

real-time-label-free-imaging-quantitative-analysis-macrophage

Research

연구

JoVE Journal

Biology

생물학

총 내부 반사 형광 (TIRF) 현미경 가까이 높은 콘트라스트와 시간적 해상도의 세포 표면 구조를 관찰하기위한 강력한 방법입니다. 우리는 TIRF은 세포 벽 - 동봉된 세균과 곰팡이 세포의 피질에서 단백질 역학을 공부 고용 수있는 방법을 보여줍니다.

미생물에 접속 조직 및 역학 시각화, 총 내부 반사의 형광 현미경을 사용하여

명시야와 미분 간섭 대비 이미지의 조합을 통해 세포 질량, 부피 및 밀도의 정량적 측정을 수행하기 위해 표준 광학 현미경을 사용하는 방법을 설명합니다.

양이 광학 현미경 : 세포 생물 물리학의 측정​​ 표준 광학 현미경과 특징

원형질막 단백질과 지질의 공간 분포와 시간 역학은 생물학에서 뜨거운 주제입니다. 여기서 이 문제는 개념적으로 동일한 단일 입자 추적의 물리량을 제공하지만 작은 분자 레이블과 표준 현미경 설정을 사용하는 시공간 이미지 변동 분석을 통해 해결됩니다.

상용 현미경에서 라이브 세포막에 분자 확산 법률에 빠른 형광 이미징

이 프로토콜은 ultrafast microfluidic 흐름과 이미징 유동 세포 계측법의 응용 프로그램에서 단일 셀 이미징을위한 비대칭 감지 시간 - 스트레치 광학 현미경 시스템의 구현을 설명합니다.

비대칭 검출 시간 - 스트레치 광학 현미경 (ATOM)에 의한 미세 유체 이미징 유동 세포 계측법

특정 대상 프로브 질병 (예를 들어, 염증, 감염, 및 tumorigenesis)의 다양 한 종류의 단백질 표정 등의 분자 메커니즘을 분석 하기 위한 혁신적인 도구를 나타냅니다. 이 연구에서 우리는 murine 모델 f 4/80 전용 형광 중재 단층 촬영을 사용 하 여 대 장 염의 장 대 식 세포 침투의 양적 차원 단층 평가 설명 합니다.

검색 및 대 식 세포 관련 Murine 창 자 염증의 정량화에 대 한 단층 형광 중재

이 프로토콜에 설명 합니다 품질 광학 유리 표면 흡착 고정 표본 슈퍼 해상도 현미경을 가능 하 게 살아있는 표본의 대 식 세포 융합을 모니터링 하는 데 사용할 수 있는 긴 사슬 탄화수소를 포함 하는 화합물으로 제조를 .

대 식 세포 융합 연구 품질 광학 유리 표면 조작

여기는 마우스 주민 복 막 대 식 세포에 의해 회전 디스크 confocal 현미경 이미지 단일 phagocytic 이벤트를 사용 하 여 방법에 설명 합니다. 프로토콜은 다른 phagocytic 세포를 확장할 수 있습니다.

마우스 대 식 세포에 의해 식 균 작용의 시간 경과 3D 영상

우리의 림프 구 정량 위상 이미징 및 기계 학습 알고리즘을 사용 하 여 레이블 없는 식별 프로토콜을 설명 합니다. 림프 톨의 3 차원 굴절률 tomograms의 측정 3D 형태학 및 생화학 정보 개별 셀에 대 한 다음 종류의 식별을 위한 기계 학습 알고리즘으로 분석을 제시.

라벨-무료 3 차원 양적 위상 이미징 사용 하 여 림프 구의 식별 및 기계 학습

칩 기반 의 초고해상도 광학 현미경 검사법은 형광 현미경 검사법에 대한 새로운 접근법이며 비용 효율성과 처리량에 이점을 제공합니다. 여기에서, 칩 준비 및 화상 진찰을 위한 프로토콜은 TIRF 현미경 검사법 및 현지화 기지를 둔 초고해상도 현미경 검사법을 위해 도시됩니다.

포토닉 칩을 사용한 고처리량 총 내부 반사 형광 및 직접 적층 광학 재건 현미경

이미징 유래 평균 제곱 변위 (iMSD) 분석은 구조 및 동적 특성 측면에서 고유 한 시간 진화 특성을 강조하기 위해 매크로 피노솜에 적용됩니다. 그런 다음 Macropinosomes는 시간 불변의 평균 구조 / 동적 특성을 가진 세포 하부 구조에 대한 참조로서 인슐린 분비 과립 (ISGs)과 비교됩니다.

시공간 변동 분광법에 의한 밀매된 세포하 나노구조체의 구조적 및 동적 특성 조사

우리는 동적 미세 소관 및 형광 표지 된 미세 소관 관련 단백질의 동시 이미징을 위해 간섭 반사 현미경 검사 및 전체-내부-반사-형광 현미경을 구현하기위한 프로토콜을 제시합니다.

동시 간섭 반사 및 전체 내부 반사 형광 현미경 검사 이미징 동적 미세 소관 및 관련 단백질

Chengdu University of Traditional Chinese Medicine.  이 프로토콜은 대식세포 형태역학의 실시간 영상 및 정량적 분석을 위한 라벨 없는 광학 회절 단층촬영 기반 워크플로우를 설명합니다. 이 방법은 단일 세포의 형태와 이동을 지속적으로 추적할 수 있게 하여, 장기 생세포 영상 촬영 중 예상 면적, 경계, 평균 이동 속도를 시간 측정으로 제공합니다.

광학 회절 단층촬영을 이용한 실시간 라벨 없는 영상화 및 대식세포 형태역학의 정량적 분석

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