Deel 1: Voorbereiding van het weefsel
- Euthanaseren de volwassen zebravissen met gebufferde MS-222 (Ethyl 3-aminobenzoaat methaansulfonaat zout, 0,03%).
- Onthoofden van de vis. Snijd de onderkaak, plaats het hoofd op de dissectie pad met de ventrale kant naar boven, en immobiliseren het weefsel met een insect pinnen. Verwijder het zachte weefsel ventrale aan de schedel en crack opent het ventrale deel van de schedel capsule met een paar fijne pincet onder een dissectie microscoop.
- Zet de vis kop in paraformaldehyd (4%) bij 4 ° C gedurende de nacht.
- Spoel de vaste vis kop in PBS (fosfaat gebufferde zoutoplossing, 1X) voor de 3 keer, 5 minuten per keer.
Deel 2: Bruto dissectie van het binnenoor
- Leg de vis hoofd op de dissectie pad met de ventrale zijde naar boven. Immobiliseren het met insect pinnen. Alle volgende stappen worden uitgevoerd in het kader van de dissectie microscoop.
- Met een paar fijne pincet, verwijder het schedelbot over het binnenoor en daarna voorzichtig trek het binnenoor weefsels: saccules, lagenae, en utricles. De saccule en lagena zijn nauw aan elkaar vast en zo trek bij elkaar, terwijl de utricle (anterior aan de saccule en lagena), zal zeer waarschijnlijk worden losgemaakt van de andere kant organen tijdens dissectie.
- Leg het binnenoor weefsels in PBS (1X). Indien geen nadere fijne dissectie nodig is, spoelt het weefsel 2-3 keer met PBS (1X) en het kan gebruikt worden voor andere experimenten, bijvoorbeeld vriescoupes.
Deel 3: Fijn dissectie van het binnenoor zintuiglijke epithelia
- De boete dissectie kan worden uitgevoerd in een daling van PBS (1X) op een schoon glasplaatje.
- Haal de utricular otoliet van de utricle met twee paar fijne pincet, en, indien gewenst, trim off van de niet-zintuiglijke epitheelweefsel en de innervatie van het epitheel met een paar fijne pincet en een naald mes.
- Verwijder de lagenar otoliet voordat scheiden zakvormig en lagenar epitheel, terwijl proberen om het hele saccule zo intact mogelijk te houden. Plaats het weefsel in de PBS druppel met ventrale zijde naar boven. Gebruik de naald mes zorgvuldig te snijden tussen de saccule en lagena. Snij de excessieve niet-zintuiglijke epitheelweefsel en de innvervation met fijne pincet en de naald blad, indien gewenst.
Deel 4: Fluorescerende kleuring van de haarcellen in de sensorische epithelia
- Spoel de sensorische epitheel met PBT (1XPBS en 1% Triton X-100) voor de 3 keer, 5 min per keer.
- Incubeer het epitheel met fluophore-gelabeld phalloidin (bv. Alexa Meel 488 Phalloidin, 1:1000 verdunning) gedurende 30 min bij kamertemperatuur.
- Spoel de sensorische epitheel met PBT voor drie keer, tien minuten per keer.
- Monteer het epitheel op een dia met montage medium en controleer de gekleurde weefsel onder de fluorescentie microscoop met filters van de juiste golflengte.
- Na de succesvolle dissectie en kleuring, kunnen intacte epitheel met een sterke haarcel bundel verkleuring te zien onder de microscoop (afb. 1).

Figuur 1. Haarcellen van het zakvormig sensorische epitheel werden gekleurd met Alexa Flour 488 Phalloidin (groen). Het weefselmonster was ontleed en gekleurd zoals vermeld in de krant. Verschillende foto's werden genomen op verschillende posities van het monster en betegelde samen met Adobe Photoshop 7.0.
Schaalbalk = 150μm.