Een abonnement op JoVE is vereist om deze inhoud te bekijken. Log in of start vandaag met uw gratis proefperiode.

Methodenartikel

Grove en fijne Dissectie van binnenoor Sensory epitheel in Adult zebravis ( Danio rerio)

16.3K weergaven

⸱

DOI:

10.3791/1211

⸱

8 mei 2009

 , 

In dit artikel

Samenvatting

Het binnenoor sensorische epitheel van volwassen zebravis is een goed model voor het begrijpen van de mechanismen van haar cel regeneratie in volwassen gewervelde dieren. Dit protocol laat de fijne ontleding van het epitheel, waardoor we kunnen weefselmonsters krijgen voor het bestuderen van de regeneratieve gebeurtenissen in cellulaire en subcellulaire niveau.

Samenvatting

Neurosensorische epitheel in het binnenoor zijn de cruciale structuren voor gehoor en evenwicht functies. Daarom is het belangrijk om te begrijpen van de cellulaire en moleculaire kenmerken van het epitheel, die hoofdzakelijk zijn samengesteld uit twee soorten cellen: haarcellen (HCS) en het ondersteunen van cellen (SC). Hier kiezen we ervoor om het binnenoor sensorische epitheel bij volwassen zebravissen niet alleen studeren, omdat de epitheliale structuren zijn sterk geconserveerd in de bestudeerde alle gewervelde dieren, maar ook omdat de volwassen zebravis is in staat om HC, een vermogen dat zoogdieren te verliezen kort na de geboorte te regenereren. We maken gebruik van het binnenoor van volwassen zebravis als model systeem om de mechanismen van binnenoor HC regeneratie studie bij volwassen gewervelde dieren die nuttig zouden kunnen zijn voor de klinische behandeling van het gehoor / balans tekorten in de menselijke als gevolg van de HC verlies.

Hier laten we zien hoe de grove en fijne dissecties van binnenoor sensorische epitheel bij volwassen zebravissen doen. De bruto dissectie verwijdert de weefsels rondom het binnenoor en is nuttig voor het bereiden van weefselcoupes, die ons in staat stelt te onderzoeken of het gedetailleerde structuur van de sensorische epitheel. De fijne dissectie ruimt de niet-zintuiglijke-epitheliale weefsels van elke individuele epitheel en stelt ons in staat om de heterogeniteit van de gehele epitheel gemakkelijk te onderzoeken in zijn geheel-mount epitheliale monsters.

Protocol

Deel 1: Voorbereiding van het weefsel

  1. Euthanaseren de volwassen zebravissen met gebufferde MS-222 (Ethyl 3-aminobenzoaat methaansulfonaat zout, 0,03%).
  2. Onthoofden van de vis. Snijd de onderkaak, plaats het hoofd op de dissectie pad met de ventrale kant naar boven, en immobiliseren het weefsel met een insect pinnen. Verwijder het zachte weefsel ventrale aan de schedel en crack opent het ventrale deel van de schedel capsule met een paar fijne pincet onder een dissectie microscoop.
  3. Zet de vis kop in paraformaldehyd (4%) bij 4 ° C gedurende de nacht.
  4. Spoel de vaste vis kop in PBS (fosfaat gebufferde zoutoplossing, 1X) voor de 3 keer, 5 minuten per keer.

Deel 2: Bruto dissectie van het binnenoor

  1. Leg de vis hoofd op de dissectie pad met de ventrale zijde naar boven. Immobiliseren het met insect pinnen. Alle volgende stappen worden uitgevoerd in het kader van de dissectie microscoop.
  2. Met een paar fijne pincet, verwijder het schedelbot over het binnenoor en daarna voorzichtig trek het binnenoor weefsels: saccules, lagenae, en utricles. De saccule en lagena zijn nauw aan elkaar vast en zo trek bij elkaar, terwijl de utricle (anterior aan de saccule en lagena), zal zeer waarschijnlijk worden losgemaakt van de andere kant organen tijdens dissectie.
  3. Leg het binnenoor weefsels in PBS (1X). Indien geen nadere fijne dissectie nodig is, spoelt het weefsel 2-3 keer met PBS (1X) en het kan gebruikt worden voor andere experimenten, bijvoorbeeld vriescoupes.

Deel 3: Fijn dissectie van het binnenoor zintuiglijke epithelia

  1. De boete dissectie kan worden uitgevoerd in een daling van PBS (1X) op een schoon glasplaatje.
  2. Haal de utricular otoliet van de utricle met twee paar fijne pincet, en, indien gewenst, trim off van de niet-zintuiglijke epitheelweefsel en de innervatie van het epitheel met een paar fijne pincet en een naald mes.
  3. Verwijder de lagenar otoliet voordat scheiden zakvormig en lagenar epitheel, terwijl proberen om het hele saccule zo intact mogelijk te houden. Plaats het weefsel in de PBS druppel met ventrale zijde naar boven. Gebruik de naald mes zorgvuldig te snijden tussen de saccule en lagena. Snij de excessieve niet-zintuiglijke epitheelweefsel en de innvervation met fijne pincet en de naald blad, indien gewenst.

Deel 4: Fluorescerende kleuring van de haarcellen in de sensorische epithelia

  1. Spoel de sensorische epitheel met PBT (1XPBS en 1% Triton X-100) voor de 3 keer, 5 min per keer.
  2. Incubeer het epitheel met fluophore-gelabeld phalloidin (bv. Alexa Meel 488 Phalloidin, 1:1000 verdunning) gedurende 30 min bij kamertemperatuur.
  3. Spoel de sensorische epitheel met PBT voor drie keer, tien minuten per keer.
  4. Monteer het epitheel op een dia met montage medium en controleer de gekleurde weefsel onder de fluorescentie microscoop met filters van de juiste golflengte.
  5. Na de succesvolle dissectie en kleuring, kunnen intacte epitheel met een sterke haarcel bundel verkleuring te zien onder de microscoop (afb. 1).

figure-protocol-1
Figuur 1. Haarcellen van het zakvormig sensorische epitheel werden gekleurd met Alexa Flour 488 Phalloidin (groen). Het weefselmonster was ontleed en gekleurd zoals vermeld in de krant. Verschillende foto's werden genomen op verschillende posities van het monster en betegelde samen met Adobe Photoshop 7.0.
Schaalbalk = 150μm.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Discussie

In dit protocol beschrijven we de grove en fijne ontleding van het binnenoor sensorische epitheel van volwassen zebravissen, die ons in staat stelt weefselmonster voor te bereiden op het bestuderen van de cellulaire en subcellulaire kenmerken van de sensorische epitheel.

Met het oog op het uitvoeren van een succesvolle dissectie, de allereerste stap, fixatie, is erg belangrijk. Zorg ervoor dat u altijd vers bereide paraformaldehyde oplossing te gebruiken omdat oude oplossing zal resulteren i...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Dankbetuigingen

Dit onderzoek werd ondersteund door de Intramurale Research Program van de National Human Genome Research Institute, National Institutes of Health.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Materialen

Lijst van materialen gebruikt in dit artikel
NaamBedrijfCatalogusnummerOpmerkingen
MS222 (Ethyl 3-aminobenzoaat methaansulfonaatzout)ReagensSigma-AldrichA5040
PBS (fosfaatgebufferde zoutoplossing, 10X)ReagensMediatech, Inc.46-013-CM
ParaformaldehydeReagensSigma-AldrichP-6148
Triton X-100ReagensSigma-AldrichT8787
Alexa Fluor 488 phalloïdineReagensInvitrogenA12379
VECTASHIELD Hard Set Mounting Medium met DAPIReagensVector LaboratoriesH-1500
DissectiemicroscoopMicroscoopNikon InstrumentsSMZ1000
InsectenspeldjesInstrumentFine Science Tools26000-40
SchaarInstrumentRoboz Surgical Instruments Co.RS-5880
PincetInstrumentRoboz Surgical Instruments Co.RS-5045
NaaldmesInstrumentSharpoint78-6810
FluorescentiemicroscoopMicroscoopCarl Zeiss, Inc.Axiovert 200M
DissectieblokInstrumenteNascoSB07840M
ZebravisDierDiversen/a

Herprints en machtigingen

Meer artikelen verkennen

Dissectie van het binnenoorsensorische epithelia van de zebravisregeneratie van haarcellengrove dissectieverwijderen van otolietenfixatie van weefselfluorescentiekleuringphalloïdine-labelingconfocale microscopie