- Bereid 500 ml van 0,22 um filter gesteriliseerde kunstmatig zeewater (FSW, zoutgehalte 35 ppt). Filter kunstmatige of natuurlijke zeewater door een 0,22 um micron filter om deeltjes en bacteriën te verwijderen.
- Verdoven een volwassen Hawaiian bobtail squid (Euprymna scolopes) door plaatsing in een 2% oplossing van ethanol in FSW. Plaats het dier in narcose voor ongeveer 10 minuten. De inktvis zal ophouden te zwemmen en zal niet actief inspelen op te raken. Vervolg ademhaling, aangegeven door beweging van de mantel, en Chromat activiteit moet nog worden genomen.
- Plaats inktvis met ventrale zijde naar boven op een standaard wax dissectie lade. Dompel het dier met FSW met 2% ethanol.
- Met behulp van een standaard 200 ul pipetpunten, trek de trechter en mantel tot de belangrijkste cefalische bloedvat gelegen tussen de twee ogen bloot te leggen.
- Met behulp van een steriele 1 ml spuit met 26,5-gauge naald, prik de cefalische bloedvat en trekt tussen 50-100 pi hemolymfe. Plaats de hemolymfe in een steriele 1,5 ml buis op ijs.
Opmerking: Als een dier zal dienen als een donor meerdere keren, slechts 10-20 ul hemolymfe te trekken op een gegeven moment. Ga terug het dier naar een normaal zeewater tank. Het dier zal doen herleven binnen de 30 minuten. - Vers verzameld hemocytes worden gewassen en opnieuw gesuspendeerd in 500 pi van de oplossing Squid Ringer s (S-Ringers, 530 mM NaCl, 10 mM KCl, 25 mM MgCl2, 10 mM CaCl 2 en 10 mM HEPES buffer, pH 7,5).
- Hemocyte concentraties worden bepaald door hemocytometer, en ongeveer 2.000 cellen worden toegevoegd aan chambered glas dekglaasjes, en mag om het glas houden gedurende 10 minuten bij kamertemperatuur. Bij deze dichtheid, de hemocytes vormen een uniform monolaag op het glaasje oppervlak.
- Te observeren bacteriële binding aan gastheer hemocytes, zijn hemocytes blootgesteld aan een fluorescent gelabelde bacteriestam zoals Vibrio fischeri ES114 en / of Vibrio harveyi B392, elk met een groen fluorescerend verslaggever. V. fischeri ES114 en V. harveyi B392 zijn gegroeid tot mid-log fase in een zeewater trypton media (SWT) bij 28 ° C in een rondschudapparaat. De optische dichtheid bij 600 nm is spectrofotometrisch gemeten om celdichtheid te bepalen. De bacteriën worden gepelleteerd door centrifugeren (5000 rpm gedurende 5 min), wordt het supernatant verwijderd en de pellet wordt geresuspendeerd in S-Ringers.
- 100.000 bacteriële cellen worden toegevoegd aan elke kamer goed, zodat er 50 bacteriën per hemocyte gemiddeld. De hemocyte / bacterie mengsels worden geïncubeerd in een oplossing S-Ringer s bij 25 ° C gedurende 1 uur, een tijd vastbesloten om het maximale niveau van binding opbrengst.
- Het cytoplasma van de hemocytes worden dan fluorescerend gekleurd met 0,005% CellTracker Orange (Invitrogen) en vervolgens gewassen in S-Ringers naar de cellen te visualiseren.
- Stained hemocytes met bijbehorende bacteriën worden bekeken door fluorescentie met behulp van een Zeiss Discovery V20 TL stereoscoop of een Leica SP2 spectraal laser confocale microscoop, en opgesomd over het gehele oppervlak van de dierlijke cel.
Representatieve resultaten
Omdat koppotigen hemolymfe bevat extracellulaire hemocyanine en niet hemoglobine, op oxygenatie, zal de hemolymfe donker blauw. Een gemiddelde van ~ 5000 hemocytes per il van hemolymfe zullen worden verkregen met behulp van deze methode. Na de naleving van de chambered dekglaasjes en fluorescerende kleuring, moet de hemocytes verschijnen helder fluorescent rood en amoeboid in vorm. Voor bacteriële hechting, V. fischeri zal slecht houden aan de hemocytes (1-2 bacteriële cellen per bloedcel), terwijl V. harveyi sterk zal hechten (10-15 bacteriële cellen per hemocyte).

Figuur 1. Adult Hawaiian bobtail squid Euprymna scolopes toont positie van cefalische bloedvat.

Figuur 2. Resultaten van hemocyte blootstelling aan Vibrio fischeri (A) en Vibrio harveyi (B). Rood, Cell Tracker Oranje, Groen, GFP-gemerkte bacteriën.