Tracking neutrofielen intraluminale Crawling, transendotheliale migratie en chemotaxis in weefsel door intravitale Video Microscopie

Samenvatting

Beschrijven we een protocol van helderveld intravitale microscopie voor het meten van dynamische neutrofiel-endotheliale cel interacties tijdens neutrofielen werving in reactie op de bron van een neutrofiel chemoattractant in vivo. Neutrofiele intraluminale kruipen, transendotheliale migratie en chemotaxis in de muis cremaster spierweefsel worden gevisualiseerd met een time-vervallen video fotografie en gevolgd met ImageJ.

Samenvatting

De aanwerving van circulerende leukocyten uit het bloed stroom naar het ontstoken weefsel is een cruciaal en complex proces van ontsteking ^1,2. In de postcapillaire venulen van ontstoken weefsel, leukocyten in eerste instantie ketting en rol op het luminale oppervlak van venular muur. Rolling leukocyten arrestatie op endotheel en ondergaan stevige adhesie in reactie op chemokine of andere chemoattractants op het venular oppervlak. Veel aanhanger leukocyten verplaatsen van de eerste plaats van hechting aan de junctionele extravasatie site in endotheel, een proces genaamd intraluminale kruipen ^3. Na kruipen, leukocyten bewegen over endotheel (transmigratie) en in extravasculaire weefsel migreren naar de bron van chemoattractant (chemotaxis) ^4. Intravitale microscopie is een krachtig hulpmiddel voor het visualiseren van leukocyten-endotheliale cel interacties in vivo en onthullende cellulaire en moleculaire mechanismen van leukocyten werving ^2,5. In dit rapport, bieden wij een uitgebreide beschrijving van het gebruik van helderveld microscopie intravitale te visualiseren en de gedetailleerde processen van neutrofielen rekrutering in de muis cremaster spier te bepalen in reactie op de gradiënt van een neutrofiel chemoattractant. Aan neutrofielen werving en selectie, een klein stukje van de agarose gel (~ 1 ^mm-3 formaat) met neutrofiel chemoaantrekkende MIP-2 (CXCL2, een CXC chemokine) of WKYMVm (Trp-Lys-Tyr-Val-D-Met, een synthetisch analoog te induceren van bacteriële peptide) wordt geplaatst op het spierweefsel grenzend aan de waargenomen postcapillaire venule. Met de tijd-vervallen video-fotografie en computer software ImageJ, neutrofielen intraluminale kruipen op endotheel, neutrofiel transendotheliale migratie en de migratie en chemotaxis in het weefsel worden gevisualiseerd en bijgehouden. Dit protocol maakt een betrouwbare en kwantitatieve analyse van een groot aantal neutrofielen werving parameters, zoals intraluminale kruipen snelheid, transmigratie tijd, onthechting tijd, migratie snelheid, chemotaxis snelheid en chemotaxis index in weefsel. We laten zien dat het gebruik van dit protocol, deze neutrofielen werving parameters kunnen stabiel worden bepaald en de single cell motoriek handig bijgehouden in vivo.

Protocol

1. Voorbereiding van de chemoattractant in agarosegel

1. Pipetteer 10 ml van 2 x PBS in een 50-mL conische buis, en opwarmen van de buis door het in een bekerglas met warm water.
2. Pipetteer 10 ml gedestilleerd water en 0,4 g agarose poeder in een andere 50-mL conische buis toe te voegen (met de dop iets los) en verwarm het mengsel tot net koken in een magnetron (voor ~ 1 min in een 700 watt magnetron) .
3. Voeg de verwarmde 2 × PBS om agarose oplossing buis, zwenk de gemengde oplossing en houd het warm in het hete water beker.
4. Micropipet chemoattractant oplossing (bv. 10 pi van 0,5 ug van CXC chemokine MIP-2 of 12 ul van 1 mM WKYMVm) in het deksel van een 1,5-ml Eppendorf buis met 3 pl Oost-Indische inkt en meng goed door aspiratie met behulp van een micropipet (vermijd luchtbel).
5. Snij het puntje einde van een 200-il pipet en micropipet 110 ul van agarose-oplossing (42 ° C) in de deksel en onmiddellijk goed mengen met een andere pipetpunt (vermijd luchtbel).
6. Bewaar de chemoattractant-bevattende gel bij +4 ° C.

2. Voorbereiding van de Cremaster Muscle voor intravitale Microscopy (figuur 1)

1. Verdoven een volwassen man muis door een ip injectie van een mengsel van 10 mg / kg xylazine en 200 mg / kg ketamine hydrochloride.
2. Scheer de ruimte boven juiste externe halsader en de voorste aspect van het scrotum met een elektrisch scheerapparaat. Na de anesthesie, is het belangrijk om speciale aandacht en zorg geven aan de verdoofde muis. Een warmtelamp kan worden gebruikt om de muis te voorkomen dat onderkoeling. De muis moet vrij zijn van pijn reflex.
3. Maak een horizontale snede, vinden en kateterizeren de halsader met behulp van een PE-10 buis gevuld met 100 U / mL heparine zoutoplossing. Catheterisatie van de halsader is nodig voor de toediening van extra anesthetica en drugs wanneer dat nodig is.
4. Fix muis achterpoten met de navelstreng tape met de muis ligt open op een home-made cremaster spier bord (figuur 1).
5. Sluit het bestuur om een ​​37 ° C water circulatiepomp om de cremaster spier en de muis het lichaam warm.

Let op: Alle procedures 2,6 tot 2,14 moeten zeer voorzichtig ⁵ worden uitgevoerd.

6. Maak een incisie in het scrotum huid aan de linkerkant cremaster spier bloot te leggen. Zorgvuldig ontleden de spier van de geassocieerde fascia.
7. Superfuse de cremaster spier met 37 ° C verwarmde bicarbonaat-gebufferde zoutoplossing (131,9 NaCl, KCl 4,7, 1,2 MgSO _4, 20 NaHCO _3, in mM, pH 7,4) met behulp van een peristaltische pomp.
8. Bind een 4-0 hechtdraad tot het distale uiteinde van de cremaster spier om het te houden naar beneden op de duidelijke kijkglas voetstuk van de cremaster spier bord.
9. Lengterichting cauterize de cremaster spier. Met 4-0 hechtdraad, houdt de spier vlak en zet het langs de randen op het voetstuk. Scheid de zaadbal en de bijbal van de onderliggende spier en zet ze in de buikholte.
10. Superfuse de spier op ~ 0,6 ml / min met de 37 ° C verwarmde perfusie buffer en de blootgestelde spier met een deksel 22 × 22 mm glas dekglaasje aan.
11. Plaats de cremaster spier raad van bestuur op de microscoop podium, onderzoekt de spier onder de microscoop, vinden van een geschikte postcapillaire venule (Selecteer de venule dat is recht en onvertakt en heeft een normale shear rate en een diameter in 25 tot 40 micrometer) en stel de videocamera om de venule te worden gevisualiseerd in een verticale positie op links of rechts van de tv-monitor.
12. Na 30 min evenwicht is, opnemen van de video beelden van de geselecteerde postcapillaire venule voor 5 min als baseline controle gegevens met behulp van een video-recorder.
13. Stop de superfusie en verwijder de dekglaasje op de spier.
14. Plaats een ~ 1-mm ³ grote chemoaantrekkende-bevattende gel op het oppervlak van de cremaster spier in een vooraf geselecteerd gebied 350 micrometer van en parallel aan de waargenomen postcapillaire venule, voeg dekglaasje aan de gel op zijn plaats houden en superfuse het spierweefsel op een zeer langzame snelheid (≤ 10 ul / min) tot de oprichting van een gradiënt van chemoattractant die langzaam wordt vrijgegeven en gevormd uit de gel toe te staan.
15. Opnemen van de video de afbeelding voor een 90 minuten na de toevoeging van de chemoattractant met gel. Tijdens het opnemen, aanpassen en houdt de microscoop focus op de hechtende, kruipen, transmigrating en chemotaxing leukocyten in de venule en in het spierweefsel.
16. Na het experiment, importeert u het videobestand naar een computer voor analyse.

3. Cel volgen met behulp van ImageJ

1. Op een computer, uitpakken en de video converteren naar AVI-formaat (bijvoorbeeld gratis gebruik maken van computersoftware bitRipper om DVD video te converteren naar AVI-bestand).
2. Gebruik video-editing software om de time-vervallen film te genereren. Gebruik bijvoorbeeld Windows Movie Maker om een ​​time-vervallen film (tot 1 / 512 of 1 / 1024 time-lapse maken eent 30-fps rate) van de oorspronkelijke, real-time video. Converteren en opslaan van de niet-gecomprimeerde tijd verstreken film naar DV-AVI-formaat.
3. De beelden van de kalibratie micrometer onder dezelfde microscoop instelling, afbeeldingen importeren naar de computer, opent u de beelden met ImageJ. In ImageJ, het totaal aantal pixels verschijnen op de linkerbovenhoek van het scherm (bijvoorbeeld 720 × 480 pixels). Meet de grootte van het scherm in zowel de X-en Y-assen (bv. 200 × 150 micrometer). Hieruit berekenen van het aantal pixels per um (bv. x = 720/200 = 3,6 pixels / um, en y = 480/150 = 3,2 pixels / pm).
4. Voor het importeren van de film, open ImageJ nogmaals, klikt u op "File-Import-Met behulp van Quicktime films Plug-in", selecteer de film te analyseren en klik op "OK" op het grensvlak van 'QT Movie Opener ".
5. Klik op "Plugins-Manual Tracking 'aan cellen te volgen. Vul de relevante informatie in de velden aan de onderkant voor aanvang tracking. In het kort,
   1. Tijdsinterval (in sec) = fold-time-lapse/30 (bijvoorbeeld een 1020 × time-lapse zou 1020/30 = 34 sec / frame interval zijn).
   2. x / y = kalibratie van de micrometer / pixel meting met behulp van de kalibratie van het beeld van de micrometer.
   3. z kalibratie = 0 (als de muis cremaster spier is een uiterst dun laagje van de weefsels en cellen kruipen en migratie zijn ongeveer 2D onder bright-field transilluminatie).
   4. Zoek vierkante formaat voor het centreren = 1.
   5. Puntgrootte / Line breedte / Lettergrootte: ze kunnen worden aangepast als dat nodig is.
6. Selecteer een stabiel en duidelijk punt als een referentiepunt. Dit referentiepunt kan een duidelijke en kleine structurele punt dat blijft ongewijzigd en stabiel gedurende het hele experiment te zijn. Klik op "Add Track" naar het referentiepunt van het eerste nummer tot het laatste frame en klik op "End Track". De gegevens worden weergegeven op de resultaten van tabel automatisch.
7. Track kruipen en het migreren van neutrofielen een voor een: klik op "Add Track" naar de cel van zijn verschijning in weefsel weg om haar verdwijning in elk frame en "End Track" te voltooien en de resultaten opslaan in Microsoft Excel te klikken.

4. Analyse van de neutrofielen Recruitment Parameters

1. Open het bestand resulteert in Microsoft Excel, en analyseren van de gegevens (neem de veranderingen van het referentiepunt in de analyse).
2. Intraluminale kruipen
   1. Kruipafstand: de totale afstand de cel kruipt in het lumen van de eerste aanhanger site om de optimale transmigratie site (pm).
   2. Crawling snelheid: kruipen afstand / tijd (um / min).
3. Transendotheliale migratie
   1. Transmigratie time: vanaf het moment dat de cel begint te over endotheel transmigreren aan de tijd dat de hele cellichaam ligt net buiten de venule en geen cel lichaam kan worden gezien in het lumen (min of sec).
   2. Detachment tijd: vanaf het moment dat de hele cel lichaam is net buiten de venule (direct na transmigratie) om het tijdstip wanneer de cel contact verliest met de venule (de staart trekt) (min of sec).
4. Chemotaxis in weefsel
   1. Migratie afstand: de som van de afstand de cel van het beginpunt wordt verplaatst naar het eindpunt van de migratie in het weefsel (pm).
   2. Snelheid van migratie: migratie afstand in weefsel / tijd (um / min).
   3. Chemotaxis afstand: de som van de afstand de cel migreert in de x-as in weefsel (pm).
   4. Snelheid van chemotaxis: chemotaxis afstand / tijd (um / min).
   5. Chemotaxis index: de verhouding van de verdeling van de chemotaxis afstand door de migratie afstand in het weefsel.

5. Representatieve resultaten:

Hoewel bightfield intravitale microscopie is gebruikt voor de studie van leukocyt-endotheliale cel interacties en niet noodzakelijk zijn voor neutrofielen, hebben we bevestigd dat, door onze histologie studies, meer dan 95% van de aangeworven cellen in neutrofielen chemoaantrekkende behandeld cremaster spieren inderdaad neutrofielen . In dit rapport, met behulp van neutrofiel-selectieve chemoattractants, presenteren we de procedures van het bijhouden van de rekrutering van neutrofielen in vivo. In het bijzonder beschrijven we een protocol van het bijhouden van neutrofielen intraluminale kruipen, transendotheliale migratie en chemotaxis in cremaster spierweefsel in verdoofde muizen met behulp van time-lapse video intravitale microscopie en ImageJ. De chemoaantrekkende-bevattende agarose gel op de cremaster spier releases langzaam chemoattractant en laat een chemoattractant gradiënt te zijn gevestigd in weefsel. Neutrofielen chemoaantrekkende induceert neutrofiel-endotheel cel interacties in cremasteric postcapillaire venulen in muizen. Het hele experiment is gevisualiseerd in een rechtopstaande helderveld intravitale microscoop met videobeelden geprojecteerd door een kleur video-camera op een tv-monitor en opgenomen door een video-recorder. We bepaalden de neutrofielenintraluminale kruipen, transendotheliale migratie en migratie en chemotaxis in spierweefsel in reactie op chemoaantrekkende MIP-2 neutrofiele en WKYMVm bereid in agarose gel (figuur 2). We vonden dat de MIP-2 (bij 0,5 uM) en WKYMVm (bij 0,1 mM) neutrofiel intraluminale kruipen ontlokte bij vergelijkbare snelheid, neutrofielen transendotheliale migratie en onthechting van de venule voor vergelijkbare lengte van de tijd, neutrofiel migratie en chemotaxis in spierweefsel op bijna de dezelfde snelheid en met dezelfde neutrofielen chemotaxis indexen (P> 0,05, Student t-test).

Figuur 1. De schematische illustratie van een intravitale microscoop systeem. De muis cremaster spier is exteriorized op de duidelijke weergave sokkel van cremaster spier pension op microscoop podium en superfused met 37 ° C verwarmde bicarbonaat-gebufferde zoutoplossing. De rechtopstaande microscoop is verbonden met een CCD-kleuren video camera voor helderveld intravitale microscopie. Een zwart-wit diepe gekoelde CCD digitale camera is ook verbonden met microscoop-poort voor fluorescentie microscopie intravitale, de beelden van die direct verwerkt door een computer.

Figuur 2. Neutrofielen werving parameters van helderveld intravitale microscopie. Neutrofielen rekrutering werd veroorzaakt door de geleidelijke afgifte van de neutrofielen chemoattractant MIP-2 of WKYMVm in de agarosegel voorbereiding geplaatst 350 micrometer grenzend aan de postcapillaire venule. Time-vervallen video gegevens werden geanalyseerd door ImageJ na verwerking van de real-time video-opname van het experiment. Neutrofielen intraluminale kruipen (A), transmigratie tijd en onthechting tijd (B), migratie snelheid en chemotaxis snelheid in weefsel (C), en chemotaxis index in cremaster spier (D) werden bepaald na de toediening van MIP-2 of WKYMVm agarose gel op cremaster spier in C57BL / 6 muizen (n = 3, # gevolgd van cellen = 22 (in A en B) en 27 (in C en D) voor respectievelijk MIP-2, en = 26 (in A en B) en 44 ( in C en D) voor respectievelijk WKYMVm).

Discussie

Intravitale microscopie is een belangrijk gereedschap voor het openbaren van de cellulaire en moleculaire mechanismen van leukocyten werving tijdens de ontsteking. Kwantitatieve visualisatie voor de bepaling van leukocyten-endotheliale cel interacties in microvasculatuur van doorschijnend weefsels zoals cremaster spier-en mesenterium blijft de gouden standaard voor de toepassing van de techniek ^1,5. De conventionele helderveld microscopie intravitale heeft vele unieke technische eigenschappen en de werving me...

Materialen

Naam van het reagens / apparatuur	Vennootschap	Catalogus nummer	Reacties
Polyethyleen buizen, PE10	Becton Dickinson	427401	ID 0,28 mm × OD 0.61mm
Oost-Indische inkt	Speedball Art	Super Black	100% carbon black pigment-no kleurstoffen
Brandijzer	Aaron Medische	AA03
Xylazine	Bayer HealthCare, Bayer Inc	DIN 02169592
Ketamine hydrochloride	Bioniche Animal Health Canada, Inc	DIN 01989529
Muizen recombinant MIP-2	R & D Systems	452-M2
WKYMVm	Phoenix Pharmaceuticals, Inc	072-12
Agarose	Invitrogen	15510-027	Ultrapuur
Heparine	Sigma	H-3.393
Rechtop microscoop	Olympus	BX61WI
3CCD kleuren video camera	SONY	DXC-990
HD-DVD-videorecorder	LG Electronics Inc	RH398H-M
TV monitor	LG Electronics Inc	22LG30
Water circulator	Thermo Scientific	Haake DC10
Slangenpomp	Gilson; Pharmacia	Gilson MINIPULS 3; Pharmacia P-3
Cremaster spier board	Universiteit van Saskatchewan		Huisgemaakte