Methodenartikel

Gebruik van Afbeelding Cytometry voor kwantificering van pathogene schimmels in associatie met gastheercellen

DOI:

10.3791/50599

⸱

19 juni 2013

 ,  ,  , 
1Department of Biology, Merrimack College, 2Center for Biotechnology and Biomedical Sciences, Merrimack College, 3Department of Technology R&D, Nexcelom Bioscience LLC

In dit artikel

Samenvatting

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Hier laten we zien hoe beeldcytometrie kan worden gebruikt voor kwantificering van pathogene schimmels in samenhang met gastheercellen in kweek. Deze techniek kan worden gebruikt als alternatief voor CFU opsomming.

Samenvatting

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Studies van de cellulaire mechanismen van de pathogenese van pathogene gisten zoals Candida albicans, Histoplasma capsulatum, en Cryptococcus neoformans algemeen gebruik infectie van zoogdierlijke gastheren of gastheercellen (bijvoorbeeld macrofagen), gevolgd door gist kwantificering middels kolonievormende eenheid analyse of flowcytometrie. Terwijl kolonievormende eenheid opsomming is de meest gebruikte methode op het, deze techniek heeft nadelen en beperkingen, waaronder trage groei van sommige schimmelsoorten op vaste media en lage en / of variabele plating efficiëntie, hetgeen vooral van belang bij het vergelijken van de groei van wild-type en mutante stammen. Flowcytometrie kan snelle kwantitatieve informatie over de levensvatbaarheid van gist te voorzien, echter de goedkeuring van flowcytometrische detectie van pathogene gisten is beperkt tot een aantal praktische redenen, waaronder de hoge kosten en bioveiligheid overwegingen. Hier laten we zien een beeld-gebaseerdecytometrische methode met behulp van de Cellometer Vision (Nexcelom Bioscience, LLC) voor de kwantificering van levensvatbare pathogene gisten in co-cultuur met macrofagen. Onze studies richten zich op de opsporing van twee menselijke pathogene schimmels: Histoplasma capsulatum en Candida albicans H.. capsulatum koloniseert alveolaire macrofagen door repliceren binnen de macrofaag phagosome, en hier, we kwantitatief de groei van H. te beoordelen capsulatum gisten in RAW 264,7 macrofagen met acridine oranje / propidiumjodide kleuring in combinatie met beeldcytometrie. Onze methode trouw recapituleert groei trends zoals gemeten volgens de traditionele kolonievormende eenheid opsomming, maar met aanzienlijk verhoogde gevoeligheid. Daarnaast hebben we direct beoordelen infectie van levende macrofagen met een GFP-expressie stam van C. albicans. Onze methodologie biedt een snelle, accurate en economische middelen voor detectie en kwantificering van belangrijke menselijke schimmels in associatie with gastheercellen.

Inleiding

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Studies van pathogene schimmels in samenwerking met hun gastheren en / of gastheercellen vereisen vaak kwantificering van levensvatbare schimmels cellen over een tijdsverloop of onder verschillende omstandigheden infectie. Bepalen van kolonie vormende eenheden (CFU) is de standaard methode waarbij het aantal levensvatbare schimmelcellen is gemeten, maar deze techniek heeft een aantal nadelen en beperkingen. Ten eerste, veel schimmelsoorten groeien langzaam. Groei van zichtbare kolonies op vaste media kan 1-2 weken duren, aanzienlijk vertragen van het tempo van het onderzoek. Tweede, manipulatie van monsters tijdens CFU plating is een moeizaam proces, aangezien verschillende verdunningen moeten worden uitgeplaat op een aftelbaar aantal kolonies garanderen. Ten derde, het aantal CFU doorgaans lager is dan het aantal levensvatbare organismen uitgeplaat omdat de plating efficiëntie ruim onder 100%. Bijvoorbeeld kan plateren efficiëntie voor de dimorfe schimmel pathogeen Histoplasma capsulatum oplopen tot 90%, maar gewoonlijk zo laag als30% en zelfs lager (10%) voor de verbonden schimmel dimorph Paracoccidioides brasiliensis 1, 2. Plating efficiency voor Candida albicans is ook onderhevig aan variabiliteit 3. Tenslotte CFU analyse slechts verantwoordelijk voor levende en actief delende cellen kunnen vormen van de groei op vaste media, terwijl in veel situaties, zou het nuttig zijn om de aanwezigheid en concentratie van dode en / of metabolisch inactieve cellen te bepalen.

Eerder heeft flowcytometrische werkwijzen voor kwantificering van verscheidene pathogène schimmelsoorten beschreven 4-6. Echter, vanwege de bioveiligheid insluiting kwesties die met behulp van bioveiligheidsniveau 2 (BSL2) of BSL3-niveau ziekteverwekkers op gedeelde flowcytometers, goedkeuring van deze techniek is beperkt. Zoals flowcytometrie, beeldcytometrie is een gevoelige en snelle methode van cel kwantificering. Echter, beeldcytometrie worden uitgevoerd bij een fractie van de kosten met vergelijkbare resultaten 7 -11. We beschrijven hier werkwijzen voor het uitvoeren beeldcytometrie van pathogene schimmels in samenhang met gastheercellen. We tonen onze methoden met behulp van twee menselijke pathogene schimmels: Histoplasma capsulatum en Candida albicans H.. capsulatum is een dimorphic schimmelziekteverwekker dat respiratoire aandoeningen veroorzaakt, bij de mens, het groeit als gist en repliceert binnen alveolaire macrofagen Candida albicans is een humane commensale soorten die soms veroorzaakt candidiasis.. We laten zien dat beeldcytometrie maakt een snelle kwantificering van deze gisten, samen met visualisatie mogelijkheden.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Protocol

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Infectie van macrofagen met H. capsulatum, C. albicans

  1. 16 uur voorafgaand aan infectie, zaad macrofagen op gewenste dichtheid in 24-well platen. In dit protocol werd een dichtheid van 3,0 x 10 5 cellen / putje gebruikt.
  2. Voeg schimmelcellen in log-fase groei op een gewenste multipliciteit van infectie (MOI). Dit protocol is geschikt voor een scala van MOI (0,2-5,0). Voor de infectie van RAW264.7 macrofagen met H. capsulatum, gebruikten we een MOI van 0,2.
  3. Na 1,5 uur om voor fagocytose, macrofagen driemaal wassen met PBS om extracellulaire schimmels verwijderen.
  4. Incubeer gewenste aantal uren voorafgaand aan de analyse van het monster. Bij lage MOI (0.2 in ons experiment), geïnfecteerde macrofaag cellen levensvatbaar blijven voor meerdere dagen, en monsters kunnen worden geanalyseerd ongeveer elke 12-24 uur.

2. Macrofaag Lysis

  1. Tegen schimmels uit macrofaagcellen bevrijden, verwijder media, was 3 keer met PBS, envoeg 0,5 ml steriel water. Onder deze omstandigheden zal macrofagen lyseren en schimmelcellen blijven intact.
  2. Incubeer gedurende 5 minuten bij kamertemperatuur.
  3. Overdragen lysate tot steriele buis, houd op ijs.
  4. Breng 20 pl lysaat naar een afzonderlijke buis en voeg 20 ul AO / PI oplossing. Ga dan naar stap 5: "Monstervoorbereiding voor Beeld cytometrische analyse"

3. CFU Plating

  1. Voer tienvoudige verdunning van lysaten (uit stap 2.3) in de media.
  2. Plaat 100 ul van elke verdunning, in tweevoud, op HMM-agarose platen. Incubeer de platen in een bevochtigde kamer bij 37 ° C met 5% CO2 voor 7-8 dagen.
  3. Handmatig tellen kolonies op platen tonen minimaal 100 en maximaal 1000 verschillende kolonies.

4. Visualisatie van Schimmels binnen Levende Macrofagen

  1. Om levende macrofagen verzamelen, wassen cellen 3 maal met PBS. Voeg 0,5 ml PBS en incubeer gedurende 30 minuten bij 4 ° C.
  2. Om macrofagen uit weefselkweek putten te verwijderen, voorzichtig pipet op en neer meerdere malen. Vloeistof overbrengen in steriele buis, houd op ijs.
  3. Breng 20 ul monster op een aparte buis, voeg 20 ul AO / PI-oplossing. Ga dan naar stap 5: "Monstervoorbereiding voor Beeld cytometrische analyse".

5. Monstervoorbereiding voor Beeld cytometrieanalyse

  1. Pipetteer de doelmonster grondig en vervolgens de overdracht 20 ul van het monster in de wegwerp cel telkamer.
  2. Laat de cellen om zich te vestigen in de kamer voor 30 sec.
  3. Steek telkamer in de afbeelding cytometer.

6. Cellometer Instrument-setup

  1. Plaats de Fluorescentie Optics Modules: VB-535-402-en VB-660-502 in het systeem en zorg ervoor dat ze zijn opgesloten in zijn plaats.
    1. VB-535-402 (excitatie bij 475 nm, emissie bij 535 nm) wordt gebruikt voor acridine oranje en GFP detectie.
    2. VB-660-502 (excitatiop bij 540 nm, emissie bij 660 nm) wordt gebruikt voor propidium iodide detectie.
  2. Zet de afbeelding cytometer en open de bijbehorende software.

7. Cellometer software-installatie

  1. Selecteer de preset "Assay Type 'en' Cell Type" in de Assay Dropdown Menu.
    1. Voor levensvatbaarheid, wordt de test geoptimaliseerd voor acridine oranje en propidiumjodide detectie.
    2. Voor detectie van Candida albicans-infectie wordt de assay geoptimaliseerd voor GFP detectie.
  2. Selecteer "Opties" op de bovenkant en klik op "Take achtergrondafbeelding", en laat de operatie te voltooien.
  3. Klik op "Preview Bright-Field Schilderij".

8. Image Acquisition Procedure

  1. Plaats de voorbereide monsterkamer in de afbeelding cytometer.
  2. Gebruik de scherpstelknop en scherp.
  3. Eenmaal in focus, klik op "Graaf", en laat het beeld overname operatie te voltooien.
  4. Remove de wegwerp telkamer en bergen.

9. Image Data Analysis

  1. Concentratie en meting levensvatbaarheid
    1. Zodra het tellen is voltooid, worden de concentratie en levensvatbaarheid van de doelcellen weergegeven in de resultaten pagina.
    2. Klik op "Exporteren" om de gegevens te exporteren naar FCS Express 4 voor celpopulatie analyse van GFP in de Candida albicans infectie experiment.
  2. FCS Express analyse van Candida albicans-geïnfecteerde cellen
    1. Importeer de "NXDAT." Bestand in FCS Express 4 en plot de resultaten in een fluorescentie histogram.
    2. Solliciteer celpopulatie poort naar het histogram aan de bevolking percentages van Candida albicans-geïnfecteerde cellen te bepalen.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Resultaten

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

We gebruikten de Cellometer Vision afbeelding cytometer om de groei te volgen van H. capsulatum in macrofaagcellen. RAW 264.7 cellen werden geïnfecteerd met H. capsulatum gistcellen en op verschillende tijdstippen werden monsters onderworpen aan AO / PI kleuring gevolgd door image-based cytometrische analyse. Daarnaast werden monsters geanalyseerd door traditionele CFU opsomming. Op elk tijdstip werden monsters geïncubeerd in water om macrofagen te lyseren en de bevrijde gistcellen werden geïdentificee...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Discussie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Beeldcytometrie kan de gebruiker hoge kwaliteit beelden vast te leggen en, met behulp van gespecialiseerde software voert snelle kwantificering van cellen. Een mogelijke uitdaging voor de vaststelling van beeldcytometrie op het gebied van microbiële pathogenese is dat de microben te tellen aanwezig in een gemengde populatie van cellen, waaronder zoogdierlijke gastheercellen. Hier tonen wij dat beeldcytometrie kan worden gebruikt voor de kwantificering van levensvatbare pathogène gist in macrofagen in vitro infe...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Openbaarmakingen

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

De auteurs Leo Li-Ying Chan en Benjamin Paradis zijn medewerkers van Nexcelom Bioscience LLC.

Materialen

Lijst van materialen gebruikt in dit artikel
NaamBedrijfCatalogusnummerOpmerkingen
REAGENTS
DMEMLife Technologies11965-084
Fetal Bovine SerumLife Technologies16000044
AO/PI SolutionNexcelom BioscienceCSK-0102
Disposable Counting ChamberNexcelom BioscienceCHT4-SD100
EQUIPMENT
Cellometer VisionNexcelom Bioscience
Cellometer Vision SoftwareNexcelom Bioscience

Referenties

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Worsham, P. L., Goldman, W. E. Quantitative plating of Histoplasma capsulatum without addition of conditioned medium or siderophores. J. Med. Vet. Mycol. 26, 137-143 (1988).
  2. Goihman-Yahr, M., Pine, L., Albornoz, M. C., Yarzabal, L., de Gomez, M. H., San Martin, B., Ocanto, A., Molina, T., Convit, J. Studies on plating efficiency and estimation of viability of suspensions of Paracoccidioides brasiliensis yeast cells. Mycopathologia. 71, 73-83 (1980).
  3. Bhatti, M. A., Hjertstedt, J., Hahn, B. L., Sohnle, P. G. Inefficient delivery of yeast cells as an explanation for reduced plating efficiency of Candida albicans. Med. Mycol. 40, 465-469 (2002).
  4. Chang, W. L., vander Heyde, H. C., Klein, B. S. Flow cytometric quantitation of yeast: a novel technique for use in animal model work and in vitro immunologic assays. Journal of Immunological Methods. 211, 51-63 (1998).
  5. Green, L., Petersen, B., Steimel, L., Haeber, P., Current, W. Rapid determination of antifungal activity by flow cytometry. Journal of Clinical Microbiology. 32, 1088-1091 (1994).
  6. Kirk, S. M., Callister, S. M., Lim, L. C., Schell, R. F. Rapid susceptibility testing of Candida albicans by flow cytometry. Journal of Clinical Microbiology. 35, 358-363 (1997).
  7. Chan, L. L. -Y., Lai, N., Wang, E., Smith, T., Yang, X., Lin, B. A rapid detection method for apoptosis and necrosis measurement using the Cellometer imaging cytometry. Apoptosis. 16, 1295-1303 (2011).
  8. Chan, L. L. -Y., Shen, D., Wilkinson, A. R., Patton, W., Lai, N., Chan, E., Kuksin, D., Lin, B., Qiu, J. A novel image-based cytometry method for autophagy detection in living cells. Autophagy. 8, 1371-1382 (2012).
  9. Chan, L. L., Wilkinson, A. R., Paradis, B. D., Lai, N. Rapid Image-based Cytometry for Comparison of Fluorescent Viability Staining Methods. Journal of Fluorescence. 22, 1301-1311 (2012).
  10. Chan, L. L., Zhong, X., Pirani, A., Lin, B. A novel method for kinetic measurements of rare cell proliferation using Cellometer image-based cytometry. J. Immunol. Methods. 377, 8-14 (2012).
  11. Chan, L. L., Zhong, X., Qiu, J., Li, P. Y., Lin, B. Cellometer Vision as an alternative to flow cytometry for cell cycle analysis, mitochondrial potential, and immunophenotyping. Cytom. Part A. 79, 507-517 (2011).
  12. Hull, C. M., Johnson, A. D. Identification of a mating type-like locus in the asexual pathogenic yeast Candida albicans. Science. 285, 1271-1275 (1999).
  13. Berkes, C. A., Chan, L. L., Wilkinson, A., Paradis, B. Rapid Quantification of Pathogenic Fungi by Cellometer Image-Based Cytometry. J. Micro. Meth. 91, 468-476 (2012).
  14. Nguyen, V. Q., Sil, A. Temperature-induced switch to the pathogenic yeast form of Histoplasma capsulatum requires Ryp1, a conserved transcriptional regulator. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 105 (12), 4880-4885 (2008).
  15. Wenisch, C., Linnau, K. F., Parschalk, B., Zedtwitz-Liebenstein, K., Georgopoulos, A. Rapid susceptibility testing of fungi by flow cytometry using vital staining. Journal of Clinical Microbiology. 35, 5-10 (1997).

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Herprints en machtigingen

Toestemming aanvragen om de tekst of afbeeldingen van dit JoVE-artikel te hergebruiken

Toestemming aanvragen

Trefwoorden

GistkwantificatieKolonievormende EenhedenFlowcytometrieAcridine Oranje PropidiumjodideGFP expressieMacrofaaginfectieSchimmellevensvatbaarheid

Gerelateerde artikelen