Methodenartikel

Functionele Beeldvorming van de auditieve cortex in volwassen katten met behulp van High-field fMRI

DOI:

10.3791/50872

⸱

19 februari 2014

 ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Physiology and Pharmacology, University of Western Ontario, 2Department of Psychology, University of Western Ontario, 3Department of Medical Biophysics, University of Western Ontario, 4Brain and Mind Institute, University of Western Ontario, 5Centre for Functional and Metabolic Mapping, Robarts Research Institute, University of Western Ontario, 6Cerebral Systems Laboratory, University of Western Ontario, 7National Centre for Audiology, University of Western Ontario

In dit artikel

Samenvatting

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Functionele studies van het gehoorsysteem bij zoogdieren zijn traditioneel uitgevoerd met behulp van ruimtelijk gerichte technieken zoals elektrofysiologische opnames. Het volgende protocol beschrijft een methode voor het visualiseren van grootschalige patronen van geïnduceerde hemodynamische activiteit in de gehoorschors van katten met behulp van functionele magnetische resonantie beeldvorming.

Samenvatting

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

De huidige kennis van sensorische verwerking in het auditief systeem van zoogdieren is voornamelijk afkomstig van elektrofysiologische studies in verschillende diermodellen, zoals apen, fretten, knuppels, knaagdieren en katten. Om geschikte parallellen tussen menselijke en dierlijke modellen van gehoorfunctie trekken, is het belangrijk om een ​​brug tussen menselijke functionele beeldvorming studies en dierlijke elektrofysiologische studies stellen. Functionele magnetische resonantie imaging (fMRI) is een gevestigde, minimaal invasieve methode voor het meten brede patronen van hemodynamische activiteit in verschillende gebieden van de cerebrale cortex. Deze techniek wordt veel gebruikt voor sensorische functie in het menselijk brein sonde is een nuttig instrument koppelen studies auditieve verwerking bij mens en dier en is met succes gebruikt om gehoorfunctie bij apen en knaagdieren onderzoeken. Het volgende protocol beschrijft een experimentele procedure voor het onderzoeken van auditieve functie in verdoofde volwassenkatten door het meten-stimulus opgeroepen hemodynamische veranderingen in de auditieve cortex met behulp van fMRI. Deze methode maakt vergelijking van de hemodynamische responsen in verschillende modellen gehoorfunctie hetgeen leidt tot een beter begrip van species-onafhankelijke eigenschappen van de zoogdieren auditieve cortex.

Inleiding

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

De huidige kennis over auditieve verwerking bij zoogdieren is voornamelijk afgeleid van invasieve elektrofysiologische onderzoeken bij apen1-5, fretten6-10, vleermuizen11-14, knaagdieren15-19 en katten20-24. Elektrofysiologische technieken gebruiken vaak extracellulaire micro-elektroden om de activiteit van enkele en meerdere neuronen binnen een klein gebied van zenuwweefsel rond de elektrodetip op te nemen. Gevestigde functionele beeldvormingsmethoden, zoals optische beeldvorming en functionele magnetische resonantiebeeldvorming (fMRI), dienen als nuttige aanvulling op extracellulaire opnamen door een macroschoppisch perspectief te bieden van gelijktijdige aangedreven activiteit over meerdere, ruimtelijk verschillende hersengebieden. Optische beeldvorming van intrinsieke signalen vergemakkelijkt de visualisatie van geëvokeerd activiteit in de hersenen door activiteitsgerelateerde veranderingen in de reflectie-eigenschappen van het oppervlakteweefsel te meten, terwijl fMRI de bloed-zuurstofniveau-afhankelijke (BOLD) contrast gebruikt om door stimulus geëvokte hemodynamische veranderingen in hersengebieden te meten die actief zijn tijdens een specifieke taak. Optische beeldvorming vereist directe blootstelling van het corticale oppervlak om veranderingen in oppervlakteweefselreflectie te meten die gerelateerd zijn aan door stimulus geëvokeerd activiteit25. In vergelijking is fMRI niet-invasief en maakt gebruik van de paramagnetische eigenschappen van gedeoxygeneerd bloed om zowel corticale oppervlakte26-28 als sulcus-gebaseerde27,29 geëvokeerd activiteit binnen een intacte schedel te meten. Sterke correlaties tussen het BOLD-signaal en neuronale activiteit in de visuele cortex van niet-menselijke primaten30 en in de menselijke auditieve cortex31 valideren fMRI als een nuttig hulpmiddel om sensorische functie te bestuderen. Aangezien fMRI uitgebreid is gebruikt om kenmerken van de auditieve route te bestuderen, zoals tonotopische organisatie32-36, lateralisatie van auditieve functie37, patronen van corticale activering, identificatie van corticale gebieden38, effecten van geluidsintensiteit op auditieve responseigenschappen39,40 en kenmerken van de tijdsverloop van het BOLD-respons29,41 bij menselijke, aap- en ratmodellen, zou de ontwikkeling van een geschikt functioneel beeldvormingsprotocol om auditieve functie bij de kat te bestuderen, een nuttige aanvulling zijn op de functionele beeldvormingsliteratuur. Hoewel fMRI ook is gebruikt om verschillende functionele aspecten van de visuele cortex bij de anesthetische kat te onderzoeken26-28,42, zijn er weinig studies die deze techniek hebben gebruikt om sensorische verwerking in de auditieve cortex van de kat te onderzoeken. Het doel van het huidige protocol is om een effectieve methode te ontwikkelen om fMRI te gebruiken om functie in de auditieve cortex van de anesthetische kat te kwantificeren. De experimentele procedures die in dit manuscript zijn geschetst, zijn met succes gebruikt om de kenmerken van de tijdsverloop van het BOLD-respons in de auditieve cortex van de volwassen kat te beschrijven43.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Protocol

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

De volgende procedure kan worden toegepast op elk beeldvormingsexperiment waarbij geanesthetiseerde katten worden gebruikt. Stappen die specifiek vereist zijn voor auditieve experimenten (stappen 1.1-1.7, 2.8, 4.1) kunnen worden aangepast om andere sensorische stimulusprotocollen te accommoderen.

Alle experimentele procedures kregen goedkeuring van de Animal Use Subcommittee van de University Council on Animal Care aan de University of Western Ontario en volgden de richtlijnen gespecificeerd door de Canadian Council on Animal Care (CCAC)44. Het beschreven experiment vereist ongeveer 150 minuten vanaf de voorbereiding van het dier tot herstel. De tijdsverloop van het experiment wordt geïllustreerd in Figuur 1.

1. Voorbereiding van stimulatieapparatuur

Figuur 2 toont de elektronische componenten en bijbehorende verbindingen die vereist zijn voor het genereren van een auditieve stimulus in de MRI-scanner. De vereisten zijn als volgt: een computer, een externe geluidskaart, een stereo versterker en een fMRI-compatibel oortelefoonsysteem.

  1. Verbind de computer die zal worden gebruikt om de auditieve stimulus te presenteren met de externe geluidskaart via de Universal Serial Bus (USB) kabel.
  2. Bevestig de kabels die de uitgangspoorten van de externe geluidskaart verbinden met de ingangspoorten van de stereo versterker.
  3. Bevestig de kabels die de uitgangspoorten van de stereo versterker verbinden met de ingangspoorten van de transformatordoos van het fMRI-compatibel oortelefoonsysteem.
  4. Verbind de binaural oortelefoons met de uitgangspoorten van de transformatordoos.
  5. Gebruik afgeschermde coaxiale kabels met BNC-verbindingen om de transformatordoos te verbinden met het penetratiepaneel buiten de scannerruimte.
  6. Verbind de oortelefoonkabelassemblage met de overeenkomstige BNC-poorten op het penetratiepaneel in de scannerruimte.
  7. Verbind de schuimrubberen oortips met de oortelefoons en verbind vervolgens de oortelefoons met de kabelassemblage. Voer een testauditieve stimulus uit om te bevestigen dat het geluid van de computer naar de oortelefoons wordt overgedragen. Ontkoppel de oortelefoons en plaats de schuimrubberen oortips stevig in de oren van de kat tijdens de voorbereidingsfase van het dier (stap 2.7).

2. Diervoorbereiding

  1. Om de kat voor te mediceren, dient u een kalmeringsmixtuur van atropinesulfaat (0,02 mg/kg) en acepromazijn (0,02 mg/kg) toe te dienen via een subcutane (SC) injectie.
  2. Na 20 minuten, dient u ketamine (4 mg/kg) en dexmedetomidinehydrochloride (0,02-0,03 mg/kg) toe te dienen via een intramusculaire (IM) injectie om anesthesie te induceren. Ketamine wordt meestal gecombineerd met een kalmeringsmiddel en spierverslappers, in dit geval dexmedetomidinehydrochloride, om de trillingen en spierstijfheid die gewoonlijk worden waargenomen wanneer ketamine alleen wordt gebruikt, te verminderen45. Deze anesthesiecombinatie induceert typisch ongeveer 150 minuten sedatie en wordt vaak gebruikt in de veterinaire praktijk om anesthesie te induceren bij kleine dieren.
  3. Zodra de kat zijn rechterreflex heeft verloren, breng ooglijfolie aan op de ogen om uitdroging tijdens de procedure te voorkomen. Plaats een indwellende katheter in de mediale safenusvene voor intraveneuze toediening van ketamine.
  4. Test op succesvolle anesthesie-inductie door een teen op de voorpoot te knijpen en vervolgens waar te nemen of de kat zijn poot terugtrekt. Zodra de pedaalreflex verdwijnt, onderdrukt u de gagreflex door lidocaine op de faryngeale wanden te spuiten en vervolgens de kat te intuberen met een 4,0-4,5 endotracheale buis.
  5. Handhaaf anesthesie gedurende de beeldvormingssessie met een constante infuussnelheid van ketamine (0,6-0,75 mg/kg/uur) en geïnhaleerd isofluraan (0,4-0,5%) geleverd in 100% zuurstof bij 1-1,5 L/min. Combineer 60 ml saline en 0,07 ml ketamine in een 60 ml-spuit en plaats de spuit in de spuitpomp. Deze stap kan worden uitgevoerd voordat de kat wordt voorbehandeld.
  6. Plaats warme met was gevulde verwarmingskussen op de vloer van de MRI-compatibele slede (Figuur 3a en 3c) en plaats vervolgens de isolerende kunststof bubble wrap rond de binnenwanden van de slede.
  7. Plaats de kat in een sternale positie binnen de isolerende bubble wrap in de MRI-compatibele slede (Figuur 3c).
  8. Zodra de kat is gepositioneerd, past u het hoofd aan om toegang tot de oren te krijgen. Rol de schuimrubberen oortips tot de kleinst mogelijke diameter en steek elke oortip diep in de gehoorgang. Eenmaal ingevoegd, moeten de schuimrubberen oortips uitzetten om de ruimte in de gehoorgangen te vullen.
  9. Pas de kat aan tot zijn hoofd goed is gepositioneerd binnen de 3-kanaals radiofrequentie (RF) spoel (Figuur 3b). Stabiliseer het hoofd met akoestisch dempingsgeheugenschuim (Figuur 3d). Plaats schuim rond de oren om extra demping van het scannergeluid te bieden.
  10. Wikel de kat in de deken van isolerende kunststof bubble wrap en bevestig en vervoer de slede naar het scannerbed.
  11. Verbind de infuuslijnen, anesthesietoedieningsbuizen en bewakingsapparatuur met de kat. Verbind de oortelefoons met de oortelefoonkabelassemblage die is bevestigd aan het penetratiepaneel.
  12. Start de ketamine-infusie bij de basisstroomsnelheid van 0,6 mg/kg/uur en verhoog de stroomsnelheid indien nodig op basis van de diepte van de anesthesie. Stel de initiële dosis isofluraan in op 0,5% en verlaag deze tot 0,4% zodra de anatomische scans zijn verzameld.
  13. Bewaak en registreer de zuurstofverzadiging in het bloed, de eind-expiratoire CO2-niveaus, de hart

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Resultaten

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Representatieve functionele gegevens werden verkregen in een 7T horizontale boorscanner en geanalyseerd met behulp van de Statistical Parametric Mapping-toolbox in MATLAB. Robuuste corticale hemodynamische reacties op auditieve stimulatie zijn consequent waargenomen bij katten met behulp van het beschreven experimentele protocol43. Figuur 6 illustreert de BOLD-activering bij 2 dieren in reactie op een 30 sec breedband ruisstimulus gepresenteerd in een blok ontwerp. T-statistiekkaarten van de b...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Discussie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bij het ontwerpen van een fMRI-experiment voor een anesthetisch diermodel van auditieve functie, moeten de volgende kwesties zorgvuldig worden overwogen: (i) de impact van anesthesie op corticale reacties, (ii) het effect van achtergrondscannerruis, en (iii) de optimalisatie van de gegevensverzamelingsfase van de experimentele procedure.

Hoewel een anesthetische voorbereiding het belangrijke voordeel biedt van het produceren van een langdurige periode van sedatie en het minimaliseren van mogel...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Openbaarmakingen

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

De auteurs verklaren geen belangenconflicten, financieel of anderszins.

Dankbetuigingen

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

De auteurs willen de bijdragen van Kyle Gilbert, die de aangepaste RF-spoel ontwierp, en Kevin Barker, die de MRI-compatibele slee ontwierp, graag erkennen. Dit werk werd ondersteund door de Canadian Institutes of Health Research (CIHR), Natural Sciences and Engineering Research Council of Canada (NSERC) en Canada Foundation for Innovation (CFI).

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Materialen

Lijst van materialen gebruikt in dit artikel
NaamBedrijfCatalogusnummerOpmerkingen
Materialen
Atropine sulfaat injectie 0,5 mg/mlRafter 8 Producten
Acepromazine 5 mg/mlVetoquinol Inc.
Ketamine hydrochloride 100 mg/mlBimeda-MTC
Dexmedetomidine hydrochloride (Dexdomitor 0,5 mg/ml)Orion Pharma
Isofluraan 99,9%Abbott Laboratories
Lidocaine (Xylocaine endotracheal 10 mg/gemeten dosis)Astra Zeneca
Smerende oogzalf (Refresh Lacri Lube)Allergan Inc.
Sterilisatie 0,95%
IV-katheter 22 g (met vleugels)
IV-verlengsetCodan US Corp.BC 269
IV-administratieset 10 druppels/ml
Endotracheale buis 4,0
Verwarmingskussens (Snuggle Safe)Lenric C21 Ltd.
Spuit 60 ml
Apparatuur
Externe geluidskaartRoland CorporationCakewalk UA-25EX
Stereo versterkerPyle Audio Inc.Pyle Pro PCAU11
MRI-compatibel insteek oortelefoon systeemSensimetric CorporationModel S14
Schuim oordopjes voor insteek oortellenfoonsE-A-R Auditory SystemsEarlink 3B
Eind-expiratoire CO2 monitorNellcorN-85
MRI-compatibele pulsoximeterNonin Medical Inc.Model 7500
SpuitpompHarvard Apparatus70-2208

Referenties

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Kaas, J. H., Hackett, T. A. Subdivisions of auditory cortex and processing streams in primates. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 97, 11793-11799 (2000).
  2. Kusmierek, P., Rauschecker, J. P. Functional Specialization of Medial Auditory Belt Cortex inthe Alert Rhesus Monkey. J. Neurophysiol. 102, 1606-1622 (2009).
  3. Recanzone, G. H., Guard, D. C., Phan, M. L. Frequency and Intensity Response Properties of Single Neurons in the Auditory Cortex of the Behaving Macaque Monkey. J. Neurophysiol. 83, 2315-2331 (2000).
  4. Godey, B., Atencio, C. A., Bonham, B. H., Schreiner, C. E., Cheung, S. W. Functional organization of squirrel monkey primary auditory cortex: Responses to frequency-modulation sweeps. J. Neurophysiol. 94, 1299-1311 (2005).
  5. Tian, B., Rauschecker, J. P. Processing of frequency-modulated sounds in the lateral auditory belt cortex of the rhesus monkey. J. Neurophysiol. 92, 2993-3013 (2004).
  6. Mrsic-Flogel, T. D., Versnel, H., King, A. J. Development of contralateral and ipsilateral frequency representations in ferret primary auditory cortex. Eur. J. Neurosci. 23, 780-792 (2006).
  7. Elhilali, M., Fritz, J. B., Chi, T. -S., Shamma, S. A. Auditory Cortical Receptive Fields: Stable Entities with Plastic Abilities. J. Neurosci. 27, 10372-10382 (2007).
  8. Shamma, S. A., Fleshman, J. W., Wiser, P. R., Versnel, H. Organization of Response Areas in Ferret Primary Auditory Cortex. J. Neurophysiol. 69, 367-383 (1993).
  9. Kowalski, N., Versnel, H., Shamma, S. A. Comparison of Responses in the Anterior and Primary Auditory Fields of the Ferret Cortex. J. Neurophysiol. 73, 1513-1523 (1995).
  10. Nelken, I., Versnel, H. Responses to linear and logarithmic frequency-modulated sweeps in ferret primary auditory cortex. Eur. J. Neurosci. 12, 549-562 (2000).
  11. Shannon-Hartman, S., Wong, D., Maekawa, M. Processing Of Pure-Tone And FM Stimuli In The Auditory Cortex Of The FM Bat, Myotis lucifugus. Hearing Res. 61, 179-188 (1992).
  12. Razak, K. A., Fuzessery, Z. M. Neural Mechanisms Underlying Sensitivity for the Rate and Direction of Frequency-Modulated Sweeps in the Auditory Cortex of the Pallid. J. Neurophysiol. 96, 1303-1319 (2006).
  13. Razak, K. A., Fuzessery, Z. M. GABA Shapes Selectivity for the Rate and Direction of Frequency-Modulated Sweeps in the Auditory Cortex. J. Neurophysiol. 102, 1366-1378 (2009).
  14. Suga, N. Functional Properties of Auditory Neurones in the Cortex of Echo-Locating Bats. J. Physiol. 181, 671-700 (1965).
  15. Harrison, R. V., Kakigi, A., Hirakawa, H., Harel, N., Mount, R. J. Tonotopic mapping in auditory cortex of chinchilla. Hearing Res. 100, 157-163 (1996).
  16. Benson, D. A., Teas, D. C. Single Unit Study of Binaural Interaction in the Auditory Cortex of the Chinchilla. Brain Res. 103, 313-338 (1976).
  17. Ricketts, C., Mendelson, J. R., Anand, B., English, R. Responses to time-varying stimuli in rat auditory cortex. Hearing Res. 123, 27-30 (1998).
  18. Gaese, B. H., Ostwald, J. Temporal Coding of Amplitude and Frequency Modulation in the Rat Auditory Cortex. European J. Neurosci. 7, 438-450 (1995).
  19. Hage, S. R., Ehret, G. Mapping responses to frequency sweeps and tones in the inferior colliculus of house mice. Eur. J. Neurosci. 18, 2301-2312 (2003).
  20. Merzenich, M. M., Knight, P. L., Roth, G. L. Representation of Cochlea Within Primary Auditory Cortex in the Cat. J. Neurophysiol. 38, 231-249 (1975).
  21. Knight, P. L. Representation of the Cochlea within the Anterior Auditory Field (AAF) of the Cat. Brain Res. 130, 447-467 (1977).
  22. Sutter, M. L., Schreiner, C. E., McLean, M., O'Connor, K. N., Loftus, W. C. Organization of Inhibitory Frequency Receptive Fields in Cat Primary Auditory Cortex. J. Neurophysiol. 82, 2358-2371 (1999).
  23. Whitfield, I. C., Evans, E. F. Responses of Auditory Cortical Neurons to Stimuli of Changing Frequency. J. Neurophysiol. 28, 655-672 (1965).
  24. Mendelson, J. R., Cynader, M. S. Sensitivity of cat primary auditory cortex (AI) neurons to the direction and rate of frequency modulation. Brain Res. 327, 331-335 (1985).
  25. Pouratian, N., Toga, A. W. Brain Mapping: The Methods. Toga, A. W., Mazziotta, J. C. , Academic Press. 97-140 (2002).
  26. Harel, N., Lee, S. P., Nagaoka, T., Kim, D. S., Kim, S. G. Origin of negative blood oxygenation level-dependent fMRI signals. J. Cereb. Blood Flow Metab. 22, 908-917 (2002).
  27. Olman, C., Ronen, I., Ugurbil, K., Kim, D. S. Retinotopic mapping in cat visual cortex using high-field functional magnetic resonance imaging. J. Neurosci. Methods. 131, 161-170 (2003).
  28. Kim, D. S., Duong, T. Q., Kim, S. G. High-resolution mapping of iso-orientation columns by fMRI. Nat. Neurosci. 3, 164-169 (2000).
  29. Belin, P., Zatorre, R. J., Hoge, R., Evans, A. C., Pike, B. Event-related fMRI of the auditory cortex. NeuroImage. 10, 417-429 (1999).
  30. Logothetis, N. K., Pauls, J., Augath, M., Trinath, T., Oeltermann, A. Neurophysiological investigation of the basis of the fMRI signal. Nature. 412, 150-157 (2001).
  31. Mukamel, R., et al. Coupling between neuronal firing, field potentials, and fMR1 in human auditory cortex. Science. 309, 951-954 (2005).
  32. Bilecen, D., Scheffler, K., Schmid, N., Tschopp, K., Seelig, J. Tonotopic organization of the human auditory cortex as detected by BOLD-FMRI. Hearing Res. 126, 19-27 (1998).
  33. Talavage, T. M., Ledden, P. J., Benson, R. R., Rosen, B. R., Melcher, J. R. Frequency-dependent responses exhibited by multiple regions in human auditory cortex. Hearing Res. 150, 225-244 (2000).
  34. Talavage, T. M., et al. Tonotopic organization in human auditory cortex revealed by progressions of frequency sensitivity. J. Neurophysiol. 91, 1282-1296 (2004).
  35. Wessinger, C. M., Buonocore, M. H., Kussmaul, C. L., Mangun, G. R. Tonotopy in human auditory cortex examined with functional magnetic resonance imaging. Human Brain Map. 5, 18-25 (1997).
  36. Cheung, M. M., et al. BOLD fMRI investigation of the rat auditory pathway and tonotopic organization. NeuroImage. 60, 1205-1211 (2012).
  37. Langers, D. R. M., van Dijk, P., Backes, W. H. Lateralization connectivity and plasticity in the human central auditory system. NeuroImage. 28, 490-499 (2005).
  38. Petkov, C. I., Kayser, C., Augath, M., Logothetis, N. K. Functional imaging reveals numerous fields in the monkey auditory cortex. PLoS Biol. 4, 1213-1226 (2006).
  39. Tanji, K., et al. Effect of sound intensity on tonotopic fMRI maps in the unanesthetized monkey. NeuroImage. 49, 150-157 (2010).
  40. Zhang, J. W., et al. Functional magnetic resonance imaging of sound pressure level encoding in the rat central auditory system. NeuroImage. 65, 119-126 (2013).
  41. Baumann, S., et al. Characterisation of the BOLD response time course at different levels of the auditory pathway in non-human primates. NeuroImage. 50, 1099-1108 (2010).
  42. Jezzard, P., Rauschecker, J. P., Malonek, D. An in vivo model for functional MRI in cat visual cortex. Magn. Reson. Med. 38, 699-705 (1997).
  43. Brown, T. A., et al. Characterisation of the blood-oxygen level-dependent (BOLD) response in cat auditory cortex using high-field fMRI. NeuroImage. 64, 458-465 (2013).
  44. Olfert, E. D., Cross, B. M., McWilliam, A. A. Canadian Council on Animal Care. 1, Ottawa, Ontario. (1993).
  45. Franceschini, M. A., et al. The effect of different anesthetics on neurovascular coupling. NeuroImage. 51, 1367-1377 (2010).
  46. Heil, P., Irvine, D. R. F. Functional specialization in auditory cortex: Responses to frequency-modulated stimuli in the cat's posterior auditory field. J. Neurophysiol. 79, 3041-3059 (1998).
  47. Norena, A. J., Gourevitch, B., Pienkowski, M., Shaw, G., Eggermont, J. J. Increasing spectrotemporal sound density reveals an octave-based organization in cat primary auditory cortex. J. Neurosci. 28, 8885-8896 (2008).
  48. Pienkowski, M., Eggermont, J. J. Long-term, partially-reversible reorganization of frequency tuning in mature cat primary auditory cortex can be induced by passive exposure to moderate-level sounds. Hearing Res. 257, 24-40 (2009).
  49. Zurita, P., Villa, A. E. P., de Ribaupierre, Y., de Ribaupierre, F., Rouiller, E. M. Changes of single unit activity in the cat auditory thalamus and cortex associated with different anesthetic conditions. Neurosci. Res. 19, 303-316 (1994).
  50. Crosby, G., Crane, A. M., Sokoloff, L. Local changes in cerebral glucose-utilization during ketamine anesthesia. Anesthesiology. 56, 437-443 (1982).
  51. Zhao, F., Jin, T., Wang, P., Kim, S. -G. Isoflurane anesthesia effect in functional imaging studies. NeuroImage. 38, 3-4 (2007).
  52. Cheung, S. W., et al. Auditory cortical neuron response differences under isoflurane versus pentobarbital anesthesia. Hearing Res. 156, 115-127 (2001).
  53. Dueck, M. H., et al. Propofol attenuates responses of the auditory cortex to acoustic stimulation in a dose-dependent manner: A FMRI study. Acta Anaesthesiol. Scand. 49, 784-791 (2005).
  54. Seifritz, E., et al. Spatiotemporal pattern of neural processing in the human auditory cortex. Science. 297, 1706-1708 (2002).
  55. Hall, D. A., et al. 34;Sparse" temporal sampling in auditory fMRI. Human Brain Map. 7, 213-223 (1999).
  56. Backes, W. H., van Dijk, P. Simultaneous sampling of event-related BOLD responses in auditory cortex and brainstem. Magn. Reson. Med. 47, 90-96 (2002).
  57. Greene, S. A. In Veterinary Anesthesia and Pain Management Secrets. , Hanley & Belfus, Inc. 121-126 (2002).

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Herprints en machtigingen

Toestemming aanvragen om de tekst of afbeeldingen van dit JoVE-artikel te hergebruiken

Toestemming aanvragen

Trefwoorden

Beeldvorming van de auditieve cortexfunctionele MRIgeanestheseerde kattenauditieve stimulushemodynamische responshersenactivatieMRI compatibele sledeketamine anesthesieSPM FSL analyse

Gerelateerde artikelen