De gist twee-hybride (Y2H) test wordt veel gebruikt om eiwit-eiwit interacties ontdekken en meer onlangs voor ontdekking van nieuwe kleine moleculen die eiwit-eiwit interactie complexen 7, 8, 9, 10, 11 verstoren. De conventionele benaderingen van deze test gebruikt voor drug discovery of "hits", niet mogelijk voor de detectie van allosterische interactie residuen van chemische verbindingen in eiwit-eiwit oppervlak, dat bij nog veranderde interactie en zorgen voor ondervraging van de veranderde residuen 11 . Immers, een dergelijke methode (n), indien mogelijk ontwikkelen, zou een handelbaar gist voor hoge doorvoer beoordeling van allosterische interactie residuen essentieel voor eiwit-eiwit interactie verstoring mogelijk. In het kader van het geneesmiddelenonderzoek, zou de meest directe manier om wisselwerking van verbindingen vast eiwitten structuurbepaling (bv. kristallisatie eiwit-remmer complex) omvatten. Deze methoden zijn cumbersome, gebruik uitgebreide middelen en het technisch niet haalbaar is om structurele studies van elk eiwit uit te voeren.
Tractable genetische drug screening systemen zijn in bacteriën 1, 2 en andere modelsystemen zoals zoogdier twee-hybride vastgesteld. Echter, deze systemen moeten optimalisatie en alternatieve systemen zoals Y2H zijn nog steeds de meest getest in drug discovery. Er zijn beperkingen die slechte gevoeligheid en betrouwbaarheid van interacties met bijzondere werkwijzen 13 omvatten echter een Y2H test kan worden aangepast aan specifieke vragen over interactie residuen beantwoorden. Op het gebied van nucleaire receptor onderzoek is Y2H gebruikt om interagerende eiwitten 14 definiëren, maar deze eiwitinteracties zelden gebruikt om de natuur waarin liganden / antagonisten interageren met nucleaire receptor-eiwitcomplexen definiëren. Aldus ons laboratorium gericht op pogingen het definiëren van een werkwijze, vooral voor receptoreiwitten die nietgemakkelijk vatbaar voor gebaseerde methoden proteomics, dat zou nieuwe ligand / antagonist interactie resten behulp van een omgekeerde Y2H gebaseerd discovery platform ontgraven.
Op basis van onze eerdere bevinding dat ketoconazol verstoort PXR en de activator SRC-1, ontwikkelden we een nieuwe reverse Y2H systeem dat ons in staat stellen om ketoconazol interactie resten te definiëren en te ondervragen op PXR 6. Onze methode is gebaseerd op de eigenschappen van de gist GAL4 eiwit dat bestaat uit scheidbare domeinen die verantwoordelijk zijn voor DNA-binding en transcriptionele activatie. De PXR LBD proteïne wordt uitgedrukt als een fusie met het LexA DNA-bindingsdomein (DNA-BD), terwijl de volledige lengte co-activatoren SRC-1 (steroïdereceptor coactivator 1) zijn proteïnen tot expressie als fusies aan het GAL4 activeringsdomein (AD ). Interactie tussen PXR en SRC-1 fusie-eiwitten leidt tot de transcriptionele activering van GAL4-bindingsplaatsen bevattend reportergen β-Lac Z die is geïntegreerd in de gist genome. Ketoconazol, een PXR antagonist, verstoort PXR en SRC-1 interactie 15, 16, 17 en kunnen we de interactie van PXR detecteren en SRC-1 bij aanwezigheid of afwezigheid van ketoconazol na kleuren kolonies op filters voor X-gal activiteit. Het principe van Y2H wordt geïllustreerd in figuur 1 en de experimentele procedure wordt samengevat in figuur 2.