Een abonnement op JoVE is vereist om deze inhoud te bekijken. Log in of start vandaag met uw gratis proefperiode.

Methodenartikel

Isolatie van primaire humane Colon tumorcellen uit Chirurgische weefsels en kweken ze rechtstreeks op zachte elastische substraten voor Traction Cytometry

15.4K weergaven

⸱

DOI:

10.3791/52532

⸱

4 juni 2015

 ,  ,  ,  , 
1Department of Mechanical Science and Engineering, University of Illinois at Urbana-Champaign, 2College of Medicine, University of Illinois at Urbana-Champaign, 3Provena Covenant Medical Centre, 4Micro and Nanotechnology Laboratory, University of Illinois at Urbana-Champaign

In dit artikel

Samenvatting

Er wordt een protocol beschreven om primaire humane cellen te extraheren uit chirurgische colontumor- en normale weefsels. De geïsoleerde cellen worden vervolgens gekweekt op zachte elastische substraten (polyacrylamide-hydrogels) die functioneel zijn gemaakt door een extracellulair matrix-eiwit en ingebed met fluorescente microbeads. Trekcytometrie wordt uitgevoerd om de cellulaire contractiele spanningen te beoordelen.

Samenvatting

Kankercellen reageren op mechanische stijfheid matrix op een complexe wijze met een gecoördineerde hiërarchische mechanisch-chemisch systeem bestaande uit adhesiereceptoren en geassocieerde signaaltransductie membraaneiwitten, het cytoskelet architectuur en moleculaire motors 1, 2. Mechanische gevoeligheid van verschillende kankercellen in vitro voornamelijk onderzocht met onsterfelijk gemaakte cellijnen of primaire cellen van muizen afgeleide, niet met primaire humane kankercellen. Derhalve is er weinig bekend over de mechanische gevoeligheid van primaire humane colon kankercellen in vitro. Hier, wordt een geoptimaliseerd protocol ontwikkeld die de isolatie van primaire humane colon van gezonde cellen en kankercellen chirurgische menselijke weefselmonsters beschreven. Geïsoleerd colon cellen worden vervolgens met succes gekweekt op zachte (2 kPa stijfheid) en stijf (10 kPa stijfheid) polyacrylamide hydrogels en stijve polystyreen (~ 3,6 GPa stijfheid) substraten gefunctionaliseerd door een extracellulaire matrix (fibronectinein dit geval). Fluorescerende microbolletjes zijn ingebed in zachte gels in de buurt van de celkweek oppervlak, en tractie test wordt uitgevoerd om cellulaire samentrekkende spanningen met behulp van gratis open toegang software te beoordelen. Bovendien immunofluorescentie microscopie van verschillende stijfheid substraten nuttige informatie over primaire celmorfologie, cytoskelet organisatie en vinculin met focale adhesies als functie van substraat stijfheid.

Inleiding

De laatste jaren is het steeds duidelijker geworden dat de mechanische micro-omgeving, naast biochemische factoren, speelt een belangrijke rol bij het reguleren cel functionaliteiten. Cellen kunnen detecteren en reageren op de stijfheid substraat waarop zij worden nageleefd (zoals in 2D kweek) en omringd door (zoals in 3D kweek) 3-7. Hierdoor kunnen cellen hun differentiatie 3, morfologie 4, migratie / motiliteit 5, biofysische eigenschappen 6, 7 groei, en andere processen moduleren.

Kankercellen ook reageren op de 2D- en 3D-matrix stijfheid met behulp van een gecoördineerde, hiërarchische mechanisch-chemische combinatie van adhesie receptoren en bijbehorende signaaltransductie membraaneiwitten, het cytoskelet architectuur en moleculaire motoren 1, 2. Bijvoorbeeld, borstklier epitheelcellen (MEC) vormen normale acinaire parenchym wanneer gekweekt op 150 Pa substraten die vergelijkbaar is met de stijfheidgezonde borstklierweefsel. Interessant is dat ze de kenmerken van een zich ontwikkelende tumor, zowel structureel als transcriptie, indien gekweekt op stijver substraten (> 5000 Pa), die de stijfheid van een tumor stroma 8 nabootsen. Bovendien, een ander experiment toont aan dat borst tumorigenese gepaard gaat met collageen verknoping en ECM verstijving 9. Recente experimenten tonen dat humane colon carcinoma (HCT-8) cellen vertonen metastase fenotype (MLP) wanneer zij gekweekt op 2D substraten met fysiologisch relevante stijfheid (20-47 kPa), maar niet op zeer stijf (3,6 GPa) substraten 10- 12 .Deze cellen eerste vorm tumorachtige celclusters en dissociëren van elkaar, vanaf de periferie. Aangezien dit epitheliale naar afgeronde morfologische (E R overgang) verandering optreedt, ze vermenigvuldigen, te verminderen cel-cel en cel-ECM adhesie, en word trekvogels. HCT-8 cellen gekweekt op heel hard polystyreen substraten zijn deze niet vertonenkwaadaardige trekken. Dus het is de hypothese dat HCT-8 cellen uitgezaaide vanwege hun blootstelling aan geschikte micro-omgeving. Vermeldenswaard is dat deze experimenten uitgevoerd met geïmmortaliseerde kankercellijnen of muizen afgeleide primaire cellen, niet met primaire humane kankercellen worden uitgevoerd.

Een recent onderzoek stelt aangevulde cellulaire traction stress, kunnen worden toegepast als een mogelijke biofysische signatuur voor metastatische cellen 13 .De studie omvat het meten trekkracht voor verschillende humane kankercellijnen op polyacrylamide gels. Het blijkt dat metastatische kankercellen significant hoger traction stress kan uitoefenen in vergelijking met niet-metastatische cellen in alle gevallen 13. Echter, deze resultaten direct in tegenspraak met de eerder gepubliceerde bevindingen muizen afgeleide borstkankercellijnen 14. Ook een recent onderzoek ook opvallende verschillen tussen geïmmortaliseerde en primaire humane cellen in het cytoskelet remodeling proeiwit profilering en overleving van de cel eiwit expressie 15. Daarom is het belangrijk voor veel van de biofysische analyses inclusief tractie voor primaire humane kankercellen opnieuw. Dit zal de vraag te beantwoorden of de primaire cellen recapituleren geïmmortaliseerde kanker cellijnen tractie trend.

De hier beschreven protocol geoptimaliseerd voor isolatie van primaire humane colon cellen (zowel gezonde en kanker), en ze te kweken op zachte substraten (polyacrylamide hydrogels) en op petrischalen. Het protocol is gebaseerd op de spijsvertering en de daaruit voortvloeiende enzymatische dissociatie van chirurgische weefselmonster in enkele celsuspensie 16. Voor zover wij weten is dit de eerste demonstratie van het kweken geïsoleerde primaire colon tumor en normale cellen direct op zachte hydrogel substraten met ingebedde fluorescente microkraaltjes tractie cytometrie. Transparante gel substraten immunokleuring ook mogelijk. Deze test toonde verschillen in F-actine organisatiefocale adhesies in primaire menselijke dikke darm cellen als substraat stijfheid veranderingen. Dit celcultuur platform opent de mogelijkheid van het verkennen van de verschillende biofysische eigenschappen van primaire menselijke cellen zoals mobiele stijfheid en tractie als parameters voor kanker prognostiek.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Protocol

De hieronder beschreven protocol volgt de richtlijnen van UIUC menselijk onderzoek ethische commissie.

1. Verzameling en de spijsvertering van Surgical weefselmonster

  1. Verzamel de tumorweefsel monster direct na colon resectie (figuur 1A en 1B). Verzamel weefsel van een aangrenzende gezonde site ook.
  2. Breng het weefsel onmiddellijk naar een 15 ml flesje met 12 ml HBSS oplossing. Houd de flacon op het ijs in een geïsoleerde schuim doos.
  3. Vervoeren het weefsel met flacon een weefselkweek kap voor verdere verwerking binnen 45 min. Houd de flacon op een ijsblok in de kap.
  4. Giet de meegeleverde weefsel in een 6-wells plaat met 6-7 ml van HBSS oplossing met behulp van een pipet.
    Let op: Bedrag van weefsel per put is niet kritisch in deze spoelen stap.
  5. Houd de 6 wells plaat op een ijsblok. Spoel het weefsel in HBSS oplossing tweemaal.
  6. Snijd weefsel netjes in gescheiden secties met steriele GCBsor. Gehakt weefsel in kleinere secties niet groter dan 1-2 mm3 in grootte met een steriele scalpel.
  7. Weeg een gemerkt 0,1% trypsine injectieflacon (met 1 ml van 0,1% trypsine oplossing) alvorens het weefsel. Overdracht ~ 20 mg weefsel in elk van de 0,1% trypsine flesjes met een pipet.
  8. Probeer de overdracht van HBSS in de trypsine flacon minimaliseren verdere verdunning van trypsine te voorkomen.
  9. Weeg de trypsine flesjes na weefsel overdracht; documenteren van het verschil als de massa weefsel.
  10. Giet ~ 20 mg weefsel en 1 ml trypsine in elk putje van een 24 putjesplaat.
  11. Plaats de 24 wells plaat op schudder in koelkast bij 4 ° C gedurende 16-20 uur. Tijdens deze wachttijd of op een eerder tijdstip, bereiden polyacrylamidegel substraten en functionaliseren ze met ECM-eiwitten zoals beschreven in paragraaf 3.

2. Enzymatische dissociatie van weefselmonster in enkele celsuspensie en kweken van geïsoleerde cellen op ECM Gefunctionaliseerde Elastic Substrates en Rigid polystyreen Gerechten

  1. Na 16-20 uur incubatie in zowel trypsine bij 4 ° C op schudinrichting overbrengen weefsel van 4 ° C trypsine tot 4 ° C compleet groeimedium injectieflacon (die 2-3 ml compleet kweekmedium) met een pipet. Zorg voor een minimale overdracht van trypsine in groeimedia.
    Opmerking: de volledige groeimedia formulering als volgt: RPMI 1640 basismedium gesupplementeerd met paardenserum tot een eindconcentratie van 10% en penicilline-streptomycine tot 1% van de totale oplossing.
  2. Plaats het weefsel bevattende media flacon in een warmwaterbad bij 37 ° C gedurende 12-15 min.
  3. Overdracht van het weefsel aan een 15 ml flacon met HBSS oplossing met behulp van een pipet, schud voorzichtig.
  4. Herhaal 2.3.
  5. Verwijder weefsel uit HBSS oplossing en transfer naar 0,1% collagenase oplossing (in HBSS) injectieflacon met 1 ml oplossing. Incubeer gedurende 45 minuten bij 37 ° C en 5% CO2 in een bevochtigde omgeving celkweek incubator. Tijdens de wachttijd, warm growth media in een 15 ml flesje bij 37 ° C in een waterbad.
  6. Trek alle weefsel fragmenten in pipet minimaliseren collagenase overdracht. Werp gewoon het weefsel fragmenten in voorverwarmde kweekmedia flacons.
  7. Plaats een 40 micrometer goed insert filter in elk putje van een 6-wells plaat. Bevochtig het filter met 1 ml celcultuur media.
  8. Vermaal weefsel in de media met een 10 ml glazen pipet meerdere keren totdat het weefsel volledig is gescheiden.
  9. Handhaaf de pipetpunt zo dicht mogelijk bij de bodem van de flacon.
  10. Stort de oplossing op het filter om vuil en ongedissocieerde onderdelen te verwijderen.
  11. Centrifugeer gefilterd celsuspensie in media bij 150 xg gedurende 5 minuten bij kamertemperatuur.
  12. Verwijder de bovenstaande vloeistof achteraf en resuspendeer celpellet met 2 ml vers kweekmedium.
  13. Tel de cellen met een hemocytometer (indien nodig). Geïsoleerd zaad primaire cellen aan de extracellulaire matrix (ECM) gefunctionaliseerd gels en polystyreen gerechten op de gewenste concentratie.

3. Voorbereiding en functionalisering van andere stijfheid Polyacrylamide (PA) Gels en polystyreen Substrates

Opmerking: Voor visuele demonstratie van hoofdstuk 3, de kijkers / lezers worden verwezen naar een recente Journal of Visualized Experiments (Jupiter) artikel 17.

  1. Vaststelling gepubliceerde protocollen 18, 19, activeer 12 mm 2 glazen dekglaasjes chemisch covalente binding van de hydrogel te waarborgen.
    1. Ten eerste behandelen glazen dekglaasjes met 3- Aminopropyltrymethoxysilane (ATS) gedurende 7 minuten bij kamertemperatuur.
    2. Verwijder de ATS volledig met DI-water spoelen en te behandelen dekglaasjes met 0,5% Glutaraldehyde (verdund in PBS van 70% Glutaraldehyde voorraad oplossing) oplossing voor 30 min.
  2. Verkrijgen 2 kPa gel oplossingen door mengen 5% g / v acrylamide-oplossing en 0,05% N, N'-methylenebisacrylamide (bis) oplossing in 10 mM HEPES-gebufferde zoutoplossing 20. Met 8% w / v acrylamide en 0,13% N, N'-methylenebisacrylamide (bis) oplossing in 10 mM HEPES-gebufferde zoutoplossing 10 kPa gel 20.
    1. In beide gevallen gebruikt 1: 200 ammoniumpersulfaat (10% w / v) en 1: 2000 N, N, N ', N'-tetramethylethyleendiamine (TEMED) als initiator en katalysator voor de polymerisatie resp.
    2. Ook, voeg 100 ul fluorescerende kralen 2 kPa geloplossing als fiduciaire markers 21, 22.
  3. Stort een daling van 20 pi pre-polymeer PA gel oplossing op de 12 mm 2 geactiveerd glas dekglas. Leg nog eens 12 mm 2 standaard glazen deksel slip op de drop. Zorg ervoor dat de daling zich verspreidt tussen de dekglaasjes als gevolg van capillaire werking. Inverteer de sandwich van 2 kPa gels zodat de meeste van de korrels naderen de celkweek oppervlak.
  4. Hard de PA gel gedurende 45 minuten bij kamertemperatuur.
  5. Trek het deksel slip met behulp van een enkele rand scheermes.
    Opmerking: Tijdens het schillen, onthechting voortkomt uit een randvan de sandwich. De gel blijft hechtend aan de geactiveerde glasplaatje.
  6. Bewaar de gels in PBS oplossing voor gebruik.
  7. Functionaliseren PA gels en glas met ECM-moleculen, menselijke fibronectine in een concentratie van 50 ug / ml volgens gepubliceerde werkwijzen 23.
    1. In het kort, incubeer substraten met 2 ml pure hydrazinehydraat O / N.
    2. Verwijder hydrazinehydraat en spoel de substraten grondig met DI water.
    3. Was de substraten met 5% azijnzuur gedurende 30 min.
    4. Verwijder azijnzuur en spoel de substraten grondig met DI water.
    5. Houd de substraten ondergedompeld in DI-water gedurende 30 min.
    6. Incubeer de substraten met geoxideerde fibronectine gedurende 35 min bij een concentratie van 50 ug / ml.
    7. Spoel de substraten met PBS op schudinrichting bij lage rpm gedurende 10 min.
    8. Incubeer alle substraten bij 37 ° C in 2-3 ml kweekmedium gedurende 30 min voor het uitplaten van de cellen.
      Opmerking: Plaat cellen in een dun populated manier (1000-3000 cellen / cm 2). Elke gel bedekte glas slip moet worden opgenomen in een 35 mm petrischaal. Laat cellen volledig hechten voordat microscopie (ten minste O / N).

4. Traction Force Microscopy en immunofluorescentiemicroscopie Testen

  1. Traction Force Microscopy Assay
    1. Warm 0,25% trypsine-EDTA / 10% SDS-oplossing bij 37 ° C in een waterbad gedurende 10 minuten voor tractie experimenten beginnen.
    2. Verwijder een gel uit de celkweek incubator op een tijd en plaats van de fluorescentie microscoop omgekeerde fase (32x vergroting).
    3. Een cel in gezichtsveld. Verwijder de petrischaal deksel.
    4. Neem een fase contrast beeld van de cel (bijvoorbeeld figuur 3).
    5. Schakel de imaging-modus om fluorescentie en selecteer de gewenste filter. Verplaats de microscoop podium of monster gedurende deze tijd.
    6. Neem een ​​beeld van de fluorescerende kralen displaced door cellulaire tractie (Figuur 4C).
    7. Voeg 1 ml trypsine / SDS oplossing petrischaal de cel gel los. Verplaats de microscoop podium of monster gedurende deze tijd. Ook een controle beeld van de cel te nemen om volledige verwijdering van de gel te waarborgen.
    8. Neem een ​​referentie (null kracht) beeld van de kralen nadat de cel wordt verwijderd.
    9. Herhaal de stappen 4.1.2-4.1.8 voor alle andere gels.
    10. Maak een image stack met ImageJ van de twee beelden verworven in stap 4.1.6 en 4.1.8 voor elk geval. Om de afbeelding stapel genereren, gebruiken volgende reeks commando's in ImageJ na het openen van de afbeeldingen: Afbeelding → Stacks → Afbeeldingen te stapelen.
    11. Om het veld verplaatsing en de tractie te krijgen, gebruiken ImageJ plugins volgende gepubliceerde methoden 21, 22 verkrijgen codes en gedetailleerde tutorials voor deze plugins via de volgende link:. https://sites.google.com/site/qingzongtseng/imagejplugins.
      1. Lijn de beelden in de stapel met behulp van de 'Template Matching' plugin. Gebruik volgende reeks commando's in ImageJ na het openen van het beeld stack gegenereerd in stap 4.1.10: Plugins → Template Matching → Align Slices in Stack → OK. Sla de afbeelding stapel dus. Met deze nieuwe afbeelding stapel in de volgende stappen.
      2. Verkrijgen van het veld verplaatsing met de PIV (Particle Image Velocimetry) plugin (figuur 4D). Gebruik volgende reeks commando's na het openen van de afbeelding stapel opgeslagen in stap 4.1.11.1: Plugins → PIV → Iterative PIV (Basic) → OK → Accepteer deze PIV en output → Ok. Sla de PIV output in dezelfde map als in het originele beeld stack. Gebruik dit als input in de volgende stap.
      3. Eindelijk gebruik maken van de FTTC (Fourier-transformatie tractie cytometrie) plugin om de tractie kaart (Figuur 4E) te verkrijgen. Gebruik volgende reeks commando's: Plugins → FTTC → Insert eigenschappen van het materiaal, dat wil zeggen, Young's modulus en de verhouding van de PA gel → OK → Poisson's Kies het PIV output bestand opgeslagen in stap 4.1.11.2 → OK. Save FTTC resulteert in dezelfde map als in het beeld stack en PIV output.
  2. Immunofluorescentiemicroscopie Assays
    1. Neem de substraten te immunostained aan de laminaire kap en verwijder het kweekmedium.
    2. Spoel de substraten met PBS en bevestig de cellen met 4% paraformaldehyde in PBS gedurende 20 min bij kamertemperatuur.
    3. Was de substraten met PBS gedurende 3 maal (5 min per keer). Bijgevolg incubeer de substraten met 500 gl signaal versterker gedurende 30 min en spoel met PBS.
    4. Incubeer de cellen met monoklonale anti-vinculin antilichaam bij een 1: 250 verdunning in PBS gedurende 45 min bij kamertemperatuur. Was de substraten met PBS gedurende 3 maal (5 min per keer).
    5. Incubeer de monsters met secundaire antilichaam Alexa Fluor 488 geit anti-muis IgG bij een 1: 200 verdunningin PBS bij kamertemperatuur gedurende 30 min. Was de substraten met PBS gedurende 3 maal (5 min per keer).
    6. Om de F-actine structuur visualiseren, incubeer cellen met TRITC falloïdine conjugaten bij een concentratie van 50 ug / ml gedurende 45 minuten bij kamertemperatuur. Was de substraten met PBS gedurende 3 maal (5 min per keer).
    7. Afbeelding van de monsters met behulp van confocale laser scanning microscoop (Figuur 5A - 5D).

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Resultaten

De bovenbeschreven protocol met succes toegepast voor meerdere weefselmonsters (n = 12) vanaf vier patiënten onder richtlijnen van het Institutional Review Board. Figuur 1A illustreert een representatieve colorectale tumor direct na operatie waaruit de weefselcoupes van celcultures verkregen. Een typische weefselsectie in HBSS oplossing na overdracht aan de laminaire kap voor verdere verwerking getoond in figuur 1B. Een schema van enzymatische digestie en dissociatie van chirurgische we...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Discussie

Cellular tractie spanning is onlangs naar voren gekomen als een potentiële biofysische indicator van metastatische staat 13. Echter, geen experimentele tractie gegevens met primaire tumorcellen bestaat in de literatuur tot nu toe. Ook wordt direct kweken geïsoleerde primaire colon cellen op verschillende stijfheid polyacrylamidegelen nog niet gemeld. Vandaar dit een optimale primaire colon celkweekomstandigheden op gels en polystyreen (figuur 2) vast. Fluorescerende microbolletjes inkapseling...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Openbaarmakingen

De auteurs hebben niets te onthullen.

Dankbetuigingen

Dit project werd gefinancierd door de National Science Foundation ECCS-subsidie 10-02165 en het Interdisciplinaire Innovatie-initiatief, Universiteit van Illinois-subsidie 12035. M.Y. A. werd gefinancierd aan UIUC door NIH National Cancer Institute Alliance for Nanotechnology in Cancer ‘Midwest Cancer Nanotechnology Training Center’ Grant R25 CA154015A. Immnunoskleuring en confocale microscopiebeelden werden uitgevoerd bij het Institute for Genomic Biology (IGB), UIUC. M.Y.A. erkent de discussies met B. J. Williams van UIUC met betrekking tot de isolatie-experimenten. M.Y.A. erkent C. Nemeh en Abdul Bhuiya van UIUC voor hun hulp bij het opstellen van schematisch en materiaallijst.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Materialen

Lijst van materialen gebruikt in dit artikel
NaamBedrijfCatalogusnummerOpmerkingen
Reagents
HBSSLife technologies14175-095
PBSLonza17-516F
TrypsinWorthingtonLS003736
CollagenaseWorthingtonLS004176
3- Aminopropyltriethoxysilane (ATS) Sigma-Aldrich281778
GlutaraldehydePolysciences, Inc.01201-5
AcrylamideSigma-AldrichA4058
N-methyleenbisacrylamide (bis)Sigma-AldrichM1533
HEPES bufferoplossingSigma-Aldrich83264
AmmoniumpersulfaatBio-Rad161-0700
Human fibronectineBD biosciences354008
HydrazinehydraatSigma-Aldrich18412Gevaarlijk
AzijnzuurSigma-AldrichA6283
Paraformaldehyde Electron Microscopy SciencesRT15710
SignaalversterkerLife technologiesI36933
Monoklonaal anti-vinculine-antilichaam Sigma-AldrichV9131
Alexa Fluor 488 geit anti-muis IgGLife technologiesA11001
TRITC phalloidine-conjugaten Sigma-AldrichP1951
0.1 µm fluorescerende bolletjesLife technologiesF8801
0.25% Trypsin-EDTALife technologies25200-056
Materialen
12 mm2 glas dekglasjesCorning2865-12

Referenties

  1. Ingber, D. E. Can cancer be reversed by engineering the tumor microenvironment. Semin. Cancer Biol. 18, 356-364 (2008).
  2. Kumar, S., Weaver, V. M. Mechanics, malignancy, metastasis: the force journey of a tumor cell. Cancer Metastasis Rev. 28, 113-127 (2009).
  3. Engler, A. J., Sen, S., Sweeney, H. L., Discher, D. E. Matrix elasticity directs stem cell lineage specification. Cell. 126, 677-689 (2006).
  4. Yeung, T., et al. Effects of substrate stiffness on cell morphology, cytoskeletal structure, and adhesion. Cell Motil. Cytoskeleton. 60, 24-34 (2005).
  5. Pelham, R. J., Wang, Y. L. Cell locomotion and focal adhesions are regulated by substrate flexibility. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 94 (25), 3661-3665 (1997).
  6. Solon, J., Levental, I., Sengupta, K., Georges, P. C., Janmey, P. A. Fibroblast adaptation and stiffness matching to soft elastic substrates. Biophys. J. 93, 4453-4461 (2007).
  7. Wang, H. B., Dembo, M., Wang, Y. L. Substrate flexibility regulates growth and apoptosis of normal but not transformed cells. Am. J. Physiol. Cell. Physiol. 279, 1345-1350 (2000).
  8. Paszek, M. J., et al. Tensional homeostasis and the malignant phenotype. Cancer Cell. 8, 241-254 (2005).
  9. Levental, K. R., et al. Matrix crosslinking forces tumor progression by enhancing integrin signaling. Cell. 139, 891-906 (2009).
  10. Tang, X., et al. Mechanical force affects expression of an in vitro metastasis-like phenotype in HCT-8 cells. Biophys. J. 99, 2460-2469 (2010).
  11. Ali, M. Y., Saif, M. T. A. Substrate Stiffness Mediated Metastasis Like Phenotype of Colon Cancer Cells is Independent of Cell to Gel Adhesion. Cell. Mol. Bioeng. , (2014).
  12. Ali, M. Y., Chuang, C. Y., Saif, M. T. A. Reprogramming cellular phenotype by soft collagen gels. Soft Matter. , (2014).
  13. Kraning-Rush, C. M., Califano, J. P., Reinhart-King, C. A. Cellular traction stresses increase with increasing metastatic potential. PLoS ONE. 7 (2), e32572(2012).
  14. Indra, I., Undyala, V., Kandow, C., Thirumurthi, U., Dembo, M., Beningo, K. A. An in vitro correlation of mechanical forces and metastatic capacity. Phys. Biol. 8 (1), (2011).
  15. Alge, C. S., Hauck, S. M., Priglinger, S. G., Kampik, A., Ueffing, M. Differential protein profiling of primary versus immortalized human RPE cells identifies expression patterns associated with cytoskeletal remodeling and cell survival. J. Proteome Res. 5 (4), 862-878 (2006).
  16. Oikonomou, E., Kothonidis, K., Zografos, G., Nasioulas, G., Andera, L., Pintzas, A. Newly established tumourigenic primary human colon cancer cell lines are sensitive to TRAIL-induced apoptosis in vitro and in vivo. Br. J. Cancer. 97 (1), 73-84 (2007).
  17. Knoll, S. G., Ali, M. Y., Saif, M. T. A. A novel method for localizing reporter fluorescent beads near the cell culture surface for traction force microscopy. J. Vis. Exp. (91), (2014).
  18. Wang, Y. L., Pelham, R. Preparation of a flexible, porous polyacrylamide substrate for mechanical studies of cultured cells. Methods in Enzymology. 298, 489-496 (1998).
  19. Tang, X., Ali, M. Y., Saif, M. T. A. A novel technique for micro-patterning proteins and cells on polyacrylamide gels. Soft Matter. 8, 3197-3206 (2012).
  20. Tse, J. R., Engler, A. J. Preparation of hydrogel substrates with tunable mechanical properties. Current Protocols in Cell Biology. , 10-16 (2010).
  21. Tseng, Q., et al. Spatial organization of the extracellular matrix regulates cell–cell junction positioning. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 109 (5), 1506-1511 (2012).
  22. Chopra, A., et al. Augmentation of integrin-mediated mechanotransduction by hyaluronic acid. Biomaterials. 35 (1), 71-82 (2014).
  23. Damljanovic, V., Lagerholm, B. C., Jacobson, K. Bulk and micropatterned conjugation of extracellular matrix proteins to characterized polyacrylamide substrates for cell mechanotransduction assays. Biotechniques. 39 (6), 847-851 (2005).
  24. Tilghman, R. W., et al. Matrix rigidity regulates cancer cell growth and cellular phenotype. PLoS ONE. 5 (9), e12905(2010).
  25. Ulrich, T. A., de Juan Pardo, E. M., Kumar, S. The mechanical rigidity of the extracellular matrix regulates the structure, motility, and proliferation of glioma cells. Cancer Res. 69, 4167-4174 (2009).
  26. Williams, B. J., Anand, S. V., Rajagopalan, J., Saif, M. T. A. A self-propelled biohybrid swimmer at low Reynolds number. Nat. Commun. 5, (2014).

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Herprints en machtigingen

Trefwoorden

Primaire menselijke coloncellenenzymatische dissociatie van weefseltractiecytometrie assayimmunofluorescentiemicroscopiepolyacrylamidehydrogelsanalyse van substraatstijfheidmeting van celcontractiliteitvisualisatie van focale adhesiesstudie naar cytoskeletorganisatiechirurgische weefselisolatie
Isolatie van primaire humane Colon tumorcellen uit Chirurgische weefsels en kweken ze rechtstreeks op zachte elastische substraten voor Traction Cytometry
Neem contact met ons op
Aanbevelen aan bibliotheek

Privacy

Gebruiksvoorwaarden

Beleid

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. Alle rechten voorbehouden.