Methodenartikel

Turen naar Brain polysomen met Atomic Force Microscopy

DOI:

10.3791/53851

⸱

16 maart 2016

 ,  ,  ,  ,  , 
1Laboratory of Biomolecular Sequence and Structure Analysis for Health, Fondazione Bruno Kessler, 2Institute of Biophysics, CNR Unit at Trento

In dit artikel

Samenvatting

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Hoewel de structuur van ribosomen uitgebreid is gekarakteriseerd, is de organisatie van polysomen nog onvoldoende bestudeerd. Om dit kennisgebrek te overwinnen, presenteren we hier een gedetailleerd voorbereidingsprotocol voor nauwkeurige beeldvorming van polysomen van zoogdieren door atomaire krachtmicroscopie (AFM) in lucht en vloeistof.

Samenvatting

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

De translatiemachinerie, dwz de polysoomdisplay of polyribosome, is één van de grootste en meest complexe cytoplasmatische machines in cellen. Polysomen, gevormd door ribosomen, mRNA's, een aantal eiwitten en niet-coderende RNA's, vertegenwoordigen geïntegreerde platforms waar de translationele controles plaatsvinden. Echter, terwijl het ribosoom is op grote schaal onderzocht, de organisatie van polysomen ontbreekt nog uitgebreide kennis. veel inspanning is dus noodzakelijk om polysoomdisplays organisatie en elk nieuw mechanisme van translationele controlesignalen die worden ingesloten helderen. Atomic force microscopie (AFM) is een soort van scanning probe microscopie dat de overname van 3D-beelden op nanoschaal resolutie maakt. Vergeleken met elektronenmicroscopie (EM) techniek, een van de belangrijkste voordelen van AFM dat duizenden beelden zowel in lucht en in oplossing te verwerven, zodat het monster onder dichtbij fysiologische omstandigheden worden gehandhaafd zonder enige noodzaak voor het kleuren en vaststelling proprocedures. Hier is een gedetailleerd protocol voor de zuivering van nauwkeurig polysomen van muizenhersenen en hun depositie op substraten mica beschreven. Dit protocol maakt polysoomdisplays beeldvorming in lucht en vloeistof met AFM en de wederopbouw driedimensionale objecten. Complementair aan cryo-elektronenmicroscopie (cryo-EM), kan de voorgestelde methode gemakkelijk worden gebruikt voor het systematisch analyseren polysomen en het bestuderen van hun organisatie.

Inleiding

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

De synthese van eiwitten is de meeste energie verbruikende proces cellen 1,2. Daarom is het niet verwonderlijk dat eiwit abundanties voornamelijk gecontroleerd op de translatie in plaats van transcriptie niveau 3,4,5. De polysoom is de fundamentele macromoleculaire component die de mRNA informatie in functionele eiwitachtige uitlezingen omgezet. Polysomen zijn tot nu toe beschouwd als macromoleculaire complexen waar verschillende translationele controles samenkomen 6-13. Ondanks honderden studies over ribosoom structuur 14- 16, heeft de gedetailleerde moleculaire inzicht in de dynamiek van de vertaling en de topologie van polysomen een beperkt belang aangetroffen. Als gevolg daarvan, de organisatie van de inheemse polysomale ribonucleoproteïne complex en de mogelijke gevolgen daarvan voor vertalingen zijn nog vrij onduidelijk kwesties. Polysomen kan nog onbekend besteld en functionele organisaties verbergen, potentieel spiegelen wat nucleosomen en epigenetische controls zijn vertegenwoordigd voor het veld transcriptie. Uit het onderzoek van deze intrigerende hypothese vereist bijkomende studies en nieuwe technische benaderingen. In deze lijn, kunnen structurele technieken en atomic force microscopy vruchtbaar samenwerken om nieuwe mechanismen ontrafelen voor de controle van genexpressie, vergelijkbaar met wat werd bereikt voor de nucleosoom 17,18.

Sinds de ontdekking van het ribosoom 14-16, is de structuur uitgebreid gekarakteriseerd in prokaryoten 19,20, gist 21 en meer recent in humane 22, die de moleculaire beschrijving van de mechanismen die aan de basis van eiwitsynthese. Polysomen werden initieel opgenomen op het membraan van het endoplasmatisch reticulum, de vorming van typische 2D geometrische organisaties 14. Zoals eerder vermeld, heeft polysoomdisplay montage niet vatbaar constante belang als ribosoomstructuur geweest. In het verleden zijn polysomen werden voornamelijk bestudeerd door transmission EM-gebaseerde technieken. Pas onlangs, cryo-EM technieken kon de 3D-reconstructie van gezuiverd polysomen van in vitro translatie-systemen 23-26, menselijke cellulaire lysaten 27 of in cellen 28. Deze technieken bood meer verfijnde informatie over de ribosoom-ribosoom organisatie polysomen 23, 26-28 en een eerste moleculaire beschrijving van de contactoppervlakken van aangrenzende ribosomen in tarwekiemen polysomen 24. Zo cryo-EM tomografie maakt de openbaarmaking van ribosoom-ribosoom interacties met moleculaire detail, maar het wordt belast door uitgebreide post-processing en wederopbouw analyses die zware computationele middelen nodig voor gegevensverwerking. Bovendien zou de moleculaire details van ribosoom-ribosoom interacties te verkrijgen, een hoogst vastbesloten kaart van het ribosoom vereist en dergelijke referentie ribosoom is alleen beschikbaar voor enkele soorten. Belangrijk is cryo-EM tomografie is niet in staat om gratis RNA te detecteren. Thereferts worden nieuwe technieken die nodig zijn om de organisatie van de vertaling machines volledig te begrijpen.

Naast cryo-EM, is de AFM is ook gebruikt als een nuttig hulpmiddel voor directe beeldvorming van polysomen in lagere eukaryoten 29-33 en mensen 27. Vergeleken met EM, AFM vereist geen monster fixatie of de etikettering. Bovendien kunnen metingen worden uitgevoerd in de buurt van fysiologische omstandigheden en met de unieke mogelijkheid om duidelijk te identificeren zowel ribosomen en naakt RNA strengen 27 uitgevoerd. Beeldvorming van enkele polysomen kan relatief snel worden uitgevoerd, het verkrijgen van duizenden beelden op nano-resolutie met weinig post-processing inspanning in vergelijking met de uitgebreide en zware post-processing en wederopbouw analyses vereist door cryo-EM microscopie. Consequently, AFM data verwerking en analyse niet duur werkstations en hoge rekenkracht nodig hebben. Als zodanig is deze techniek verzamelt informatie over polysomale uniek morfologische kenmerken (zoalshoogte, lengte en breedte), ribosoom dichtheden is de aanwezigheid van vrije RNA en het aantal ribosomen per polysoomdisplays 27 met een hoger debiet dan cryo-EM. In een dergelijke manier, AFM staat voor een krachtige en complementaire aanpak van EM technieken om polysomen 27 portretteren.

Hier presenteren we een volledige pijpleiding van zuivering tot data-analyse, waar AFM wordt toegepast op de afbeelding en analyseren muizenhersenen polysomen. De voorgestelde protocol gericht op zuivering kwesties en de nauwkeurige afzetting van polysomen op mica substraten die worden gebruikt voor AFM beeldvorming. In aanvulling op de conventionele analyse van deeltjes die gemakkelijk kunnen worden uitgevoerd met gangbare software wordt gebruikt door de AFM gemeenschap, een ImageJ 34 plugin, genaamd RiboPick, wordt gepresenteerd voor het tellen van het aantal ribosomen per polysoomdisplays 27, 35.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Protocol

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Het wordt gebruikt om de muis weefsels te verkrijgen praktijken werden goedgekeurd door het orgaan voor de bescherming van dieren (OPBA) van de Universiteit van Trento (Italië), protocol nr. 04-2015, volgens Art.31 wetsdecreet nr. 26/2014. Alle muizen werden op het modelorganisme Facility van het Centre for Integrative Biology (CIBIO), Universiteit van Trento, Italië onderhouden.

Let op: Om RNA degradatie van de monsters te voorkomen, bereiden alle buffers met behulp van DEPC behandeld water voor het minimaliseren van RNase besmetting.

1. Bereiding van polysomen van Whole Brains

  1. Verzamelen hersenweefsel (15 min)
    1. Euthanaseren wild-type muis stam C57BL / 6 met CO 2 stikken gedurende 5 min 36. Ontleden voorzichtig de hersenen uit de schedel 36, plaatst het weefsel in een 1,5 ml buis en meteen plaats het in vloeibare stikstof. Bewaren bij -80 ° C tot gebruik.
  2. Bereiding van lysaat (30 min)
    1. Verpulveren de hele hersenweefsel met behulpeen vijzel onder vloeibare stikstof.
    2. Breng ongeveer 25 mg poeder een koude microcentrifugebuis onmiddellijk voeg 0,8 ml lysisbuffer (zie tabel 1) en verstoren de cel (het ontdooien van de verpulverde weefsel te voorkomen) door op en neer pipetteren 25 keer snel.
    3. Centrifugeer de buis bij 12.000 xg gedurende 1 min bij 4 ° C om celresten te pelleteren.
    4. Breng de supernatant naar een nieuwe microcentrifugebuis en houden de buis op ijs gedurende 15 min.
    5. Centrifugeer de buis bij 12.000 xg gedurende 5 minuten bij 4 ° C kernen en mitochondriën te pelleteren.
    6. Breng de supernatant naar een nieuwe microcentrifugebuis.
    7. Bewaar het supernatant bij -80 ° C maximaal 6 maanden gebruik ze onmiddellijk.
  3. Sucrosegradiënt centrifugering preparaat en (2 uur en 30 min)
    1. Was de ultracentrifuge buizen uitgebreid met RNase-vrij water (diethylpyrocarbonaat behandeld water (DEPC-water) of commercieel) eend 3% H 2 O 2 / DEPC H2O oplossing.
    2. Zet de buizen op ijs en voeg 5,5 ml koude 50% sucrose oplossing onder aan elke buis (zie tabel 1 voor sucrose toegevoegd). Voeg voorzichtig de 15% sucrose oplossing druppelsgewijs blijven dicht bij de interfase om een ​​scherpe interfase behouden, totdat de buis volledig is gevuld. Wanneer de buis volledig is gevuld, sluit met een rubberen stop aan luchtbelvorming voorkomen.
    3. In een koude ruimte voorzichtig leggen de buizen horizontaal en hou het in deze positie gedurende 2 uur. Na deze tijd, langzaam strek de buizen terug in de verticale positie en leg ze op ijs. De hellingen zijn nu klaar om te worden gebruikt. Als alternatief, de voorbereiding van de 15-50% sucrose gradiënt met behulp van een conventionele gradient voormalig.
    4. In een koelruimte Haal 1,0 ml van de top van de gradiënt en de overlay sucrose druppelsgewijs met de cytosolische lysaat (dat wil zeggen, de bovenstaande vloeistof verkregen in step 1,2).
    5. laat de buizen voorzichtig in de emmers van swinging bucket rotor. Centrifugeer de gradiënten van 100 min bij 180.000 xg bij 4 ° C onder toepassing van een ultracentrifuge.
    6. Na het centrifugeren, laat de buizen in hun bakken gedurende 20 minuten bij 4 ° C te laten verlopen stabiliseren.
  4. Sucrosegradiënt fractionering (2 uur)
    1. Haal een ultracentrifuge buis van de ultracentrifuge rotor en monteren op de collector-inrichting van een dichtheidsgradiënt fractionering System. Verzamel 1 ml fracties volgen van de absorptie bij 260 nm met een UV / VIS detector (zie figuur 1 bovenste paneel). Houd de verzamelde fracties op het ijs.
    2. Aliquots van 30-40 ul van de fracties van belang, bewaar ze op ijs alvorens ze op te slaan bij -80 ° C tot gebruik. Gebruik geen monsters of sucrose fracties die meer dan twee invriezen-ontdooien cycli ondergingen (zie figuur 1 onderste paneel).

2. Monstervoorbereiding voor Atomic Force Microscopy (3 uur)

  1. Met behulp van tape, schil van de mica vellen.
  2. Was de mica vellen 3-4 keer met DEPC-water en plaats deze in een kleine petrischaal. Dan droog het oppervlak met behulp van lucht.
  3. Bedek de mica met 200 ui 1 mM NiSO 4 en incubeer gedurende 3 minuten bij kamertemperatuur.
  4. Verwijder de nikkel-oplossing en daarna droog het oppervlak met behulp van lucht. Voer alle toekomstige stappen bij 4 ° C door het plaatsen van de petrischaal met de mica op het ijs.
  5. Dooi een hoeveelheid verkregen in 1.4.2 op ijs en voorzichtig al het monster druppel toevoegen door druppel op het mica. Met behulp van een 100-200 pi tip, verspreid het monster op het gehele oppervlak van het mica. Incubeer het monster op ijs gedurende 3 min.
  6. Bedek de micablad druppelsgewijs met 200 ul koude buffer-AFM (zie tabel 1) en incubeer gedurende 1 uur op ijs.
  7. Imaging in vloeibare
    1. Verwijder zorgvuldig de Buffer-AFM en was de mica vellen 3-4 tijds met 200 ul koud Buffer-AFM om overtollig sucrose te verwijderen. Was daarna de mica platen 3 maal met koude Washing Solution (zie tabel 1), waarbij het ​​mica oppervlak met enkele microliter oplossing.
    2. Ga naar punt 3 (Afbeelding acquisitie).
  8. Beeldvorming in de lucht
    1. Haal de Buffer-AFM en was de mica 3-4 keer met 200 ul koud Buffer-AFM om de overmaat sucrose te verwijderen. Vervolgens was de mica 3 keer met koude Washing Solution (zie tabel 1) en laat het overtollige water met behulp van papier.
    2. Laat het monster gedroogd onder de chemische kap met de bovenkant van de petrischaal gedeeltelijk open. Na 2 uur, sluit de petrischaal en bewaar bij kamertemperatuur. Meet het monster na 2-3 uur omdat ze stabiel zijn voor jaren.

3. Image Acquisition (15 min per beeld na thermische stabilisatie)

Noot: polysomen geïmmobiliseerd op mica kunnen worden afgebeeld in lucht of vloeistof, via de AC modus.

  1. Bevestig de mica om de monsterhouder met dubbelzijdig tape.
  2. Schuif de monsterhouder in de AFM etappe volgende aanwijzingen van de fabrikant. Bij beeldvorming in vloeibare, indien mogelijk, proberen het monster op een temperatuur lager dan 25 ° C te polysoomdisplays stabiliteit te verhogen.
  3. Selecteer een cantilever geschikt voor AC beeldvorming en monteren op de tip houder volgens de aanwijzingen van de fabrikant. Hier, gebruik uitkragingen met geweld constant tussen 2-20 N / m voor de lucht imaging en rond 0,1 N / m voor vloeibare beeldvorming.
  4. Stel de laser plek op de cantilever en nul het kwadrant detector signalen.
  5. Selecteer een geschikt rijden frequentie en rijd de cantilever met een amplitude van 10-20 nm.
  6. Benader het monster totdat de punt aangrijpt op het oppervlak.
  7. Selecteer een scan gebied van 2x2 micrometer, het verwerven van minstens 512x512 pixel beelden (pixel breedte <4 nm), selecteert u een live achtergrond aftrekken modus en een Z-schaal van 20-25 nm.
  8. inspecteren thij kijken voor de aanwezigheid van ronde voorwerpen gekenmerkt door de hoogte tussen 10 en 15 nm bij het verwerven luchtmengsel en 25 en 30 nm wanneer in vloeibare en de breedte in het bereik van 25-30 nm. Stel het setpoint en feedback parameters tot scherpe voorwerpen worden gevisualiseerd. De achtergrond moet relatief vlak in goede monsters verschijnen enkele 2-4 nm hoogte voorwerpen (zie figuur 2A en B).
  9. Als het beeld ziet er goed uit (zoals vermeld in punt 3.8), het verwerven van een aantal (minstens tien) 2x2 micron scans op verschillende sample gebieden.
  10. (Optioneel). Indien nodig, het verwerven van hoge resolutie beelden van de geselecteerde polysomen (zie Figuur 2C).
  11. Solliciteer software correcties (vliegtuig aftrekken en lijn per lijn correctie algoritmes) aan de AFM beelden verwijderen van willekeurige tilt en drijven effecten te corrigeren.

4. Data-analyse (30 min per beeld)

  1. afbeeldingen Export in ImageJ (optioneel: breng een schaal factor) preferentially met een lossless compressie formaat, bijvoorbeeld de TIFF-formaat (zie figuur 3A).
  2. Gebruik de ImageJ macro toolset RiboPick.ijm (in de ImageJ macro / toolset subdirectory moet worden gekopieerd) aan ribosomen in polysomen (zie figuur 3B) tellen en berekenen statistische eigenschappen van het monster (zie figuur 3C).
    1. Start het laden van een afbeelding met behulp van de tool die het programma geïnitialiseerd.
    2. Pluk het ribosoom centra met de standaard ImageJ gereedschap (shift + linker muisknop kan de multi-selectie van ribosomen). Markeer de geselecteerde ribosomen met de <mark> tool. Ribosoom coördinaten zal verschijnen in een aangepaste tekst venster.
    3. Voeg meer ribosomen dezelfde polysoomdisplays herhalen van de procedure aangegeven in het punt 4.2.2.
    4. Verwijder ten onrechte gemarkeerd ribosomen met behulp van de gereedschap (begint het verwijderen van de laatst toegevoegde ribosoom aan de eerste212; in de huidige polysoomdisplays alleen).
    5. Wanneer de polysoom is voltooid, gebruikt u de tool. Aangezien het polysoom wordt toegevoegd als een overlay aan het beeld, wordt het tekstvenster bijgewerkt.
    6. Gebruik de te schrijven het ribosoom coördineert een PNG-afbeelding die de geplukt ribosomen en polysomen een samenvatting van het bestand (de standaard eenheden van het beeld worden gebruikt) en. Het originele beeld is gesloten zonder te worden opgeslagen.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Resultaten

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Sucrosegradiënt polysomale profilering van de hele hersenen van muizen

Het is mogelijk om polysomen zuiveren van een cellulair lysaat door polysomale profielen om macromoleculen scheidt volgens hun gewicht en grootte. Met polysomale profilering, cytoplasmatische lysaten verkregen uit gekweekte cellen of weefsels, zoals in dit voorbeeld, worden geladen op een lineaire sucrosegradiënt en verwerkt door ultracentr...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Discussie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

De structuur van DNA werd bewezen van cruciaal belang voor het proces van transcriptie en de organisatie van de chromatinestructuur geavanceerde ons begrip van transcriptionele regulatie van genexpressie te beschrijven, is het essentieel om de organisatie en structuur van polysomen analyseren de waarheidsgetrouwe begrip verbeteren van de vertaling en de regelgeving.

Met de beschreven protocol, een optimale dichtheid van polysomen zacht geïmmobiliseerd op een vlak oppervlak, geschikt voor AFM...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Openbaarmakingen

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

De auteurs hebben geen concurrerende financiële belangen in dit artikel en niets te onthullen.

Dankbetuigingen

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Dit onderzoek werd ondersteund door het AXonomIX-onderzoeksproject gefinancierd door de Provincia Autonoma di Trento, Italië.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Materialen

Lijst van materialen gebruikt in dit artikel
NaamBedrijfCatalogusnummerOpmerkingen
CycloheximideSigma01810Prepararation van lysate
DNAseIThermo Scientific89836Prepararation van lysate
RiboLock RNAse InhibitorLife technologiesEO-0381Prepararation van lysate
DEPCSigma40718Prepararation van lysate
Triton X100SigmaT8532Prepararation van lysate
DTTSigma43815Prepararation van lysate
Sodium DeoxycholateSigmaD6750Prepararation van lysate
Microcentrifuge Eppendorf5417RPrepararation van lysate
SucroseSigmaS5016Prepararation van sucrosegradiënt
UltracentrifugeBeckman CoulterOptima LE-80KSucrose gradiënt centrifugatie
Ultracentrifuge RotorBeckman CoulterSW 41 TiSucrose gradiënt centrifugatie
Polyallomer tubeBeckman Coulter331372Sucrose gradiënt centrifugatie
Density Gradient Fractionation System Teledyne Isco67-9000-176Sucrose gradiënt fractievorming
AFMAsylum ResearchCypherPolysoom visualisatie

Referenties

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Buttgereit, F., Brand, M. D. A hierarchy of ATP-consuming processes in mammalian cells. Biochem J. 312, 163-167 (1995).
  2. Russell, J. B., Cook, G. M. Energetics of bacterial growth: balance of anabolic and catabolic reactions. Microbiol Rev. 59 (1), 48-62 (1995).
  3. Vogel, C., et al. Sequence signatures and mRNA concentration can explain two-thirds of protein abundance variation in a human cell line. Mol Syst Biol. 6, 400(2010).
  4. Schwanhäusser, B., et al. Global quantification of mammalian gene expression control. Nature. 473, 337-342 (2011).
  5. Tebaldi, T., et al. Widespread uncoupling between transcriptome and translatome variations after a stimulus in mammalian cells. BMC Genomics. 13, 220(2012).
  6. Kondrashov, N., et al. Ribosome-mediated specificity in Hox mRNA translation and vertebrate tissue patterning. Cell. 145 (3), 383-397 (2011).
  7. Topisirovic, I., Svitkin, Y. V., Sonenberg, N., Shatkin, A. J. Cap and cap-binding proteins in the control of gene expression. Wiley Interdiscip Rev RNA. 2, 277-298 (2011).
  8. Darnell, J. C., et al. FMRP stalls ribosomal translocation on mRNAs linked to synaptic function and autism. Cell. 146 (2), 247-261 (2011).
  9. Pircher, A., et al. An mRNA-derived noncoding RNA targets and regulates the ribosome. Mol Cell. 54 (1), 147-155 (2014).
  10. Simms, C. L., et al. An active role for the ribosome in determining the fate of oxidized mRNA. Cell Rep. 9 (4), 1256-1264 (2014).
  11. Kraushar, M. L., et al. Temporally defined neocortical translation and polysome assembly are determined by the RNA-binding protein Hu antigen R. Proc Natl Acad Sci U S A. 111 (36), E3815-E3824 (2014).
  12. van Heesch, S., et al. Extensive localization of long noncoding RNAs to the cytosol and mono- and polyribosomal complexes. Genome Biol. 15 (1), R6(2014).
  13. Preissler, S., et al. Not4-dependent translational repression is important for cellular protein homeostasis in yeast. EMBO J. 34 (14), 1905-1924 (2015).
  14. Palade, G. E. A small particulate component of the cytoplasm. J Biophys Biochem Cytol. 1 (1), 59-68 (1955).
  15. McQuillen, K., Roberts, R. B., Britten, R. J. Synthesis of nascent protein by ribosomes in Escherichia coli. Proc Natl Acad Sci U S A. 45 (9), 1437-1447 (1959).
  16. Wettstein, F. O., Staehelin, T., Noll, H. Ribosomal aggregate engaged in protein synthesis: characterization of the ergosome. Nature. 2 (197), 430-435 (1963).
  17. Dimitriadis, E. K., et al. Tetrameric organization of vertebrate centromeric nucleosomes. Proc Natl Acad Sci U S A. 107 (47), 20317-20322 (2010).
  18. Allen, M. J., et al. Atomic force microscope measurements of nucleosome cores assembled along defined DNA sequences. Biochemistry. 32 (33), 8390-8396 (1993).
  19. Ban, N., Nissen, P., Hansen, J., Moore, P., Steitz, T. The complete atomic structure of the large ribosomal subunit at 2.4 Å resolution. Science. 289 (5481), 905-920 (2000).
  20. Schluenzen, F., et al. Structure of functionally activated small ribosomal subunit at 3.3 Å resolution. Cell. 102 (5), 615-623 (2000).
  21. Ben-Shem, A., et al. The structure of the eukaryotic ribosome at 3.0 Å resolution. Science. 334 (6062), 1524-1529 (2011).
  22. Anger, A. M., et al. Structures of the human and Drosophila 80S ribosome. Nature. 497 (7447), 80-85 (2013).
  23. Brandt, F., et al. The native 3D organization of bacterial polysomes. Cell. 136, 261-271 (2009).
  24. Myasnikov, A. G., et al. The molecular structure of the left-handed supra-molecular helix of eukaryotic polyribosomes. Nat. Commun. 5, 5294(2014).
  25. Afonina, Z. A., Myasnikov, A. G., Shirokov, V. A., Klaholz, B. P., Spirin, A. S. Formation of circular polyribosomes on eukaryotic mRNA without cap-structure and poly(A)-tail: a cryo electron tomography study. Nucleic Acids Res. 42 (14), 9461-9469 (2014).
  26. Afonina, Z. A., Myasnikov, A. G., Shirokov, V. A., Klaholz, B. P., Spirin, A. S. Conformation transitions of eukaryotic polyribosomes during multi-round translation. Nucleic Acids Res. 43 (1), 618-628 (2015).
  27. Viero, G., et al. Three distinct ribosome assemblies modulated by translation are the building blocks of polysomes. J Cell Biol. 208 (5), 581-596 (2015).
  28. Brandt, F., Carlson, L. -A., Hartl, F. U., Baumeister, W., Grünewald, K. The three-dimensional organization of polyribosomes in intact human cells. Mol. Cell. 39, 560-569 (2010).
  29. Wu, X., Liu, W. Y., Xu, L., Li, M. Topography of ribosomes and initiation complexes from rat liver as revealed by atomic force microscopy. Biol Chem. 378 (5), 363-372 (1997).
  30. Yoshida, T., Wakiyama, M., Yazaki, K., Miura, K. Transmission electron and atomic force microscopic observation of polysomes on carbon-coated grids prepared by surface spreading. J. Electron Microsc (Tokyo). 46 (6), 503-506 (1997).
  31. Mikamo, E. C., et al. Native polysomes of Saccharomyces cerevisiae in liquid solution observed by atomic force microscopy. J. Struct. Biol. 151, 106-110 (2005).
  32. Mikamo-Satoh, E. A., et al. Profiling of gene-dependent translational progress in cellfree protein synthesis by real-space imaging. Anal. Biochem. 394, 275-280 (2009).
  33. Bernabò, P., et al. Studying translational control in non-model stressed organisms by polysomal profiling. J. Insect Physiol. 76, 30-35 (2015).
  34. Schneider, C. A., Rasband, W. S., Eliceiri, K. W. IH Image to ImageJ: 25 years of image analysis. Nat. Methods. 9, 671-675 (2012).
  35. Lauria, F., et al. RiboAbacus: a model trained on polyribosome images predicts ribosome density and translational efficiency from mammalian transcriptomes. Nucleic Acids Res. , (2015).
  36. Al Omran, A. J., et al. Live Imaging of the Ependymal Cilia in the Lateral Ventricles of the Mouse Brain. J Vis Exp. (100), e52853(2015).
  37. Warner, J. R., Rich, A., Hall, C. E. Electron microscope studies of ribosomal clusters synthesizing hemoglobin. Science. 138, 1399-1403 (1962).
  38. Yazaki, K., Yoshida, T., Wakiyama, M., Miura, K. Polysomes of eukaryotic cells observed by electron microscopy. J. Electron Microsc (Tokyo). 49, 663-668 (2000).

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Herprints en machtigingen

Toestemming aanvragen om de tekst of afbeeldingen van dit JoVE-artikel te hergebruiken

Toestemming aanvragen

Trefwoorden

Polysome PurificationBrain TissueSucrose GradientMica DepositionRibosome ImagingNanoscale ResolutionCryo EM ComplementaryTranslational ControlPolysome Organization

Gerelateerde artikelen