Een abonnement op JoVE is vereist om deze inhoud te bekijken. Log in of start vandaag met uw gratis proefperiode.

Methodenartikel

Trap en Cilinder Test: een nieuwe benadering voor Motor Resultaat van Deep Brain Stimulation Effecten op het Hemiparkinsonian Rat Assess

14.8K weergaven

DOI:

10.3791/53951

31 mei 2016

In dit artikel

Samenvatting

Diepe hersenstimulatie (DBS) is een effectieve behandelingsoptie voor de ziekte van Parkinson. We hebben een onderzoeksontwerp opgesteld om nieuwe stimulatieparadigma's bij ratten te screenen. Het protocol beschrijft het gebruik van de trappentest en cilindertest voor de beoordeling van motorische resultaten bij DBS-behandelde hemiparkinsonische ratten.

Samenvatting

Diepe hersenstimulatie van de subthalamische nucleus is een effectieve behandeling voor de ziekte van Parkinson. In ons lab hebben we een protocol om verschillende neurostimulatie patronen te screenen in hemiparkinsonian (eenzijdige laesie) ratten. Het bestaat uit het creëren van laesies eenzijdige Parkinson door injectie van 6-hydroxydopamine (6-OHDA) in de rechter mediale voorhersenbundel, implanteren chronische stimulering elektroden in de nucleus subthalamicus en evalueren motor resultaten eind 24 uur periode kabelgebonden externe neurostimulatie . De stimulatie werd uitgevoerd met constante stroom stimulatie. De amplitude is ingesteld onder de individuele drempel voor bijwerkingen 20%. De evaluatie motorische uitkomst werd gedaan door de beoordeling van de spontane poot gebruik in de cilinder-test volgens Shallert en door de beoordeling van geschoolde bereiken in het trappenhuis proef volgens Montoya. Dit protocol beschrijft in detail de training in de doos trap, de cylinder test, alsmede het gebruik van zowel hemiparkinsonian ratten. Het gebruik van beide tests is nodig, want de trap-test lijkt gevoeliger voor fijne motorische vaardigheden stoornis te zijn en vertoont een grotere gevoeligheid te veranderen tijdens neurostimulatie. De combinatie van de eenzijdige Parkinson model en de twee gedragstesten maakt de beoordeling van de verschillende stimulatie parameters op een gestandaardiseerde manier.

Inleiding

Diepe hersenstimulatie van de subthalamische nucleus (STN) is een effectieve behandeling voor de ziekte 1 en andere bewegingsstoornissen Parkinson. De onderliggende mechanismen zijn nog slecht begrepen en multifactorieel, maar een belangrijk kenmerk is de modulatie van neuronale netwerkactiviteit door repeterende depolarisatie van neuronen in de nabijheid van de stimulerende elektrode 2-4. Hoge-frequentie (> 100 Hz) stimulatie is nodig om een ​​gunstig effect in de meeste doelen hersenen en voor de meeste indicaties van DBS. Bijwerkingen van diepe hersenstimulatie gevolg van onbedoelde coactivation andere vezels, die onder de stimulatie volume en die bevordelijk verschillende functies, zoals de piramidebaan. Daarom zou het wenselijk zijn om stimulatieparameters, die bij voorkeur gunstig neurale elementen activeren ontwikkelen, maar vermijdt de coactivation neveneffect elementen 5,6. Hoewel neurofysiologie dergelijke fijne Tuni kunnen aanbiedenng opties van DBS, heeft de wetenschappelijke vooruitgang minimaal geweest gedurende de laatste twee decennia, omdat programmeringsstrategieën hebben voornamelijk met "trial and error" bij patiënten geëvalueerd en beperkt door de beperkte programmeringsopties van commercieel verkrijgbare DBS-apparaten, in plaats van neurofysiologische inzicht en experimentele instellingen gedefinieerd om systematisch te onderzoeken de volledige parameter ruimte.

Om de translationele wegversperring in DBS onderzoek ondervangen stellen wij een protocol om alternatieve stimulatie parameters in knaagdier modellen van parkinsonisme voorafgaand aan klinische exploratie screenen. Ziekte van Parkinson eenzijdige bij ratten wordt gemodelleerd met 6-hydroxydopamine injecties in de rechter mediale voorhersenbundel 7,8. De resulterende laesie, verder beschreven als hemiparkinsonian, wordt beoordeeld in het apomorfinetest door evaluatie van de rotatie score na een lage dosis apomorfine-injectie en bevestigd na het slachten door tyrosine hydroxylase immunohistochemistry. De werkwijze is gemakkelijk te verwerken en uiterst reproduceerbaar, terwijl die van een lage mortaliteit en morbiditeit. De tekorten resulterende motor zijn zeer discreet 7,8; de dieren vertonen een lichte aantasting van de contralaterale linkerpoot zowel tijdens spontane exploratie en complexe grijpgedrag 9,10.

Om de effectiviteit van diepe hersenstimulatie protocollen tests nodig waardoor het meten van een snelle en betrouwbare verandering motorprestaties en kan in de tijd met verschillende instellingen neurostimulatie herhaald evalueren. Verschillende groepen hebben verschillende stimulatie benaderingen en verschillende tests voorgesteld om de motorische functies bij ratten 11 met zeer variabele en inconsistente uitkomsten 11-14 beoordelen. Dit dwong ons om een ​​reeks tests met een hoge voorspellen geldigheid en complementariteit te kiezen. Bovendien, voor de beoordeling van de motorische uitkomst onder diepe hersenstimulatie voorwaarden, tests werden begunstigd die zouden kunnen worden uitgevoerd door animals aangesloten via de kabel op de stimulus generator. Voor deze doeleinden hebben we onze testbatterij bestaande uit een test voor poot gebruik asymmetrie en één test voor ervaren verstrekkend. De onderzoeksopzet is weergegeven in figuur 1.

Voor spontane poot gebruik uitgevoerd we de cilinder-test beschreven door Shallert 15, dat is een veel gebruikte test voor poot gebruik tijdens verticale verkenning. Geen training van het dier vereist. Voor de beoordeling van complexere grijpgedrag hebben we de trap test overeenkomstig Montoya 16. Ons protocol is aangepast aan Kloth 17. De ratten worden getraind gedurende twaalf dagen bereiken pellets uit de testbox. Na de trainingsperiode de test kan worden toegepast op het complex grijpgedrag gemeten door telling van het succespercentage genaamd aantal pellets gegeten. Dit artikel presenteert de gedetailleerde opleiding in de doos trap evenals de prestaties van zowel behavioral testen onder naïef, hemiparkinsonian en deep brain stimulation omstandigheden.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Protocol

Dierproeven werden goedgekeurd door de Universiteit van Würzburg en de juridische toestand autoriteiten van Neder-Franken in overeenstemming met de richtlijnen voor de bescherming van dieren en de richtsnoeren van de Europese Gemeenschappen (erkenningsnummer: 55,2-2531,01 76/11). Alle inspanningen werden geleverd om de pijn of ongemak van de gebruikte dieren zoveel mogelijk te beperken.

Opmerking: Elektrode implantatie werd uitgevoerd zoals elders 18 beschreven.

1. Cilinder Test (figuur 2)

  1. Bereid een doorzichtig plastic glazen cilinder (hoogte: 40 cm, diameter: 19 cm) van de cilinder reinigen met een 0,1% azijnzuuroplossing.
  2. Bereid kaarten met datum van experiment en elke rat identificatienummer.
  3. Plaats twee spiegels 90 ° hoek achter de cilinder.
  4. Plaats de camera voor de cilinder zodanig dat de afstand tussen de camera en de cilinder kan een goed zicht op de poten.
  5. Plaats de rat in het vak transport.
    Opmerking: De dieren moeten door de onderzoeker vóór de test op stress voorkomen worden behandeld.
  6. Vervoer de rat van kooi naar de cilinder met behulp van het vak transport.
  7. Plaats de rat in de cilinder (figuur 3).
    1. Voer altijd alle gedragstesten op hetzelfde tijdstip van de dag circadiane verschillen in activiteit te voorkomen. Als het dier is aangesloten op de stimulusgenerator de kabel of de kabel wordt gedurende het experiment niet verdraaid.
  8. Druk op de "record" knop op de camera. Laat de kaart met de werkelijke datum van het experiment en de rat het identificatienummer van de camera. Begin met opnemen.
  9. Na vijf minuten, verwijder het dier uit de cilinder en zet het terug in de kooi met behulp van het vak transport.
  10. Reinig de cilinder met een 0,1% azijnzuuroplossing.
  11. Evalueer de poot gebruik van opgenomen beelden door telling van het linker- en rechterpoot wand contacten (paw gebruik in procent) en rearings (permanent op achterpoten met of zonder steunen op de cilinderwand). De cilinder test kan ook automatisch worden geëvalueerd door een geschikte software.
    Opmerking: Een gezonde rat gebruikt beide poten in gelijke mate. De hemiparkinsonian rat maakt gebruik van de poot aangetast als gevolg van laesie in mindere mate.

2. Trap Test (figuur 4)

  1. acquisitie Phase
    1. Eén dag voor de training raken de dieren met de pellets die in de trap proef.
      1. Optioneel: Om de motivatie van het dier maken gebruik van een calorische restrictie (10-15 g standaard laboratorium chow het lichaamsgewicht te handhaven op 90% van de vrije voeding level 16). Dit is echter niet verplicht om een ​​positieve training effect te bereiken. Deze studie werd uitgevoerd zonder voedsel beperking.
    2. Bereid een doorzichtige plastic glazen trap doos (hoogte: 34,5 cm, lengte: 35,5 cm, breedte: 12 cm en smal compartiment 6 cm) met het schoonmaken van de doos met een 0,1% acetic zure oplossing. Let op: De trap doos is een twee-compartimenten-box met een verhoogd platform en twee trappen in de smalle ruimte. De linker stappen op de trap in de smalle ruimte kan alleen worden bereikt met de linker poot, de juiste stappen alleen met de juiste poot.
      Opmerking: De standaard dozen trap bestaat uit twee compartimenten met een deksel, als het wordt gebruikt voor experimenten met ratten gestimuleerd via kabel, gebruikt een hoge doos zonder deksel.
    3. Verwijder de trap en vullen de putten op elke stap met acht 45 mg pellets.
    4. Plaats de trap en zet acht extra pellets op de verhoogde platform.
    5. Plaats de rat in het vak transport.
    6. Vervoer de rat van kooi naar de trap box met behulp van de box transport.
    7. Plaats de rat in het vak trap (Figuur 5).
    8. Na vijf minuten, verwijder het dier uit de box trap en zet het terug in de kooi met behulp van het vak transport.
    9. Opmerking hoeveelpellets werden gegeten van platform en (uiteindelijk) van rechts en links trap.
    10. Vul de trap door het invullen van de putten op elke stap met acht 45 mg pellets.
    11. Reinig de box trap met een 0,1% azijnzuuroplossing en plaats de extra pellets op het platform.
    12. Herhaal deze procedure (acquisitie fase) drie dagen op een rij.
      Opmerking: Alle beschreven experimenten werden uitgevoerd op mannelijke Sprague Dawley ratten. De duur van de verschillende training modules kunnen verschillen in ratten van verschillende stam, geslacht en vender.
  2. Vrije Keuze Test
    1. Reinig de box trap met een 0,1% azijnzuuroplossing.
    2. Verwijder de trap en vullen de putten op elke stap met acht 45 mg pellets.
    3. Plaats de rat in het vak transport.
    4. Vervoer de rat van kooi naar de trap box met behulp van de box transport.
    5. Plaats de rat in het vak trappenhuis.
    6. Na vijf minuten, verwijder het dier uit de trapcase doos en zet het terug in de kooi met behulp van het vak transport.
      Merk op hoe veel pellets werden gegeten van rechts en links trap.
    7. Opmerking: Als de dieren nog steeds problemen met grijpen pellet hebben, voeg wat meer op het platform waar ze gemakkelijk kunnen worden bereikt.
    8. Vul de trap door het invullen van de putten op elke stap met acht 45 mg pellets.
    9. Reinig de box trap met een 0,1% azijnzuuroplossing de volgende dier.
    10. Herhaal deze procedure (vrije keuze fase) drie dagen op een rij.
      Opmerking: De gepresenteerde resultaten werden verkregen door het trainen uitgevoerd zonder een rustperiode tussen de modules. Sommige groepen de voorkeur aan een rustdag voor de consolidatie, om de opleiding te ondersteunen.
  3. Gedwongen Keuze Test
    1. Reinig de box trap met een 0,1% azijnzuuroplossing.
    2. Verwijder de trap en vullen de putten op elke stap op de linker trap met acht (eerste drie dagen van de module) of vier (opeenvolgende three dagen van de module) 45 mg pellets.
      1. Voer de geforceerde proef keuze aan de kant, waar de aantasting plaatsvindt.
        Let op: Wij voeren de Parkinson letsel aan de rechter hersenhelft en daarom trainen selectief de linkerpoot.
    3. Plaats de rat in het vak transport.
    4. Vervoer de rat van kooi naar de trap box met behulp van de box transport.
    5. Plaats de rat in het vak trappenhuis.
    6. Na vijf minuten, verwijder het dier uit de box trap en zet het terug in de kooi met behulp van het vak transport.
    7. Merk op hoe veel pellets werden gegeten van links trap.
    8. Vul de trap door het invullen van de putten op elke stap met acht of vier 45 mg pellets (aantal pellets is afhankelijk van opleiding dag).
    9. Reinig de box trap met een 0,1% azijnzuuroplossing de volgende dier.
    10. Herhaal deze procedure (geforceerde keuze fase) zes dagen in een rij.
  4. data Acquisition
    1. Voer het experiment zoals beschreven voor de geforceerde keuze module (vier pellets in elk putje links trap) op twee opeenvolgende dagen. Bereken het succespercentage (aantal pellets gegeten) als gemiddelde van de twee dagen.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Resultaten

Alle dieren ondergingen een post mortem histologische verificatie van zowel de dopaminerge laesie en de elektrode locatie. Alleen dieren met de juiste plaatsing van de elektroden in de STN (figuur 6) en volledige dopaminerge letsel (> 90% verlies van dopaminerge neuronen in de substantia nigra) opgenomen in de resultaten sectie (Figuur 7).

De cilinder-test uitgevoerd onder laesie voorwaarde...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Discussie

Dit artikel beschrijft een uitgebreide training protocol voor de cilinder en trap te testen. Deze laatste is ontworpen om complexe grijpgedrag en fijne motoriek te beoordelen als gevolg van het bereiken van bekwaam bij ratten 16,17. De uitkomst temperatuur wordt uitgedrukt als aantal pellets gegeten tijdens de proef, die een objectieve meting. Het protocol kan worden gebruikt in ratmodellen voor de ziekte van Parkinson en andere auto ziektemodellen. De cilinder-test gaat om een ​​eenvoudige benadering van poo...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Openbaarmakingen

De auteurs verklaren dat ze geen concurrerende financiële belangen hebben.

Dankbetuigingen

Dit werk werd ondersteund door Interdisziplinäres Zentrum für Klinische Forschung (IZKF), University Clinics Würzburg, Duitsland (project N-215).

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Materialen

Lijst van materialen gebruikt in dit artikel
NaamBedrijfCatalogusnummerOpmerkingen
Staircase box without lidGlas Keil, Germanyop maat gemaakt
Cylinder boxGlas Keil, Germanyop maat gemaakt
Dustless precision pellets, 45 mgBio ServF0021

Referenties

  1. Fasano, A., Lozano, A. M. Deep brain stimulation for movement disorders: 2015 and beyond. Current opinion in neurology. , (2015).
  2. McIntyre, C. C., Savasta, M., Kerkerian-Le Goff, L., Vitek, J. L. Uncovering the mechanism(s) of action of deep brain stimulation: activation, inhibition, or both. Clinical neurophysiology : official journal of the International Federation of Clinical Neurophysiology. 115, 1239-1248 (2004).
  3. Deniau, J. M., Degos, B., Bosch, C., Maurice, N. Deep brain stimulation mechanisms: beyond the concept of local functional inhibition. The European journal of neuroscience. 32, 1080-1091 (2010).
  4. Modolo, J., Legros, A., Thomas, A. W., Beuter, A. Model-driven therapeutic treatment of neurological disorders: reshaping brain rhythms with neuromodulation. Interface focus. 1, 61-74 (2011).
  5. Groppa, S., et al. Physiological and anatomical decomposition of subthalamic neurostimulation effects in essential tremor. Brain : a journal of neurology. 137, 109-121 (2014).
  6. Reich, M. M., et al. Short pulse width widens the therapeutic window of subthalamic neurostimulation. Annals of clinical and translational neurology. 2, 427-432 (2015).
  7. Blandini, F., Armentero, M. T., Martignoni, E. The 6-hydroxydopamine model: news from the past. Parkinsonism & related disorders. 14, Suppl 2 124-129 (2008).
  8. Bove, J., Perier, C. Neurotoxin-based models of Parkinson's disease. Neuroscience. 211, 51-76 (2012).
  9. Metz, G. A., Tse, A., Ballermann, M., Smith, L. K., Fouad, K. The unilateral 6-OHDA rat model of Parkinson's disease revisited: an electromyographic and behavioural analysis. The European journal of neuroscience. 22, 735-744 (2005).
  10. Miklyaeva, E. I., Castaneda, E., Whishaw, I. Q. Skilled reaching deficits in unilateral dopamine-depleted rats: impairments in movement and posture and compensatory adjustments. The Journal of neuroscience : the official journal of the Society for Neuroscience. 14, 7148-7158 (1994).
  11. Li, X. H., et al. High-frequency stimulation of the subthalamic nucleus restores neural and behavioral functions during reaction time task in a rat model of Parkinson's disease. Journal of neuroscience research. 88, 1510-1521 (2010).
  12. Darbaky, Y., Forni, C., Amalric, M., Baunez, C. High frequency stimulation of the subthalamic nucleus has beneficial antiparkinsonian effects on motor functions in rats, but less efficiency in a choice reaction time task. The European journal of neuroscience. 18, 951-956 (2003).
  13. Fang, X., Sugiyama, K., Akamine, S., Namba, H. Improvements in motor behavioral tests during deep brain stimulation of the subthalamic nucleus in rats with different degrees of unilateral parkinsonism. Brain research. 1120, 202-210 (2006).
  14. Lindemann, C., Krauss, J. K., Schwabe, K. Deep brain stimulation of the subthalamic nucleus in the 6-hydroxydopamine rat model of Parkinson's disease: effects on sensorimotor gating. Behavioural brain research. 230, 243-250 (2012).
  15. Schallert, T., Fleming, S. M., Leasure, J. L., Tillerson, J. L., Bland, S. T. CNS plasticity and assessment of forelimb sensorimotor outcome in unilateral rat models of stroke, cortical ablation, parkinsonism and spinal cord injury. Neuropharmacology. 39, 777-787 (2000).
  16. Montoya, C. P., Campbell-Hope, L. J., Pemberton, K. D., Dunnett, S. B. The 'staircase test': a measure of independent forelimb reaching and grasping abilities in rats. Journal of neuroscience. 36, 219-228 (1991).
  17. Kloth, V., Klein, A., Loettrich, D., Nikkhah, G. Colour-coded pellets increase the sensitivity of the staircase test to differentiate skilled forelimb performances of control and 6-hydroxydopamine lesioned rats. Brain research bulletin. 70, 68-80 (2006).
  18. Fluri, F., Volkmann, J., Kleinschnitz, C. Microelectrode guided implantation of electrodes into the subthalamic nucleus of rats for long-term deep brain stimulation. JoVE. , (2015).
  19. Paxinos, G., Watson, C. The rat brain in stereotactic coordinates. , (2008).
  20. Nikkhah, G., Rosenthal, C., Hedrich, H. J., Samii, M. Differences in acquisition and full performance in skilled forelimb use as measured by the 'staircase test' in five rat strains. Behavioural brain research. 92, 85-95 (1998).
  21. Angelov, S. D., Dietrich, C., Krauss, J. K., Schwabe, K. Effect of Deep Brain Stimulation in Rats Selectively Bred for Reduced Prepulse Inhibition. Brain stimulation. , (2014).
  22. de Haas, R., et al. Wireless implantable micro-stimulation device for high frequency bilateral deep brain stimulation in freely moving mice. Journal of neuroscience methods. 209, 113-119 (2012).
  23. Heo, M. S., et al. Fully Implantable Deep Brain Stimulation System with Wireless Power Transmission for Long-term Use in Rodent Models of Parkinson's Disease. Journal of Korean Neurosurgical Society. 57, 152-158 (2015).
  24. Gut, N. K., Winn, P. Deep brain stimulation of different pedunculopontine targets in a novel rodent model of parkinsonism. J. Neurosci. 35, 4792-4803 (2015).
  25. Whishaw, I. Q., Gorny, B., Foroud, A., Kleim, J. A. Long-Evans and Sprague-Dawley rats have similar skilled reaching success and limb representations in motor cortex but different movements: some cautionary insights into the selection of rat strains for neurobiological motor research. Behavioural brain research. 145, 221-232 (2003).
  26. Honndorf, S., Lindemann, C., Tollner, K., Gernert, M. Female Wistar rats obtained from different breeders vary in anxiety-like behavior and epileptogenesis. Epilepsy research. 94, 26-38 (2011).
  27. Jadavji, N. M., Metz, G. A. Sex differences in skilled movement in response to restraint stress and recovery from stress. Behavioural brain research. 195, 251-259 (2008).
  28. Kucker, S., Tollner, K., Piechotta, M., Gernert, M. Kindling as a model of temporal lobe epilepsy induces bilateral changes in spontaneous striatal activity. Neurobiology of disease. 37, 661-672 (2010).
  29. Smith, L. K., Metz, G. A. Dietary restriction alters fine motor function in rats. Physiology & behavior. 85, 581-592 (2005).

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Herprints en machtigingen

Tags

Traptestbeoordeling van motorische uitkomstennucleus subthalamicus6-OHDA-laesiegedragstestbatterijbekabelde stimulatiespontaan pootgebruik