Methodenartikel

Peptide Scanning-bijgestaan ​​Identificatie van een monoklonaal antilichaam-erkende Lineair B-celepitoop

9.2K weergaven

⸱

DOI:

10.3791/55417

⸱

24 maart 2017

 , 
1Institute of Cellular and Organismic Biology, Academia Sinica

In dit artikel

Samenvatting

Hier presenteren de auteurs een eenvoudig en efficiënt protocol om een lineair antigeen epitoop te definiëren met behulp van een gezuiverd monoklonaal antilichaam en peptide scanning door dot-blot hybridisatie. De geïdentificeerde epitoop kan vervolgens worden gebruikt in therapeutische en diagnostische toepassingen.

Samenvatting

De identificatie van een antigeen epitoop door het immuunsysteem zorgt voor het begrijpen van het beschermingsmechanisme van neutraliserende antilichamen die de ontwikkeling van vaccins en geneesmiddelen peptide kan vergemakkelijken. Peptide scannen is een eenvoudige en efficiënte methode die rechtlijnig brengt de lineaire epitoop herkend door een monoklonaal antilichaam (mAb). Hier de auteurs presenteren een epitoop bepaling methodiek waarbij serieel afgeknotte recombinante eiwitten, synthetisch peptide ontwerp en dot-blot hybridisatie voor de antigene herkenning van nerveuze necrose virus manteleiwit met behulp van een neutraliserende mAb. Deze techniek is gebaseerd op de dot-blot hybridisatie van synthetische peptiden en mAbs op een polyvinylideenfluoride (PVDF) membraan. De minimale antigeen gebied van een viraal manteleiwit herkend door de RG-M56 mAb kan teruggebracht worden stap voor stap bijgesneden peptide mapping op een 6-meer peptide epitoop. Bovendien, alanine scanning mutagenese en residuen substitutie kan worden uitgevoerd om de binding betekenis van elke aminozuurrest die het epitoop karakteriseren. De resten aan weerszijden van de epitoop website bleken cruciale rol in peptide conformatie regelgeving spelen. Het geïdentificeerde epitoop peptide kan worden gebruikt om kristallen van epitoop peptide-antilichaam complexen een röntgendiffractie onderzoek en functionele concurrentie, of therapeutische vormen.

Inleiding

In het immuunsysteem, de recombinatie van V-, D- en J-segmenten zorgt voor antilichamen tegen enorme variaties van complementariteitsbepalende gebieden (CDR's) te creëren voor binding aan verschillende antigenen aan de host pathogene infectie te beschermen. De verdediging neutraliserende antilichamen tegen antigenen afhankelijk van de ruimtelijke complementariteit van de CDR's van de antilichamen en de epitopen van de antigenen. Daarom zal een begrip van deze moleculaire interactie profylactisch vaccin ontwerp en therapeutische ontwikkeling peptide helpen. Dit kan echter neutralisatie interactie beïnvloed door zowel meerdere antigene domeinen van één antigeen en door meerdere CDR's van antilichamen, die bijgevolg het epitoop behandelingsprocedure complexer. Gelukkig is de ontwikkeling van hybridoma technologie, die afzonderlijke antilichaamproducerende cellen ondersteunen gen met myelomacellen, zorgt voor een constant delende partij cellen secrete een specifiek antilichaam, bekend als een monoklonaal antilichaam (mAb) 1. Hybridoma cellen die zuivere hoge affiniteit mAbs binden aan een enkele antigene domein van een specifiek antigeen. De verhouding van het antigeen-antilichaam gevestigde verschillende manieren, waaronder peptide scannen, kan worden gebruikt om het epitoop van een antigeen via de bijbehorende mAb te bepalen. Recente ontwikkelingen in de synthetische peptide technologie hebben het peptide scantechniek toegankelijker en handiger te voeren gemaakt. Kort samengevat, een set van overlappende synthetische peptiden worden geproduceerd volgens een doelantigeen sequentie en worden gekoppeld aan een vaste drager membraan mAb hybridisatie. Peptide scanning biedt niet alleen een eenvoudige manier aan het antilichaam bindingsgebied kaart, maar vergemakkelijkt ook aminozuur (aa) mutagenese met scannen of residu substitutie de bindingsinteractie tussen elke aa residu van het epitoop peptide en de CDR's van het antilichaam te beoordelen.

Hier de huidige studie beschrijft een protocol voor de efficiënte identificatie van het lineaire epitoop van de gele grouper nerveuze necrose (YGNNV) manteleiwit met een neutraliserende mAb 2, 3, 4. Het protocol omvat mAb preparaat, constructie en expressie van serieel afgeknotte recombinante eiwitten, synthetische peptiden overlappend ontwerp, dot-blot hybridisatie, alanine scanning en substitutie mutagenese. Gezien de hoge kosten van peptidesynthese, de stap van het serieel afkappen de recombinante eiwitten van een gewenst doeleiwit werd gewijzigd en het antigene gebied werd teruggebracht tot ongeveer 100 tot 200 aa resten voor het synthetische peptide matrix dot-blotanalyse werd uitgevoerd.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Protocol

1. Bereiding van monoklonaal antilichaam

  1. De cultuur van de RG-M56 muis monoklonale hybridoomcellen 2 in serum-vrij medium in 175T kolven bij 37 ° C met 5% CO 2 te vullen. Verzamel de bovenstaande vloeistof wanneer de kleur van het medium wordt geel na vijf dagen incuberen.
    OPMERKING: Hybridoma cellen werden gekweekt in serumvrij medium antilichaam verontreiniging uit foetaal runderserum voorkomen.
  2. Centrifugeer de supernatant bij 4500 xg gedurende 30 min bij 4 ° C en werp de celresten pellet.
  3. Voeg 2 ml proteïne G agarose (geleverd als een 50% suspensie) aan een 5 ml kolom en equilibreren met 10 hars volumes (10 ml) ijskoude PBS.
  4. Load 200 ml van het antilichaam supernatant (stap 1.2) op de kolom en gooi de doorwerking.
  5. Voeg 10 ml ijskoude PBS om de kolom te wassen. Herhaal dit twee keer.
  6. Voeg 10 ml 50 mM glycine, pH 2,7 aan de kolom om het eiwit G-geassocieerde antilichaam te elueren. collect 900 ul fracties in een microcentrifugebuis met 100 ui 10x neutralisatie buffer (1 M Tris, 1,5 M NaCl en 1 mM EDTA, pH 8,0).
  7. Bewaar het gezuiverde antilichaam in 50% glycerol met 0,03% NaN3 bij -20 ° C.

2. Constructie en expressie van Serieel afgeknotte recombinante eiwitten

  1. Bereid een PCR reactiemengsel: 5 ui 10 x Pfu buffer, 0,2 mM van elk dNTP, 0,2 pM forward primer 3, 0,2 uM reverse primer 3, 2 mM MgSO4, 1 ng pET20b-1A59 3 plasmide-DNA, en 2,5 U ( eenheid) van Pfu DNA polymerase; voeg DDH 2 O tot een eindvolume van 50 ul.
    1. Run monsters in een automatische thermische cycler met de volgende parameters: Cyclus 1 (94 ° C gedurende 5 min); cycli 2-36 (94 ° C gedurende 30 seconden, 63 ° C gedurende 30 seconden, en 72 ° C gedurende 60 s); en cyclus 37 (72 ° C gedurende 7 min).
  2. Extraheer de polymerasekettingreactie (PCR) producten met behulp van een PCR zuivering kit 5 voor de volgende restrictie-enzymdigestie vergemakkelijken.
  3. Digest het PCR-geamplificeerde DNA-fragmenten met NdeI en XhoI-restrictie-enzymen en ligeren elk van deze DNA fragmenten in NdeI en XhoI-enzym geknipt pET-20b (+) vector. Transformeer de constructen in Escherichia coli DH-5α-competente cellen 6.
    1. Bereid het digestiemengsel in digestiebuffer (20 mM Tris-acetaat, 10 mM Mg (CH3COO) 2, 50 mM KCH 3 COO, en 1 mM DTT, pH 7,9) met 1 ug PCR-geamplificeerde DNA of pET-20b (+) vector DNA, en 2 U van NdeI en XhoI restrictie-enzymen in een uiteindelijk volume van 20 pl.
    2. Meng de spijsvertering mengsel voorzichtig en snel spin down. Incubeer bij 37 ° C gedurende 2 uur in een droge bad om te zorgen voor de volledige snijden van de beperking zittenes.
    3. Extraheer de restrictie-enzymen gedigereerde DNA-fragmenten onder toepassing van een PCR zuivering kit 5 onderstaande plasmideconstructie te vergemakkelijken.
    4. Bereid het ligatiemengsel in ligatiebuffer (66 mM Tris, 5 mM MgCl2, 1 mM ATP en 5 mM DTT, pH 7,5) met 100 ng voorverteerd, PCR-geamplificeerd DNA, 10 ng voorverteerd pET-20b (+) vector DNA en 5 U van T4 DNA ligase in een eindvolume van 10 pi.
    5. Meng de ligatiemengsel voorzichtig en snel spin down. Incubeer bij 16 ° C gedurende 18 h in een waterbad.
    6. Put 10 pi van het ligatiemengsel monsters in 100 ul van de DH-5α-competente cellen en meng voorzichtig alvorens de microcentrifugebuis op ijs gedurende 30 min. Zet de microcentrifugebuis in een droge bad bij 42 ° C gedurende 90 s aan heat shock 7 induceren. Onmiddellijk over de buis op ijs gedurende 2 minuten.
    7. Voeg 900 ul van Luria-Bertani (LB) bouillon (1% Bacto trypton, 0,5% Bacto gist extractiet en 0,5% NaCl, pH 7,0) aan de buis. Incubeer bij 37 ° C met 150 rpm schudden gedurende 45 minuten. Pellet de cellen door centrifugeren bij 4000 x g gedurende 10 min en gooi het supernatant.
    8. Resuspendeer de pellet met 50 pl LB-bouillon en uitgespreid elke transformatie op voorverwarmd LB platen met 100 ug / ml ampicilline. Incubeer de platen bij 37 ° C gedurende 16 uur.
    9. Ophalen van een enkele kolonie met een 200 ul tip en plaats deze in 3 ml LB-bouillon die 100 ug / ml ampicilline in een losjes afgedekte 15 ml buis. Incubeer bij 37 ° C met 150 rpm schudden gedurende 12 uur.
    10. Extraheer het plasmide-DNA 8 van elke kweek en de sequentie met behulp van T7-promotor en T7-terminator primers met de sequentie 9 bevestigen.
  4. Na sequentiebevestiging, transformatie 10 ng DNA uit deze pET-20b (+) plasmiden met verschillende lengtes van YGNNV manteleiwitgen in de BL-21 (DE3) stam van E. coli door onsing de heat-shock-methode 7. Volg de stappen 2.3.6-2.3.8 om de transformatie uit te voeren.
  5. Transfer een enkele kolonie van elke getransformeerde E. coli BL-21 cellen in 3 ml LB-bouillon die 100 ug / ml ampicilline in een losjes afgedekte 15 ml buis. Incubeer de cultuur bij 37 ° C met 150 rpm schudden.
  6. Koel de cultuur 25 ° C wanneer de OD 600 van de kweek ongeveer 0,6 en voeg IPTG tot een uiteindelijke concentratie van 0,4 mM om de expressie van het recombinante eiwit te induceren. Incubeer de cultuur voor een extra 4 uur bij 25 ° C met 200 rpm schudden.
  7. Breng 1 ml van de kweek in een microcentrifugebuis. Pellet de cellen door centrifugatie bij 12.000 xg gedurende 1 min en gooi het supernatant.
  8. Resuspendeer de celpellet in 100 pl denaturatie buffer (8 M ureum, 20 mM natriumfosfaat en 0,5 M NaCl, pH 7,4) door op en neer pipetteren met een micropipet. Meng door krachtig vortexen.
    LET OP: Het monster solutions moet nu halftransparant, een beetje plakkerig en klaar voor de dot-blot hybridisatie assay.

3. Design en Synthese van overlappende peptiden

  1. Ontwerp en synthetiseren 3 seriële 20-meer peptiden die elk overlappen met zijn opvolger met 10 aa resten uit de 195-338 aa regio van het YGNNV manteleiwit om een beperking van het epitoop regio RG-M56 mAb door dot blotting.
  2. Ontwerp en synthetiseren 3 drie 8-mer peptiden (195 VNVSVLCR 202, 197 VSVLCRWS 204 en 199 VLCRWSVR 206) met een overlapping van 6 aa resten naar de volgende synthetische peptide om een beperking van het epitoop regio 195-206 aa door dot blotting.
  3. Ontwerp en synthetiseren 3 7-mer (196 NVSVLCR 202 en 195 VNVSVLC 201), 6-mer (195 VNVSVL 200, 196 NVSVLC 201 en 197 VSVLCR 202), en 5-meer peptiden (195 VNVSV 199, 196 NVSVL 200, 197 VSVLC 201 en 198 SVLCR 202) met een overlapping van 6, 5 en 4 aa-residuen,, op naburige peptiden aan het minimaliseren epitoopregio door dot blotting.

4. Dot-blot hybridisatie

  1. Ontbinden elke gesynthetiseerde peptide in dimethylsulfoxide (DMSO) tot een uiteindelijke concentratie van 10 mg / ml.
    OPMERKING: Om de gevarieerde oplosbaarheid van synthetische peptiden te overwinnen, moeten alle synthetische peptiden worden opgelost in DMSO. DMSO is een goed oplosmiddel voor hydrofobe of hydrofiele peptiden volledig oplossen.
  2. Week de polyvinylideenfluoride (PVDF) membraan met methanol gedurende 2 minuten.
    OPMERKING: PVDF membraan tot 100% resistent DMSO; anderen kunnen niet zo zijn.
  3. Equilibreren het PVDF membraan met gemodificeerd Towbin buffer (25 mM Tris, 192 mM glycine en 0,1% SDS, pH 8,3) voor2 minuten.
    OPMERKING: 10-20% (v / v) methanol worden toegevoegd gemodificeerde Towbin buffer om de overdracht te verbeteren.
  4. Spoel een stuk chromatografie papier met de gewijzigde Towbin buffer. Plaats de PVDF-membraan op de chromatografie papier. Wacht tot de gewijzigde Towbin buffer is verdwenen uit de PVDF membraanoppervlak voordat u doorgaat naar de volgende stap.
  5. Voeg 2 ul van elk monster peptide aan het membraan met een 10 pi tip. Lucht-drogen PVDF membraan op de chromatografie papier voor 10 min. Voeg elk peptide monster langzaam en geleidelijk op het membraan te veel diffusie te voorkomen.
  6. Blokkeer het membraan in TBST buffer (0,05% (v / v) Tween-20, 20 mM Tris en 150 mM NaCl, pH 7,4) met 5% magere melk gedurende 30 minuten bij kamertemperatuur onder zachtjes schudden.
  7. Add RG-M56 mAb in een uiteindelijke verdunning van 1: 1000 in TBST buffer met 5% magere melk aan het membraan. Incubeer het membraan bij 37 ° C gedurende 1 uur onder zacht schudden.
  8. Verwijder het antilichaam zodatlutie. Was het membraan in TBST buffer gedurende 5 minuten onder zacht schudden. Herhaal dit twee keer.
  9. Voeg het tweede antilichaam (geit anti-muis IgG, Fc geconjugeerd alkalisch fosfatase) in een uiteindelijke verdunning van 1: 5000 in TBST buffer met 5% magere melk aan het membraan. Incubeer het membraan bij 37 ° C gedurende 1 uur onder zacht schudden.
  10. Gooi de antilichaamoplossing. Was het membraan in TBST buffer gedurende 5 minuten onder zacht schudden. Herhaal de wasstap tweemaal.
  11. Ontwikkeling van de membraan met BCIP / NBT substraatoplossing bij kamertemperatuur gedurende 15 minuten in het donker. Stop de ontwikkeling door het wassen van de membraan met DDH 2 O wanneer het signaal wordt weergegeven.
  12. Air-droog het membraan en vast te leggen beeld de dot-blot met behulp van een afbeelding systeem.
  13. Meet de intensiteit van elke dot blot met behulp van software voor beeldanalyse 3.

5. Alanine Scanning en Substitutie

  1. Ontwerpen en synthetiseren van 3 alanine en methionine substitutie peptiden. Vervang elk aa residu met alanine voor de 8-meer peptide 195 VNVSVLCR 202 en synthetiseren peptiden 195 ANVSVLCR 202, 195 VAVSVLCR 202, 195 VNASVLCR 202, 195 VNVAVLCR 202, 195 VNVSALCR 202, 195 VNVSVACR 202, 195 VNVSVLAR 202, en 195 VNVSVLCA 202 . Vervang aa residu leucine 200 naar methionine aan de SJNNV genotype epitooppeptide VNVSVMCR 195 202 maken.
  2. Volg Deel 4 uit te voeren alanine scanning en substitutie mutagenese dot blotting.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Resultaten

Het doel van dit experiment was om een ​​epitoop te identificeren door middel van dot blotting met behulp van mAb. Snel en doeltreffend beperken het antigeen gebied herkend door mAb, met de volledige lengte en afgeknot serieel YGNNV recombinante manteleiwitten met 6xHis fusion label de C-terminus werden tot expressie gebracht vanaf een E. coli expressiesysteem PET 10 (Figuur 1A). De resulterende recombinante eiwitten werden gespot op het ...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Discussie

Dit protocol biedt een snelle en eenvoudige techniek om een ​​lineaire mAb herkende epitoop te identificeren. Gezien de kosten van peptidesynthese en de productie-efficiëntie van het synthetiseren van peptiden de antigene gebied van het virus manteleiwit werd verminderd tot expressie serieel afgeknotte recombinante eiwitten voor peptide-scanning analyse. Als zodanig werd het betrouwbaar en doelmatig pET E. coli expressiesysteem gebruikt om deze serieel afgeknotte recombinante eiwitten, recombinante eiwitten met...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Openbaarmakingen

De auteurs hebben geen belangenconflicten met betrekking tot dit rapport.

Dankbetuigingen

De auteurs danken Miss Ching-Chun Lin en Miss Diana Lin van de Core Facility of the Institute of Cellular and Organismic Biology (ICOB) van Academia Sinica voor het aanbieden van hun expertise op het gebied van peptide synthese en DNA-sequencing, respectievelijk. Dit onderzoek werd ondersteund door Academia Sinica.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Materialen

Lijst van materialen gebruikt in dit artikel
NaamBedrijfCatalogusnummerOpmerkingen
Hybrid-SFM mediumGibco12045-076
Dulbeccos's Phophate-Buffered Saline (PBS)Gibco21600-069
Pfu DNA Polymerase Thermo Scientific EP0502 Inclusief buffers
T4 DNA LigaseRoche10799009001Inclusief buffers
NdeI New England BiolabsR0111SInclusief buffers
XhoI New England BiolabsR0146SInclusief buffers
pET-20b(+) vectorNovagen, Merck Millipore69739
E. coli DH-5α competent cellRBC BioscienceRH617
E. coli BL-21(DE3) competent cellRBC BioscienceRH217
AmpicillinAmresco0339-25G
LB broth Invitrongen12780-052
Isopropylthio-β-D-thiogalactoside (IPTG)MDBio, Inc.101-367-93-1
MethanolMerck Millipore106009
Polyoxyethylene 20 Sorbitan Monolaurate (Tween-20)J.T.BakerX251-07
Dimethyl sulfoxide (DMSO)SigmaD2650
GlycineAmresco0167-5KG
TrisAffymetrix, USB75825
NaClAmresco0241-1KG
EDTAAmresco0105-1KG
GlycerolAmresco0854-1L
NaN3SigmaS2002-500G
BCIP/NBTPerkinElmerNEL937001PK
Goat Anti-Mouse IgG, Fc fragment antibodyJackson ImmunoResearch115-055-008
Immobilon-P (Polyvinylidene fluoride, PVDF)Merck MilliporeIPVH00010
Protein G Agarose Fast FlowMerck Millipore16-266
QIAquick PCR Purification kitQiagen28106
UVP BioSpectrum 600 Image SystemUVPn/a
VisionWorks LS Analysis Software Ver 6.8UVPn/a
MyCycler thermal cyclerBioRad1709713

Referenties

  1. Milstein, C., Kohler, G. Clonal variations of myelomatous cells (proceedings). Minerva Med. 68 (50), 3453(1977).
  2. Lai, Y. S., et al. In vitro neutralization by monoclonal antibodies against yellow grouper nervous necrosis virus (YGNNV) and immunolocalization of virus infection in yellow grouper Epinephelus awoara (Temminck & Schlegel). J Fish Dis. 24 (4), 237-244 (2001).
  3. Chen, C. W., Wu, M. S., Huang, Y. J., Cheng, C. A., Chang, C. Y. Recognition of Linear B-Cell Epitope of Betanodavirus Coat Protein by RG-M18 Neutralizing mAB Inhibits Giant Grouper Nervous Necrosis Virus (GGNNV) Infection. PLoS One. 10 (5), 0126121(2015).
  4. Lai, Y. -S., et al. Propagation of yellow grouper nervous necrosis virus (YGNNV) in a new nodavirus-susceptible cell line from yellow grouper, Epinephelus awoara (Temminck & Schlegel), brain tissue. J Fish Dis. 24 (5), 299-309 (2001).
  5. Lougee, E., Morjaria, S., Shaw, O., Collins, R., Vaughan, R. A new approach to HLA typing designed for solid organ transplantation: epityping and its application to the HLA-A locus. Int J Immunogenet. 40 (6), 445-452 (2013).
  6. Radulovich, N., Leung, L., Tsao, M. S. Modified gateway system for double shRNA expression and Cre/lox based gene expression. BMC Biotechnol. 11, 24(2011).
  7. Froger, A., Hall, J. E. Transformation of plasmid DNA into E. coli using the heat shock method. J Vis Exp. (6), e253(2007).
  8. Pronobis, M. I., Deuitch, N., Peifer, M. The Miraprep: A Protocol that Uses a Miniprep Kit and Provides Maxiprep Yields. PLoS One. 11 (8), e0160509(2016).
  9. Metzker, M. L. Emerging technologies in DNA sequencing. Genome Res. 15 (12), 1767-1776 (2005).
  10. Chiu, C. C., John, J. A., Hseu, T. H., Chang, C. Y. Expression of ayu (Plecoglossus altivelis) Pit-1 in Escherichia coli: its purification and immunohistochemical detection using monoclonal antibody. Protein Expr Purif. 24 (2), 292-301 (2002).
  11. Atassi, M. Z. Antigenic structures of proteins. Their determination has revealed important aspects of immune recognition and generated strategies for synthetic mimicking of protein binding sites. Eur J Biochem. 145 (1), 1-20 (1984).
  12. Opuni, K. F., et al. Mass spectrometric epitope mapping. Mass Spectrom Rev. , (2016).
  13. Chang, C. Y., Chiu, C. C., Christopher John, J. A. The Aquaculture of Groupers. Liao, I. C., Leaño, E. M. , Taiwan Asian Fisheries Society, World Aquaculture Society, The Fisheries Society of Taiwan, National Taiwan Ocean University, Taiwan Press. 207-224 (2008).
  14. Conti-Tronconi, B. M., et al. Alpha-bungarotoxin and the competing antibody WF6 interact with different amino acids within the same cholinergic subsite. Biochemistry. 30 (10), 2575-2584 (1991).
  15. Briggs, S., Price, M. R., Tendler, S. J. Fine specificity of antibody recognition of carcinoma-associated epithelial mucins: antibody binding to synthetic peptide epitopes. Eur J Cancer. 29 (2), 230-237 (1993).
  16. Chen, N. C., et al. Crystal Structures of a Piscine Betanodavirus: Mechanisms of Capsid Assembly and Viral Infection. PLoS Pathog. 11 (10), e1005203(2015).
  17. Badani, H., Garry, R. F., Wimley, W. C. Peptide entry inhibitors of enveloped viruses: The importance of interfacial hydrophobicity. Biochim Biophys Acta. , (2014).
  18. Qureshi, N. M., Coy, D. H., Garry, R. F., Henderson, L. A. Characterization of a putative cellular receptor for HIV-1 transmembrane glycoprotein using synthetic peptides. AIDS. 4 (6), 553-558 (1990).

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Herprints en machtigingen

Toestemming aanvragen om de tekst of afbeeldingen van dit JoVE-artikel te hergebruiken

Toestemming aanvragen

Trefwoorden

Dot blot hybridisatieserieel getrunceerde eiwittenalanine scanningnervous necrosis virusrecombinante eiwitexpressiePVDF membraanepitopenmapping

Gerelateerde artikelen