Methodenartikel

NMR-spectroscopie als een robuust hulpmiddel voor de snelle evaluatie van het lipidenprofiel van visolie supplementen

DOI:

10.3791/55547

1 mei 2017

In dit artikel

Samenvatting

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Hierbij werd een hoge resolutie 1H en 13C kernmagnetische resonantie (NMR) spectroscopie gebruikt als een snel en betrouwbaar middel voor kwantitatieve en kwalitatieve analyse van ingekapselde visolie supplementen.

Samenvatting

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

De westerse dieet is slecht in n -3 vetzuren, dus de consumptie van visolie supplementen wordt aanbevolen om de inname van deze essentiële voedingsstoffen te verhogen. Het doel van deze werkzaamheden is de kwalitatieve en kwantitatieve analyse van ingekapselde visoliesupplementen aantonen met behulp van hoge resolutie 1H en 13C NMR spectroscopie NMR gebruikmaking van twee verschillende instrumenten; een 500 MHz en een 850 MHz instrument. Zowel proton (1H) en koolstof (13C) NMR-spectra kunnen worden gebruikt voor de kwantitatieve bepaling van de hoofdbestanddelen van visoliesupplementen. Kwantificering van de lipiden in visoliesupplementen wordt verkregen door integratie van de geschikte NMR-signalen in het betrokken 1D spectra. Resultaten verkregen met 1H en 13C NMR komen goed overeen met elkaar, ondanks het verschil in resolutie en gevoeligheid tussen de twee kernen en de twee instrumenten. 1H NMR biedensa snellere analyse vergeleken met 13C NMR, omdat het spectrum kan worden opgenomen in minder dan 1 minuut, in tegenstelling tot 13C NMR-analyse, die duurt 10 minuten tot een uur. Het 13C NMR spectrum echter veel meer informatief. Het kan kwantitatieve gegevens voor een groter aantal individuele vetzuren en kunnen worden gebruikt voor het bepalen van de positie verdeling van vetzuren op de glycerol hoofdketen. Beide kernen kan kwantitatieve informatie in slechts een experiment zonder de noodzaak van zuivering of scheiding stappen. De sterkte van het magneetveld voornamelijk invloed op de 1H NMR spectra vanwege de lagere resolutie bij 13 C NMR echter ook goedkopere NMR instrumenten efficiënt worden toegepast als standaardmethode door de voedingsindustrie en kwaliteitscontrolelaboratoria.

Inleiding

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

De consumptie van n -3-vetzuren in het dieet gebleken gunstig tegen verschillende omstandigheden zoals hartstoornissen 1, 2, 3, 4 ontstekingsziekten en diabetes 5. De Westerse dieet is in n -3 vetzuren slecht beschouwd en daarmee de consumptie van visolie supplementen wordt aanbevolen om de n te verbeteren -6 / n -3 balans in de voeding van de consument 1. Ondanks de recente stijging van visolie supplement consumptie, vragen blijven over de veiligheid, authenticiteit en kwaliteit van sommige van deze producten. De snelle en nauwkeurige analyse van de samenstelling van visolie supplementen is essentieel voor de kwaliteit van deze commerciële producten goed te kunnen beoordelen en te zorgen voor de veiligheid van de consument.

De meest voorkomende methoden voor de beoordeling van visolie supplements zijn gaschromatografie (GC) en infraroodspectroscopie (IR). Hoewel deze zijn zeer gevoelige methoden, ze lijden aan verschillende nadelen 6. GC-analyse is tijdrovend (4-8 h), omdat scheiding en derivatisering verschillende verbindingen vereist 7 en lipide oxidatie kan optreden tijdens de analyse 8, 9. Terwijl IR spectroscopie kwantitatief kan worden, wordt een voorspellingsmodel moeten worden geconstrueerd met gebruikmaking partiële kleinste kwadraten regressie (PLSR), hoewel er uitzonderingen waarbij Infraroodbanden kan worden toegeschreven aan een enkele verbinding 10. PLSR vereist de analyse van een groot aantal monsters, die het tijdstip van de analyse 11 toeneemt. Om deze reden is er een toenemende belangstelling voor de ontwikkeling van nieuwe analytische methoden die nauwkeurige en snelle analyse van een groot aantal van visolie monsters mogelijk te maken. Organisaties zoals de Office van voedingssupplementen (ODS) aan de National Institutes of Health (NIH) en de Food and Drug Administration (FDA) hebben samengewerkt met de Association of Official Analytical Chemists (AOAC) om deze nieuwe methoden 12, 13 te ontwikkelen.

Een van de meest veelbelovende analysemethoden voor het screenen en evalueren van meerdere componenten matrices, zoals voedingssupplementen, is kernspinresonantie (NMR) spectroscopie 14, 15. NMR spectroscopie heeft een aantal voordelen: het is een niet-destructieve en kwantitatieve techniek vereist minimale tot geen monstervoorbereiding en wordt gekenmerkt door uitstekende nauwkeurigheid en reproduceerbaarheid. Bovendien NMR spectroscopie is een milieuvriendelijke methode omdat het gebruik maakt van slechts kleine hoeveelheden oplosmiddelen. Het belangrijkste nadeel van NMR-spectroscopie is de relatief lage gevoeligheid in vergelijking met andere analytical methoden zijn echter recente technologische vooruitgang in instrumentatie zoals sterkere magneetvelden, cryogene probes met verschillende diameters, geavanceerde gegevensverwerking en veelzijdige pulssequenties en technieken de gevoeligheid verhoogd tot het nM traject. Terwijl NMR instrumentatie is hoge kosten, de lange levensduur van NMR spectrometers en de vele toepassingen van NMR lager de kosten van de analyse op de lange termijn. Deze gedetailleerde video protocol is bedoeld om nieuwe mensen in het veld voorkomen valkuilen geassocieerd met 1H en 13C NMR spectroscopische analyse van visoliesupplementen.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Protocol

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. NMR Monstervoorbereiding

Let op: Let op, raadpleeg dan eerst alle relevante veiligheidsinformatiebladen (VIB) voor gebruik. Gedeutereerd chloroform (CDCI3) gebruikt monsterbereiding giftig. Gelieve gebruik maken van alle passende veiligheidsmaatregelen in acht bij het uitvoeren van monstervoorbereiding inclusief het gebruik van een zuurkast en persoonlijke beschermingsmiddelen (veiligheidsbril, handschoenen, laboratoriumjas, volledige lengte broek, dichte schoenen).

  1. Bereiding van 1H en 13C samples
    1. Extract 120 pl (-110 mg) visolie van een voedingssupplement capsule met behulp van een spuit en plaats deze in een 4 ml glazen flesje. Registreer het gewicht van de visolie.
    2. monster oplossen
      1. Los ongeveer 120 pl visolie in 500 pl CDCl3 die 0,01% tetramethylsilaan (TMS) dat wordt gebruikt als referentie voor de 1H en 13C chemische verschuivingen.
        OPMERKING: TMS is gebruikd alleen voor chemische verschuiving kalibratie (zie stap nummers 2.2.1.2.7 en 2.2.2.2.7), niet voor de kwantificering (zie stap nummers 2.2.1.3 en 2.2.2.3) doeleinden.
      2. Bereid een 2,6-di-tert-butyl-4-methylfenol (BHT) voorraadoplossing, indien kwantificering uitgedrukt in mg / g gewenst, door het oplossen van ongeveer 220 mg BHT en 15 mg van chroom (III) acetylacetonaat (Cr ( acac) 3) in 20 ml CDCl3 die 0,01% van TMS. Met 500 ul van de voorraadoplossing tot 100 mg (± 10 mg) visolie lossen.
    3. Na oplossen van de olie (dit duurt enkele seconden), dragen alle oplossing direct in een hoogwaardige 5 mm NMR-buis en voeg een dop. Analyseer de monsters binnen 24 uur na bereiding van de monsters.

2. Instrument voorbereiding NMR

Opmerking: Voorzichtig, voorzichtig zijn dat de aanwezigheid van sterke magnetische velden afkomstig van NMR instrumenten kunnen beïnvloeden medische hulpmiddelen en implmieren zoals pacemakers en chirurgische prothesen, en elektronische apparatuur zoals creditcards, horloges, etc. Extra voorzichtigheid vereist bij de analyse wordt uitgevoerd met behulp van niet-afschermende magneten. Twee NMR instrumenten gebruikt voor het verwerven van 1H en 13C NMR spectra; een spectrometer die werkt bij 850,23 MHz en 213,81 MHz voor 1H en 13C kernen, die zijn uitgerust met een triple resonantie heliumgekoelde inverse (TCI) 5 mm probe en een spectrometer die werkt bij 500,20 MHz en 125,77 MHz voor 1H en 13C kernen respectievelijk uitgerust met een brede band waargenomen (BBO) stikstof gekoelde sonde 5 mm. Alle experimenten werden uitgevoerd bij 25 ± 0,1 ° C en de spectra werden verwerkt door een standaard NMR-gegevensanalyse acquisitie en verwerkingssoftware (zie Materialen List).

  1. Voorbereiding van het verwerven van de NMR-spectra
    Noot: 1H en 13C NMR spectrakan derhalve worden verkregen zonder het monster uit het instrument.
    1. Plaats de NMR buis in een spinner turbine (zie Materialen List).
    2. Plaats de spinner en de buis bovenop een gegradeerde dieptemeter en druk de bovenkant van de buis totdat de onderzijde van de bodem van de meter raakt.
    3. Plaats NMR monster in een open plek van de SampleCase. Noteer het slotnummer het monster geplaatst.
    4. Bij de inhoud van de NMR belasting terug naar de besturingscomputer en soort 'sx #', waarbij # het slot in de SampleCase houden van uw monster.
    5. Wacht op het deuterium signaal van CDCl3 op het vergrendelvenster scherm. Als dit niet automatisch verschijnt, type "lockdisp". Zodra het deuterium signaal zichtbaar, type "lock" op de opdrachtregel en selecteer "CDCI3" uit de lijst van het oplosmiddel om het monster te vergrendelen met de CDCl3 deuterium resonantie.
      LET OP: Deuterium signal mogelijk niet uit als de vorige gebruiker een ander oplosmiddel gebruikt. Gebruiker moet wachten op de indicator dat het monster naar beneden, dan vergrendelen.
    6. Type "bsmsdisp" in de opdrachtregel om spinnen te verzekeren is niet actief. Als de "SPIN" knop groen is, klikt u erop om spinnen te deactiveren.
    7. Typ de "nieuwe" opdracht om een ​​nieuwe dataset te maken. Voer een naam voor de set in het tabblad "Naam" en het experiment nummer in de tab "EXPNO" data. Gebruik nummer "1" in het tabblad "PROCNO". In het tabblad "Experiment", klik op "Select" en kies de "PROTON" parameter bestand. Schrijf de titel van het experiment in het tabblad "TITLE". Klik op "OK".
    8. Type "getprosol" in de opdracht om het standaardparameters voor de NMR sonde en oplosmiddel te verkrijgen.
    9. Herhaal stap 2.1.7 voor13C, optie "C13IG" pulssequentie de tab "Experiment" voor 1D 13C inverse gated ontkoppeld experiment.
    10. Type "getprosol" in de opdracht om het standaardparameters voor de NMR sonde en oplosmiddel te verkrijgen.
    11. Typ het commando "Atma" naar automatische afstemming en aanpassing van de sonde uit te voeren voor zowel koolstof en proton kernen.
    12. Voer een eendimensionale gradiënt vulplaten een sterk homogeen magnetisch veld te bereiken en aldus een optimale lijnvorm voor de NMR signalen.
      1. Gebruik de standaard procedure voor de automatische 1D shimming, simpelweg door het sequentieel uitvoeren van de commando "qu topshim 1dfast ss", "Qu topshim tuneb ss," en "qu topshim rapport" op de opdrachtregel.
  2. parameter optimalisatie
    1. 90 ° puls kalibratie
      1. Maak een nieuwe dataset voor 1 H (zie stap 2.1.7 en 2.1.8).
      2. Typ het commando "paropt" op de opdrachtregel om de automatisering programma te starten voor het kalibreren van de 90 ° pulse. Kies pulsduur, p1, als parameter worden gewijzigd.
      3. Met "2" ps de beginwaarde van p1 voert "2" pS stappen en voer "16" experimenten.
      4. Maak een nieuwe dataset voor 13 C (zie stap 2.1.9) en herhaal het proces voor 13C kernen (zie stap 2.2.1.2 en 2.2.1.3).
    2. T1 meting gemeten door nulmethode 16 voor 1H
      OPMERKING: De nulmethode gebruikt inversieherstelpuls sequentie die bestaat uit een 180 ° puls gevolg van een vertraging (tau), ontspanning mogelijk langs de z-as en een uiteindelijke 90 ° puls, die de waarneembare dwarse magnetisatie creëert.
      1. Maak een nieuwe dataset voor 1 H (zie stap 2.1.7 en 2.1.8).
      2. Type "pulprog t1ir1d" naar de pulssequentie te veranderen om de inversie-recovery-experiment.
      3. Typ de volgende opdrachten op de command lijn om de spectrale breedte in ppm, het midden van de RF-zender, het aantal aftastingen het aantal dummy scans en het aantal datapunten "sw 8", "o1p 3.8", "ns 2", "ds 2" en "td 64K".
      4. Type "p1 (value)" en voer het duurwaarden 90 ° puls bepaald door de puls kalibreren (zie stap 2.2.1) en type "p2 (value)" om de 180 ° puls (de duurwaarde de 180 ° puls 90 ° pulsduur maal twee).
      5. Stel de recycle vertraging een zeer hoge waarde, bijvoorbeeld 10 s typt "d1 10".
      6. Stel tau op een korte waarde, bijvoorbeeld 10 ms, typt "d7 10ms" in de commandoregel.
      7. Stel de ontvangerversterking (RG) op een geschikte waarde met de opdracht "RGA" voor automatische berekening van RG.
      8. Voer een spectrum door het intikken van het commando "zg".
      9. Uitvoeren Fourier-transformatie door te typen "EFP"in de command line.
      10. Voer automatische fasecorrectie door het intikken van het commando "apk" in de opdrachtregel. Als er extra fase aanpassingen nodig zijn om een ​​verdere verbetering van het spectrum, klik op het tabblad "Process", klik op het icoon "Stel fase" om de fasecorrectie in te schakelen.
        1. Met de nulde orde (0) en de eerste orde (1) fasecorrectie iconen slepen met de muis totdat alle signalen negatief opname modus. Breng en sla de fasecorrectie waarden door te klikken op de "Return and Save" knop om de fasecorrectie te verlaten.
      11. Verhoging van de tau tot alle pieken ofwel positief of nul gebracht door stap 2.2.2.6-2.2.2.9. De T1 te bepalen, eenvoudigweg verdelen de tau-waarde waarbij de piek wordt nul gemaakt met ln2.
    3. T1 meting gemeten door nulmethode 16 voor13C
      1. Maak een nieuwe dataset voor 13 C (zie stap 2.1.9)
      2. Type "pulprog t1irpg" naar de pulssequentie te veranderen om de inversie-recovery experiment koolstof kernen.
      3. De volgende opdrachten op de opdrachtregel om de spectrale breedte in ppm, het midden van de RF-zender, het aantal scans, het aantal dummy scans en het aantal gegevenspunten: "sw 200", "o1p 98" , "ns 8", "ds 2" en "td 64K".
      4. Type "p1 (value)" en voer het duurwaarden 90 ° puls bepaald door de puls kalibreren (zie stap 2.2.1) en type "p2 (value)" om de 180 ° puls (de duurwaarde is 90 ° pulsduur vermenigvuldigd met twee).
      5. Stel de recycle vertraging een zeer hoge waarde, zoals 100 s typt "d1 100".
      6. Set tau op een korte waarde, bijvoorbeeld 100 ms typt "d7 100ms" in de commandoregel.
      7. Stel de ontvaner waarderingsverschil (RW) op de juiste waarde met de opdracht "RGA" voor automatische berekening van RG.
      8. Voer een spectrum door het intikken van het commando "zg".
      9. Uitvoeren Fourier-transformatie door te typen "EFP" in de opdrachtregel.
      10. Voer Automatische fasecorrectie door het intikken van het commando "apk" in de opdrachtregel. Als extra faseinstellingen nodig om het spectrum te verbeteren, op het pictogram "Stel fase" en de fasecorrectie iconen voor nulde orde (0) en de eerste-orde fase (1) correctie.
        1. Terwijl u op het nulde orde en eerste orde fasecorrectie iconen, sleep de muis tot alle signalen negatief opname modus. Breng en sla de fasecorrectie waarden door te klikken op de "Return and Save" knop om de fasecorrectie te verlaten.
      11. Verhoging van de tau tot alle pieken ofwel positief of nul gebracht door stap 2.2.3.6-2.2.3.9. om te bepalende T1 waarde eenvoudigweg verdelen de tau-waarde waarbij de piek wordt nul gemaakt met ln2.
  3. Ééndimensionale (1D) NMR spectra
    1. 1H-NMR spectra
      1. Verwerving van de NMR-gegevens
        1. Naar het 1H gegevensreeks in stap 2.1.7 en gebruik de standaard "pulse-acquire" pulssequentie "zg", door te typen "pulprog zg" in de commandoregel.
        2. De volgende opdrachten op de opdrachtregel om de spectrale breedte in ppm, het midden van de RF-zender, het aantal scans, het aantal dummy scans, het aantal gegevenspunten en de pulsduur van 90 ° pulshoek : "sw 8", "o1p 3.8", "ns 2", "ds 2", "td 64K" en "p1 (zoals bepaald door impuls kalibratie)" (zie stap 2.2.1).
          OPMERKING: 32K datapunten kunnen worden gebruikt voor de 500 MHz instrument.
        3. Stel een relaxatiedelay van 7 vanwege de 500 MHz instrument of 9 en de 850 MHz-instrument typen "d1 7s" of "d1 9s", respectievelijk in de commandoregel.
        4. Stel de ontvangerversterking (RG) op een geschikte waarde met de opdracht "RGA" voor automatische berekening van RG.
        5. Typ "digmod baseopt" naar een spectrum met verbeterde basislijn te verwerven.
        6. Start de overname door het intikken van de puls-verwerven opdracht "zg" in de opdrachtregel.
      2. Verwerken van de NMR-gegevens
        1. Typ "si 64K" in de command line naar nul-vulling toe te passen en de grootte van de echte spectrum aan 64K.
        2. Stel de lijn verbreding parameter 0,3 Hz typt "0,3 lb" in de commandoregel een weegfunctie (exponentieel verval) toegepast met een lijn verbreding factor 0,3 Hz voorafgaand aan Fouriertransformatie.
        3. Uitvoeren Fourier-transformatie door te typen "EFP" in de opdrachtlijn.
        4. Voer Automatische fasecorrectie door het intikken van het commando "apk" in de opdrachtregel. Als extra faseinstellingen nodig verdere verbetering van de spectrum op de "tab Process," klik op het icoon "Stel fase" en de fasecorrectie iconen voor nulde orde (0) en de eerste orde (1) fasecorrectie .
          1. Terwijl u op het nulde orde en eerste orde fasecorrectie iconen, sleep de muis totdat alle signalen positieve absorptie modus. Breng en sla de fasecorrectie waarden door te klikken op de "Return and Save" knop om de fasecorrectie te verlaten.
        5. Breng een polynoom van de vierde orde functie basislijn correctie op de integratie openen door het commando "abs n".
          LET OP: Dit zorgt voor een vlakke spectrale basislijn met een minimum intensiteit.
        6. Chemische verschuivingen in ppm vanaf TMS = 0). Klik op de kalibratie ( "Calib. Axis ') icoon, en plaats de cursor met de rode lijn op de top van de TMS NMR-signaal (piek die het dichtst bij 0). Klik met de linkermuisknop en type in '0'.
      3. NMR gegevensanalyse
        1. Integreer het spectrale gebied van δ 1,1 tot ó 0,6 en de pieken bij δ 4,98, δ 5,05 en δ 5,81 via het pictogram "geïntegreerd" (onder de tab "Process") en de opgelichte icoon ( "new regio definiëren"). Links klikken en slepen door de integralen.
          OPMERKING: Als er behoefte is om zich te concentreren op een regio, klikt u op het icoontje hoogtepunt om te deactiveren en de linker muisknop en sleep de muis om in te zoomen op de regio. Om de drempel intensiteit aan te passen, gebruikt u de middelste muisknop indien nodig. Klik op het icoon hoogtepunt opnieuw om de integratie-functie actief te maken, ga dan naar de volgende piek.
          1. Normaliseren van de som van de bovenstaande integralen tot 100 door rechts te klikken op de integrale waarde die verschijnens onder het signaal en selecteer "normaliseren som van integralen". Voer de waarde "100" in het vak en klik op de "Return en Save" om de integratie te verlaten.
        2. Bij gebruik van BHT als interne standaard integreren piek bij δ 6,98 en stel de integraal gelijk aan de millimol BHT per 0,5 mL van de voorraadoplossing.
        3. Integreer de belangrijke pieken (zie stap 2.3.1.3.1) uitstrekt 10 Hz vanaf elke zijde van de piek, indien mogelijk.
        4. Verder met 13C-NMR-spectra en -verwerking te voeren op een soortgelijke wijze.
    2. 13C-NMR spectra
      1. Verwerving van de NMR-gegevens
        1. Naar het 13C gegevensset en gebruik de inverse gated ontkoppelde pulssequentie "ZGig" typt "pulprog ZGig" in de commandoregel.
          OPMERKING: Om een ​​carbon experiment met de standaard breedband decou draaienPLED pulssequentie type "pulprog zgpg" in de commandoregel.
        2. De volgende opdrachten op de opdrachtregel om de spectrale breedte in ppm, het midden van de RF-zender, het aantal scans, het aantal dummy scans, het aantal gegevenspunten en de pulsduur van 90 ° pulshoek : "sw 200", "o1p 95", "16 ns" "ds 2", "td 64K" en "p1 (zoals bepaald door impuls kalibratie)" (zie stap 2.2.1.4).
        3. Stel een relaxatiedelay van 35 s voor 500 MHz instrument of 45 s voor 850 MHz instrument typen "d1 35s" of "d1 45s", respectievelijk in de commandoregel. Bij gebruik van BHT zou relaxatiedelay 50 s in de 500 MHz instrument 60 en de 850 MHz instrument.
        4. Stel de ontvangerversterking (RG) op een geschikte waarde met de opdracht "RGA" voor automatische berekening van RG.
        5. Typ "digmod baseopt" in de opdrachtregel om een ​​spectrum te verwerven wet verbeterde baseline.
        6. Start de overname door het intikken van de puls-verwerven opdracht "zg" in de opdrachtregel.
      2. Verwerken van de NMR-gegevens
        1. Typ "si 64K" in de command line naar nul-vulling toe te passen en de grootte van de echte spectrum aan 64K.
        2. Stel de lijn verbreding parameter 1,0 Hz typt "lb 1.0" in de commandoregel een weegfunctie (exponentieel verval) toegepast met een lijn verbreding van 1,0 Hz voorafgaand aan Fouriertransformatie.
        3. Uitvoeren Fourier-transformatie door te typen "EFP" in de opdrachtregel.
        4. Voer Automatische fasecorrectie door het intikken van het commando "apk" in de opdrachtregel. Als extra faseinstellingen nodig verdere verbetering van de spectrum op de "tab Process," klik op het icoon "Stel fase" en de fasecorrectie iconen voor nulde orde (0) en de eerste-orde fase (1) correctie .
          1. Terwijl klikken op de nulde orde en eerste orde fasecorrectie iconen, sleep de muis totdat alle signalen positieve absorptie modus. Breng en sla de fasecorrectie waarden door te klikken op de "Return and Save" knop om de fasecorrectie te verlaten.
            OPMERKING: carbon spectra opgenomen op Larmor frequentie van 214 MHz (850 MHz instrument) het corrigeren van de frequentie afhankelijke fouten (eerste orde) kan een uitdaging zijn en tijdrovend voor minder ervaren gebruikers vanwege de grote off-resonantie-effecten van de 90 ° puls.
        5. Breng een polynoom van de vierde orde functie basislijn correctie op de integratie openen door het commando "abs n" in de commandoregel.
        6. Chemische verschuivingen in ppm vanaf TMS = 0). Klik op de kalibratie ( "Calib. Axis") icoon, en plaats de cursor met de rode lijn op de top van het NMR-signaal te worden verwezen. Klik met de linkermuisknop en typ in "0".
      3. NMR gegevensanalyse
        1. Integreer het spectrale gebied van 175 tot δ ó 171 met het pictogram "geïntegreerd" (onder de tab "Process") en de opgelichte icoon ( "new regio definiëren"). Links klikken en slepen door de integralen.
          OPMERKING: Als er behoefte is om zich te concentreren op een regio, klikt u op het icoontje hoogtepunt om te deactiveren en de linker muisknop en sleep de muis om in te zoomen op de regio. Klik op het icoon hoogtepunt opnieuw om de integratie-functie actief te maken, ga dan naar de volgende piek.
          1. Stel de integrale tot 100 door het doen van een klik met de rechtermuisknop op de integrale waarde die onder het signaal verschijnt en selecteer "Calibrate Huidige Integral". Voer de waarde "100" in het vak en klik op de "Return en opslaan" om de integratie te verlaten.
        2. Bij gebruik van BHT als interne standaard integreren piek bij δ 151,45 en stel de integraal gelijk is aande millimol BHT per 0,5 mL van de voorraadoplossing.
        3. Integreer de belangrijke pieken uitstrekken 5Hz vanaf elke zijde van de piek (zie stap 2.3.2.3.1).

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Resultaten

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1H en 13C NMR spectra werden verzameld voor in de handel verkrijgbaar visoliesupplementen behulp van twee NMR instrumenten; Een 850 MHz en 500 MHz spectrometer. Deze spectra kunnen worden gebruikt voor de kwantitatieve bepaling van bestanddelen van de visolie, zoals docosahexaeenzuur (DHA) en eicosapentaeenzuur (EPA), en andere verbindingen zoals n -1 acylketens en uit voedingsoogpunt belangrijke index zoals n -6 / n -3-verhouding. De kwan...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Discussie

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Wijzigingen en strategieën voor het oplossen

Spectral kwaliteit. De lijnbreedte van het NMR-signaal en derhalve de resolutie van het NMR-spectrum is sterk afhankelijk van vulplaten, die een werkwijze voor het optimaliseren van de homogeniteit van het magneetveld. Voor routinematige analyse 1D shimming is voldoende en een 3D-shimming is niet vereist, aangezien zij worden uitgevoerd door personeel NMR regelmatig. Indien dit niet het geval is, moet een 3D shimming worden voorafgaa...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Openbaarmakingen

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

De auteurs hebben niets te onthullen.

Dankbetuigingen

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Dit werk werd ondersteund door de Foods for Health Discovery thema aan de Ohio State University en het Department of Food Science and Technology aan de Ohio State University. De auteurs willen graag de NMR faciliteit aan de Ohio State University en de NMR faciliteit aan de Penn State University bedanken.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Materialen

Lijst van materialen gebruikt in dit artikel
NaamBedrijfCatalogusnummerOpmerkingen
Avance III 850 NMR instrumentBruker
Avance III 500 NMR instrumentBruker
TCI 5 mm probeBrukerHelium cooled inverse (proton deetected) NMR probe featuring three independent channels (1H, 13C, 15N)
BBO prodigy 5 mm probeBrukerNitrogen cooled observe (X-nuclei detected) probe, featuring two channels; one for 1H and 19F detectionand one for X-nuclei (covering from 15N to 31P)
Spinner turbinBrukerNMR spinners are made by polymer materials and they have a rubber o-ring to hold the NMR tube securely in place
Topspin 3.5Bruker
deuterated chloroformSigma-Aldrich 865-49-699.8 atom % D, contains 0.03 TMS
2,6-Di-tert-butyl-4-methylphenolSigma-Aldrich 128-37-0purity >99%
Fish oil samples
NMR tubesNew EraNE-RG5-75mm OD Routine “R” Series NMR Sample Tube
BSMSBrukerBruker Systems Management System; control system device

Referenties

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Simopoulos, A. P. The importance of the ratio of omega-6/omega-3 essential fatty acids. Biomed. Pharmacother. 56 (8), 365-379 (2002).
  2. Goodnight, S. H. Jr, Harris, W. S., Connor, W. E. The effects of dietary omega 3 fatty acids on platelet composition and function in man: a prospective, controlled study. Blood. 58 (5), 880-885 (1981).
  3. Harper, C., Jacobsen, T. Usefulness of omega-3 fatty acids and the prevention of coronary heart disease. Am. J. Cardiol. 96 (11), 1521-1529 (2005).
  4. Kremer, J. M., et al. Effects of high-dose fish oil on rheumatoid arthritis after stopping nonsteroidal antiinflammatory drugs. Clinical and immune correlates. Arthritis and Rheumatol. 38 (8), 1107-1114 (1995).
  5. Malasanos, T., Stackpoole, P. Biological effects of omega-3 fatty acids in diabetes mellitus. Diabetes Care. 14, 1160-1179 (1991).
  6. Han, Y., Wen, Q., Chen, Z., Li, P. Review of Methods Used for Microalgal Lipid-Content Analysis. Energ. Procedia. 12, 944-950 (2011).
  7. Guillén, M., Ruiz, A. 1H nuclear magnetic resonance as a fast tool for determining the composition of acyl chains in acylglycerol mixtures. Eur. J. Lipid Sci. Technol. 105, 502-507 (2003).
  8. Sacchi, R., Medina, I., Aubourg, S. P., Addeo, F., Paolillo, L. Proton nuclear magnetic resonance rapid and structure specific determination of ω-3 polyunsaturated fatty acids in fish lipids. J. Am Oil Chem Soc. 70, 225-228 (1993).
  9. Igarashi, T., Aursand, M., Hirata, Y., Gribbestad, I. S., Wada, S., Nonaka, M. Nondestructive quantitative acid and n-3 fatty acids in fish oils by high-resolution 1H nuclear magnetic resonance spectroscopy. J. Am. Oil Chem. Soc. 77, 737-748 (2000).
  10. Plans, M., Wenstrup, M., Saona, L. Application of Infrared Spectroscopy for Characterization Dietary Omega-3 Oil Supplements. J. Am. Oil Chem. Soc. 92, 957-966 (2015).
  11. Jian-hua, C. I. A. Near-infrared Spectrum Detection of Fish Oil DHA Content Based on Empirical Mode Decomposition and Independent Component Analysis. J Food Nutr Res. 2 (2), 62-68 (2014).
  12. Millen, A. E., Dodd, K. W., Subar, A. F. Use of vitamin, mineral, nonvitamin, and nonmineral supplements in the United States: The 1987, 1992, and 2000 National Health Interview Survey results. J. of Am. Diet Assoc. 104 (6), 942-950 (2004).
  13. Dwyer, J. T., et al. Progress in developing analytical and label-based dietary supplement databases at the NIH office of dietary supplements. J. Food Compos. Anal. 21, S83-S93 (2008).
  14. Monakhova, Y. B., Ruge, I., Kuballa, T., Lerch, C., Lachenmeier, D. W. Rapid determination of coenzyme Q10 in food supplements using 1H NMR spectroscopy. Int. J. Vitam. Nutr. Res. 83 (1), 67-72 (2013).
  15. Monakhova, Y. B., et al. Standardless 1H NMR determination of pharmacologically active substances in dietary supplements and medicines that have been illegally traded over the internet. Drug Test. Anal. 5 (6), 400-411 (2013).
  16. Berger, S., Braun, S. 200 and more NMR experiments: a practical course. , Wiley-VCH. Weinheim. (2004).
  17. Knothe, G., Kenar, J. A. Determination of the fatty acid profile by 1H-NMRspectroscopy. Eur. J. Lipid Sci. Technol. 106, 88-96 (2004).
  18. Sacchi, R., Medina, J. I., Aubourg, S. P., Paolillo, I. G. L., Addeo, F. Quantitative High-Resolution 13C NMR Analysis of Lipids Extracted from the White Muscle of Atlantic Tuna (Thunnus alalunga). J. Agric. Food Chem. 41 (8), 1247-1253 (1993).
  19. Dais, P., Misiak, M., Hatzakis, E. Analysis of marine dietary supplements using NMR spectroscopy. Anal. Methods. 7 (12), 5226-5238 (2015).
  20. Pickova, J., Dutta, P. C. Cholesterol Oxidation in Some Processed Fish Products. J. Anal. Oil Chem. Soc. 80 (10), 993-996 (2003).
  21. Siddiqui, N., Sim, J., Silwood, C. J. L., Toms, H., Iles, R. A., Grootveld, M. Multicomponent analysis of encapsulated marine oil supplements using high-resolution 1H and 13C NMR techniques. J. of Lipid Rsrch. 44 (12), 2406-2427 (2003).
  22. Sua´rez, E. R., Mugford, P. F., Rolle, A. J., Burton, I. W., Walter, J. A., Kralovec, J. A. 13C-NMR Regioisomeric Analysis of EPA and DHA in Fish Oil Derived Triacylglycerol Concentrates. J. Am. Oil Chem. Soc. 87, 1425-1433 (2010).
  23. Youlin, X. A., Moran, S., Nikonowiczband, E. P., Gao, X. Z-restored spin-echo 13C 1D spectrum of straight baseline free of hump, dip and roll. Magn. Reson. Chem. 46, 432-435 (2008).
  24. Tengku-Rozaina, T. M., Birch, E. J. Positional distribution of fatty acids on hoki and tuna oil triglycerides by pancreatic lipase and 13C NMR analysis. Eur. J. Lipid Sci. Technol. 116 (3), 272-281 (2014).
  25. Berry, S. E. E. Triacylglycerol structure and interesterification of palmitic and stearic acid-rich fats:An overview and implications for cardiovascular disease. Nutr. Res. Rev. 22 (1), 3-17 (2009).
  26. Hunter, J. E. Studies on effects of dietary fatty acids as related to their position on triglycerides. Lipids. 36, 655-668 (2001).
  27. Vlahov, G. Regiospecific analysis of natural mixtures of triglycerides using quantitative 13C nuclear magnetic resonance of acyl chain carbonyl carbons. Magnetic Res. in Chem. 36, 359-362 (1998).

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Herprints en machtigingen

Toestemming aanvragen om de tekst of afbeeldingen van dit JoVE-artikel te hergebruiken

Toestemming aanvragen

Trefwoorden

Proton NMRKoolstof NMRLipideanalyseKwantificering van VetzurenPositionele VerdelingMagnetische VeldsterkteMonstervoorbereiding

Gerelateerde artikelen