Methodenartikel

Optische coherentie tomografie: Beeldvorming muis retinale Ganglion cellen In Vivo

19.2K weergaven

⸱

DOI:

10.3791/55865

⸱

22 september 2017

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1INSERM U1051, Institut of Neurosciences of Montpellier, 2CNRS UMS3426, BioCampus Montepellier, 3University of Montpellier, 4CHRU Montpellier, Centre of Reference for Genetic Sensory Diseases, CHU Gui de Chauliac Hospital

* These authors contributed equally

In dit artikel

Samenvatting

Dit manuscript wordt een protocol voor de beeldvorming in vivo van het netvlies van de muis met hoge resolutie spectrale domein optische coherentie tomografie (SD-OCT) beschreven. Het richt zich op netvlies peesknoopcellen (regering van Cambodja) in de peripapillary regio, met verschillende scannen en kwantificeren van de aanpak beschreven.

Samenvatting

Structurele veranderingen in de retina zijn gemeenschappelijke uitingen van oogheelkundige ziekten. Optische coherentie tomografie (OCT) kan hun identificatie in vivo— snel, herhaaldelijk en met een hoge resolutie. Dit protocol beschrijft OCT beeldvorming in het netvlies van de muis als een krachtig hulpmiddel om te studeren optic neuropathieën (OPN). De OCT-systeem is een interferometrie gebaseerde, niet-invasieve alternatief voor gemeenschappelijke postmortaal histopathologisch testen. Het biedt een snelle en nauwkeurige beoordeling van retinale dikte, de mogelijkheid voor het bijhouden van wijzigingen, zoals netvlies uitdunnen of verdikking. Wij presenteren de beeldvorming proces en analyse met het voorbeeld van de Opa1delTTAG muis lijn. Drie soorten scans worden voorgesteld, met kwantificering op twee manieren: standaard en zelfgemaakte remklauwen. De laatste is het beste voor gebruik op het netvlies peripapillary tijdens radiale scans; Being nauwkeuriger, verdient de voorkeur voor het analyseren van dunner structuren. Alle benaderingen die hier worden beschreven zijn ontworpen voor retinale peesknoopcellen (regering van Cambodja) maar zijn gemakkelijk aan te passen aan andere cel populaties. Kortom, OCT is efficiënt in mouse model fenotypering en heeft het potentieel om te worden gebruikt voor de betrouwbare beoordeling van therapeutische interventies.

Inleiding

OCT is een diagnostisch hulpprogramma dat de behandeling van retinale structuren1 vergemakkelijkt, met inbegrip van de kop van de oogzenuw (ONH). Door de jaren heen is het geworden tot een betrouwbare indicator van progressie van de ziekte in mensen2,3, evenals in knaagdieren4,5. Het maakt gebruik van interferometrie transversale om afbeeldingen te maken van retinale lagen met een 2-µm axiale resolutie. De binnenste laag is de retinale zenuw vezel laag (RNFL), met axonen van de regering van Cambodja, die wordt gevolgd door de ganglion cellaag (GCL), met meestal regering van Cambodja organen. Volgende halte is de Meervormige binnenlaag (IPL), waar de regering van Cambodja dendrites bipolaire, horizontaal en amacrine cel axonen ontmoeten. Deze, samen met horizontale cellen, vormen de nucleaire binnenlaag (l), en hun uitsteeksels verbinden met fotoreceptor axonen in de Meervormige buitenlaag (OPL). Dit wordt gevolgd door de nucleaire buitenlaag (ONL), met fotoreceptor cel organen, en is gescheiden van de fotoreceptor laag door de beperkende buitenmembraan (OLM), ook wel genoemd het innerlijke segment/buitenste segment (IS / OS) laag. Ten slotte, de laatste waarneembare lagen in het netvlies van de muis zijn de retinale pigment epitheel (RPE) en het vaatvlies (C). De RNFL alleen is normaal te dun om te worden gemeten in muizen; analyseren van de RNFL/GCL is dus, in plaats daarvan beter4,5. Een andere mogelijkheid is de complexe laag van GC, waarin de laatste naast de IPL, waardoor het dikker en dus nog makkelijker te meten LGO scant4. Bijgevolg, OCT kan inzicht geven in de pathologische status van het netvlies, zoals in OPNs.

De dikte van het netvlies van de muis is ook vaak geanalyseerd met post-mortem histologie. Echter, deze techniek gezichten beperkingen met betrekking tot weefsel collectie, fixatie, snijden, kleuring, montage, etc. dus, sommige gebreken, zoals de dikte van de subtiele veranderingen, kunnen niet worden gedetecteerd. Ten slotte, omdat het dezelfde muis kan niet worden getest op verschillende tijd punten, het aantal dieren per studie sterk toeneemt, in tegenstelling tot voor LGO. Al met al, de niet-invasiviteit, hoge resolutie, mogelijkheid voor herhaling, tijd toezicht op tijd, en gebruiksgemak van de OCT-technologie maken het de methode van keuze in netvlies ziekte studies.

Muismodellen worden gebruikt om te identificeren gene gebreken en ophelderen van de moleculaire mechanismen ten grondslag liggen aan de retinopathies6. OPN is een vorm van retinopathie met aanzienlijke schade aan de oogzenuw (ON), die is samengesteld uit ongeveer 1,2 miljoen regering van Cambodja axonen. OPN kan worden gericht op de ON of kan ondergeschikt zijn aan andere aandoeningen, aangeboren of niet7, hetgeen leidt tot verlies van het gezichtsveld en later, blindheid. Karakteristieke eigenschappen van OPN zijn verlies van de regering van Cambodja en op schade, die kan worden waargenomen in menselijke LGO als RNFL en GCL uitdunnen van2,3. Ondertussen, de pathofysiologie van OPN is nog steeds slecht begrepen, en vandaar de noodzaak voor het testen van muis netvlies blijft.

Dit manuscript beschrijft de beeldvorming en de kwantificering van retinale laagdikte, met behulp van het voorbeeld van de Opa1delTTAG muis lijn8,9, een model van de dominante optic atrofie (DOA)10. Om te beoordelen pathofysiologie van de regering van Cambodja, werden radiaal, rechthoekige en ringvormige scans gekwantificeerd. Dit werd gedaan met de standaard remklauwen verstrekt door de software van de OCT, hetzij met een zelfgemaakte macro ontwikkeld voor een open-source beeldverwerking programma. De standaard remklauwen zijn moeilijk te manipuleren en vaak dikker dan de RNFL/GCL, terwijl de zelfgemaakte remklauwen makkelijk te gebruiken, reproduceerbare en nauwkeuriger zijn. De macro wordt een meting uitgevoerd voor een automatisch gedetecteerde laag, in 5 punten en op vaste posities, aan beide zijden van de ONH in de peripapillary-regio. Het doel van het voorgestelde protocol is te beschrijven van OCT scan overname wilt retinale positionering, met een focus op RGCs.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Protocol

de experimenteel protocol is goedgekeurd door het Institut national de la santé et de la recherche médicale (Inserm; Montpellier, Frankrijk), is in overeenstemming met de Europese richtlijnen, en voldoet aan de ARVO instructie voor het gebruik van dieren in Ophthalmic onderzoek. Het werd uitgevoerd onder het akkoord van de Languedoc Roussillon internationale courtoisie van ethiek in dier experimenten (CEEALR; nuCEEA-LR-12123).

1. apparatuur Setup en pre imaging voorbereiding

Opmerking: hier, OCT werd uitgevoerd op muis netvlies met behulp van de oogheelkundige imaging systeem van spectrale domein (SD) ( figuur 1A). Het SD-OCT-apparaat bestaat uit een basis en een dierlijke imaging mount (AIM) met een knaagdier uitlijning stadium (RAS) ( figuur 1B). De base bevat de computer, de OCT-motor, de SD-OCT-sonde en de muis-specifieke lens. De sonde is gemonteerd op het doel, waaronder de Z-vertaler. Het RAS wordt gebruikt voor muis positionering dankzij de tabel met de X - en Y-vertaler, de cassette die kan worden gedraaid en gedraaid, en de verwisselbare beet bar met de band van de neus. De software die wordt geleverd door de fabrikant zorgt voor de overname en de analyse van OCT bestanden, hoewel de laatste kan ook worden gedaan met een open-source image processing programma.

  1. Stevig de sonde in het doel plaats.
  2. De muis-specifieke lens verbinden met de sonde.
  3. De referentie arm instellingen aanpassen voor de specifieke lens (hier, macht bij 086 en positie op 964).
  4. Ervoor dat de muis-specifieke lens is voldoende afstand van de cassette, hechten de balk beet met de band van de neus op de cassette.
    Opmerking: De afstand tussen de lens en de cassette kan worden aangepast met de Z-vertaler schroef, gelegen aan de achterzijde van het doel. De neus-band is een commercieel beschikbare elastische band, en de spanning moet worden aangepast afhankelijk van de grootte van de muis.
  5. De voeding (rechts onderin de winkelwagen) en vervolgens de computer inschakelen.
  6. Te lanceren van het imaging-programma, dubbelklik op de juiste snelkoppeling op het scherm.
    Opmerking: Dit is afhankelijk van het type van lens; hier, muis Retina.
  7. Maakt een nieuwe klinische studie en voeg de gewenste protocollen. Anders, gebruik van de bestaande klinische studie en/of protocollen.
    1. Toevoegen van een nieuwe studie door te kiezen voor de " studie NameŔ " IDŔ " behandeling Arm specificaties " (hier " Uncategorized "); en vooraf gedefinieerde " scannen protocollen ", als ze bestaan.
  8. Kies een " examinator " in de " klinische studie " sectie.
    Opmerking: voor een nieuwe " examinator ", ga naar " Setup examinatoren & artsen " te definiëren van IT
  9. Toevoegen een nieuwe patiënt in de patiënt/examen sectie door te klikken op toevoegen patiënt; invoeren de " ID ", " naam ", " achternaam ", " sex ", en " geboortedatum " (optioneel).
    Let op: Doe dit net voor het testen van elke muis, als handiger. Zorg ervoor dat de ID niet dan 10 tekens bevatten is. Voor de muis, de refractieve fout voor beide ogen is 0 en de axiale lengte is 23,0.
  10. Klik op " examen toevoegen " en selecteer de gewenste " Protocol " door toe te voegen " Preset scant " vanuit de lijst begint met het oog dat zal eerst worden gemeten (hier, het rechter oog) of door het aanpassen van de scans.
  11. Voor het aanpassen van een scan, een bestaande scan gebruiken als een sjabloon en bewerken of maken van kras door middel van de " toevoegen aangepaste Scan " optie. Na alle de scans aan de lijst toe te voegen, definiëren een nieuw protocol met de " Enter " nieuwe protocolnaam " optie (OS: oculus sinister, linker oog; OD: oculus dexter, rechter oog).
    Opmerking: Hier, het protocol omvat drie scans: (i) een radiale scan, met een diameter van 1.4 mm, 0 mm horizontale en verticale verschuivingen, 1.000 lijnen van A-scans/B-scan, 100 B-scans/volume, 1 frame/B-scan, 80 lijnen voor inactieve A-scans/B-scan, en 1 deel; (ii) een rechthoekige scan, met een 1.4-mm lengte en breedte, hoek van 0°, 0 mm horizontale en verticale verschuivingen, 1.000 lijnen van A-scans/B-scan, 100 B-scans, 1 frame/B-scan, 80 lijnen voor inactieve A-scans/B-scan, en 1 deel; en (iii) een ringvormige scannen, met een minimum- en 0.6 mm maximale diameter van 0.4 mm, 0-mm horizontale en verticale verschuivingen, 1.000 lijnen van A-scans/B-scan, 3 B-scans/volume, 48 frames/B-scan, 80 lijnen voor inactieve A-scans/B-scan, en 1 deel.

2. Voorbereiding van de muis

  1. Eye dilatatie en immobilisatie
    1. ten minste 15 minuten vóór de data-acquisitie, inboezemen dalingen van het oog van de phenylephrine van 10% in de ogen van de muis, het verwijderen van de overtollige en indruppelen van oogdruppels 0,5%-tropicamide.
      Opmerking: De eerste maagdilatatie kan worden gedaan in één keer voor alle de muizen die in de sessie zal worden getest. Zorg ervoor dat de vloeistoffen bij kamertemperatuur.
    2. Onmiddellijk na inducerend narcose (stap 2.2), beheer van 0,4% oxybuprocaine hydrochloride oogdruppels, bewaar ze in de plaats voor 3 s tot anesthetize en immobiliseren van de ogen. Daarna veeg de druppels en herhaal de instillation van 10% phenylephrine en 0,5% tropicamide om na te gaan dat de ogen zijn goed uitgezet.
      Opmerking: Zorg ervoor dat de vloeistoffen bij kamertemperatuur en dat de muis niet de oxybuprocaine slikken doet.
  2. Narcose
    1. een verdoving oplossing van ketamine (20 mg/mL) en xylazine (1,17 mg/mL) in een zoutoplossing bereiden. Bewaren bij 4 ° C voor maximaal 2 weken.
    2. Ongeveer 5 min vóór het testen, injecteren intraperitoneally 5-10 µL van verdoving oplossing per 1 g lichaamsmassa, afhankelijk van de leeftijd en de grootte van de muis.
      Opmerking: Young en/of dunne muizen noodzaak minder verdoving, neem minder tijd om te anesthetize, maar ook sneller ontwaken. Hier, 8 µL/g (160 mg/kg van ketamine, 9.33 mg/kg xylazine).
    3. Eventueel smeren de ogen met viskeuze oogdruppels of een oogheelkundige gel te vermijden hoornvlies droogheid.

3. Positionering van de muis

  1. Lubricate de ogen met viskeuze glycol gebaseerde oog daalt tot het verstrekken van hoornvlies hydratatie.
    Opmerking: Als de ogen droog tijdens het examen lijken, opnieuw toepassen de oogdruppels.
  2. De muis teruglopen in een blad van chirurgische gaas te houden het warm.
  3. Met behulp van een spons of katoen wick, breng een dunne laag van een oogheelkundige gel met 0,3% hypromellose op elk van beide ogen, Vermijd om te minimaliseren lichtbreking, opaciteit en veilige hoornvlies hydratatie. Terwijl doen, verplaatsen de wimpers en snorharen opzij.
  4. Plaats van de muis in de cassette, met het hoofd rechte en wijzen naar voren.
  5. Voorzichtig openen van de klem van de balk beet en de staaf van de plaats in de mond; de neus band gebruiken om de positie veilig.
    Opmerking: Zorg ervoor dat de beet-bar in het midden van de cassette is.
  6. Plaats een katoenen rollen onder de juiste (links) als het rechteroog (links) wordt getest.
  7. Terwijl de clip-on gericht tip over de muis-specifieke lens, breng het naar het oog door het draaien van de Z-vertaler schroef linksom.
  8. Door roteren en draaibare van de cassette en door te draaien aan de bar van de beet en de X-vertaler schroeven, voorgeprogrammeerde de positie van de muis; het doel is dat het rechteroog uiterlijk direct in de lens, en dus op de optische assen van de ogen en de lens uitlijnen.
    Opmerking: Als de muis te hoog of te laag is, de Y-vertaler schroef dient eerst.
  9. Kiezen van de eerste scan in de " examen ", klik op " beginnen gericht ", en maak verder handmatige aanpassingen voor retinale imaging.
    1. Met behulp van de schroef van de Z-vertaler, beweeg het netvlies verticaal op het linker paneel ( Figuur 2, B-scan horizontale uitlijning) en horizontaal op de rvlucht paneel ( Figuur 2, B-scan verticale uitlijning).
    2. Draaien de cassette door te brengen de ONH in het midden van het rechter paneel de ONH omhoog of omlaag verplaatsen. De schroef van de balk beet rechtzetten van het netvlies op het juiste paneel gebruiken De cassette als u wilt plaatsen de ONH in het midden van het linker paneel draaibaar.
    3. Gebruiken de schroef X-vertaler naar het niveau van het netvlies op het linker paneel. Rekening houdend met de belangrijke functie van elke modulator, verder aanpassen van de positie van het netvlies te centraliseren de ONH.
      Opmerking: Gebruik de Y-vertaler schroef om de ONH omhoog en omlaag op het juiste paneel, indien nodig. De positie op elk gewenst moment tussen scans kan worden verfijnd.

4. SD-OCT Imaging van de ONH en netvlies

  1. zodra inhoud met de aanpassingen, klikt u op " beginnen momentopname " om te beginnen met het scannen van de SD-OCT.
    1. Als een 3D-beeldbewerking niet vereist is, schakelt u de optie OCU.
  2. De scan en het rapport opslaan.
  3. Doorgaan met de volgende scans.
  4. Naar het image van het tweede oog, na het intrekken van de lens, zet de cassette dienovereenkomstig en herhaal stappen 3.6-4.3.

5. Voltooiing van de overname

  1. wanneer de overname voltooid is, verwijder de muis uit de cassette, oogheelkundige gel met 0,3% hypromellose aan elk van beide ogen, van toepassing en plaatst u de muisaanwijzer op een verwarmingsplaat up. wakker
  2. Na de laatste overname, sluit de software en schakel de computer en de OCT machine (levering machtsknoop).
  3. Reinigen van de cassette met een ontsmettingsmiddel.

6. Analyse

  1. voor de retinale laag dikte meting, gebruiken de automatische segmentatie software door de fabrikant verstrekte.
    1. Klik op de " patiënt ", kies de gewenste " examen " dan lijst, en klik op de " Review examen " optie.
    2. De gewenste OCT-gegevens op de OCT software laden door met de rechtermuisknop op het mappictogram in de gewenste scan.
    3. Rechts klik op de B-scan; configureren de remklauwen doordat maximaal 10 meten remklauwen; en hun namen, hoeken en kleuren invoeren.
    4. Kiezen van de gewenste remklauw door een met de rechtermuisknop op de B-scan; het dienovereenkomstig plaats op het netvlies voor meting.
      Opmerking: Voor de scans gecentreerd op de ONH, ingesteld 5 remklauwen aan weerskanten van het, gelijke afstanden van elkaar. Bij de analyse van de peripapillary, door ervoor te zorgen dat de remklauw niet ver van de ONH wordt geplaatst. Voor radiale scannen, analyseren 10 foto's per scan die werden gekozen door de OCT-software. Hun nummers kunnen worden gevonden in de " rapporten " map.
    5. De resultaten voor analyse opslaan in een spreadsheet-softwareprogramma door rechts te klikken op de B-scan en te klikken op " resultaten opslaan ".
      Opmerking: De resultaten kunnen gevonden worden in de zelfde omslag zoals het scannen gegevens.
  2. Ook gebruiken de zelfgemaakte remklauw macro, " MRI netvlies Tool ", ontwikkelde voor een open-source image processing program (Zie de tabel van materialen).
    1. Zorg ervoor dat de " MRI netvlies Tool " en de " vormgereedschap sectie wijzigen " macro's actief zijn. Laden van de afbeelding. Klik op de m-toets om te beginnen met de meting.
      Opmerking: De macro automatisch één 0.2 mm lang cassette aan beide zijden van de ONH meten. Elke cassette bevat 5 meetpunten die functie als remklauwen. Hun zijligging is onveranderlijk en is aangepast voor de peripapilla in de radiale scans. De horizontale positie van de cassettes vooraf is gedefinieerd voor het meten van de dikte van de RNFL/GCL, maar het is gemakkelijk aanpasbaar voor het meten van de GC complexe laag in plaats daarvan. Als de scankwaliteit slecht is, de horizontale positie moet worden aangepast of de afbeelding moet worden uitgesloten van de analyse.
    2. Voor horizontale aanpassing, klik op de e-knop. In de onlangs geopende " ROI Manager " venster, kies de eerste cassette.
    3. Klik op de blauwe veelhoek knop en pas de positie van de eerste cassette door te klikken op de grenzen van de gemeten laag in de afbeelding.
      4. Herhaal deze stappen voor de tweede
    4. cassette door eerste kiezen in de " ROI Manager " venster en vervolgens te klikken op het juiste beeld. Klik op de r-toets om opnieuw op te meten. Bekijk de resultaten in de " metingen " venster.
      Opmerking: De resultaten kunnen worden gekopieerd naar een spreadsheetprogramma van de software op elk gewenst moment. Ze bevatten de volgende waarden voor de juiste cassette (r), linker cassette (l) en totaal: Intden - geïntegreerde dichtheid binnen de cassette; Gebied: gebied van de meting, in mm 2; Len: lengte van de remklauw binnen de cassette, in mm; Gemiddelde: bedoel intensiteit van het signaal binnen de cassette; en SOA: de standaardfout van het gemiddelde intensiteit van het signaal.
    5. Doorgaan met de volgende afbeelding.
    6. Verder analyseren van de gegevens in een werkblad softwareprogramma.
      Opmerking: Om te zoeken naar de gemiddelde dikte van de laag, de tien-Len waarden aannemen.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Resultaten

De SD-OCT-technologie kan retinale verbeelden en dikte analyse die vergelijkbaar is met de histologie, maar is sneller en meer gedetailleerde (Figuur 3). Zoals gepresenteerd met wildtype C57Bl/6 muizen, hoewel de kwaliteit van een SD-OCT scan (figuur 3A, rechts) is niet zo goed als die van een afbeelding van een retinale dwarsdoorsnede (figuur 3A, links), het visualiseert meer lagen (bijvoorbeeld...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Discussie

De OCT-systeem, een niet-invasieve in vivo imaging methode, biedt hoge resolutie Retina Cross-Country-section-achtige scans. Het belangrijkste voordeel is dus het potentieel voor gedetailleerde analyse, met de prachtige kans tot omzetting protocollen routinematig toegepast op mensen Muismodellen.

In het voorbeeld van Opa1delTTAG mutant muizen resultaten SD-OCT sprake van een toename van RNFL en GC complexe laagdikte, waardoor voor de verdere verkenning van DOA path...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Openbaarmakingen

De auteurs hebben niets te onthullen.

Dankbetuigingen

Dit werk werd gesteund door Inserm, Université Montpellier, Retina Frankrijk, Union nationale des Aveugles et Déficients Visuels (UNADEV), vereniging syndroom de Wolfram, Fondation pour la Recherche Médicale, Fondation de France, en het laboratorium of Excellence EpiGenMed programma.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Materialen

Lijst van materialen gebruikt in dit artikel
NaamBedrijfCatalogusnummerOpmerkingen
Muizen
Opa1delTTAG muisInstitute for Neurosciences in Montpellier, INSERM UMR 1051, Frankrijk-Opa1 knock-in muizen met  OPA1 c.2708_2711delTTAG mutatie op C57Bl6/J achtergrond
NaamBedrijfCatalogusnummerOpmerkingen
Apparatuur
EnVisu R2200 SD-OCT Imaging SystemBioptigen, Leica Microsystems, Duitsland-Spectral-Domain Optic Coherence Tomography systeem
EnVisu R2200 SD-OCT Imaging System SoftwareBioptigen, Leica Microsystems, Duitsland-Software voor OCT acquisitie en analyse
ImageJ 1.48vWayne Rasband, National Institutes of Health, VS-Software voor analyse, vereist het downloaden en installeren van twee zelfgemaakte macros: http://dev.mri.cnrs.fr/projects/imagej-macros/wiki/Retina_Tool
Zelfsturende verwarmingsplaatBioseb, FrankrijkBIO-062Bescherming tegen hypothermie
NaamBedrijfCatalogusnummerOpmerkingen
Benodigdheden
Neusband--Elastiek
Gaasjes 3" x 3"Curad, VSCUR20434ERBBescherming tegen hypothermie
Dubbelzijdige katoenen applicatorEssence of Beauty, CVS Health Corporation, VS-Gel applicatie
Katoen TwistsCentraVet, FrankrijkT.7979C.CSMuizen positionering
NaamBedrijfCatalogusnummerOpmerkingen
Reagentia en geneesmiddelen
Néosynéphrine Faure 10%Laboratoires Europhtha, Monaco-Oogdilatatie
Mydriaticum 0.5%Laboratoires Théa, Frankrijk3397908Oogdilatatie
Cebesine 0.4%Laboratoire Chauvin, Bausch&Lomb, Frankrijk3192342Lokaal anesthesie
Imalgene 1000Merial, Frankrijk/CentraVet, FrankrijkIMA004Algemene anesthesie
RompunBayer Healthcare, Duitsland/CentraVet, FrankrijkROM001Algemene anesthesie, pijnstilling, spierrelaxatie
NaCl 0.9%Laboratoire Osalia, Frankrijk 103697114Fysiologisch serum
Systene UltraAlcon, Novartis, VS-Hydratisatie van ogen
GenTeal'Alcon, Novartis, VS-Oftalmisch gel om lichtrefractie en opacificaties te minimaliseren
Aniospray Surf 29Laboratoires Anios, Frankrijk59844Ontsmettingsmiddel

Referenties

  1. Drexler, W., Fujimoto, J. G. State-of-the-art retinal optical coherence tomography. Prog Retin Eye Res. 27 (1), 45-88 (2008).
  2. Grenier, J., et al. WFS1 in Optic Neuropathies: Mutation Findings in Nonsyndromic Optic Atrophy and Assessment of Clinical Severity. Ophthalmology. 123 (9), 1989-1998 (2016).
  3. Zmyslowska, A., et al. Retinal thinning as a marker of disease progression in patients with Wolfram syndrome. Diabetes Care. 38 (3), e36-e37 (2015).
  4. Fischer, M. D., et al. Noninvasive, in vivo assessment of mouse retinal structure using optical coherence tomography. PLoS One. 4 (10), e7507(2009).
  5. Grieve, K., Thouvenin, O., Sengupta, A., Borderie, V. M., Paques, M. Appearance of the Retina With Full-Field Optical Coherence Tomography. Invest Ophthalmol Vis Sci. 57 (9), OCT96-OCT104 (2016).
  6. Chang, B., et al. Retinal degeneration mutants in the mouse. Vision Res. 42 (4), 517-525 (2002).
  7. Mustafa, S., Pandit, L. Approach to diagnosis and management of optic neuropathy. Neurol India. 62 (6), 599-605 (2014).
  8. Sarzi, E., et al. The human OPA1delTTAG mutation induces premature age-related systemic neurodegeneration in mouse. Brain. 135 (Pt 12), 3599-3613 (2012).
  9. Sarzi, E., et al. Increased steroidogenesis promotes early-onset and severe vision loss in females with OPA1 dominant optic atrophy. Hum Mol Genet. 25 (12), 2539-2551 (2016).
  10. Delettre-Cribaillet, C., Hamel, C. P., Lenaers, G., et al. Optic Atrophy Type 1. Gene Reviews. Pagon, R. A. 7 (2007), University of Washington. Seattle. (2007).
  11. Lenaers, G., et al. Dominant optic atrophy. Orphanet J Rare Dis. 7 (46), (2012).
  12. Delettre, C., et al. Nuclear gene OPA1, encoding a mitochondrial dynamin-related protein, is mutated in dominant optic atrophy. Nat Genet. 26 (2), 207-210 (2000).
  13. Liu, Y., et al. Monitoring retinal morphologic and functional changes in mice following optic nerve crush. Invest Ophthalmol Vis Sci. 55 (6), 3766-3774 (2014).

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Herprints en machtigingen

Toestemming aanvragen om de tekst of afbeeldingen van dit JoVE-artikel te hergebruiken

Toestemming aanvragen

Trefwoorden

Beeldvorming van de muishutretinameting van de retinadikteniet invasieve beeldvormingspectrale domein OCTanalyse van optische neuropathieretinaal zenuwvezellaagjeperipapillaire retinascanningImage J analyse

Gerelateerde artikelen