Methodenartikel

Brachialis slagader Catheterization in varkens

11.9K weergaven

⸱

DOI:

10.3791/59365

⸱

30 maart 2019

 ,  ,  ,  , 
1Department of Agricultural, Food and Nutritional Science, University of Alberta, 2Neuroscience and Mental Health Institute, University of Alberta, 3Sensory Motor Adaptive Rehabilitation Technology (SMART) Network, University of Alberta, 4Division of Physical Medicine and Rehabilitation, University of Alberta, 5Division of Pediatric Surgery, Department of Surgery, University of Alberta, 6Division of Physical Medicine and Rehabilitation, University of Alberta

In dit artikel

Samenvatting

De video beschrijft in detail de catheterisatie van de distale brachialis slagader in varkens. Deze procedure nauwkeurig meet arteriële bloeddruk en is een eenvoudige en snelle methode voor het verzamelen van monsters voor arteriële bloed gas metingen.

Samenvatting

De video beschrijft in detail de catheterisatie van de distale brachialis slagader in varkens. Deze techniek kan onderzoekers arteriële bloeddruk continu meten en verzamelen van arteriële bloedmonsters om te beoordelen van arteriële bloed gas metingen. Arterieel bloed druk en arteriële bloed gassen zijn belangrijke fysiologische parameters te controleren tijdens de experimentele procedures. In varkens, zijn vier veelgebruikte methoden van arteriële catheterisatie beschreven, met inbegrip van catheterisatie van de carotis, femorale auricular en mediale saphenous slagaders. Elk van deze technieken hebben voordelen, zoals gemak van toegang voor de auricular slagader en nadelen die diepe weefsel dissectie voor halsslagader catheterisatie bevatten. De beschreven alternatieve methode van arteriële catheterisatie in varkens, de catheterisatie van de distale aspect van de brachialis slagader, bestaat er een snelle procedure vereist relatief minimale weefsel dissectie en informatie die is in overeenstemming met de gegevens verzameld van andere sites arteriële catheterisatie. De procedure wordt een mediale aanpak langs een schuin vlak voor de lagere brachium, gepositioneerd tussen de olecranon en de musculus flexor aspect van het ellebooggewricht, en deze benadering biedt onderzoekers het grote voordeel van biedt voor een volstrekte vrijheid voor procedures die betrekking hebben op de caudoventral, caudodorsal achterzijde of hind ledematen van het varken. Dankzij de ligging van de bovenste voorpoot van het catheterized schip en potentiële uitdagingen van effectieve homeostase na verwijderen van de katheter uit de ader, kan deze techniek worden beperkt tot niet-invordering procedures.

Inleiding

Chirurgische ingreep wordt gebruikt in experimenteel onderzoek voor de ontwikkeling van diermodellen die verbeteren van wetenschappelijke ontwikkeling. De wetenschappelijke literatuur is gevuld met voorbeelden van roman chirurgische diermodellen1,2,3. Chirurgische ingrepen zijn een complex proces waarbij niet alleen de manipulatie van anatomische structuren maar ook ingewikkelde fysiologische interacties met verschillende drugs vereist voor anesthesie en analgesie. Deze wisselwerking kan leiden tot grote veranderingen in de fysiologische processen binnen het dier en als zodanig vereist waakzaam toezicht van de dierlijke4. Klinisch succesvolle chirurgische resultaten zijn geassocieerd met metingen van arteriële bloed gassen en arteriële bloed druk5. Deze klinische parameters vereist de mogelijkheid om arteriële bloeddruk meten en verzamelen van arteriële bloed effectief, die op haar beurt de succesvolle catheterisatie van een slagader6,7 vereist.

Arteriële catheterisatie verzamelen van arteriële bloed te meten druk is gebruikt in diverse diersoorten5,6,7,8,9,10, 11 , 12 , 13 , 14 , 15 , 16 , 17 , 18 , 19 , 20 , 21 en dieren op verschillende leeftijden van ontwikkeling19,20,21 en is gericht op zowel herstel (klinische en diagnostische) procedures4,5, 6,7,8 en niet-invordering (experimenteel) procedures14,15,16,17,18. Bovendien, het gemak van arteriële toegang en de locatie van de slagader in de context van de chirurgische ingreep zijn ook belangrijke overwegingen bij het kiezen van een slagader voor arteriële bloed metingen. Bijvoorbeeld, de mediane caudal slagader bij honden en het gezicht slagader in paarden, evenals de pedaal slagader bij zowel honden en paarden, worden gebruikt voor diagnostische meting en controle tijdens herstel procedures6,7, 8. daarentegen de halsslagader en de femorale slagaders zijn vaak catheterized in varkens hetzij teruggevorderd of langdurige katheter implantatie experimenten14,15,18.

In varkens, heeft arteriële catheterisatie te meten of arteriële bloeddruk of arteriële bloed te verzamelen regelmatig werkzaam ofwel de halsslagader, femur, mediale saphenous, of auricular slagaders22,23. Voor gespecialiseerde niet-routinematige procedures, zijn andere meer ongewone slagaders gebruikt, met inbegrip van de subclavian en iliacale slagaders, voor het meten van de arteria brachialis anatomische tortuosity17 en beeld van de aorta16, respectievelijk. Ongeacht welke slagader wordt gekozen voor catheterisatie, elke slagader heeft inherente voordelen en nadelen voor het gebruik ervan. Bijvoorbeeld, de auricular slagader is anatomisch gemakkelijk te bereiken, maar het gebruik ervan kan worden beperkt tot de directe nabijheid van de marginale oor aderen11,12. Ter vergelijking: de halsslagader is relatief groot en robuuste24, maar het ligt diep in de jugular furrow en inhoudelijke weefsel dissectie25vereist. Als zodanig is het identificeren van een andere slagader die kon worden catheterized om te meten van de arteriële druk en verzamelen van arteriële bloed is gerechtvaardigd. Deze video en manuscript beschrijven in detail de catheterisatie van de distale brachialis slagader in varkens, een techniek die kan worden toegepast op niet-terugvorderingsprocedures. Met name werd het varken brachialis slagader catheterisatie gebruikt als eenheid van arteriële bloed druk en arteriële bloedparameters gas tijdens een operatie van de lumbale wervelkolom met hind-limb metingen (de gegevens uit dit deel van de operatie is niet ingediend).

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Protocol

Alle procedures op proefdieren beschreven in zowel de video als het manuscript werden goedgekeurd door de institutionele Animal Care en gebruik van het Comité van de Universiteit van Alberta

1. de chirurgische anesthesie en de chirurgische bereiding van de varkens.

  1. Premedicate 50 kg landras-Yorkshire commerciële varkens intramuscularly met de verdoving drug cocktail met ketamine hydrochloride (22 mg/kg,), xylazine hydrochloride (2,2 mg/kg) en glycopyrrolaat waterstofchloride (10 µg/kg).
  2. Instellen dat alle apparatuur die betrokken zijn bij de controle van de klinische parameters aan het einde van de tabel in de buurt van de kop van het varken. Zorgen dat de apparatuur zal niet de toegang tot het varken. Produceren nauwkeurige arteriële bloeddruk meting door het plaatsen van de transducer druk in een horizontaal vlak, niveau met het hart.
  3. Anesthetize van de varkens met geïnhaleerde Isofluraan gas (4-5% Isofluraan op 500-1000 mL/min O2) met behulp van een juiste afmeting gezichtsmasker. Visualiseren van de stembanden met een veterinaire Laryngoscoop (17-25 cm lange rechte mes) en toepassing van actuele 10% lidocaïne spay aan de stembanden te beperken van het risico van laryngospasm en luchtweg obstructie.
  4. Intubate van de varkens door het invoegen van een radialis Endotracheale tube (9.0 mm inwendige diameter (ID)) door middel van de stembanden en onderhouden van anesthesie met Isofluraan gas (0,5% - 3,0% Isofluraan op 1000-2000 mL/min O2). Ventileer het varken op een mechanische ventilator (18-22 adem/min) en zorgen voor alle verlopen verdoving gas is opruiming en geventileerde buiten het chirurgische suite. Beoordelen van het niveau van de verdoving door kaak Toon, en de zowel de pedaal en de ooglidreflex reflex reacties.
    Opmerking: Intraveneuze Lactated Ringer's oplossing beheren (LRS, 10-50 mL/kg/h; Zie stap 1.6) Isofluraan gas anesthesie te verbeteren van hemodynamische functie induced depressie van cardiovasculaire output in varkens26.
  5. Het beveiligen van een Pulsoximeter naar de mucosal oppervlakte van de tong met medische tape monitor hartslag en de verzadiging van perifeer bloed oxygenatie (SpO2). Invoegen een temperatuur probe ongeveer 2-4 cm in de neusholte om lichaamstemperatuur te bewaken. Plaats de varkens op een verwarmde tabel te handhaven van de normale lichaamstemperatuur (38-40 ° C) tijdens de chirurgische ingreep.
  6. Chirurgische steriliteit met goede weefsel voorbereiding zorgen.
    1. Reinig de buitenzijde van het oor te bereiden veneuze catheterisatie met 10% Povidon-jodium chirurgische scrub oplossing en laat de oplossing voor lucht droog.
    2. Catheterize met een 20 G, 1 inch intraveneuze katheter, een marginale oor ader te leveren beide intraveneuze vloeistoffen (LRS; 10-50 mL/kg/h) of de toevoeging van andere verdoving agenten.
    3. Varken narcose en analgesie verbeteren indien nodig voor invasieve procedures met continue intraveneuze remifentanil hydrochloride infusie (0.05-0.14 µg/kg/min).
  7. Plaats het varken in een ligfiets zijligging en voorzichtig uit te breiden de voorkant been ongeveer 10-12 cm afstand van de schouder. Klem het haar op het huidoppervlak van het mediale aspect van de brachium (bovenste voorpoot). Landmark de pols van de distale brachialis slagader door palpatie.
    Opmerking: De gelandmerkte locatie van de slagader ligt langs een schuin vlak met de brachium ongeveer 9 cm vanaf de olecranon, en 5 cm vanaf de musculus flexor aspect van het ellebooggewricht. De brachialis slagader reist proximally naar de caudal derde van het schouderblad doorlopen van de bovenarm.
  8. Op dezelfde manier om 1.6, zorgen voor chirurgische steriliteit met goede weefsel voorbereiding. Schoon het huidoppervlak met 10% Povidon-jodium chirurgische schrobben oplossing en laat de oplossing voor lucht droog. Drape de brachialis slagader catheterisatie site met vier kleine wegwerp afdeklakens.

2. de weefsels dissectie en catheterisatie van de brachialis slagader

  1. Maak een incisie van de huid van 6 cm met een scalpel mes om het onderliggende weefsel bloot te stellen. Bot ontleden met Metzenbaum schaar langs het mediale oppervlak van de biceps brachii, verdieping van de dissectie, totdat de pulserende slagader wordt geïdentificeerd.
  2. Gebruik katoenen wissers te zacht plagen weg de adventitia van de arteria brachialis, de mediane zenuw en de brachialis ader; structuren die in de nabijheid en binnen hetzelfde fasciaal vlak. Zachte dissectie is vereist, vooral zorgen voor minimale schade aan de n. medialis tijdens de procedure. De brachialis slagader ongeveer 2.0-2.5 cm onder de huid ligt en mediale coracobrachialis en lateral aan de tensor fasciae antibrachii is een klein segment van de mediale kop van de triceps spier27,28overlies.
    Opmerking: Plaats een oprolmechanisme te houden van de huid incisie geopend, gemakkelijker toegang tot de brachialis slagader. Plaats een tweede oprolmechanisme (facultatief) als u wilt verder helpen bij het vaartuig blootstelling.
  3. Bevochtig alle weefsels met warme zoutoplossing (37 ° C) voor de gehele dissectie beter structurele integriteit en verbeterde weefsel behandeling tijdens de procedure te behouden.
  4. Maken van een tunnel onder de slagader met een afgestompte Tang, dan passeren drie 2-0 polyglactin hechtingen onder de slagader. Opzet, laat de uiteinden van deze relatief lange hechtdraad (3-4 cm) teneinde de katheter aan de slagader. Het toevoegen van een "losse hechtdraad gelijkspel" waardoor snelle katheter vastmaken, aan de eerste twee hechtingen die 1.0 cm van elkaar zijn gescheiden en zijn ongeveer 1,5-2,0 cm proximaal aan de derde distale hechtdraad. Het afbinden van de meest distale hechtdraad eerst om het occlude van de slagader.
  5. Binnenwerk een 22 G, 1 inch perifere veneuze katheter in de slagader en dan verder de katheter (volledig op de katheter hub) uit de stilet in het schip. Gedeeltelijk trekken de pistolen uit de katheter te visualiseren arteriële bloed, zorgen voor de juiste schip plaatsing van de katheter. Stevig beveiligt u de katheter in het vaartuig door de koppelverkoop van de middelste hechtdraad. Verwijder de pistolen en de katheter om te minimaliseren bloeden snel van het GLB.
  6. Spoel de ingesneden en katheter met warme zoutoplossing (37 ° C). Bind de meest proximale hechtdraad en belangrijker ervoor te zorgen dat de distale hechtdraad strak rond de katheter hub is beveiligd, zoals dit verbetert de stabiliteit van de katheter en accidentele ontsporing van de katheter uit de ader (dat wil zeggen, tijdens het varken herpositionering vermindert).
    Opmerking: Als de eerste plaatsing van de katheter in de slagader mislukt, of het vaartuig is gewond, opnieuw invoegen de katheter in de slagader op een positie ongeveer 0,25 cm proximaal naar de site van eerste katheter inbrengen.
  7. Snel hechten de LRS gevuld intraveneuze verlengingslijn met de aangesloten arteriële drukopnemer aan de katheter, waarna lavage de chirurgische site met warme zoutoplossing 37 ° C, vochtig, houden van weefsels en reinigen van alle bloed dat in het omringende weefsel vergoten . Spoel de katheter met zoutoplossing katheter bij zorgen en voorkomen dat bloedstolsels vormen langs de muur van de katheter.
    Opmerking: Controleer voor transducer arteriële bloeddruk lijn storingen (dat wil zeggen, lekken), leg transducer basislijn door zeroing arteriële druk monitor metingen vast en zorgen voor goede arteriële bloeddruk Golf formaties.
  8. Zorgen voor verdere katheter bij door het behoud van de verzonken poort van de verlengingslijn drukkend boven 250 mmHg, met cadeauzakje ei druk leveren van 3-5 mL/min LRS.
    1. Optioneel: Plaats twee 2-0 polypropyleen of twee 2-0 polyglactin hechtingen rond de katheter hub of intraveneuze extensie lijn hub katheter stabiliteit binnen de slagader verder te verbeteren.

3. de weefsels sluiting en positionering van het lichaam

  1. Sluit de spier lagen met een eenvoudige continu hechtdraad patroon met een 2-0 polyglactin hechtdraad op een snijdende of taps toelopende naalden en sluit de huid in een eenvoudige onderbroken hechtdraad patroon met een 2-0 van polypropyleen hechtdraad op een scherpe naald.
    Opmerking: Door elkaar, 2-0 polyglactin of 2-0 polypropyleen hechtingen kunnen worden gebruikt om spieren en huid te sluiten.
  2. Plaats het varken in de ventrale lighouding door het draaien van de buik van een laterale ligfiets varken richting de chirurgische tabel. Een linker dubbelzijdige laterale ligfiets varken wordt gedraaid in een richting van de klok, terwijl een dubbelzijdige laterale ligfiets varken wordt gedraaid in een teller rechtsom recht.
  3. Plaats de catheterized voorpoot onder een hoek van 40° aan de middellijn van de wervelkolom van het varken. Deze plaatsing van de voorpoot genereert de beste arteriële doorbloeding en de meest nauwkeurige metingen van de arteriële bloeddruk.

4. controle van de klinische parameters

  1. Maatregel hemodynamische en respiratoire parameters evenals de temperatuur gedurende de gehele verdoving en chirurgische procedure met behulp van de juiste bewakingsapparatuur.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Resultaten

Brachialis slagader catheterisatie zorgt voor continue bewaking van de arteriële bloeddruk en intermitterende monsterneming van arteriële bloed tijdens uitgebreide chirurgische procedures in varkens. Gemeten parameters werden verzameld uit zeven 50 kg landras-Yorkshire commerciële varkens zoals beschreven. De totale benodigde tijd voor het catheterize van de brachialis slagader was 35.2 ± 4.4 min vanaf de eerste slagader-landmarking tot sluiting van de definitieve chirurgische insnijding ...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Discussie

Arteriële catheterisatie voor het meten van de arteriële druk van het bloed en verzamelen van bloedmonsters voor arteriële bloed gas metingen is gevestigd in een groot aantal diersoorten5,,6,,7,8 , 9 , 10 , 11 , 12 , 13

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Openbaarmakingen

De auteurs hebben niets te onthullen.

Dankbetuigingen

Dit werk werd gesteund door de Canadese instituten van gezondheidsonderzoek en de Stichting van Canada voor de toekenning van de innovatie aan V. K. Mushahwar. A. Toossi werd gesteund door een Vanier Canada Graduate beurs, Alberta innoveert - gezondheid oplossingen Graduate studententijd en een Graduate beurs van koningin Elizabeth II. VK Mushahwar is een Canada Research Chair in functionele herstel. Wij willen erkennen van Mr. J. Stack van Moss Street Productions voor zijn hulp met de audioproductie en medewerkers van het chirurgische Medical Research Institute voor hun hulp bij de procedures.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Materialen

```html
Lijst van materialen gebruikt in dit artikel
NaamBedrijfCatalogusnummerOpmerkingen
0.9% NaCl (Saline) OplossingEMRNJB1322P1 x1 liter zak
10% Lidocaine sprayAstraZenecaDIN:02039508 / 1 x  50 ml  fles
10% Povidone-Jodium scrubPurdue Pharma5212321 x 500 ml fles 
20 ga 1-inch angiocatheterBecton Dickinson3814331 x angiocatheter
2-0 polyglactin naalddraad (Vicryl)EthiconJ339H2-0 vicryl / 1 pakket naalddraad
2-0 polypropyleen naalddraad (Prolene) Ethicon8833H2-0 prolene / 1 pakket naalddraad
22 ga 1-inch angiocatheterBecton Dickinson3814231 x angiocatheter
9 ID mm endotracheale buisJorvetJ0835P1 x endotracheale buis
Arteriële bloeddruk IV-lijnArgon Medical Devices1124111 x arteriële bloeddruk IV-lijn
Wegwerp schermenHalyard Sales LLC897314-8 x wegwerp schermen 
Glycopyrrolaathydrochloride SandozDIN:02039508 / 1 x 20ml fles
IsofluraanAbbott Animal  Health05260-51 x 250ml fles
Kelly pincet-gebogen (14cm)Stevens162-7-388-10  instrumenten
KetaminehydrochlorideVetoquinolDIN:02374994 / 1 x 10ml fles
Lactated Ringer's oplossingHospira0409-7953-094 x1 liter zak
Metzenbaum schaarFine Science14518-18
Miller laryngoscoopbladWelch Allyn68044182 mm lengte  / 1 instrument
Neus temperatuur sondeSurgivetV34171 sonde
NaaldbestuurdersStevens162-V98-422 instrumenten
Q tip applicatorenFisher Scientific22-037-96020-40  app
RemifentanilhydrochlorideTEVADIN:0234432 / 1 mg fles
Surgivet adviseur: Vital signs monitorSurgivetV92031 monitor
Weitlaner retractorStevens162-11-602 2 retractoren
XylazinhydrochlorideBayerDIN:02169606 1 x 50ml fles
```

Referenties

  1. Uwiera, R. R., et al. Plasmid DNA induces increased lymphocyte trafficking: a specific role for CpG motifs. Cellular Immunology. 214 (2), 155-164 (2001).
  2. Uwiera, R. R., Kastelic, J. P., Inglis, G. D. Catheterization of intestinal loops in ruminants. Journal of Visualized Experiments. (28), (2009).
  3. Uwiera, R. R., Mangat, R., Kelly, S., Uwiera, T. C., Proctor, S. D. Long-Term Catheterization of the Intestinal Lymph Trunk and Collection of Lymph in Neonatal Pigs. Journal of Visualized Experiments. (109), (2016).
  4. Wohlfender, D. H., et al. International online survey to assess current practice in equine anaesthesia. Equine Veterinary Journal. 47, 65-71 (2015).
  5. Dugdale, A. H., Taylor, P. M. Equine anaesthesia-associated mortality: where are we now? Veterinay Anaesthesia Analgesia. 43 (3), 242-255 (2016).
  6. McGrotty, Y., Brown, A. Blood gases, electrolytes and interpretation 1. Blood gases. In Practice. 35 (2), 59-65 (2013).
  7. Taylor, P. M. Techniques and clinical application of arterial blood pressure measurement in the horse. Equine Veterinary Journal. 13, 271-275 (1981).
  8. Trim, C. M., Hofmeister, E. H., Quandt, J. E., Shepard, M. K. A survey of the use of arterial catheters in anesthetized dogs and cats: 267 cases. Journal of Veterinary Emergency and Critical. 27, 89-95 (2017).
  9. Komine, H., Matsukawa, K., Tsuchimochi, H., Nakamoto, T., Murata, J. Sympathetic cholinergic nerve contributes to increased muscle blood flow at the onset of voluntary static exercise in conscious cats. American Journal of Physiology - Regulatory, Integrative and Comparative Physiology. 295 (4), R1251-R1262 (2008).
  10. Krista, L. M., Beckett, S. D., Branch, C. E., McDaniel, G. R., Patterson, R. M. Cardiovascular Responses in Turkeys as Affected by Diurnal Variation and Stressor. Poultry Science. (60), 462-468 (1981).
  11. Bass, L. M., Yu, D. Y., Cullen, L. K. Comparison of femoral and auricular arterial blood pressure monitoring in pigs. Veterinay Anaesthesia Analgesia. 36 (5), 457-463 (2009).
  12. Karnabatidis, D., Katsanos, K., Diamantopoulous, A., Kagadis, G. C., Siablis, D. Transauricular arterial or venous access for cardiovascular experimental protocols in animals. Journal of Vascular and Interventional Radiology. 17 (11 Pt 1), 1803-1811 (2006).
  13. Namba, K., Kawamura, Y., Higaki, A., Nemoto, S. Percutaneous medial saphenous artery approach for Swine central artery access. Journal of Investigative Surgery. 26 (6), 360-363 (2013).
  14. Hong, Y., et al. Feasibility of Selective Catheter-Directed Coronary Computed Tomography Angiography Using Ultralow-Dose Intracoronary Contrast Injection in a Swine Model. Investigative Radiology. (50), 449-455 (2015).
  15. Kumar, A., et al. Aortic root catheter-directed coronary CT angiography in swine: coronary enhancement with minimum volume of iodinated contrast material. American Journal of Roentgenology. (188), W415-W422 (2007).
  16. Park, J. H., et al. Safety and Efficacy of an Aortic Arch Stent Graft with Window-Shaped Fenestration for Supra-Aortic Arch Vessels: an Experimental Study in Swine. Korean Circulation Journal. 47 (2), 215-221 (2017).
  17. Carniato, S., Mehra, M., King, R. M., Wakhloo, A. K., Gounis, M. J. Porcine brachial artery tortuosity for in vivo evaluation of neuroendovascular devices. American Journal of Neuroradiology. 34 (4), E36-E38 (2013).
  18. Hannon, J. P., Bossone, C. A., Wade, C. E. Normal Physiological Values for Consious pigs used in Biomedical Research. Laboratory Animal Science. 40, 293-298 (1990).
  19. Nijland, M. J., Shankar, U., Iyer, V., Ross, M. G. Assessment of fetal scalp oxygen saturation determination in the sheep by transmission pulse oximetry. American Journal of Obstetrics and Gynecology. 183 (6), 1549-1553 (2000).
  20. Yawno, T., et al. Human Amnion Epithelial Cells Protect Against White Matter Brain Injury After Repeated Endotoxin Exposure in the Preterm Ovine Fetus. Cell Transplantation. 26 (4), 541-553 (2017).
  21. Amaya, K. E., et al. Accelerated acidosis in response to variable fetal heart rate decelerations in chronically hypoxic ovine fetuses. American Journal of Obstetrics and Gynecology. 214 (2), e270-e271 (2016).
  22. Malavasi, L. M. Swine. Anesthesia and Analgesia for Domestic Species. , 5, John Wiley & Sons Inc. New Jersey. (2015).
  23. Moon, P. F., Smith, L. J. General Anesthetic Techniques in Swine. Veterinary Clinics of North America: Food Animal Practice. 12 (3), 663-691 (1996).
  24. Caramoni, P. R. A., et al. Postangioplasty restenosis: a practical model in the porcine carotid artery. Brazilian Journal of Medical and Biological Research. (30), 1087-1091 (1997).
  25. Sisson, S. The Anatomy of the Domestic Animals. , 2, W. B. Saunders Company. Philadelphia. 636-638 (1930).
  26. Lundeed, A. B., Manohar, M., Parks, C. Systemic distribution of blood flow in swine while awake and during 1.0 and 1.5 MAC isoflurane anesthesia with or without 50% nitrous oxide. Anesthesia and Analgesia. 31, 499-512 (1983).
  27. Sisson, S. The Anatomy of the Domestic Animals. , 2, W. B. Saunders Company. Philadelphia. 302-304 (1930).
  28. Adin, C. A., Gregory, C. R., Adin, D. B., Cowgill, L. D., Kyles, A. E. Evaluation of three peripheral arteriovenous fistulas for hemodialysis access in dogs. Veterinary Surgery. 31 (5), 405-411 (2002).
  29. Gladczak, A. K., Shires, P. K., Stevens, K. A., Clymer, J. W. Comparison of indirect and direct blood pressure monitoring in normotensive swine. Research in Veterinary Science. 95 (2), 699-702 (2013).
  30. Wenzel, K., et al. Survey of Effects of Anesthesia Protocols on Hemodynamic Variables in Porcine Cardiopulmonary Resuscitation Laboratory Models Before Induction of Cardiac Arrest. Comparative Medicine. 50 (6), 644-648 (2000).
  31. Duval, J. D., Pang, J. M., Boysen, S. R., Caulkett, N. A. Cardiopulmonary Effects of a Partial Intravenous Anesthesia Technique for Laboratory Swine. Journal of the American Association for Laboratory Animal Science. 57 (4), 376-381 (2018).
  32. Friendship, R. M., Lumsden, J. H., McMillan, I., Wilson, M. R. Hematology and Biochemistry Reference Values for Ontario Swine. Canadian Journal of Comparative Medicine. (48), 390-393 (1984).
  33. Kiorpes, A. L., MacWilliams, P. S., Schenkman, D. I., Bickstrom, L. R. Blood Gas and Hematological Changes in Experimental Peracute Porcine Pleuropneumonia. Canadian Journal of Veterinary Research. (54), 164-169 (1990).
  34. Klem, T. B., Bleken, E., Morberg, H., Thoresen, S. I., Framstad, T. Hematologic and biochemical reference intervals for Norwegian crossbreed grower pigs. Veterinary Clinical Pathology. 39 (2), 221-226 (2010).
  35. Sisson, S. The Anatomy of the Domestic Animals. , 2, W. B. Saunders Company. Philadelphia. 804-810 (1930).
  36. Lopes-Berkas, V. C., Jorgenso, M. A. Measurement of Peripheral Arterial Vasculature in Domestic Yorkshire Swine by Using Quantitative Vascular Angiograph. Journal of the American Association for Laboratory Animal Science. 50 (5), 628-634 (2011).
  37. Geary, R. L., et al. Wound healing: A paradigm for lumen narrowing after arterial reconstruction. Journal of Vascular Surgery. (27), 96-108 (1998).

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Herprints en machtigingen

Toestemming aanvragen om de tekst of afbeeldingen van dit JoVE-artikel te hergebruiken

Toestemming aanvragen

Trefwoorden

Arteri le catheterisatie bij varkensarteri le bloeddrukarterieel bloedgasarteria brachialis distalisweefseldissectiecatheterplaatsingchirurgische procedurehemodynamische monitoringchirurgie zonder herstel

Gerelateerde artikelen